RU2698017C1 - Method for creating experimental model of glaucoma in rats - Google Patents
Method for creating experimental model of glaucoma in rats Download PDFInfo
- Publication number
- RU2698017C1 RU2698017C1 RU2018147209A RU2018147209A RU2698017C1 RU 2698017 C1 RU2698017 C1 RU 2698017C1 RU 2018147209 A RU2018147209 A RU 2018147209A RU 2018147209 A RU2018147209 A RU 2018147209A RU 2698017 C1 RU2698017 C1 RU 2698017C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- glaucoma
- rats
- solution
- methyl
- undecanol
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 21
- 208000010412 Glaucoma Diseases 0.000 title claims abstract description 19
- 241000700159 Rattus Species 0.000 title claims abstract description 6
- 210000002159 anterior chamber Anatomy 0.000 claims description 11
- -1 sodium chloride 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol Chemical compound 0.000 claims description 6
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 8
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 5
- 230000006698 induction Effects 0.000 abstract description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 abstract description 4
- 239000003945 anionic surfactant Substances 0.000 abstract description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 abstract description 2
- ZNVVFVQLSXWPEV-UHFFFAOYSA-N (7-ethyl-2-methylundecan-4-yl) hydrogen sulfate;sodium Chemical compound [Na].CCCCC(CC)CCC(CC(C)C)OS(O)(=O)=O ZNVVFVQLSXWPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 2
- 238000005457 optimization Methods 0.000 abstract 1
- 238000004088 simulation Methods 0.000 abstract 1
- 210000004087 cornea Anatomy 0.000 description 10
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 8
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 6
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 5
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 5
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 4
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 4
- 230000004410 intraocular pressure Effects 0.000 description 4
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 3
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 3
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 3
- 238000011161 development Methods 0.000 description 3
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 3
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 3
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 3
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 3
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 238000012014 optical coherence tomography Methods 0.000 description 3
- 206010063560 Excessive granulation tissue Diseases 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 2
- UCTWMZQNUQWSLP-UHFFFAOYSA-N adrenaline Chemical compound CNCC(O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 UCTWMZQNUQWSLP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 210000000795 conjunctiva Anatomy 0.000 description 2
- 210000001126 granulation tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 2
- 239000005995 Aluminium silicate Substances 0.000 description 1
- 241000700112 Chinchilla Species 0.000 description 1
- 206010010726 Conjunctival oedema Diseases 0.000 description 1
- 206010011033 Corneal oedema Diseases 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical group CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000037273 Pathologic Processes Diseases 0.000 description 1
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 235000012211 aluminium silicate Nutrition 0.000 description 1
- 210000003484 anatomy Anatomy 0.000 description 1
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001174 ascending effect Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000004590 computer program Methods 0.000 description 1
- 201000004778 corneal edema Diseases 0.000 description 1
- 210000002555 descemet membrane Anatomy 0.000 description 1
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 1
- 210000003560 epithelium corneal Anatomy 0.000 description 1
- 210000000416 exudates and transudate Anatomy 0.000 description 1
- 230000003176 fibrotic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 1
- 230000003179 granulation Effects 0.000 description 1
- 238000005469 granulation Methods 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000010253 intravenous injection Methods 0.000 description 1
- NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N kaolin Chemical compound O.O.O=[Al]O[Si](=O)O[Si](=O)O[Al]=O NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000002690 local anesthesia Methods 0.000 description 1
- 230000000527 lymphocytic effect Effects 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000004660 morphological change Effects 0.000 description 1
- 238000007491 morphometric analysis Methods 0.000 description 1
- 230000003562 morphometric effect Effects 0.000 description 1
- 238000013425 morphometry Methods 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 238000002559 palpation Methods 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 230000008506 pathogenesis Effects 0.000 description 1
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 1
- 230000009054 pathological process Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 229910052938 sodium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000013517 stratification Methods 0.000 description 1
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Mathematical Analysis (AREA)
- Mathematical Physics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Algebra (AREA)
- Computational Mathematics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Mathematical Optimization (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Pure & Applied Mathematics (AREA)
- Business, Economics & Management (AREA)
- Educational Administration (AREA)
- Educational Technology (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, в частности, к офтальмологии, и может быть использовано для воспроизведения модели глаукомы у крыс.The invention relates to medicine, in particular to ophthalmology, and can be used to reproduce a model of glaucoma in rats.
