RU2675930C1 - Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе - Google Patents
Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе Download PDFInfo
- Publication number
- RU2675930C1 RU2675930C1 RU2017126204A RU2017126204A RU2675930C1 RU 2675930 C1 RU2675930 C1 RU 2675930C1 RU 2017126204 A RU2017126204 A RU 2017126204A RU 2017126204 A RU2017126204 A RU 2017126204A RU 2675930 C1 RU2675930 C1 RU 2675930C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- culture medium
- solution
- antibiotic
- spheroids
- Prior art date
Links
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 title claims abstract description 17
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title description 53
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 title description 11
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 77
- 210000002536 stromal cell Anatomy 0.000 claims abstract description 45
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 43
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 36
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 claims abstract description 22
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims abstract description 21
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims abstract description 19
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims abstract description 18
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims abstract description 16
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 claims abstract description 16
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 claims abstract description 15
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 claims abstract description 15
- 229940024999 proteolytic enzymes for treatment of wounds and ulcers Drugs 0.000 claims abstract description 15
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 claims abstract description 11
- 239000002356 single layer Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims abstract description 9
- 230000006698 induction Effects 0.000 claims abstract description 8
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 7
- 230000002491 angiogenic effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 4
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 4
- 238000000227 grinding Methods 0.000 claims abstract description 3
- 238000004264 monolayer culture Methods 0.000 claims abstract description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 43
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 15
- 108010073929 Vascular Endothelial Growth Factor A Proteins 0.000 claims description 11
- 102000005789 Vascular Endothelial Growth Factors Human genes 0.000 claims description 11
- 108010019530 Vascular Endothelial Growth Factors Proteins 0.000 claims description 10
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 claims description 9
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 claims description 9
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 claims description 9
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 claims description 7
- 108010007093 dispase Proteins 0.000 claims description 7
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 7
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 claims description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 6
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 claims description 5
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 claims description 5
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 claims description 4
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 claims description 4
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 claims description 4
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 claims description 4
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 claims description 3
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 claims description 3
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 claims description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims description 3
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims description 3
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 3
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 claims description 3
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 claims description 3
- APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N Amphotericin-B Natural products O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1C=CC=CC=CC=CC=CC=CC=C[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N 0.000 claims description 2
- 108050007372 Fibroblast Growth Factor Proteins 0.000 claims description 2
- 102000018233 Fibroblast Growth Factor Human genes 0.000 claims description 2
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 claims description 2
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 claims description 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 claims description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 claims description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 claims description 2
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 claims description 2
- APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N amphotericin B Chemical compound O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N 0.000 claims description 2
- 229960003942 amphotericin b Drugs 0.000 claims description 2
- 229940126864 fibroblast growth factor Drugs 0.000 claims description 2
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 claims description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 claims description 2
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims description 2
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 claims description 2
- 230000003750 conditioning effect Effects 0.000 claims 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 abstract description 3
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 abstract description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 29
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 23
- 239000000463 material Substances 0.000 description 21
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 15
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 12
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 11
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 11
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 10
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 10
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 10
- 206010010356 Congenital anomaly Diseases 0.000 description 9
- 230000001066 destructive effect Effects 0.000 description 9
- 239000011173 biocomposite Substances 0.000 description 8
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 8
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 8
- 230000008569 process Effects 0.000 description 8
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 7
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 6
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 6
- 102000004067 Osteocalcin Human genes 0.000 description 6
- 108090000573 Osteocalcin Proteins 0.000 description 6
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 6
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 6
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 6
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 6
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 6
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 6
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 5
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 5
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 5
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 5
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 5
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 102100031573 Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Human genes 0.000 description 4
- 101000777663 Homo sapiens Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Proteins 0.000 description 4
- 101000946889 Homo sapiens Monocyte differentiation antigen CD14 Proteins 0.000 description 4
- 101000738771 Homo sapiens Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Proteins 0.000 description 4
- 101000800116 Homo sapiens Thy-1 membrane glycoprotein Proteins 0.000 description 4
- 102100035877 Monocyte differentiation antigen CD14 Human genes 0.000 description 4
- 102100037422 Receptor-type tyrosine-protein phosphatase C Human genes 0.000 description 4
- 102100033523 Thy-1 membrane glycoprotein Human genes 0.000 description 4
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 4
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 4
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 4
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 4
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 4
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 4
- 102100037241 Endoglin Human genes 0.000 description 3
- 101000881679 Homo sapiens Endoglin Proteins 0.000 description 3
- 102100024616 Platelet endothelial cell adhesion molecule Human genes 0.000 description 3
- 238000002659 cell therapy Methods 0.000 description 3
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 3
- 230000003511 endothelial effect Effects 0.000 description 3
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 3
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 3
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 3
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 3
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical class [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 3
- 235000019731 tricalcium phosphate Nutrition 0.000 description 3
- 108010047303 von Willebrand Factor Proteins 0.000 description 3
- 102100036537 von Willebrand factor Human genes 0.000 description 3
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 2
- 229920003319 Araldite® Polymers 0.000 description 2
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 description 2
- 102100024222 B-lymphocyte antigen CD19 Human genes 0.000 description 2
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 description 2
- 229920002683 Glycosaminoglycan Polymers 0.000 description 2
- 101000980825 Homo sapiens B-lymphocyte antigen CD19 Proteins 0.000 description 2
- 101001046686 Homo sapiens Integrin alpha-M Proteins 0.000 description 2
- 101000935043 Homo sapiens Integrin beta-1 Proteins 0.000 description 2
- 102100022338 Integrin alpha-M Human genes 0.000 description 2
- 102100025304 Integrin beta-1 Human genes 0.000 description 2
- BPQQTUXANYXVAA-UHFFFAOYSA-N Orthosilicate Chemical compound [O-][Si]([O-])([O-])[O-] BPQQTUXANYXVAA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000006735 Periostitis Diseases 0.000 description 2
- GOOHAUXETOMSMM-UHFFFAOYSA-N Propylene oxide Chemical compound CC1CO1 GOOHAUXETOMSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 101150052863 THY1 gene Proteins 0.000 description 2
- 102000016549 Vascular Endothelial Growth Factor Receptor-2 Human genes 0.000 description 2
- 108010053099 Vascular Endothelial Growth Factor Receptor-2 Proteins 0.000 description 2
- 210000001789 adipocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000002293 adipogenic effect Effects 0.000 description 2
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 2
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 2
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 2
