RU2685936C2 - Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров - Google Patents

Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров Download PDF

Info

Publication number
RU2685936C2
RU2685936C2 RU2017136513A RU2017136513A RU2685936C2 RU 2685936 C2 RU2685936 C2 RU 2685936C2 RU 2017136513 A RU2017136513 A RU 2017136513A RU 2017136513 A RU2017136513 A RU 2017136513A RU 2685936 C2 RU2685936 C2 RU 2685936C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solid phase
aptamer
dna
blood
conjugate
Prior art date
Application number
RU2017136513A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2017136513A (ru
RU2017136513A3 (ru
Inventor
Евгения Евгеньевна Башмакова
Людмила Алексеевна Франк
Василиса Валерьевна Красицкая
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук" (ФИЦ КНЦ СО РАН, КНЦ СО РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук" (ФИЦ КНЦ СО РАН, КНЦ СО РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук" (ФИЦ КНЦ СО РАН, КНЦ СО РАН)
Priority to RU2017136513A priority Critical patent/RU2685936C2/ru
Publication of RU2017136513A publication Critical patent/RU2017136513A/ru
Publication of RU2017136513A3 publication Critical patent/RU2017136513A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2685936C2 publication Critical patent/RU2685936C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Описан способ выявления в крови больных циркулирующих мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом. Обрабатывают твердую фазу биоспецифическими реагентами, отделяют непрореагировавшую жидкую фазу, инкубируют с мишенью, ассоциированной с определенным диагнозом. Далее обрабатывают твердую фазу репортером, разделяют жидкую и твердую фазы. Проводят анализ твердой фазы. В качестве твердой фазы используют магнитные микрочастицы с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина, в качестве биоспецифического реагента для первой обработки твердой фазы используют ДНК-аптамер, связывающийся с поверхностью за счет гибридизации с меченным биотином олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Вio, комплементарным константному концевому участку ДНК-аптамера, а в качестве репортера - другой ДНК-аптамер, меченный конъюгатом того же олигонуклеотида с Са-регулируемым фотопротеином обелином. Техническим результатом изобретения является разработка более чувствительного, универсального, экспрессного и технологичного биолюминесцентного способа выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов. 3 ил., 2 пр.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и медицины, а именно к способу выявления в крови больных циркулирующих мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, путем иммобилизации биоспецифического ДНК-аптамера (группы биоспецифических ДНК-аптамеров) на поверхности магнитных частиц, последовательных процедур промывки и инкубации анализируемого образца, промывки и инкубации универсального репортера - конъюгата Са2+-регулируемого фотопротеина обелина с олигонуклеотидом, комплементарным константной концевой последовательности ДНК-аптамера (группы биоспецифических ДНК-аптамеров). Биолюминесцентный сигнал репортера регистрируется при добавлении раствора CaCl2.
Известен микроскопический способ выявления циркулирующих опухолевых клеток (микроэмбол и апоптотических телец) в крови больных раком легкого человека с помощью пары аптамеров, меченных флуоресцентными метками [патент РФ №2571821, МПК G01N 33/18 (2006.01), опубл. 20.12.2015].
Недостатками способа являются низкая производительность и высокая стоимость флуоресцентной микроскопии.
Известен способ биолюминесцентного микроанализа с использованием специфических конъюгатов Са2+-регулируемого фотопротеина обелина и его производных с иммуноглобулинами и олигонуклеотидами [патент РФ №2497128, МПК G01N 33/532 (2006.01), опубл. 17.10.2013].
Недостатком способа является необходимость синтезировать биоспецифические конъюгаты в зависимости от природы выявляемой мишени.
В качестве прототипа взята диагностическая тест-система на основе аптамеров [патент РФ №117150, МПК С12М 1/18 (2006.01), опубл. 06.06.2012], включающая n-луночный планшет, лунки которого покрыты слоем немеченых аптамеров, специфичных к заданной биологической мишени. Выявление мишени в образце проводилось после серии процедур последовательной инкубации исследуемого образца, раствора другого аптамера, меченного флуоресцентным красителем, (репортера) и промывки. Регистрация проводилась с помощью планшетного спектрофлуориметра.
Недостатками системы является использование поверхности пластиковых планшет, обладающих ограниченной поверхностной активностью, низкая чувствительность флуоресцентной метки, а также высокая стоимость планшетного спектрофлуориметра.
