RU2691439C1 - Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения - Google Patents

Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения Download PDF

Info

Publication number
RU2691439C1
RU2691439C1 RU2018129791A RU2018129791A RU2691439C1 RU 2691439 C1 RU2691439 C1 RU 2691439C1 RU 2018129791 A RU2018129791 A RU 2018129791A RU 2018129791 A RU2018129791 A RU 2018129791A RU 2691439 C1 RU2691439 C1 RU 2691439C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
mycobacteriophage
liposomes
phospholipid
particles
preparation
Prior art date
Application number
RU2018129791A
Other languages
English (en)
Inventor
Марина Борисовна Лапенкова
Михаил Александрович Владимирский
Анатолий Анатольевич Маныкин
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ФПИ" Минздрава России)
Priority to RU2018129791A priority Critical patent/RU2691439C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2691439C1 publication Critical patent/RU2691439C1/ru
Priority to PCT/RU2019/050132 priority patent/WO2020036517A1/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение касается препарата для инактивации (лизиса) внутриклеточных микобактерий туберкулеза на основе литического штамма микобактериофага, инактивирующего внутриклеточные микобактерий туберкулеза, представляющего собой микобактериофаг D29, включенный в бислойную фосфолипидную липосому размером 0,4 микрон, и способа его получения, заключающегося в выделении и очистке фаговых частиц из бактериальных лизатов M.smegmatis с последующим включением в фосфолипидные липосомы, где выделение и очистку фаговых частиц из бактериальных лизатов M.smegmatis проводят с помощью ионно-обменной хроматографии на колонке Q-sepharose, полученный очищенный микобактериофаг в концентрации не менее 10pfu/мл встряхивают с фосфолипидной пленкой в течение 5-10 минут, проводят экструзию полученных частиц через фильтр с порами 5 микрон и последующей 20-кратной экструзией с использованием фильтров размером пор 0,4 мкм, концентрированием и отделением включенной в липосомы фракции микобактериофага с помощью центрифугирования при 13±2 тыс. об/мин в течение 30±5 минут, при этом используют фосфолипидную пленку, полученную из фосфатидилхолина, холестерина и твин-80, взятых в массовом соотношении 5±1:1±0,8:1,2±0,2. 2 н. и 1 з.п. ф-лы, 5 ил.