- 230000000975 bioactive effect Effects 0.000 description 2
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 2
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 2
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000002648 chondrogenic effect Effects 0.000 description 2
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 2
- 238000013461 design Methods 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 description 2
- 239000000834 fixative Substances 0.000 description 2
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 2
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 2
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 2
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 2
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 2
- 210000003460 periosteum Anatomy 0.000 description 2
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 2
- 210000004003 subcutaneous fat Anatomy 0.000 description 2
- 229940078499 tricalcium phosphate Drugs 0.000 description 2
- 229910000391 tricalcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PRDFBSVERLRRMY-UHFFFAOYSA-N 2'-(4-ethoxyphenyl)-5-(4-methylpiperazin-1-yl)-2,5'-bibenzimidazole Chemical compound C1=CC(OCC)=CC=C1C1=NC2=CC=C(C=3NC4=CC(=CC=C4N=3)N3CCN(C)CC3)C=C2N1 PRDFBSVERLRRMY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100022464 5'-nucleotidase Human genes 0.000 description 1
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 1
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 1
- 206010061728 Bone lesion Diseases 0.000 description 1
- 206010065687 Bone loss Diseases 0.000 description 1
- -1 CD31 Proteins 0.000 description 1
- 108010029697 CD40 Ligand Proteins 0.000 description 1
- 101150013553 CD40 gene Proteins 0.000 description 1
- 102100032937 CD40 ligand Human genes 0.000 description 1
- 102100032912 CD44 antigen Human genes 0.000 description 1
- 229910014497 Ca10(PO4)6(OH)2 Inorganic materials 0.000 description 1
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 1
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 1
- 102000000503 Collagen Type II Human genes 0.000 description 1
- 108010041390 Collagen Type II Proteins 0.000 description 1
- 102000001187 Collagen Type III Human genes 0.000 description 1
- 108010069502 Collagen Type III Proteins 0.000 description 1
- ZGTMUACCHSMWAC-UHFFFAOYSA-L EDTA disodium salt (anhydrous) Chemical compound [Na+].[Na+].OC(=O)CN(CC([O-])=O)CCN(CC(O)=O)CC([O-])=O ZGTMUACCHSMWAC-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 102100037362 Fibronectin Human genes 0.000 description 1
- 108010067306 Fibronectins Proteins 0.000 description 1
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000028180 Glycophorins Human genes 0.000 description 1
- 108091005250 Glycophorins Proteins 0.000 description 1
- 206010018852 Haematoma Diseases 0.000 description 1
- 101000678236 Homo sapiens 5'-nucleotidase Proteins 0.000 description 1
- 101000868273 Homo sapiens CD44 antigen Proteins 0.000 description 1
- 101001046677 Homo sapiens Integrin alpha-V Proteins 0.000 description 1
- 101000610551 Homo sapiens Prominin-1 Proteins 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 102100022337 Integrin alpha-V Human genes 0.000 description 1
- 102000008070 Interferon-gamma Human genes 0.000 description 1
- 108010074328 Interferon-gamma Proteins 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- NPGIHFRTRXVWOY-UHFFFAOYSA-N Oil red O Chemical compound Cc1ccc(C)c(c1)N=Nc1cc(C)c(cc1C)N=Nc1c(O)ccc2ccccc12 NPGIHFRTRXVWOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010077077 Osteonectin Proteins 0.000 description 1
- 102000004264 Osteopontin Human genes 0.000 description 1
- 108010081689 Osteopontin Proteins 0.000 description 1
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 1
- 208000037273 Pathologic Processes Diseases 0.000 description 1
- 241000237503 Pectinidae Species 0.000 description 1
- 102100040120 Prominin-1 Human genes 0.000 description 1
- 102100037599 SPARC Human genes 0.000 description 1
- 206010061363 Skeletal injury Diseases 0.000 description 1
- 210000001744 T-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N Titanium Chemical compound [Ti] RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100040245 Tumor necrosis factor receptor superfamily member 5 Human genes 0.000 description 1
- 108010000134 Vascular Cell Adhesion Molecule-1 Proteins 0.000 description 1
- 102100023543 Vascular cell adhesion protein 1 Human genes 0.000 description 1
- 108010065472 Vimentin Proteins 0.000 description 1
- 102000013127 Vimentin Human genes 0.000 description 1
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 210000001015 abdomen Anatomy 0.000 description 1
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 description 1
- 238000005299 abrasion Methods 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 230000009815 adipogenic differentiation Effects 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- RGCKGOZRHPZPFP-UHFFFAOYSA-N alizarin Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C3=C(O)C(O)=CC=C3C(=O)C2=C1 RGCKGOZRHPZPFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000001857 anti-mycotic effect Effects 0.000 description 1
- 239000002543 antimycotic Substances 0.000 description 1
- 230000001174 ascending effect Effects 0.000 description 1
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 description 1
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 description 1
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 description 1
- 239000000560 biocompatible material Substances 0.000 description 1
- 230000033558 biomineral tissue development Effects 0.000 description 1
- 230000036770 blood supply Effects 0.000 description 1
- 210000002449 bone cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004271 bone marrow stromal cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000018678 bone mineralization Effects 0.000 description 1
- 229910021538 borax Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 238000001354 calcination Methods 0.000 description 1
- 210000003321 cartilage cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 1
- 230000008614 cellular interaction Effects 0.000 description 1
- 229940096422 collagen type i Drugs 0.000 description 1
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 1
- 239000003636 conditioned culture medium Substances 0.000 description 1
- 231100000433 cytotoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000001472 cytotoxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 1
- UREBDLICKHMUKA-CXSFZGCWSA-N dexamethasone Chemical compound C1CC2=CC(=O)C=C[C@]2(C)[C@]2(F)[C@@H]1[C@@H]1C[C@@H](C)[C@@](C(=O)CO)(O)[C@@]1(C)C[C@@H]2O UREBDLICKHMUKA-CXSFZGCWSA-N 0.000 description 1
- 229960003957 dexamethasone Drugs 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 1
- 238000010195 expression analysis Methods 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 1
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012735 histological processing Methods 0.000 description 1
- 238000012760 immunocytochemical staining Methods 0.000 description 1
- 238000011532 immunohistochemical staining Methods 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 230000002757 inflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 230000010354 integration Effects 0.000 description 1
- 102000006495 integrins Human genes 0.000 description 1
- 108010044426 integrins Proteins 0.000 description 1
- 229960003130 interferon gamma Drugs 0.000 description 1
- 239000011229 interlayer Substances 0.000 description 1
- 230000004807 localization Effects 0.000 description 1
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 230000036244 malformation Effects 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 210000002894 multi-fate stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000015122 neurodegenerative disease Diseases 0.000 description 1
- 108010028584 nucleotidase Proteins 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 230000008520 organization Effects 0.000 description 1
- 230000000278 osteoconductive effect Effects 0.000 description 1
- 210000004409 osteocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000005009 osteogenic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000009818 osteogenic differentiation Effects 0.000 description 1
- 230000002138 osteoinductive effect Effects 0.000 description 1
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 1
- 230000009054 pathological process Effects 0.000 description 1
- INAAIJLSXJJHOZ-UHFFFAOYSA-N pibenzimol Chemical compound C1CN(C)CCN1C1=CC=C(N=C(N2)C=3C=C4NC(=NC4=CC=3)C=3C=CC(O)=CC=3)C2=C1 INAAIJLSXJJHOZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000001316 polygonal cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 1
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 description 1
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 description 1
- 238000007634 remodeling Methods 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 1
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000009118 salvage therapy Methods 0.000 description 1
- 238000011012 sanitization Methods 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 235000020637 scallop Nutrition 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 238000007873 sieving Methods 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 239000004328 sodium tetraborate Substances 0.000 description 1
- 235000010339 sodium tetraborate Nutrition 0.000 description 1
- 238000013222 sprague-dawley male rat Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 229950003937 tolonium Drugs 0.000 description 1
- HNONEKILPDHFOL-UHFFFAOYSA-M tolonium chloride Chemical compound [Cl-].C1=C(C)C(N)=CC2=[S+]C3=CC(N(C)C)=CC=C3N=C21 HNONEKILPDHFOL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 210000000515 tooth Anatomy 0.000 description 1
- 230000008736 traumatic injury Effects 0.000 description 1
- 210000005048 vimentin Anatomy 0.000 description 1
- 229960001134 von willebrand factor Drugs 0.000 description 1
- 230000029663 wound healing Effects 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0665—Blood-borne mesenchymal stem cells, e.g. from umbilical cord blood
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов и индуцированных в ангиогенном направлении. Способ включает изолирование фрагмента ткани донора, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, перенос фрагмента ткани донора в среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту и антибиотик, механическое измельчение фрагмента ткани донора с получением гомогената, инкубирование полученного гомогената в растворе протеолитических ферментов при 37°С до момента получения клеточной суспензии. Далее добавляют питательную среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови; осуществляют центрифугирование клеточной суспензии до момента полного осаждения клеток, удаление супернатанта, ресуспендирование выделенных клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, культивирование выделенных клеток в монослойной культуре при 37°С в среде 5% СОкак минимум 2 пассажа, дезагрегация монослоя, культивирование в неадгезивных условиях клеток как минимум 2-го пассажа в концентрации от 1×10кл/мл до 5×10кл/мл в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза с получением клеточной культуры, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов. Изобретение позволяет получить мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов и индуцированные в ангиогенном направлении. 24 з.п. ф-лы, 3 ил, 3 пр.