В настоящее время разработаны различные экспериментальные методы индукции глаукомы у животных: путем многократных внутривенных инъекций кроликам по 0,1 мл раствора адреналина 1:1000 через день в течение 3 месяцев (Офтальмолог. журн., 1996, N 3, с. 221-223, Липовецкая Е. М.), введении в переднюю камеру глаза 1-2% коллоидного раствора каолина в количестве 0,2-0,3 мл (Патологическая анатомия и патогенез глаукомы. - М.: Медицина, 1966, с. 173 и 174, Пригожина А.Л.).At present, various experimental methods for the induction of glaucoma in animals have been developed: by repeated intravenous injections in rabbits, 0.1 ml of 1: 1000 adrenaline solution every other day for 3 months (Ophthalmologist. Zh., 1996, N 3, pp. 221-223, Lipovetskaya E. M.), the introduction into the anterior chamber of the eye of 1-2% colloidal solution of kaolin in an amount of 0.2-0.3 ml (Pathological anatomy and pathogenesis of glaucoma. - M .: Medicine, 1966, S. 173 and 174, Prigozhina A.L.).
Перечисленные методы имеют существенные недостатки: длительность методик, рассасывание введенных веществ через 1-2 месяца и снижение внутриглазного давления (ВГД) через 2-3 месяца, а также реализация эксперимента только у относительно крупных животных (кроликах).These methods have significant drawbacks: the duration of the methods, resorption of the injected substances after 1-2 months and a decrease in intraocular pressure (IOP) after 2-3 months, as well as the experiment only in relatively large animals (rabbits).
Наиболее близким к предлагаемому способу является способ создания модели экспериментальной глаукомы с помощью введения в переднюю камеру глаза 3%-ного раствора 2-метил-7-этилундецил-4-сульфат натрия объемом 0,3 мл (Способ создания модели экспериментальной глаукомы Азнабаев Б.М., Азнабаев М.Т., Кригер Г.С., Соломатникова С.Р.; патент RU2164396, 16.07.1998). Closest to the proposed method is a method of creating a model of experimental glaucoma by introducing into the anterior chamber of the eye a 3% solution of sodium 2-methyl-7-ethylundecyl-4-sulfate 0.3 ml in volume (Method for creating a model of experimental glaucoma Aznabaev B.M. ., Aznabaev M.T., Krieger G.S., Solomatnikova S.R .; patent RU2164396, July 16, 1998).
Согласно этому методу, экспериментальная глаукома моделируется путем введения в переднюю камеру глаза кроликов породы Шиншилла 3%-ного раствора 2-метил-7-этилундецил-4-сульфат натрия объемом 0,3 мл. Значительное повышение внутриглазного давления наблюдалось спустя неделю от введения препарата. According to this method, experimental glaucoma is modeled by introducing into the anterior chamber the eyes of Chinchilla rabbits 3% sodium 2-methyl-7-ethylundecyl-4-sodium sulfate solution with a volume of 0.3 ml. A significant increase in intraocular pressure was observed a week later from the administration of the drug.
Недостатками указанного метода являются: длительность методики - повышение ВГД через неделю от введения препарата, а также создание модели глаукомы только у относительно крупных животных.The disadvantages of this method are: the duration of the method is an increase in IOP in a week from the administration of the drug, as well as the creation of a glaucoma model only in relatively large animals.
Новой технической задачей изобретения является оптимизация метода индукции глаукомы, отличающегося технической простотой, введением в переднюю камеру глаза реагента 7-этил-2-метил-4-ундеканол гидрогенсульфата натриевой соли, быстрым – в течение 48 часов – воспроизведением патологического процесса, а также получение заболевания у относительно мелких животных. A new technical task of the invention is to optimize the method of inducing glaucoma, which is distinguished by its technical simplicity, introducing 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol sodium hydrogen sulfate reagent into the anterior chamber of the eye, quickly reproducing the pathological process within 48 hours, and also obtaining the disease in relatively small animals.
Для решения поставленной задачи при создании экспериментальной модели глаукомы выполняют однократное введение в переднюю камеру глаза крыс породы Wistar 3%-ного раствора 7-этил-2-метил-4-ундеканол гидрогенсульфата натриевой соли объемом 0,1 мл, который обладает поверхностно-активными свойствами (анионный сурфактантный детергент), является веносклерозирующим препаратом и позволяет ускорить моделирование экспериментальной глаукомы.To solve this problem, when creating an experimental model of glaucoma, a single injection of a 0.1% solution of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol sodium hydrogen hydrogen sulfate of a sodium salt volume of 0.1 ml, which has surface-active properties, is performed into the anterior chamber of the eyes of Wistar rats (anionic surfactant detergent), is a venosclerosing drug and allows you to accelerate the modeling of experimental glaucoma.