Description

Область техники
Изобретение относится к медицине, в частности к проблеме лечения туберкулеза. Как известно, лечение туберкулеза требует очень длительных курсов специфической химиотерапии с использованием различных комбинаций противотуберкулезных препаратов, в основном, антибиотиков.
Уровень техники
Длительность курсов приема антибиотиков приводит возникновению лекарственной устойчивости возбудителя - микобактерий туберкулеза (МБТ). При этом, использование при лечении больных туберкулезом новых, вновь созданных противотуберкулезных препаратов также достаточно быстро приводит к появлению лекарственно-устойчивых штаммов МБТ. Кроме того, при туберкулезной инфекции значительная часть микобактерий находится - персистирует и размножается внутриклеточно - в тканевых макрофагах.
Известно, что применение бактериофагов для лечения различных микробных инфекции, в общем, рассматривается мировой научной общественностью в качестве альтернативы эры применения антибиотиков в связи с распространением лекарственной устойчивости к этим препаратам. Однако, практически, несмотря на имеющиеся публикации об успешном применении бактериофагов для лечения некоторых воспалительных заболеваний микробной природы, их применение в настоящее время ограничено (A. Nilsson. Phage therapy. Constraints and possibilities. Upsala J. of Med. Sciences, 2014, 119, 192-198).
Известны также, экспериментальные работы от 70-х годов и до 1991 г., в которых были предприняты попытки лечения туберкулезной инфекции с помощью различных штаммов микобактериофагов. Однако, полученные результаты были ограниченными по эффективности и уступали применению традиционных противотуберкулезных лекарственных веществ (Козьмин-Соколов Б.Н. и др. Влияние микобактериофагов на течение экспериментальной туберкулезной инфекции у белых мышей. Проблемы туберкулеза 1975, №4, с. 75-79; Земскова З.С., Дорожкова И.Р. Патоморфологическая оценка лечебного действия микобактериофагов при туберкулезе. Проблемы туберкулеза 1991, №11, с. 63-66).
В 2000-е годы интерес к применению микобактериофагов, в частности, к перспективе применения литического микобактериофага D 29 для лечения туберкулезной инфекции, вновь вырос и обсуждается в некоторых международных публикациях последнего времени (Gr. Hatfull. Mycobacteriophages: Windows into Tuberculosis. Plos patogens. 2014, v. 10, issue 3). Обсуждаются вопросы доступности, транспорта микобактериофагов к зонам туберкулезного воспаления и к внутриклеточно расположенным микобактериям, а также к вероятной возможности элиминации микобактериофагов микро и макрофагами периферической крови.
Известны способы лекарственного транспорта с помощью различных микронных, субмикронных и наноносителей. Чаще всего используются полимеры молочной и гликолевой кислоты, альгинаты, а также частицы хитозана. (Y. Wang et al. Review. Manufacturing Techniques and Surface Engineering of Polymer Based Nanoparticles for Targeted Drug Delivery to Cancer. Nanomaterials 2016, 6, 26 p. 1-18).
Липосомы также являются одним из наиболее известных методов лекарственного транспорта, а также в качестве перспективных антигенных носителей для получения вакцин, поскольку их фосфолипидная мембрана хорошо совместима с клетками эукариотов и может быть различным образом модифицирована, получением иммунолипосом и др. В этих целях их размер обычно не превышает 150-200 нм (R. Nisini et al. The Multirole of liposomes in therapy and prevention of infection diseases. Review. Frontiers in Immunology, 2018, v. 9 art. 155, p. 1-23.). Экспериментальные исследования применения липосомальных антибиотиков для лечения туберкулезной инфекции проводились с начала 80-х годов прошлого века, первой из которых была публикация одного авторов настоящей заявки (Vladimirsky М.А. and Ladigina G.A. Antibacterial activity of liposomal-entrapped streptomycin mice infected with Mycobacterium tuberculosis. Biomedicine and Pharmacotherapy, 1982, v. 36, N. 8-9, p. 375-377). Размеры этих липосом не превышали 100 нм. Эти работы в дальнейшем были подтверждены развивались, но препятствием к практическому применению липосомальных антибиотиков для лечения туберкулеза стало накопление препарата в печени, что позже несколько нивелировалось при использовании stealth липосом с полиэтиленгликолем. Липосомы, содержащие микобактериофаг, в качестве саморазмножающегося лекарства теоретически могли бы эффективно доставляться в мелкие бронхи дренирующие очаги специфического туберкулезного воспаления. Однако, идея использования липосом в качестве транспортного средства для применения микобактериофагов до сих пор сдерживалась размерами частиц микобактериофага, поскольку литический микобактериофаг имеет размер головки фага - 65 нм и размер фагового хвоста - 110 нм. Следовательно, липосомы, включающие частицы размером около 200 нм должны быть слишком большими для того чтобы быть фагоцитированными клетками эукариотов. Поэтому задача получения и применения липосом с включенными частицами микобактериофага не была тривиальной и до сих пор использование таких экспериментальных препаратов с целью их литического действия на микобактерий туберкулеза, в том числе, на внутриклеточную популяцию микобактерий не было описано.
Наиболее близким к заявляемому является препарат микобактериофага, получаемый способом по патенту Ю.Н. Курунова и сотр. 2001 г. «Способ фаготерапии туберкулеза» №2214829, 2001 г., который заключается в очищении микобактериофага от бактериального лизата при высокоскоростном (70-100 тыс g) центрифугировании в градиенте цезия, затем полученный препарат встряхивали вместе с фосфолипидной пленкой, получая таким образом многослойные липосомы и вводили их ректально мышам, инфицированным микобактериями туберкулеза.