Description
Настоящее изобретение относится к области биотехнологии, а именно к технологии создания тканей, органов, тканеинженерных конструкций. Также настоящее изобретение относится к области медицины, а именно к биотрансплантатам для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани.
В ряде случаев заболевания или пороки развития приводят к потере костной ткани в связи с развитием различных патологических процессов [Григорьян А.С., Топоркова А.В. Проблемы интеграции имплантатов в костную ткань (теоретические аспекты). М.: Техносфера, 2007, 130 с.]. Хирургическое лечение дефицита и дефектов костной ткани направлено на восстановление утраченных тканей в их оригинальной гистоархитектонике и функции. В настоящее время, в широкой клинической практике распространены имплантационные материалы для направленной костной регенерации. Эффективность восстановления костной ткани в таком случае при хирургическом лечении, главным образом, зависит от свойств имплантационных материалов, которыми замещается дефект.
Известны материалы для имплантации в ткани на основе резорбируемых и нерезорбируемых остеоиндуктивных веществ, которые могут быть минерального или биологического происхождения. Так, известна имплантация в поднадкостничную область материалов на основе коллагена, содержащих костный порошок гидроксиапатитов, трикальцийфосфатов с применением лекарственных средств гликозаминогликанов [RU 2159101 С1, 25.03.99].
Известен биосовместимый материал для стоматологии, включающий неорганические соли, коллаген, сульфатированные гликозаминогликаны и воду [RU 2155024 C1, 25.11.2000].
Также широко используются различные виды костных ауто-, алло- и ксенотрансплантатов. Известно использование различного вида культур клеток, чаще фибробластов, в качестве оптимизаторов раневого заживления в хирургической пародонтологии [Fang В, Song Y, Lin Q, Zhang Y, Cao Y, Zhao R C, Ma Y. Human adipose tissue derived mesenchymal stromal cells as salvage therapy for treatment of severe refractory acute grafts vs. host disease in two children. Pediatr Transplant. 2007 Nov; 11(7): 8147].
Ближайшим аналогом заявленного изобретения является биотрансплантат для восстановления объема костной ткани при дегенеративных заболеваниях и травматических повреждениях костей [RU 2530622]. Изобретение характеризуется тем, что содержит аутологичные мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки пациента и матрицу-носитель, имеющую в основе своей структуры коллаген-минеральный комплекс, идентичный по составу натуральному костному материалу, отличающийся тем, что содержит смесь мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК), культивированных в стандартных условиях, и мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, дифференцированных в остеогенном направлении, взятых в соотношении 1:1 и в количестве 10 клеток на 1 г веса матрицы-носителя. В аспекте способа получения, данное изобретение характеризуется тем, что подготавливают жировую ткань, полученную у пациента, измельчают, ферментативно дезагрегируют; полученную суспензию фильтруют, центрифугируют и ресуспендируют в культуральной среде; суспензию ММСК высевают на чашки Петри диаметром 100 мм, инкубируют при 37°C в атмосфере 5% CO2 до первого пассажа, дифференцируют в остеогенной культуральной среде с добавлением аскорбиновой кислоты и Дексаметазона; культивирование осуществляют в конфлюентном монослое в течение 2 недель, меняя среду на свежую каждые 3 дня; матрицу-носитель, представляющую собой коллаген-минеральный комплекс, размягчают и перемешивают с суспензией клеток, отличающийся тем, что подготавливают аутологичную сыворотку крови пациента, после центрифугирования суспензию клеток высаживают в количестве 1×103 клеток на чашку Петри в стандартную среду культивирования AdvanceSTEMTM /Antibiotic/Antimycotic Solution 100х с добавлением 10% аутологичной сыворотки крови пациента; после первого пассажа клетки снимают с подложки и разделяют на 2 равные части: одну часть ММСК продолжают культивировать в стандартных условиях, а другую дифференцируют в остеогенном направлении в течение 2 недель, затем клетки снимают с подложек и смешивают в соотношении 1:1; после чего их смешивают с матрицей-носителем в количестве 107 клеток на 1 г веса матрицы-носителя и инкубируют в течение суток при 37°C в атмосфере 5% CO2.
Недостатком данного изобретения является низкая эффективность регенерации поврежденных тканей, обусловленная низким уровнем ангиогенеза и, как следствие, остеогенеза мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, находящихся в составе биотрансплантата. Причиной этого является низкая плотность заселения биотрансплантата клетками, культивированными в виде монослоя.
Таким образом, задачей заявленного изобретения является повышение уровня ангиогенеза мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, а также повышение эффективности регенерации поврежденных тканей при использовании биотрансплантатов для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани, содержащих мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки и матрицу-носитель в виде биокомпозиционного материала.
Решение поставленной задачи обеспечивается тем, что клеточная культура для создания тканей, органов, тканеинженерных конструкций содержит мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов, а также тем, что биотрансплантат для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани содержит мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов и матрицу-носитель в виде биокомпозиционного материала.
Мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки (ММСК) - мультипотентные стволовые клетки, способные дифференцироваться в остеобласты (клетки костной ткани), хондроциты (хрящевые клетки) и адипоциты (жировые клетки) [Pittenger et al., 1999; Caplan, 1991]. Данные клетки претерпевают ассиметричное деление, в результате которого одна дочерняя клетка переходит на новую ступень дифференцировки, а вторая - остается копией материнской клетки и сохраняет способность к самообновлению. После рождения и на протяжении всей жизни ММСК остаются клеточным резервом, участвующим в физиологическом обновлении тканей и патологической репарации, и присутствуют в костном мозге, жировой ткани, пульпе зуба. Во многих работах в области тканевой инженерии такие клетки были использованы в качестве источника клеток, обеспечивающих начало процесса регенерации. Первое успешное выделение ММСК костного мозга относится к 1970 году [Friedenstein et al., 1970]. В основе выделения авторы использовали принцип адгезии клеток к пластику, в данный момент наиболее точной методикой является выделение с помощью проточного цитофлуориметра или магнитного сортинга на основании экспрессии определенных поверхностных антигенов [Lee et al., 2006; Smith et al., 2004]. Фенотипически ММСК отличаются отсутствием экспрессии маркеров гемопоэтических клеток: CD34, CD45, CD14, glycophorin А и CD133. Также в ММСК отсутствует секреция МНС II, Т-клеточных костимулирующих факторов (В7-1, В7-2, CD40, CD40L), рецепторов к матриксу (CD65L, CD65P), к факторам роста (CD1200A, TGFbIIR), маркеров предшественников остеогенных клеток - STRO-1, щелочная фосфатаза, остеонектин, остеокальцин. ММСК идентифицируются по экспрессии Thy-1 (CD90), CD105, VCAM-1, CD44. Также ММСК экспрессируют CD29, CD51 (интегрины) и характерные для МСК SH2, SH3. Характерными для ММСК являются виментин, фибронектин, коллаген I и III, VI типов и т.н. osteoblast-specific factor. Таким образом, ММСК могут служить привлекательным источником клеток для тканевой инженерии и при регенерации костной ткани [Мао, 2005].
Комитет по мезенхимальным и стромальным стволовым клеткам Международного общества клеточной терапии установил следующие стандартные критерии ММСК для научных и доклинических исследований:
1. Клетки должны обладать адгезией к стандартному пластику для культивирования in vitro при стандартных условиях культивирования.
2. Более 95% клеточной популяции должны демонстрировать экспрессию специфических поверхностных маркеров: CD105, CD73, CD90, но не CD45, CD34, CD14 или CD11b, CD79a или CD 19 и HLA class II (положительная экспрессия данных маркеров допустима в количестве менее 2%).
3. Клетки должны обладать способностью к дифференцировке по остеогенному, хондрогенному и адипогенному пути.
Способность клеток к адгезии к стандартному пластику является важным свойством ММСК и уравнивает уникальные субпопуляции ММСК, так как характерна для всех их типов. Протоколы, в которых описывали ММСК, не обладающие адгезией к пластику, предлагали использование очень специфических условий культивирования. В таких случаях требуется культивирование клеток в стандартных условиях, чтобы доказать их принадлежность к популяции ММСК.
Определение экспрессии поверхностных антигенов - быстрый и точный способ идентифицировать клеточную популяцию. Для идентификации ММСК предлагают исследовать экспрессию следующих маркеров: CD 105 - эндоглин, распознается Mab SH2; CD 73-5'нуклеотидаза, распознается Mab SH3 или SH4, и CD90, известного также как Thy-1. Чтобы не получить гетерогенную популяцию клеток, стоит проверить их на предмет экспрессии маркеров гемопоэтического ряда клеток: CD45, CD34, CD14 или CD11b, CD79a или CD19 и HLA class II (последний может экспрессироваться только при обработке культуры ММСК интерфероном-γ).
Наиболее уникальным свойством ММСК является способность к дифференцировке в трех направлениях: остеогенном, хондрогенном и адипогенном. Таким образом, клетки должны демонстрировать in vitro дифференцировку при культивировании их в стандартных условиях для дифференцировки по одному из этих путей. Дифференцировка в остеобласты может быть продемонстрирована с помощью окраски клеток ализариновым красным или по методу ван Косса. Адипогенная дифференцировка может быть показана окрашиванием Oil Red О. Дифференцировка в хондробласты может быть продемонстрирована с помощью окрашивания альциановым синим, или с помощью антител к коллагену II типа [Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Dominici, M. et al. Cytotherapy, Volume 8, Issue 4,315-317].
Адгезивная культура мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток представляет собой клетки, растущие двумерным монослоем на плоской поверхности. Такая культура обладает низким уровнем стабильности по той причине, что клетки, прикрепленные к подложке или матрице, контактируют с другими клетками с образованием межклеточных контактов только в одной плоскости. При длительном культивировании в монослое мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки теряют одно из важнейших свойств - эпителио-мезенхимную пластичность [Сабурина И.Н. Эпителио-мезенхимальная пластичность мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток в норме и патологии (экспериментальное исследование). Диссертация на соискание степени д.б.н. 2010. М. 195 с], что приводит к снижению эффективности ангиогенеза и, как следствие, остеогенеза мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, находящихся в составе биотрансплантата. Это, в свою очередь, приводит к снижению эффективности регенерации поврежденных тканей при использовании биотрансплантатов, содержащих мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани.
Органы и ткани имеют трехмерную клеточную организацию, в рамках которой клетки образуют сложные комплексы контактов с другими клетками и внеклеточным матриксом, формируя уникальное микроокружение. Подобные структуры могут быть получены в виде клеточных сфероидов. Наличие сформированных контактов и элементов внеклеточного матрикса, а также высокая плотность клеток в сфероидах приближает их к нативным тканям. Этим и обусловлена повышенная стабильность мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов, по сравнению с двухмерными клеточными культурами. Культивирование мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток в виде сфероидов поддерживает их эпителио-мезенхимную пластичность. Это, в свою очередь, повышает эффективность ангиогенеза и, как следствие, остеогенеза мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, находящихся в составе биотрансплантата. Повышается эффективность регенерации поврежденных тканей при использовании биотрансплантатов, содержащих мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани.
Как вариант осуществления изобретения, мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки могут быть культивированы в виде сфероидов со средним размером 50-200 мкм.
Как вариант осуществления изобретения, мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки могут быть культивированы в виде сфероидов с гладкой поверхностью.
Как вариант осуществления изобретения, мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки на поверхности сфероидов могут находиться в виде эпителиального фенотипа.
Настоящее изобретение также обеспечивает способ получения клеточной культуры для создания тканей, органов, тканеинженерных конструкций, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов, который включает в себя следующие стадии:
- изолирование фрагмента ткани донора,
- перенос фрагмента ткани донора в среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту и антибиотик, механическое измельчение фрагмента ткани донора с получением гомогената,
- инкубирование полученного гомогената в растворе протеолитических ферментов при 37°С до момента получения клеточной суспензии,
- добавление питательной среды, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови,
- центрифугирование клеточной суспензии до момента полного осаждения клеток,
- удаление супернатанта,
- ресуспендирование выделенных клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови,
- культивирование выделенных клеток в монослойной культуре при 37°С в среде 5% СО2 как минимум 2 пассажа,
- дезагрегация монослоя,
- культивирование в неадгезивных условиях клеток как минимум 2-го пассажа в концентрации от 1×106 кл/мл до 5×106 кл/мл в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза с получением клеточной культуры, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов.