Применение предлагаемого способа индукции глаукомы обеспечивает формирование глаукоматозного процесса, что в дальнейшем позволяет использовать полученную модель заболевания в качестве объекта исследований при изучении особенностей течения глаукомы и разработке эффективных методов лечения заболевания.The application of the proposed method for the induction of glaucoma provides the formation of a glaucomatous process, which subsequently allows you to use the resulting model of the disease as an object of research in studying the features of the course of glaucoma and developing effective methods of treating the disease.
Способ осуществляется следующим образом. The method is as follows.
В условиях операционной после обработки операционного поля с соблюдением правил асептики и антисептики животным под общей и местной анестезией проводят однократное введение в переднюю камеру глаза 3%-ного раствора 7-этил-2-метил-4-ундеканол гидрогенсульфата натриевой соли объемом 0,1 мл. Предлагаемый способ обеспечивает развитие глаукоматозного процесса у мелких животных в течение 48 часов. In the operating room, after treatment of the surgical field with the observance of aseptic and antiseptic rules, animals under general and local anesthesia administer a single injection of a 3% solution of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol sodium hydrogen sulfate 0.1 ml in the anterior chamber of the eye . The proposed method provides the development of the glaucomatous process in small animals within 48 hours.
Способ апробирован на 16 крыс - самцах породы Wistar весом 500 г.The method was tested on 16 rats - male Wistar breed weighing 500 g.
В ходе эксперимента проводили наружный осмотр, фоторегистрацию, оптическую когерентную томографию (ОКТ) роговицы. Забор материала для гистологического исследования производили спустя 48 часов от начала эксперимента. During the experiment, external examination, photographic recording, optical coherence tomography (OCT) of the cornea was performed. The sampling for histological examination was made 48 hours after the start of the experiment.
Для оценки морфологических изменений энуклеированные глаза фиксировали в 12% нейтральном формалине в течение 24 часов. После 24-часового промывания в проточной воде материал обезвоживали в спиртах восходящей концентрации, просветляли в О-ксилоле и заливали в парафин. После приготовления срезов толщиной 4-6 мкм препараты окрашивали гематоксилином и эозином, пикрофуксином по Ван-Гизону. To assess morphological changes, enucleated eyes were fixed in 12% neutral formalin for 24 hours. After a 24-hour washing in running water, the material was dehydrated in ascending alcohols, enlightened in O-xylene and embedded in paraffin. After preparation of sections 4-6 μm thick, the preparations were stained with hematoxylin and eosin, picrofuchsin according to Van Gieson.
Цифровые фотографии гистологических срезов роговицы и конъюнктивы энуклиированных глаз анализировали в ходе морфометрического исследования с использованием компьютерной программы ImageJ 1.46. За единицу измерения принимали 1 мм2 роговицы и конъюнктивы. С помощью метода точечного счета Г.Г. Автандилова (1960 г.) с использованием Plugins «Grid» в гистологических препаратах рассчитывали удельный объем (%) пространств между коллагеновыми волокнами, которые расценивали как развитие отека, и клеточной инфильтрации.Digital photographs of histological sections of the cornea and conjunctiva of enucleated eyes were analyzed during a morphometric study using the ImageJ 1.46 computer program. The unit of measurement was 1 mm 2 of the cornea and conjunctiva. Using the method of point counting G.G. Avtandilova (1960) using Plugins "Grid" in histological preparations calculated the specific volume (%) of the spaces between collagen fibers, which were regarded as the development of edema, and cell infiltration.
В ходе наружного осмотра после индукции глаукомы 3%-ным раствором 7-этил-2-метил-4-ундеканол гидрогенсульфата натриевой соли объемом 0,1 мл через 48 часов от введения препарата отмечалось интенсивное врастание сосудов в роговицу, расширение сосудистого пояса, отек роговицы, хемоз конъюнктивы, рубеоз радужки (фиг. 1). Тонус пальпаторно повышен.During the external examination after the induction of glaucoma with a 3% solution of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol sodium hydrogen sulfate 0.1 ml in volume after 48 hours from the administration of the drug, intensive growth of vessels in the cornea, expansion of the vascular belt, and corneal edema were noted , conjunctival chemosis, iris rubeosis (Fig. 1). The palpation tone is increased.