Техническим результатом изобретения является разработка более чувствительного, экспрессного и технологичного биолюминесцентного способа выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов.
Технический результат достигается тем, что в способе выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров, включающем обработку твердой фазы биоспецифическими реагентами, отделение непрореагировавшей жидкой фазы, инкубацию с мишенью, ассоциированной с определенным диагнозом, дальнейшую обработку твердой фазы репортером, разделение жидкой и твердой фаз и анализ твердой фазы, новым является то, что в качестве твердой фазы для анализа используют магнитные микрочастицы с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина, обладающие более высокой площадью по сравнению с поверхностью лунок пластиковых планшетов, в качестве биоспецифического реагента для первой обработки твердой фазы используют ДНК-аптамер, связывающийся с поверхностью за счет гибридизации с меченным биотином олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio, комплементарным константному концевому участку аптамера, а в качестве репортера -другой ДНК-аптамер, меченный коньюгатом того же олигонуклеотида с Са2+-регулируемым фотопротеином обелином.
Отличие заявляемого способа от прототипа заключается в том, что в заявляемом изобретении в качестве твердой фазы используют магнитные микрочастицы с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина, в качестве биоспецифического реагента для первой обработки твердой фазы используют ДНК-аптамер, связывающийся с поверхностью за счет гибридизации с меченным биотином олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio, комплементарным константному концевому участку аптамера, а в качестве репортера - другой ДНК-аптамер, меченный коньюгатом того же олигонуклеотида с Са2+-регулируемым фотопротеином обелином.
Перечисленные выше отличительные от прототипа признаки позволяют сделать вывод о соответствии заявляемых технических решений критерию «новизна».
Признаки, отличающие заявляемые технические решения от прототипа, не выявлены в других технических решениях и, следовательно, обеспечивают заявляемому решению соответствие критерию «изобретательский уровень»
Заявленный способ диагностики иллюстрируется примерами, описывающими предел обнаружения биолюминесцентной метки для выявления мишеней, ассоциированных с раком легкого, и результаты анализа образцов крови пациентов с диагнозом рак легкого, другими заболеваниями легкого, а также здоровых доноров.
В настоящее время для диагностики рака легкого применяют иммуноферментный анализ ряда белковых онкомаркеров с использованием моноклональных антител. Как правило, эти онкомаркеры могут выявляться при различных типах рака [Sung, H.J., Cho, J.Y. Biomarkers for the lung cancer diagnosis and their advances in proteomics // В MB Reports. - 2008. - V. 41. - №9. - P. 615-625], и потому остается актуальным поиск новых способов специфичной лабораторной диагностики рака легкого. В данном подходе в качестве альтернативы антителам предлагается использовать аптамеры.
Аптамеры - короткие одноцепочечные рибо- либо дезоксирибо-олигонуклеотиды, обладающие определенной пространственной структурой благодаря образованию внутримолекулярных локальных дуплексов и стэкинг-взаимодействий. С помощью технологии SELEX получают высокоспецифичные аптамеры практически к любой мишени. По сравнению с антителами аптамеры как биоспецифические аффинные молекулы имеют ряд определенных преимуществ, главными из которых являются возможность их химического синтеза и модификации, а также стабильность при хранении.
К постоперационной ткани аденокарциномы легкого была получена группа ДНК-аптамеров, характеризующихся высоким связыванием с элементами опухолевой ткани и отрицательным связыванием со здоровой тканью легкого и клетками крови [Zamay, G.S. Aptamers selected to postoperative lung adenocarcinoma detect circulating tumor cells in human blood / O.S. Kolovskaya, T.N. Zamay, Y.E. Glazyrin, A.V. Krat, O. Zubkova, E. Spivak, M. Wehbe, A. Gargaun, D. Muharemagic, M. Komarova, V. Grigorieva, A. Savchenko, A.A. Modestov, M.V. Berezovski, A.S. Zamay // Molecular Therapy. - 2015. - V. 23. - №9. - P. 1486-1496].
Данные аптамеры длинной в 80 нуклеотидных оснований (н.о) имеют константные участки с 5' и 3'- концов (20 н.о) и вариабельную часть (40 н.о), отвечающую за специфическое связывание аптамера со своими мишенями.