Как вариант осуществления изобретения, культивирование клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза осуществляется до момента образования гладкой поверхности сфероидов.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве ткани донора используется жировая ткань.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве ткани донора используется ткань пупочного канатика.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве ткани донора используется ткань костного мозга.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве культуральной среды используется среда DMEM.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве культуральной среды используется среда F12.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве культуральной среды используется смесь культуральной среды DMEM и культуральной среды F12 в соотношении 1 к 1 по объему.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве культуральной среды используется смесь культуральной среды DMEM и культуральной среды F12 в соотношении 2 к 1 по объему.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве культуральной среды используется среда α-МЕМ.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве аминокислоты используется L-глутамин.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве антибиотика используется гентамицин.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве антибиотика используется смесь пенициллина со стрептомицином.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве антибиотика используется амфотерицин В.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы первого типа и диспазы.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы первого типа.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор диспазы.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор трипсина.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы второго типа и диспазы.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы второго типа.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве сыворотки крови используется эмбриональная телячья сыворотка.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве сыворотки крови используется аутологичная сыворотка крови пациента.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве фактора индукции ангиогенеза используется фактор роста эндотелия сосудов.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве фактора индукции ангиогенеза используется кондиционированная среда от эндотелиальных клеток вены пупочного канатика.
Как вариант осуществления изобретения, в качестве фактора индукции ангиогенеза используется основной фактор роста фибробластов.
Настоящее изобретение также обеспечивает способ получения биотранплантата для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани, который включает в себя следующие стадии:
- стерилизация матрицы-носителя в виде биокомпозиционного материала,
- нанесение клеточной культуры, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов, на поверхность матрицы-носителя в виде биокомпозиционного материала,
- инкубирование биокомпозиционного материала с нанесенной на его поверхность клеточной культурой, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов, не менее 1 суток с получением биотрансплантата.
На фиг. 1 представлена фотография среза фрагмента нижней челюсти животного опытной группы на 21-ые сутки после остеоабразии и трансплантации биотрансплантата.
На фиг. 2 представлена фотография среза фрагмента нижней челюсти животного опытной группы на 120 - е сутки после остеоабразии и трансплантации биотрансплантата.
На фиг. 3 приведена диаграмма динамики изменения количества сосудов после трансплантации в группе положительного контроля (синий) и в опытной группе (красный) на разных сроках исследования.
Настоящее изобретение проиллюстрировано далее посредством следующих примеров.
Пример 1. Получение клеточной культуры для создания тканей, органов, а также тканеинженерных конструкций, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов.
Выделение и монослойное культивирование аутологичных клеток.
Для выделения клеток стромально-сосудистой фракции у животных в процессе операции брали фрагменты ткани подкожного жира из области нижней части живота и выделяли по стандартному протоколу. Для этого, под общей анестезией рассекали кожу, отделяли гиподерму от мышц брюшной стенки, отрезали фрагмент подкожного жира и помещали его в среду для культивирования клеток, кожу зашивали. Полученную ткань в стерильных условиях измельчали, получив суспензию мелких фрагментов проводили их инкубацию в растворах коллагеназы 1-го типа (0,07%) и диспазы (0,025%) в течение 30 минут. После окончания инкубации в раствор с ферментами и тканью добавляли полную среду культивирования и центрифугировали в течение 5 мин при 1000 об/мин. Затем, слив супернатант, полученный осадок ресуспендировали в полной среде и пропускали через нейлоновый фильтр, для того чтобы избавиться от крупных фрагментов ткани. Полученную суспензию клеток помещали на чашки Петри и культивировали в течение 10 дней. Среду меняли каждые 3 дня, рассев осуществляли на 4-й и 8-й дни после выделения. Полная среда культивирования имеет следующий состав: DMEM/F12 с глутамином (ПанЭко), 1% пенициллин-стрептомицин (ПанЭко), 10% FCS (Fetal Calf Serum).
Получение клеточных сфероидов.
Из охарактеризованных монослойных 2D культур 4-ого пассажа получали 3D культуры - клеточные сфероиды с использованием специальных агарозных планшетов с лунками (Microtissue, США), посевная концентрация клеток составила 3×106 кл/мл. Агарозные планшеты помещали в 12-луночный культуральный планшет и культивировали в течение 7 суток в стандартных условиях (37°С, 5%СО2) в полной ростовой среде вышеуказанного состава с добавлением фактора роста эндотелия сосудов VEGF (10 нг/мл) для стимуляции эндотелиальных предшественников.
Характеристика полученных сфероидов. Получение полутонких срезов.
Сфероиды, зафиксированные в 3% растворе глутарового альдегида на фосфатно-солевом буфере (pH=7,4), дофиксировали 2 часа с помощью 1% OsO4 на фосфатно-солевом буфере (pH=7,4). Отмывали от фиксатора в растворе фосфатно-солевого буфера (pH=7,4), проводили по ряду восходящих спиртов: 50° (2 смены по 5 мин), 70° (ночь при +4°C), 96° (4 смены по 20 мин); обезвоживали в пропилен оксиде (5 мин), переносили в смеси пропилен оксид : аралдит 1 : 1 (60 мин), чистый аралдит (60 мин) и инкубировали в чистой смоле при +60°C до полной полимеризации. Полученные блоки серийно резали на ультратоме Leica ЕМ UC6 (Leica, Германия) (толщина среза 1 мкм). Срезы окрашивали 15 мин смесью толуидинового синего с бурой. При необходимости проводили дифференцировку окрашенных препаратов в воде и фоторегистрировали в видимом световом диапазоне под микроскопом Axiovert 25 {Carl Zeiss, Германия) с помощью цифровой камеры AxioCam HRC {Carl Zeiss, Германия).
Характеристика полученных сфероидов. Проточная цитофлуориметрия.
Полученные сфероиды ферментировали с применением 0.25% раствора трипсина для получения суспензии отдельных клеток. Полученную суспензию инкубировали с антителами к CD1 lb, CD14, CD19, CD29, CD31, CD45, CD90 и CD105 (Beckman Coulter). Анализ экспрессии проводили на проточном цитофлуориметре FC500 (Beckman Coulter, США) с помощью программного обеспечения СХР System.
Иммуноцитохимическое окрашивание
Для проведения иммуноцитохимического анализа сфероиды фиксировали в 4%-ном растворе параформальдегида (20 мин, 4°C), отмывали от фиксатора в растворе фосфатного-солевого буфера (pH=7,4; 3 смены по 5 минут) и инкубировали в течение ночи при 4°C с первичными антителами к маркерам эндотелиальных клеток CD31, Flk-1, vWF, VEGF. Затем сфероиды тщательно отмывали в растворе фосфатного-солевого буфера (pH=7,4) и инкубировали 1 час в темноте со вторичными антителами, конъюгированными с флуоресцентными метками. Ядра на препаратах докрашивали красителем бис-бензимид (Hoechst 33258, Serva). Препараты анализировали под лазерным сканирующим конфокальным микроскопом Olympus Fluoview FV10I (Olympus, Япония).
Результаты
Наблюдение за процессом формирования сфероидов при помощи прижизненной цейтраферной съемки показало, что уже в первые часы клетки формировали рыхлую структуру, которая в дальнейшем компактизировалась, и к седьмым суткам формировался плотный компактный сфероид с гладкой поверхностью. Гистологический анализ показал, что поверхность сфероидов представлена плотно упакованными уплощенными клетками, центральная зона состояла из рыхло расположенных клеток полигональной формы.