В ходе оптической когерентной томографии спустя 48 часов от начала эксперимента в роговице наблюдался выраженный стромальный отек. Передняя камера диффузно заполнена гиперрефлективными образованиями (указано желтыми стрелками) и экссудатом (фиг. 2). Местами границы роговицы, радужки и хрусталика не определяются вследствие фиброзных изменений в передней камере глаза. Толщина роговой оболочки увеличена до 350±48 мкм. Передний эпителий роговицы сохранял стратификацию слоев. Передняя пограничная мембрана четко выражена. Собственное вещество роговицы характеризовалось наличием пространств между волокон, свидетельствующих о развитии отека, набуханием и разволокнением коллагеновых волокон, между которыми отмечалась диффузная лимфо-лейкоцитарная инфильтрация. Задняя пограничная мембрана имела волнообразный ход, неравномерную толщину на всем своем протяжении, местами полностью отсутствовала. Задний эпителий на всем протяжении роговицы отсутствовал.During optical coherence tomography 48 hours after the start of the experiment, pronounced stromal edema was observed in the cornea. The anterior chamber is diffusely filled with hyperreflective formations (indicated by yellow arrows) and exudate (Fig. 2). In some places, the borders of the cornea, iris and lens are not determined due to fibrotic changes in the anterior chamber of the eye. The thickness of the cornea is increased to 350 ± 48 μm. The anterior corneal epithelium maintained stratification of the layers. The anterior border membrane is pronounced. Corneal intrinsic substance was characterized by the presence of spaces between the fibers, indicating the development of edema, swelling and razvolennost collagen fibers, between which there was a diffuse lymphocytic leukocyte infiltration. The posterior border membrane had a wavy course, uneven thickness along its entire length, and in places it was completely absent. The posterior epithelium was absent throughout the cornea.
В передней камере глаза наблюдалось полное ее заполнение новообразованными тонкими коллагеновыми волокнами с прикреплением их к Десцеметовой мембране или к собственному веществу роговицы в местах отсутствия пограничной мембраны и формированием рыхлых грануляций (рис. 3). Грануляционная ткань характеризовалась наличием полнокровных новообразованных сосудов (рис. 4). In the anterior chamber of the eye, its complete filling was observed with newly formed thin collagen fibers with their attachment to the Descemet membrane or to the cornea's own substance in places where there was no border membrane and the formation of loose granulations (Fig. 3). Granulation tissue was characterized by the presence of full-blooded newly formed vessels (Fig. 4).
В результате морфометрического анализа выявлено следующее.As a result of morphometric analysis revealed the following.
Объем отека в собственном веществе роговой оболочки пораженного глаза составил 32,44±2,44%, клеточной инфильтрации 28,48±6,21%, грануляционной ткани - 34,49±6,68%, новообразованных сосудов - 10,44±4,51%.The volume of edema in the intrinsic substance of the cornea of the affected eye was 32.44 ± 2.44%, cell infiltration 28.48 ± 6.21%, granulation tissue - 34.49 ± 6.68%, newly formed vessels - 10.44 ± 4 , 51%.