Использованная в способе технология выделения микобактериофагов в градиенте цезия дает относительно низкий выход (Boulanger P. Purification of bacteriophages and SDS-PAGE analysis of phage structural proteins from ghost particles. In: Clokie MR, Kropinksi AM, editors. Bacteriophages: Methods and Protocols. Humana Press; New York: 2009. pp. 227-238), а также повреждает жизнеспособность фаговых частиц (Carlson K. Appendix: Working with bacteriophages: common techniques and methodological approaches. In: Kutter EM, Sulakvelidze A, editors. Bacteriophages: biology and application. CRC Press; Boca Raton, FL: 2005). Кроме того, приведенный авторами патента способ получения препарата микобактериофагов, позволяет получать только очень крупные многослойные липосомы размером 5-10 микрон («Липосомы в биологических системах», под ред Г. Грегориадиса пер. с англ., Москва 1983 г.). Также известный препарат не стерилизуется, поскольку его используют только для ректального введения. Препарат невозможно стерилизовать без повреждения жизнеспособности фаговых частиц, например, путем лиофилизации с последующим гамма облучением, что также приведет к повреждению ДНК микобактериофага. Кроме того, липосомы размером 5-10 микрон не могут фагоцитироваться клетками макроорганизма - макрофагами, что не позволит в полном объеме реализовать противотуберкулезный эффект препарата.
Раскрытие изобретения
Задачей заявляемого изобретения является создание препарата на основе литического штамма микобактериофага, инактивирующего внутриклеточные микобактерий туберкулеза.
Поставленная задача решается препаратом для инактивации (лизиса) внутриклеточных микобактерий туберкулеза, представляющий собой микобактериофаг D29 (АТСС - Американская коллекция клеточных культур), включенный в бислойную фосфолипидную липосому размером 0,4 микрон.
Также поставленная задача решается способом получения указанного препарата, заключающимся в выделении и очистке фаговых частиц из бактериальных лизатов M. smegmatis с помощью ионно-обменной хроматографии на колонке Q-sepharose. Полученный очищенный микобактериофаг в концентрации не менее 108 pfu/мл встряхивают с фосфолипидной пленкой в течение 5-10 минут, экструзией полученных частиц через фильтр с порами 5 микрон и последующей 20-кратной экструзией с использованием фильтров размером пор 0,4 мк, концентрированием и отделением включенной в липосомы фракции микобактериофага с помощью центрифугирования при 13±2 тыс об/мин в течение 30±5 минут. Предпочтительно использовать фосфолипидную пленку, полученную из фосфатидилхолина, холестерина и твин-80 взятых в массовом соотношении 5±1:1±0,8:1,2±0,2.
Преимуществом заявляемого технического решения является:
1. Для выделения микобактериофагов, в частности, микобактериофага D29 из бактериального лизата M. smegmatis, в суспензии которых производится размножение микобактериофага, используется альтернативная технология выделения и очистки микобактериофага: Evelien М. Adriaenssens, Susan М. Lehman et. al. CIM® Monolithic Anion-Exchange Chromatography as a Useful Alternative to CsCl Gradient Purification of Bacteriophage Particles. Virology 2012, 434(2), p. 265-270., K. Liu et al. Purification an concentration of mycobacteriophage D29 using monolithic chromatographic columns. J. of Virological Methods, 2012, v. 186, p. 7-13, которая позволяет сохранить жизнеспособность частиц бактериофага.
2. Заявляемым способом были получены липосомальные частицы с включенными микобактериофагами оптимального размера - в основном с размером частиц около 400 нм, что обеспечивает возможность их фагоцитоза макрофагами, что, в свою очередь, позволяет в полном объеме реализовать противотуберкулезный эффект препарата.
3. Получение стерильного препарата, подтверждаемого размером фильтруемых частиц и сохранением стерильности в отношении банальной микрофлоры в течение 3-4-недельного периода культивирования инфицированных микобактериями макрофагов на агаровой питательной среде 7Н10, при котором определяли рост МБТ при отсутствии банальной микрофлоры.
4. Заявляемым способом достигается высокая - 80% эффективность включения частиц микобактериофага в липосомы, тогда как в ранее описанном способе не производилось отделение фракции липосом с включенным микобактериофагом и не изучалась эффективность его включения.
5. Полученный таким способом, заявляемый препарат на основе микобактериофага обеспечивает проникновение частиц микобактериофага в клетки перевиваемой культуры макрофагов не менее, чем в 4 раза более эффективно и обеспечивает е инактивацию микобактерий туберкулеза, инфицирующих макрофаги также не менее чем в 4-5 раз более эффективно.
Краткое описание чертежей
Изобретение поясняется следующими чертежами, где на фиг. 1 представлено негативное контрастирование бислойных липосом без фага.
На фиг. 2 показано позитивное контрастирование контрольного образца микобактериофага уранилцетатом. Видны ДНК головка фага и хвост.
На фиг. 3 показано позитивное контрастирование. Справа внизу - головка фага, включенного в липосому.
На фиг. 4 показано позитивное контрастирование. Головка фага, включенного в липосому.
На фиг. 5 показано негативное контрастирование разрушенной липосомы. При затекании контрастирующего вещества видны головки фагов.
Осуществление изобретения
Для получения липосом очищенный при ионно-обменной хроматографии на колонке Q-sepharose препарат микобактериофагов D29 (набор реагентов Fast Plaque ТВ, Biotec laboratories Ltd. Ipswich United Kingdom) в концентрации фаговых частиц не менее 108 плакобразующих единиц (pfu)/мл и диализованный против фагового буферного раствора, встряхивают в течение 5-10 минут с фосфолипидной пленкой. Полученные многослойные липосомы подвергают последовательной экструзии через фильтры с размером пор 5 микрон, а затем 20 кратной экструзии (продавливание) через фильтры с размером пор 0,4 микрон, после чего для концентрирования и отделения липосом с включившимися микобактериофагами от не включившихся частиц микобактериофага, а также для освобождения препарата от мелких липосомных частиц, препарат центрифугируют при 13±2 тыс. об/мин. в течение 30±5 мин. Далее концентрацию микобактериофага, включенного в липосомы измеряют с помощью количественной ПЦР в реальном времени и определяют процент включения частиц фага в липосомы, который составляет не менее 80%.
В качестве фосфолипидных пленок могут быть использованы пленки, образованные фосфотидилхолином, для укрепления мембраны получаемых липосом в состав пленки добавляют холестерин, взятый в массовом соотношении 1±0,8 к 5±1 фосфатидилхолина. Также для стабильности препарата в пленки дополнительно добавляют неионогенное поверхностно активное вещество - твин-80 в количестве 1,2±0,2 мг на 5±1 мг фосфатидилхолина.