Для обеспечения высокой чувствительности анализа в качестве репортера в работе использовали новый, полученный сайт-направленным мутагенезом вариант рекомбинантного Са2+-регулируемого фотопротеина обелина (22,2 кДа) гидроидного полипа Obelia longissima А6С, имеющего цистеиновый остаток на доступном для синтеза NH2-конце молекулы. Это позволило увеличить выход целевого конъюгата до 83% [Krasitskaya V.V. Mutants of Ca2+-regulated photoprotein obelin for site-specific conjugation / V.V. Krasitskaya, L.P. Burakova, A.A. Komarova, E.E. Bashmakova, L.A. Frank // Photochemistry and Photobiology. - 2017. - V. 93. - №2. - P. 553-557]. Биолюминесцентный сигнал этого белка инициируется присоединением Са2+, не зависит от дополнительных субстратов, кислорода и пр. и всегда пропорционален количеству белка.
На основе данного белка был получен конъюгат с олигонуклеотидом, комплементарным 5'-константному участку аптамеров, который может быть использован для выявления всей группы аптамеров, полученных к аденокарциноме легкого. Предел обнаружения конъюгата - около 20 амоль, обеспечивает высокую чувствительность биолюминесцентного анализа с использованием данного конъюгата в качестве метки.
Ранее был описан конъюгат обелина с РНК-аптамером [Vorobjeva М. A. RNA aptamer against autoantibodies associated with multiple sclerosis and bioluminescent detection probe on its basis / M.A. Vorobjeva V.V. Krasitskaya, A.A. Fokina, V.V. Timoshenko, G.A. Nevinsky, A.G. Venyaminova, L.A. Frank // Analytical Chemistry. -2014. - V. 86. - №5. - P. 2590-2594], обладающий специфичностью к единственной мишени - патогенному аутоантителу при рассеянном склерозе. В заявленном способе предлагается использовать конъюгат обелина с олигонуклеотидом, комплементарным константному участку группы аптамеров связанными с одним диагнозом. Например, в работе [Zamay, G.S. Aptamers selected to postoperative lung adenocarcinoma detect circulating tumor cells in human blood / O.S. Kolovskaya, T.N. Zamay, Y.E. Glazyrin, A.V. Krat, O. Zubkova, E. Spivak, M. Wehbe, A. Gargaun, D. Muharemagic, M. Komarova, V. Grigorieva, A. Savchenko, A.A. Modestov, M.V. Berezovski, A.S. Zamay // Molecular Therapy. - 2015. -V. 23. - №9. - P. 1486 - 1496] описано 10 аптамеров, полученных на мишени, ассоциированной с раком легкого, и все они имеют одинаковые концевые участки. Таким образом, предложенный нами способ пригоден для выявления не только одной мишени (при использовании одной пары аптамеров), но и группы мишеней, ассоциированных с данным заболеванием (при использовании смеси аптамеров).
Получение конъюгата фотопротеина обелина с олигонуклеотидом, комплементарным константным участкам на 5' концах ДНК-аптамеров, проводили химическим синтезом с небольшими модификациями способа, разработанного ранее для РНК-аптамера [Vorobjeva М.A. RNA aptamer against autoantibodies associated with multiple sclerosis and bioluminescent detection probe on its basis / M.A. Vorobjeva V.V. Krasitskaya, A.A. Fokina, V.V. Timoshenko, G.A. Nevinsky, A.G. Venyaminova, L.A. Frank // Analytical Chemistry. - 2014. - V. 86. - №5. - P. 2590-2594].
Олигонуклеотид 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-(CH2)6-NH2, комплементарный 5'-константным участкам аптамеров, несущий свободную NH2-группу (10 нмоль), модифицировали 50-кратным молярным избытком сукцинимидного эфира 4-(N-малеимидометил-) циклогексановой кислоты (SMCC) (Thermo Scientific, США) (свежеприготовленный раствор в диметилсульфоксиде) в течение 1,5 часов при комнатной температуре в 0,1 М NaHCO3. Избыток реагентов удаляли с помощью гель-фильтрации на колонке HiTrap Desalting Columns (GE Healthcare, Великобритания), уравновешенной буфером 20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА), на хроматографической системе АKТА purifier (GE Healthcare, Великобритания). SMCC-активированный олигонуклеотид инкубировали с 3-х кратным молярным избытком мутантного варианта фотопротеина обелина с заменой Ala6→Cys в течение 12-14 часов при 4°С.