Проточная цитофлуориметрия показала, что клетки в составе сфероидов сохраняли экспрессию характерных для ММСК маркеров, в то же время повышалось количество CD34 + клеток - эндотелиальных прогениторов. Иммуноцитохимический анализ показал, что добавление в культуральную среду фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) стимулировало появление в сфероидах ММСК, экспрессирующих маркеры эндотелиальных клеток: CD31, Flk-1, vWF, VEGF. При помещении индуцированных фактором роста эндотелия сосудов (VEGF) сфероидов в гель эндотелиальные прогениторные клетки формировали тубулоподобные ветвящиеся структуры, что доказывает ангиогенный потенциал полученных сфероидов. Таким образом, культивирование сфероидов в присутствии фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) способствует поддержанию и активации популяции эндотелиальных прогениторов.
В результате была получена и охарактеризована клеточная культура для создания тканей, органов, а также тканеинженерных конструкций, содержащая мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов.
Пример 2. Получение биотрансплантата для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани, содержащего клеточную культуру для создания тканей, органов, а также тканеинженерных конструкций, состоящую из мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов.
Для получения биоинженерной конструкции брали микропористый каркас из силикатной матрицы, в которой диспергирована биоактивная фаза (гидроксиапатит) в сочетании с трехкальциевым фосфатом Ca3(P04)2 в форме блоков неправильной формы размером примерно 0.5×0.5 см. Блоки помещали по два в каждую лунку четырехлуночного стерильного планшета и насыщали сфероидами по 250 сфероидов на блок в 150 мкл среды. Планшет помещали в инкубатор на 30 мин для обеспечения адгезии сфероидов к матрице. Через 40 мин в каждую лунку осторожно добавляли полную ростовую среду, пока она не покроет края матрицы со сфероидами, биотрансплантат использовали через 3 суток после заселения.
Для получения биоинженерных конструкций использован стерильный ячеистый биосовместимый остеокондуктивный апатитосиликатный композиционный материал с пористостью 60%, размером пор 50-500 мкм, по минеральному составу близкий к минеральному матриксу губчатой костной ткани. Материал имеет микропористый каркас из силикатной основы, в которой диспергирована биоактивная фаза - гидроксиапатит Са10(РО4)6(ОН)2 или гидроксиапатит в сочетании с трехкальциевым фосфатом Са3(РО4)2.
Исследование показало, что используемый материал не цитотоксичен, адгезивен и не влияет на пролиферативную активность клеток. При заселении матрицы сфероидами к 7 суткам наблюдали лишь единичные выселившиеся клетки. На самой матрице, как на поверхности, так и в порах, к 7 суткам формировался плотный слой клеток, которые экспрессировали остеопонтин и остеокальцин - маркеры остеогенной дифференцировки. При заселении матрицы сфероидами наблюдали также появление тубулоподобных структур.
В результате был получен биотрансплантат для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани, содержащий клеточную культуру для создания тканей, органов, а также тканеинженерных конструкций, состоящую из мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов.
Пример 3. Исследование эффективности биотрансплантата для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани, содержащего клеточную культуру для создания тканей, органов, а также тканеинженерных конструкций, состоящую из мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов.
Используемый в исследовании биотрансплантат
Используемый в исследовании биотрансплантат представляет собой биокомпозиционный материал, содержащий в своей матрице мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов с гладкой поверхностью и средним размером - 100 мкм.
Экспериментальные группы для трансплантации биоинженерной конструкции.
Исследование выполнено на 36 самцах крыс линии Sprague Dawley в возрасте 3-4 месяцев со средним весом 400 гр. Животных разделили на 3 группы: в первой группе (опытная группа) проводили пересадку биотрансплантата, содержащего мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов, и матрицу-носитель в виде биокомпозиционного материала (12 животных). Во второй группе (положительный контроль) проводили пересадку биотрансплантата на основе матрицы - носителя в виде биокомпозиционного материала, содержащего смесь мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в стандартных условиях, и мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, дифференцированных в остеогенном направлении. Клетки взяты в соотношении 1:1 и в количестве 107 клеток на 1 г веса матрицы-носителя (12 животных). При этом клетки в составе биоинженерной конструкции культивированы в виде монослоя. В третьей группе (отрицательный контроль) проводили операцию по остеоабразии передней поверхности нижней челюсти без применения биотрансплантатов (12 животных).
Для определения влияния используемого биотрансплантата, аутологичные образцы, соответствующие номеру экспериментального животного, пересаживали в область угла нижней челюсти, также поступали при имплантации образцов в группе положительного контроля. Для контроля вклада собственных клеток надкостницы, закрывающей костную ткань нижней челюсти, в процесс репаративного остеогенеза проводили операцию остеоабразии без внесения биотрансплантатов (отрицательный контроль). Животных выводили из эксперимента помещением в СО2-камеру. Образцы фиксировались в 10% нейтральном формалине на 7, 21, 40 и 120 сутки. Для каждой экспериментальной группы на одну временную точку приходилось по три животных.
Операции по остеоабразии передней поверхности нижней челюсти и имплантации образцов.
Под общим наркозом рассекали кожу в области левой щеки, отсепаровывали мышцу, обнажали поверхность угла нижней челюсти, скальпелем проводили абразию данной поверхности вплоть до глубины 0,1-0,2 мм. Поверхность санировали стерильным марлевым тампоном, потом аккуратно прижимая соответствующий аутологичный образец пинцетом, фиксировали его к челюсти посредством титановой проволоки, рану обрабатывали антибиотиком и послойно ушивали.
Гистологический анализ фрагментов нижней челюсти после трансплантации биоинженерной конструкции или матрицы.
Зафиксированный в 10% нейтральном формалине фрагмент нижней челюсти с трансплантированным материалом подвергали декальцификации в Трилоне Б по общепринятой методике [Саркисова, Перова, 1996]. После декальцификации из каждого образца вырезали фрагмент ткани с участком имплантата толщиной примерно 5 мм, помещали его в одноразовую кассету и подвергали обработке в автомате для гистологической обработки тканей (STP 120, MICROM INTERNATIONAL GmbH, Германия). Производили заливку в парафин и формирование блоков с использованием станции для заливки в парафин, нарезали срезы толщиной 5 мкм, которые окрашивали гематоксилин-эозином и пикрофуксином по Ван-Гизону по стандартным методикам [Саркисова, Перова, 1996].
Результаты
В опытной группе, а также в группе положительного контроля на 7 сутки после травматического повреждения контакт биокомпозиционного материала с поверхностью кости нижней челюсти животного отсутствовал, в области дефекта уже не было выявлено гематомы, но присутствовали признаки воспалительной реакции. Во всех случаях в области остеобразии над костной поверхностью в области воспалительного инфильтрата на поверхности кости были отмечены признаки репаративного остеогенеза. Различия между опытной и контрольными группами в скорости репаративных процессов, то есть в динамике увеличения доли костной части регенерата и уменьшения доли рыхлой соединительной ткани на данном этапе не зафиксированы.
В группе отрицательного контроля признаков регенерации костной ткани не обнаружено.
На 21 сутки эксперимента в опытной группе, а также в группе положительного контроля отмечена высокая активность репаративных процессов. Между костной поверхностью нижней челюсти и остеопластическим материалом сформировалась тонкая прослойка волокнистой соединительной ткани, представляющая собой тяжи коллагеновых волокон.
В опытной группе на 21 сутки признаки остеогенеза отмечены в двух независимых областях: на поверхности кости и в ячейках матрицы, расположенных в отдалении от костной поверхности, ближе к мышечному пласту (фиг. 1а). Между костной поверхностью нижней челюсти и биотрансплантатом на 21 сутки формировалась прослойка волокнистой соединительной ткани, в которой было много сосудов различного диаметра (фиг. 1б), а также умеренное количество лимфоцитов. В прилежащих к мышечной ткани ячейках отмечена высокая плотность заполнения коллагеновыми волокнами.