Размер и морфология получаемых бислойных липосом продемонстрированы с помощью электронной микроскопии при негативном и позитивном контрастировании уранилацетатом (фиг. 1-5).
Достижение литического действия микобактериофагов на внутриклеточно МБТ, расположенные демонстрируется при использовании, в качестве примера, модели макрофагов мышей, в качестве которых были использованы клетки перевиваемой линии RAW 264.7 (АТСС - американская коллекция клеточных культур), инфицированных МБТ (музейный штамм H37Rv, получен из Государственного института стандартизации и контроля биопрепаратов (ГИСК) им. Л.А. Тарасевича). Для аналогичных исследований могут быть также использованы перевиваемая линия макрофагов человека ТНР (АТСС), а также возможно менее изученная модель микрогранулемы in vitro, состоящая из лимфоцитов и макрофагов крови человека, инфицированных микобактериями туберкулеза. Литическое действие микобактериофага D29, включенного в липосомы в отношении внутриклеточных микобактерий туберкулеза (МБТ), а также эффективность проникновения липосомного микобактериофага в клетки макрофагов сравнивается с микобактериофагом не включенным в липосомы при аналогичной фаговой активности. Литическое (антибактериальное) действие МБТ измеряется при посевах инфицированных макрофагов, после их двукратного замораживания и оттаивания на агаровую питательную среду 7Н10 Миддлбрук.
Способ получения препарата для литического действия в отношении внутриклеточной популяции микобактерий туберкулеза (МБТ) на основе микобактериофага D29 реализуется путем его размножения в культуре нетуберкулезных микобактерий M. smegmatis (АТСС 101), выделения и очистки с помощью ионно-обменной хроматографии, получением многослойных липосом при 5-10 минутном встряхивании препарата микобактериофага специфической активностью не менее 108 плакобразующих фаговых частиц (pfu) в мл фагового буферного раствора, Ph-7,5 с фосфолипидной пленкой, получаемой после выпаривания на роторном испарителе растворенного в 96° этанола фосфатидилхолина, холестерина и твин-80 в соотношении 5±1:1±0,8:1,2±0,2 с экструзией через фильтр с порами 5 микрон и последующей 20-кратной экструзией с использованием фильтров с размером пор 0,4 мк, концентрированием и отделением включенной в липосомы фракции микобактериофага от не включенных фаговых частиц, а также отделением более мелких липосомных частиц с помощью центрифугирования при 13 тыс об/ мин в течение 30 минут, исследованием количественного (процентного) содержания включенных в липосомы частиц микобактериофага путем определения ДНК микобактериофага с помощью количественной ПЦР в реальном времени, составляющего не менее 80% от внесенного микобактериофага, контролем полученного препарата с помощью электронной микроскопии и анализом биологической активности в культуре макрофагов перевиваемой линии, инфицированных МБТ. Пример осуществления изобретения.
1. Модель внутриклеточной инфекции микобактерий туберкулеза: макрофаги перевиваемой линии RAW 264.7 (АТСС), инфицировали МБТ музейного штамма H37Rv при инкубации в течение 24 часов; суспензия инфицированных макрофагов выделяли с освобождением от не включившихся микобактерий с помощью центрифугирования при 2 тыс обор/мин в градиенте плотности раствора Ficoll-Paque (GE Healthcare) на разделе сред и отмывали в питательной среде RPMI 1640 с последующим культивированием в лунках 6-луночного культурального планшета с использованием среды RPMI 1640 с 20% фетальной бычьей сыворотки, L-глютамина, MEM Vitamins, MEM NEAA, Sodium Pyruvate PenStrep (0,1) mcg/ml); затем после суточной инкубации в лунках планшета вносили микобактериофаг D29 известной активности - 108 плакобразующих частиц (pfu) в мл в липосомальной форме и не включенного в липосомы в равных количествах, определяемых по числу pfu и концентрации ДНК фага.
2. Приготовление липосомального микобактерифага: 40 мг яичного фосфатидилхолина (фирма Lipoid, Германия), 8 мг холестерина (Sigma) и 8,8 мг твин 80 растворяли в 3 мл 96% этанола; высушивали на роторном испарителе до получения липидной пленки; вносили 3 мл хроматографически очищенного на ионнообменной колонке Q сефарозы препарата микобактериофага с активностью не менее 108 pfu/мл; встряхивали до образования суспензии, продавливали через стерильный фильтр 5,0 с размером пор 5 мк, а затем не менее 20 раз через стерильный фильтр с размером пор 0,4 мк; центрифугировали для освобождения от не включенного в липосомы микобактериофага и измеряли относительное количество ДНК фага в осадке в сравнении с общим количеством ДНК внесенного в препарат фага. Контроль полученного липосомального препарата микобактериофага проводили также при использовании электронной микроскопии фиг. 1-5.
3. Исследование эффективности антимикобактериального действия липосомального микобактериофага: после 24 часовой инкубации культуры макрофагов с внутриклеточными МБТ с препаратами микобактериофагов (липосомальный и свободный микобактериофаг) клетки отмывали однократно питательной средой; снимали инфицированные макрофаги с поверхности лунок в объеме 200 мкл; проводили двукратное замораживание и оттаивание материалов, после чего по 100 мкл из каждого образца засевали на чашки с питательной средой 7Н10 для определения жизнеспособности МБТ, а также по 100 мкл аналогичных материалов исследовали для определения количества ДНК микобактериофага с помощью ПЦР в реальном времени.
Результаты исследования: 1. Количество ДНК фага, включенного в липосомы, определяемого в клетках инфицированных макрофагов по данным количественного ПЦР -анализа в 4-8 раз (в разных экспериментах) превышало количество ДНК свободного, не включенного в липосомы фага.
2. Количество колоний МБТ выявленных в результате культивирования: в контрольных чашках без фага - 300-500; в чашках с микобактериофагом не включенным в липосомы составляло - 15-27 колоний, тогда как в чашках с после воздействия липосомального фага число колоний - 3-4 на чашку. Различия статистически значимы.