Полученный конъюгат выделяли анион-обменной хроматографией на колонке Mono Q (GE Healthcare, Великобритания), уравновешенной 20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА. Элюцию полученного конъюгата проводили линейным градиентом NaCl (0-1 М), выход целевого конъюгата - 71±12%.
Для определения предела обнаружения конъюгата в лунки планшета вносили раствор конъюгата разной концентрации (по 100 мкл в 20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА и 0,1% бычьего сывороточного альбумина) и измеряли биолюминесцентный сигнал сразу после быстрого добавления раствора СаС12 (100 мкл, 0,1 М в 0,1 М Tris-HCl, рН 8.8) с помощью планшетного люминометра LB 940 Multimode Reader Mithras (Berthold, Германия). Сигнал интегрировали 5 с. В контрольную лунку вносили буфер без конъюгата. Все измерения проводили в трех параллелях. Предел обнаружения определяли, как количество конъюгата, при котором отношение сигнала к контролю составляет 3. Предел обнаружения конъюгата составил 20,8 амоль (фиг. 1).
Для осуществления заявляемого способа растворы ДНК-аптамеров перед использованием прогревали при температуре 95°С в течение 5 минут и охлаждали 5 минут на льду. Образцы плазмы крови человека перед исследованием инкубировали с маскирующей дрожжевой РНК (0,1 нг/мкл), встряхивая 30 мин при комнатной температуре.
Полученную плазму инкубировали с магнитными микрочастицами с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина (Promega, США) (30 мкг/анализ), эквимолярной смесью ДНК- аптамера и биотинилированным олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio в течение 30 мин при встряхивании, при комнатной температуре (конечная концентрация аптамера и олигонуклеотида 250 нМ).
Частицы промывали трижды, суспендируя в растворе 20 мМ Трис-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА, фиксируя частицы магнитом на стенке пробирки и удаляя надосадочную жидкость. К частицам добавляли раствор аптамера в конечной концентрации 250 нМ, инкубировали и промывали аналогичным образом. Далее к частицам добавляли конъюгат обелина с олигонуклеотидом, комплементарным 5'-константным участкам аптамеров. Инкубировали и промывали.
Суспензию частиц в 60 мкл буфера (20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА) переносили в лунки непрозрачного 96-луночного микропланшета (Costar, США) и биолюминесцентный сигнал образовавшихся комплексов на их поверхности измеряли с помощью планшетного люминометра Mithras LB 940 Multimode Reader (Berthold, Германия) сразу после добавления 0,1 М СаСl2, в 0,1 М Tris-HCl рН 7,0 в течение 5 с.
Пример 1.
Образцы плазмы крови человека перед исследованием инкубировали с маскирующей дрожжевой РНК (0,1 нг/мкл) при встряхивании 30 мин.
Перед использованием растворы ДНК-аптамеров LC-17 и LC-18, прогревали при 95°С в течение 5 мин и охлаждали 5 мин на льду.
240 мл полученной плазмы инкубировали с магнитными микрочастицами с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина (Promega, США) (30 мкг/анализ), эквимолярной смесью аптамера LC-18 и биотинилированным олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio (конечная концентрация аптамера и олигонуклеотида 250 нМ) в течение 30 мин при встряхивании, при комнатной температуре.
Частицы промывали трижды, суспендируя в растворе 20 мМ Трис-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА, фиксируя частицы магнитом на стенке пробирки и удаляя надосадочную жидкость. К частицам добавляли раствор ДНК-аптамера LC-17 в конечной концентрации 250 нМ, инкубировали и промывали аналогичным образом. Далее к частицам добавляли конъюгат обелина с олигонуклеотидом, который связывался с константной областью ДНК-аптамера LC-17. Инкубировали и промывали.
Суспензию частиц в 60 мкл буфера (20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА) переносили в лунки непрозрачного 96-луночного микропланшета (Costar, США) и биолюминесцентный сигнал образовавшихся комплексов на их поверхности измеряли с помощью планшетного люминометра Mithras LB 940 Multimode Reader (Berthold, Германия) сразу после добавления 0,1 М СаСl2, в 0,1 М Tris-HCl рН 7,0 в течение 5 с.
Пример 2.
Образцы плазмы крови человека перед исследованием инкубировали с маскирующей дрожжевой РНК (0,1 нг/мкл) при встряхивании 30 мин.