Таким образом, результаты экспериментального исследования показали, что введение в переднюю камеру 3%-ного раствора 7-этил-2-метил-4-ундеканол гидрогенсульфата натриевой соли объемом 0,1 мл обеспечивает воспроизведение глаукомы у крыс в течение 48 часов.Thus, the results of an experimental study showed that the introduction of a 3% solution of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanol sodium hydrogen sulfate in a volume of 0.1 ml into the anterior chamber provides reproduction of glaucoma in rats for 48 hours.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018147209A RU2698017C1 (en) | 2018-12-28 | 2018-12-28 | Method for creating experimental model of glaucoma in rats |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018147209A RU2698017C1 (en) | 2018-12-28 | 2018-12-28 | Method for creating experimental model of glaucoma in rats |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2698017C1 true RU2698017C1 (en) | 2019-08-21 |
Family
ID=67733650
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018147209A RU2698017C1 (en) | 2018-12-28 | 2018-12-28 | Method for creating experimental model of glaucoma in rats |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2698017C1 (en) |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1465900A1 (en) * | 1986-10-08 | 1989-03-15 | Одесский научно-исследовательский институт глазных болезней и тканевой терапии им.акад.В.П.Филатова | Method of modeling open angle glaucoma |
| SU1603428A1 (en) * | 1988-08-15 | 1990-10-30 | Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" | Method of modeling glaucoma |
| RU2164396C2 (en) * | 1998-07-16 | 2001-03-27 | Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней | Method for creating experimental glaucoma model |
| JP2002112664A (en) * | 2000-10-04 | 2002-04-16 | Koken Co Ltd | Method for making model animal of glaucoma |
| JP2004313188A (en) * | 2003-03-31 | 2004-11-11 | Santen Pharmaceut Co Ltd | Model animal of normal-pressure glaucoma |
| CN108210520A (en) * | 2018-03-26 | 2018-06-29 | 厦门大学附属厦门眼科中心有限公司 | Open-angle glaucoma method for building animal model and its application |
-
2018
- 2018-12-28 RU RU2018147209A patent/RU2698017C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1465900A1 (en) * | 1986-10-08 | 1989-03-15 | Одесский научно-исследовательский институт глазных болезней и тканевой терапии им.акад.В.П.Филатова | Method of modeling open angle glaucoma |
| SU1603428A1 (en) * | 1988-08-15 | 1990-10-30 | Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" | Method of modeling glaucoma |
| RU2164396C2 (en) * | 1998-07-16 | 2001-03-27 | Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней | Method for creating experimental glaucoma model |
| JP2002112664A (en) * | 2000-10-04 | 2002-04-16 | Koken Co Ltd | Method for making model animal of glaucoma |
| JP2004313188A (en) * | 2003-03-31 | 2004-11-11 | Santen Pharmaceut Co Ltd | Model animal of normal-pressure glaucoma |
| CN108210520A (en) * | 2018-03-26 | 2018-06-29 | 厦门大学附属厦门眼科中心有限公司 | Open-angle glaucoma method for building animal model and its application |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Schoefl | Studies on inflammation: III. Growing capillaries: Their structure and permeability | |
| Korey et al. | Central corneal endothelial cell density and central corneal thickness in ocular hypertension and primary open-angle glaucoma | |
| Ameri et al. | The effects of intravitreous bevacizumab on retinal neovascular membrane and normal capillaries in rabbits | |
| Rebhun | Diagnosis and treatment of equine uveitis | |
| GRANT | New treatment for calcific corneal opacities | |
| RU2698017C1 (en) | Method for creating experimental model of glaucoma in rats | |
| Frezzotti et al. | Management of intraocular pressure elevation during hemodialysis of neovascular glaucoma: a case report | |
| RU2601317C1 (en) | Method of treating endothelial epithelial corneal dystrophy | |
| Pruett et al. | Collagen vitreous substitute: I. Experimental study | |
| RU2316299C1 (en) | Microinvasive surgical method for treating open angle glaucoma | |
| Toris | Aqueous humor dynamics and intraocular pressure elevation | |
| RUBEN | Corneal vascularization | |
| CN106686981B (en) | Animal models of corneal angiogenesis and corneal ectasia diseases, methods of making the same, and methods of using the same | |
| Treffers | Corneal endothelial wound healing | |
| Brown et al. | Melanoma (sarcoma) of the eye in a syphilitic rabbit | |
| RU2542799C1 (en) | Method of treating corneal keratoconus | |
| BELLOWS et al. | Regeneration of the aqueous | |
| RU2644297C1 (en) | Method of filling ulcerous defect of cornea in its paracentral distribution | |
| RU2357706C1 (en) | Method of determination of indications to choice of anesthetic technique in microsurgery for cataracta with concomitant diseases of retina of macular area | |
| Inoue et al. | Horizontal intracorneal swirling water migration indicative of corneal endothelial function | |
| RU2470630C1 (en) | Method of treating inflammatory eye diseases in human and animals for stimulation of repair processes and epithelisation | |
| RU2119685C1 (en) | Method of constructing a model of cornea chemical burn | |
| RU2558991C1 (en) | Method for simulating proliferative retinopathy in rats | |
| RU2438629C1 (en) | Method for prevention of choroidal neovascularisation following cataract phacoemulsification surgery | |
| SU1601629A1 (en) | Method of modeling toxico-allergic uveitis |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20201229 |