В группе положительного контроля в некоторых ячейках матрицы было отмечено формирование костной ткани, источниками развития которой являлись края дефекта, содержащие элементы периоста, эндоста.
В группе отрицательного контроля признаков регенерации костной ткани не обнаружено.
На 40 сутки после пересадки у животных опытной группы в центральных ячейках матрицы отмечено большое количество кровеносных сосудов различного диаметра, а также много коллагеновых волокон, местами формирующих массивные тяжи коллагена. В ячейках со стороны мышечной ткани отмечено формирование плотной волокнистой соединительной ткани, большое количество незрелых клеток.
На 40 сутки после пересадки у животных группы положительного контроля между остеопластическим материалом и костной поверхностью нижней челюсти сформировалась прослойка из волокнистой ткани, пронизанная кровеносными сосудами. В области плотного контакта пластины с костной поверхностью нижней челюсти отмечены многочисленные среднего размера костные бугорки и гребешки, а также оссификация (кальцинирование) материала между ячейками. В ячейках, контактирующих с костной поверхностью, отмечена хорошо сформированная новообразованная костная ткань. Большинство ячеек матрицы заполнены кровеносными сосудами различного диаметра, в отдельных ячейках, преимущественно центральной локализации в пластине, отмечено небольшое количество жировой ткани.
В группе отрицательного контроля на 40 сутки после операции признаков регенерации костной ткани не обнаружено.
На 120 сутки после пересадки у животных опытной группы шло активное замещение биотрансплантата сформированной и функционально активной новообразованной костной тканью: костная часть регенерата состояла из ретикулофиброзной и компактной кости (фиг. 2). Ретикулофиброзная кость была образована массивными костными трабекулами с узкими щелевидными межтрабекулярными пространствами, заполненными соединительной тканью или костным мозгом. Между матрицей и костной поверхностью нижней челюсти сформировалась прослойка из волокнистой соединительной ткани, пронизанная кровеносными сосудами.
На 120 сутки после пересадки у животных группы положительного контроля между остеопластическим материалом и костной поверхностью нижней челюсти сформировалась прослойка из волокнистой соединительной ткани, пронизанная кровеносными сосудами. Репаративные процессы кости на этих сроках наблюдения можно охарактеризовать как перестройку ретикулофиброзной (незрелой кости) в компактную (зрелую). Скорость репаративных процессов снизилась, на первый план выступали процессы минерализации и ремоделирования костной ткани в соответствии с функциональной нагрузкой костного органа.
В группе отрицательного контроля на 120 сутки практически не шел остеогенез, в большей степени сохранялись участки рыхлой соединительной ткани.
При иммуногистохимическом окрашивании срезов в опытной группе на 21, 40 и 120 сутки на всех трех сроках после трансплантации была зафиксирована экспрессия маркера зрелого сосудистого русла - фактора Фон Виллебранда и синтезируемого зрелыми остеоцитами и участвующего в минерализации костной ткани остеокальцина. В большинстве случаев, остеокальцин - позитивные клетки локализовались внутри ячеек носителя, вследствие чего предполагается, что остеокальцин экспрессировали клетки сфероидов, ранее заселенных на матрицу. На всех трех сроках исследования интенсивность синтеза остеокальцина в группе после пересадки заявленного биотрансплантата была выше по сравнению с группой положительного контроля.
Дополнительно на гистологических препаратах после трансплантации в опытной группе, а также в группе положительного контроля был произведен подсчет сосудов. Результаты приведены на фиг. 3. Количество крупных, мелких и средних сосудов достоверно выше в опытной группе, на поздних сроках происходит значительное уменьшение количества сосудов в обеих группах, однако в опытной группе данный феномен менее выражен.
Выводы.
Полученные данные, свидетельствуют о выраженном положительном влиянии клеточных сфероидов в биотрансплантате на репаративный остеогенез после абразии костной ткани за счет значимого улучшения кровоснабжения биотрансплантата. Инициацию репаративного остеогенеза на границе «трансплантат-кость» обеспечивали именно клеточные взаимодействия между привнесенными с биотрансплантатом клеточными сфероидами и реципиентным ложем.
Исходя из вышеуказанных результатов, можно сделать вывод о повышении уровня ангиогенеза мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, а также о повышении эффективности регенерации поврежденных тканей при использовании биотрансплантата, содержащего клеточную культуру, состоящую из мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов.
Список использованной литературы
1. Zuk Р.А., Zhu М., Mizimo Н., Huang J.I., Futrell W.J., Katz A.J., Benhaim P., Lorenz H.P., Hedrick M.H. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. // Tissue Eng. - 2001. - V. 7. - P. 211-226.
2. Rehman J., Traktuev D., Li J., Merfeld-Clauss S., Temm-Grove C.J., Bovenkerk J.E., Pell C.L., Johnstone B.H., Considine R.V., March K.L. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells. // Circulation. - 2004. V. 109. - №10. - P. 1292-1298.
3. Микроскопическая техника Руководство для врачей и лаборантов под ред. Д.С. Саркисова и Ю.Л. Перова, Москва «Медицина» 1996, 542 С.
Claims (35)
1. Способ получения мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов и индуцированных в ангиогенном направлении, включающий в себя следующие стадии:
- изолирование фрагмента ткани донора, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки.
- перенос фрагмента ткани донора в среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту и антибиотик, механическое измельчение фрагмента ткани донора с получением гомогената,
- инкубирование полученного гомогената в растворе протеолитических ферментов при 37°С до момента получения клеточной суспензии,
- добавление питательной среды, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови,
- центрифугирование клеточной суспензии до момента полного осаждения клеток,
- удаление супернатанта,
- ресуспендирование выделенных клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови,
- культивирование выделенных клеток в монослойной культуре при 37°С в среде 5% СО2 как минимум 2 пассажа,
- дезагрегация монослоя,
- культивирование в неадгезивных условиях клеток как минимум 2-го пассажа в концентрации от 1×106 кл/мл до 5×106 кл/мл в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза с получением клеточной культуры, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что культивирование клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза, осуществляется до момента образования гладкой поверхности сфероидов.
3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве ткани донора используется жировая ткань.
4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве ткани донора используется ткань пупочного канатика.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве ткани донора используется ткань костного мозга.
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве культуральной среды используется среда DMEM.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве культуральной среды используется среда F12.
8. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве культуральной среды используется смесь культуральной среды DMEM и культуральной среды F12 в соотношении 1 к 1 по объему.
9. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве культуральной среды используется смесь культуральной среды DMEM и культуральной среды F12 в соотношении 2 к 1 по объему.
10. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве культуральной среды используется среда α-МЕМ.
11. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве аминокислоты используется L-глутамин.
12. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве антибиотика используется гентамицин.
13. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве антибиотика используется смесь пенициллина со стрептомицином.
14. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве антибиотика используется амфотерицин В.
15. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы первого типа и диспазы.
16. Способ получения по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы первого типа.
17. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор диспазы.
18. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор трипсина.
19. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы второго типа и диспазы.
20. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве раствора протеолитических ферментов используется раствор коллагеназы второго типа.
21. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве сыворотки крови используется эмбриональная телячья сыворотка.
22. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве сыворотки крови используется аутологичная сыворотка крови пациента.
23. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве фактора индукции ангиогенеза используется фактор роста эндотелия сосудов.
24. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве фактора индукции ангиогенеза используется кондиционированная среда от эндотелиальных клеток вены пупочного канатика.
25. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве фактора индукции ангиогенеза используется основной фактор роста фибробластов.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017126204A RU2675930C1 (ru) | 2017-07-21 | 2017-07-21 | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017126204A RU2675930C1 (ru) | 2017-07-21 | 2017-07-21 | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018143952A Division RU2721532C1 (ru) | 2018-12-12 | 2018-12-12 | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2675930C1 true RU2675930C1 (ru) | 2018-12-25 |
Family
ID=64753824
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2017126204A RU2675930C1 (ru) | 2017-07-21 | 2017-07-21 | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2675930C1 (ru) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2731314C1 (ru) * | 2019-10-30 | 2020-09-01 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства клеточных сфероидов для восстановления хрящей |
| RU2744664C1 (ru) * | 2020-03-02 | 2021-03-12 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства сфероидов из культивируемых клеток надкостницы для обеспечения репаративного остеогенеза |
| RU2747087C1 (ru) * | 2020-08-31 | 2021-04-26 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства биокомпозитных сфероидов для восстановления костной ткани |
| RU2750021C1 (ru) * | 2020-08-26 | 2021-06-21 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ восстановления диафизов длинных трубчатых костей с применением клеточных технологий |
| RU2779742C1 (ru) * | 2021-08-10 | 2022-09-13 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се | Способ получения суспензии единичных жизнеспособных клеток из клеточных сфероидов |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2530622C2 (ru) * | 2012-03-01 | 2014-10-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Биотрансплантат для восстановления объема костной ткани при дегенеративных заболеваниях и травматических пвореждениях костей и способ его получения |
-
2017
- 2017-07-21 RU RU2017126204A patent/RU2675930C1/ru active
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2530622C2 (ru) * | 2012-03-01 | 2014-10-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Биотрансплантат для восстановления объема костной ткани при дегенеративных заболеваниях и травматических пвореждениях костей и способ его получения |
Non-Patent Citations (4)
| Title |
|---|
| Cesarz Z., et al. "Spheroid Culture of Mesenchymal Stem Cells", Stem Cell Int. 2016; 2016: 9176357. * |
| ВЕЧКАНОВ Е.М., и др. Основы клеточной инженерии: Учебное пособие. - Ростов-на-Дону, 2012. - 136 с. * |
| ВЕЧКАНОВ Е.М., и др. Основы клеточной инженерии: Учебное пособие. - Ростов-на-Дону, 2012. - 136 с. КОЖУХАРОВА И.В. "Новые линии эмбриональных стволовых клеток человека С612 и С910". Цитология. 2009; 51(7):551-558. * |
| КОЖУХАРОВА И.В. "Новые линии эмбриональных стволовых клеток человека С612 и С910". Цитология. 2009; 51(7):551-558. * |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2731314C1 (ru) * | 2019-10-30 | 2020-09-01 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства клеточных сфероидов для восстановления хрящей |
| WO2021086222A1 (ru) * | 2019-10-30 | 2021-05-06 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" | Способ производства клеточных сфероидов для восстановления хрящей |
| RU2744664C1 (ru) * | 2020-03-02 | 2021-03-12 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства сфероидов из культивируемых клеток надкостницы для обеспечения репаративного остеогенеза |
| RU2750021C1 (ru) * | 2020-08-26 | 2021-06-21 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ восстановления диафизов длинных трубчатых костей с применением клеточных технологий |
| RU2747087C1 (ru) * | 2020-08-31 | 2021-04-26 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Международный Центр Медицинских Исследований И Разработок" (Ооо "Мц Миир") | Способ производства биокомпозитных сфероидов для восстановления костной ткани |
| RU2779742C1 (ru) * | 2021-08-10 | 2022-09-13 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се | Способ получения суспензии единичных жизнеспособных клеток из клеточных сфероидов |
| RU2819284C2 (ru) * | 2022-06-29 | 2024-05-16 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени Н.Н. Приорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ТО им. Н.Н. Приорова" Минздрава России) | Способ получения тканеинженерной надкостницы из клеточных сфероидов для восстановления костных дефектов субъекта |
| RU2802060C1 (ru) * | 2022-12-13 | 2023-08-22 | Государственное автономное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГАУЗ СО "ИМКТ") | Способ оценки биосовместимости имплантата с сетчатой структурой |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| KR100968165B1 (ko) | 지방 유래 간세포 및 격자 | |
| US9867854B2 (en) | Therapeutic method using cardiac tissue-derived pluripotent stem cells | |
| US9192695B2 (en) | Allografts combined with tissue derived stem cells for bone healing | |
| RU2675930C1 (ru) | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе | |
| US20080026461A1 (en) | Tissue-like organization of cells and macroscopic tissue-like constructs, generated by macromass culture of cells and the method of macromass culture | |
| Ibsirlioglu et al. | Decellularized biological scaffold and stem cells from autologous human adipose tissue for cartilage tissue engineering | |
| Nae et al. | Human adipose-derived stem cells: definition, isolation, tissue-engineering applications | |
| EP1934332B1 (en) | Methods for differentiating stem cells and use thereof in the treatment of dental conditions | |
| Fard et al. | Bilayer amniotic membrane/nano-fibrous fibroin scaffold promotes differentiation capability of menstrual blood stem cells into keratinocyte-like cells | |
| US20160067377A1 (en) | Stem Cell Seeded Natural Substrates and Methods Relating Thereto | |
| RU2721532C1 (ru) | Клеточная культура и биотрансплантат для регенерации костной ткани на ее основе | |
| RU2530622C2 (ru) | Биотрансплантат для восстановления объема костной ткани при дегенеративных заболеваниях и травматических пвореждениях костей и способ его получения | |
| US20080241111A1 (en) | Pluripotent Stem Cell Derived from Cardiac Tissue | |
| EP1029035B1 (fr) | Procede pour induire la differenciation osteoblastique de cellules de tissu adipeux extramedullaire humain | |
| AU2004317828B2 (en) | Tissue-like organization of cells and macroscopic tissue-like constructs, generated by macromass culture of cells, and the method of macromass culture | |
| JP6598106B2 (ja) | 脂肪由来幹細胞シート由来の骨細胞又は骨の作製方法 | |
| JP6525282B2 (ja) | 骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シート及びその作製方法 | |
| Wang et al. | A selective cell population from dermis strengthens bone regeneration | |
| JP2022550911A (ja) | 軟骨形成ヒト間葉系幹細胞（ｍｓｃ）シート | |
| RU2744732C1 (ru) | Биокомпозитный сфероид для восстановления костей и способ его получения | |
| Vernon et al. | Stem cell based bone tissue engineering | |
| JP2020162565A (ja) | 脂肪由来幹細胞シート由来の骨三次元構造体及び該構造体の作製方法 | |
| Hutmacher et al. | Bone repair and adult stem cells |