Claims (3)

1. Препарат для инактивации внутриклеточных микобактерий туберкулеза, представляющий собой микобактериофаг D29, включенный в бислойную фосфолипидную липосому размером 0,4 микрон.
2. Способ получения препарата по п. 1, заключающийся в выделении и очистке фаговых частиц из бактериальных лизатов M.smegmatis с последующим включением в фосфолипидные липосомы, отличающийся тем, что выделение и очистку фаговых частиц из бактериальных лизатов M.smegmatis проводят с помощью ионно-обменной хроматографии на колонке Q-sepharose, полученный очищенный микобактериофаг в концентрации не менее 108 pfu/мл встряхивают с фосфолипидной пленкой в течение 5-10 минут, проводят экструзию полученных частиц через фильтр с порами 5 микрон и последующей 20-кратной экструзией с использованием фильтров размером пор 0,4 мкм, концентрированием и отделением включенной в липосомы фракции микобактериофага с помощью центрифугирования при 13±2 тыс. об/мин в течение 30±5 минут.
3. Способ по п. 2, отличающийся тем, что используют фосфолипидную пленку, полученную из фосфатидилхолина, холестерина и твин-80, взятых в массовом соотношении 5±1:1±0,8:1,2±0,2.
RU2018129791A 2018-08-16 2018-08-16 Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения RU2691439C1 (ru)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018129791A RU2691439C1 (ru) 2018-08-16 2018-08-16 Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения
PCT/RU2019/050132 WO2020036517A1 (ru) 2018-08-16 2019-08-16 Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018129791A RU2691439C1 (ru) 2018-08-16 2018-08-16 Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2691439C1 true RU2691439C1 (ru) 2019-06-13