Перед использованием раствор ДНК-аптамера LC-17 и LC-18 прогревали при 95°С в течение 5 мин и охлаждали 5 мин на льду.
240 мл полученной плазмы инкубировали с магнитными микрочастицами с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина (Promega, США) (30 мкг/анализ), эквимолярной смесью ДНК-аптамера LC-17 и биотинилированным олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio (конечная концентрация аптамера и олигонуклеотида 250 нМ) в течение 30 мин при встряхивании, при комнатной температуре.
Частицы промывали трижды, суспендируя в растворе 20 мМ Трис-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА, фиксируя частицы магнитом на стенке пробирки и удаляя надосадочную жидкость. К частицам добавляли раствор ДНК-аптамера LC-18 в конечной концентрации 250 нМ, инкубировали и промывали аналогичным образом. Далее к частицам добавляли конъюгат обелина с олигонуклеотидом, который связывался с константной областью аптамера LC-18. Инкубировали и промывали.
Суспензию частиц в 60 мкл буфера (20 мМ Tris-HCl, рН 7.0, 5 мМ ЭДТА) переносили в лунки непрозрачного 96-луночного микропланшета (Costar, США) и биолюминесцентный сигнал образовавшихся комплексов на их поверхности измеряли с помощью планшетного люминометра Mithras LB 940 Multimode Reader (Berthold, Германия) сразу после добавления 0,1 М CaCl2, в 0,1 М Tris-HCl рН 7,0 в течение 5 с. Схема проведения анализа приведена на фигуре 2.
Представленные исследования выполнены в соответствии с документами, регламентирующими этические нормы проведения исследований с использованием биологического материала человеческого происхождения (решение Локального этического комитета КККОД №8/2011 от 16.03.2011).
Венозная кровь пациентов, перенесших полную резекцию опухоли, отобрана до операций и предоставлена сотрудниками КГБУЗ «Красноярский краевой клинический онкологический диспансер им. А.И. Крыжановского». Образцы плазмы крови 56 пациентов взяты перед проведением операции по удалению образований в легких. Диагнозы пациентов были верифицированы морфологически. В эксперименте использовали образцы пациентов без диагноза рак легкого (здоровые доноры), а также с другими заболеваниями легких и видами рака.
Сигналы, полученные от образцов крови здоровых доноров, достоверно отличались от сигналов остальных пациентов (р<0,05).
Результаты проведенных исследований образцов плазмы крови по примеру 1 представлены на фигуре 3, где 1, 2, 3 - среднее значение сигнала в группе с железистоклеточным (n=22), плоскоклеточным (n=23) раком легкого и в контрольной группе ± SD (n=19), соответственно, 4 - метастазы в легкое (n=3); 5 - туберкулез (n=2); 6 - хондрогамартома (n=1); отн.свет.ед. - относительные световые единицы.
Преимущества заявляемого способа заключаются в том, что в качестве твердой фазы используются магнитные частицы с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина, обладающие более высокой площадью поверхности по сравнению с поверхностью лунок пластиковых планшетов, и в использовании высокочувствительного биолюминесцентного репортера - конъюгата Са2+-регулируемого фотопротеина обелина с олигонуклеотидом, позволяющего выявлять одновременно несколько мишеней, связанных с диагностикой данного заболевания, при использовании группы ДНК-аптамеров со специфичностью к разным мишеням, но одинаковой константой концевой областью.

Claims (1)

  1. Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров, включающий обработку твердой фазы биоспецифическими реагентами, отделение непрореагировавшей жидкой фазы, инкубацию с мишенью, ассоциированной с определенным диагнозом, дальнейшую обработку твердой фазы репортером, разделение жидкой и твердой фаз и анализ твердой фазы, отличающийся тем, что в качестве твердой фазы используют магнитные микрочастицы с ковалентно иммобилизованными молекулами стрептавидина, в качестве биоспецифического реагента для первой обработки твердой фазы используют ДНК-аптамер, связывающийся с поверхностью за счет гибридизации с меченным биотином олигонуклеотидом 5'-CGTGGTTACAGTCAGAGGAG-3'-Bio, комплементарным константному концевому участку ДНК-аптамера, а в качестве репортера - другой ДНК-аптамер, меченный конъюгатом того же олигонуклеотида с Са2+-регулируемым фотопротеином обелином.
RU2017136513A 2017-10-16 2017-10-16 Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров RU2685936C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017136513A RU2685936C2 (ru) 2017-10-16 2017-10-16 Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017136513A RU2685936C2 (ru) 2017-10-16 2017-10-16 Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2017136513A RU2017136513A (ru) 2019-04-17
RU2017136513A3 RU2017136513A3 (ru) 2019-04-17
RU2685936C2 true RU2685936C2 (ru) 2019-04-23

Family

ID=66168126

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017136513A RU2685936C2 (ru) 2017-10-16 2017-10-16 Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2685936C2 (ru)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140342918A1 (en) * 2013-05-15 2014-11-20 University Of Ottawa Method For Affinity Purification

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140342918A1 (en) * 2013-05-15 2014-11-20 University Of Ottawa Method For Affinity Purification

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
E. Smith, Colin D. Medley et.al. Aptamer-Conjugated Nanoparticles for the Collection and Detection of Multiple Cancer Cells Anal. Chem., 2007, 79 (8), pp 3075-3082. *
Jwa-Min Nam, Nanoparticle-Based Bio-Bar Codes for the Ultrasensitive Detection of Proteins, Science 26.09.2003: Vol. 301, Issue 5641, pp. 1884-1886. *
Jwa-Min Nam, Nanoparticle-Based Bio-Bar Codes for the Ultrasensitive Detection of Proteins, Science 26.09.2003: Vol. 301, Issue 5641, pp. 1884-1886. Р.Р. Гарафутдинов. Твердофазная полимеразная цепная реакция, Вестник Башкирского университета, 2012, стр. 1745-1748. *
Р.Р. Гарафутдинов. Твердофазная полимеразная цепная реакция, Вестник Башкирского университета, 2012, стр. 1745-1748. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2017136513A (ru) 2019-04-17
RU2017136513A3 (ru) 2019-04-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN104067124B (zh) 用于检测含核苷酸的核小体的方法
Nilsson et al. Quantitative phosphoproteomic analysis of the STAT3/IL-6/HIF1α signaling network: an initial study in GSC11 glioblastoma stem cells
RU2716494C2 (ru) Способ детекции нуклеосом, содержащих гистоновые варианты
KR20210093266A (ko) 엑소좀 막단백질과 mRNA를 동시에 검출하는 방법
JP2016533752A (ja) オリゴヌクレオチドプローブおよびその使用
US9983203B2 (en) Method for protein analysis
CN108603884A (zh) 富集无细胞核小体的方法
US20210318310A1 (en) Methods for monitoring polymorphonuclear myeloid derived suppressor cells
EP3365681A1 (en) Method for detecting nucleosomes containing histone modifications and variants
Lukic et al. An integrated approach for comparative proteomic analysis of human bile reveals overexpressed cancer-associated proteins in malignant biliary stenosis
US20200362349A1 (en) Application of aptamer in recognition and binding of alkaline phosphatase heterodimer or tumor detection
JP6645981B2 (ja) サーマルシフトアッセイを使用して薬物反応の減少の指標となるバイオマーカーを識別するための方法
Bashmakova et al. Bioluminescent aptamer-based solid-phase microassay to detect lung tumor cells in plasma
US20220127677A1 (en) Preparation device and preparation method for exosome liquid biopsy sample and method for analyzing exosome liquid biopsy sample prepared thereby
CA3029178C (en) Double-stranded nucleic acid signal probe and method for detecting target molecule using same
CN106011142B (zh) 一种特异识别psa蛋白的寡核苷酸配基p7-26的序列和应用
KR101995189B1 (ko) 비침습적 체외진단을 위한 간암 진단용 바이오마커 조성물 및 이를 포함하는 키트
RU2685936C2 (ru) Способ выявления мишеней, ассоциированных с определенным диагнозом, в крови пациентов на основе ДНК-аптамеров
CN112251507A (zh) 一种脑卒中诊疗效果评价相关微生物
US20100120033A1 (en) Method for measuring dna methylation
SK282091B6 (sk) Spôsob imunomagnetického oddeľovania buniek
CN110088629A (zh) 通过识别对fgfr抑制剂治疗敏感的患者来治疗癌症的改进方法
KR102498862B1 (ko) 엑소좀 액체생검 샘플 분석방법
Kotani et al. Proximity Labeling and Proteomics: Get to Know Neighbors
Xu et al. Detection of Cancer-Derived Exosomes Using a Sensitive Colorimetric Aptasensor