Family

ID=66947556

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018129791A RU2691439C1 (ru) 2018-08-16 2018-08-16 Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения

Country Status (2)

Country Link
RU (1) RU2691439C1 (ru)
WO (1) WO2020036517A1 (ru)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2214829C2 (ru) * 2001-11-05 2003-10-27 Новосибирский научно-исследовательский институт туберкулеза Способ фаготерапии туберкулеза

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2622755C1 (ru) * 2016-05-04 2017-06-19 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Средство с липосомами, содержащими изониазид

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2214829C2 (ru) * 2001-11-05 2003-10-27 Новосибирский научно-исследовательский институт туберкулеза Способ фаготерапии туберкулеза

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЛАПЕНКОВА М.Б. и др. Исследование активности литического микобактериофага D29 на модели перевиваемой линии макрофагов, инфицированных микобактериями туберкулеза, Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, N9, 2017, с.326-329. *
СМИРНОВА Н.С. и др. Применение литического микобактериофага D29 для ускоренного фенотипического определения чувствительности микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам, Клиническая лабораторная диагностика, 62 (12), 2017, с.757-763. *
СМИРНОВА Н.С. и др. Применение литического микобактериофага D29 для ускоренного фенотипического определения чувствительности микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам, Клиническая лабораторная диагностика, 62 (12), 2017, с.757-763. ЛАПЕНКОВА М.Б. и др. Исследование активности литического микобактериофага D29 на модели перевиваемой линии макрофагов, инфицированных микобактериями туберкулеза, Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, N9, 2017, с.326-329. *

Also Published As

Publication number Publication date
WO2020036517A1 (ru) 2020-02-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7122976B2 (ja) 医学に使用するためのヒト血小板溶解物由来細胞外小胞
CN107875124B (zh) 一种从细胞悬液中提取和纯化包裹药物的细胞囊泡的方法
US20230172989A1 (en) System and a method for obtaining an improved plasma extract
NELSON et al. An electron-microscopic study of bacterial meningitis: I. Experimental alterations in the leptomeninges and subarachnoid space
TW201130980A (en) A new lytic phage specific to Klebsiella pneumoniae
Zhang et al. Effects of panax notoginseng saponins on homing of C-kit+ bone mesenchymal stem cells to the infarction heart in rats
Lapenkova et al. Bactericidal activity of liposomal form of lytic Mycobacteriophage D29 in cell models of tuberculosis infection in vitro
RU2691439C1 (ru) Препарат на основе литического микобактериофага и способ его получения
Hutchins et al. Atypical mycobacterial infection complicating mineral oil pneumonia
Feng et al. Exosomes: Applications in respiratory infectious diseases and prospects for coronavirus disease 2019 (COVID-19)
CN112675203A (zh) 一种细胞来源的外泌体在制备治疗哮喘和/或肺纤维化生物制剂中的应用
CN116515762A (zh) 一种促进糖尿病创面愈合的工程化改造外泌体及其制备方法和应用
Ghosh et al. Transmission electron microscopic study of renal haemopoietic tissues of Channa punctatus (Bloch) experimentally infected with two species of aeromonads
CN113073071B (zh) 一株假小链双歧杆菌及其在代谢综合征中的应用
CN115029322A (zh) 一株多药耐药肺炎克雷伯菌噬菌体及其应用
CN114869999A (zh) 白屈菜红碱联合多黏菌素e在抑制多黏菌素e耐药菌中的应用
KR102365657B1 (ko) 젬피브로질을 포함하는 비결핵항산균 감염 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물
CN116196332A (zh) 凋亡小体在制备治疗脓毒血症产品中的应用
Faizal et al. THE EFFECT OF INCREASING INTERLEUKIN 6 EXPRESSION WITH THE DOSES OF MACROPHAGES ON TUBERCULOSIS GRANULOMA IN VITRO.
WO2023169594A1 (zh) 血液来源的样品在制备囊泡中的应用
JPH01104182A (ja) 新規多糖類、それらの製造法及びそれらを有効成分として含有する医薬組成物
CN117338820A (zh) 一种副拟杆菌外泌体的治疗急性肺损伤的用途
CN117004566A (zh) 一种具有抗结核免疫保护作用的巨噬细胞来源的外泌体和相关蛋白及用途
Kudoyarov et al. Possibilities of sterilization by track membranes
GOBLE et al. Effects of Certain Surface‐Active Po lyoxyethylene Ethers in Experimental Protozoal Infections