RU2673729C1 - Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma - Google Patents

Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma Download PDF

Info

Publication number
RU2673729C1
RU2673729C1 RU2018111913A RU2018111913A RU2673729C1 RU 2673729 C1 RU2673729 C1 RU 2673729C1 RU 2018111913 A RU2018111913 A RU 2018111913A RU 2018111913 A RU2018111913 A RU 2018111913A RU 2673729 C1 RU2673729 C1 RU 2673729C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cell
cells
rc291c
cell line
tumor
Prior art date
Application number
RU2018111913A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Александровна Балдуева
Анна Борисовна Данилова
Татьяна Леонидовна Нехаева
Алексей Михайлович Беляев
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Петрова" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Петрова" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Петрова" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2018111913A priority Critical patent/RU2673729C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2673729C1 publication Critical patent/RU2673729C1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention is the use of the human cell carcinoma of the kidney cancer RC291C, expressing cancer-testicular antigens stored in the specialized collection of vertebrate cell cultures of the Russian cell culture collection under the registration number RKKK (P) 724D for the preparation of biomedical cell products and testing of antitumor bio-and chemotherapy drugs.
EFFECT: invention allows to increase the effectiveness of treatment and increase the life expectancy in the treatment of malignant tumors.
1 cl, 1 ex

Description

Изобретение относится к области медицинской биотехнологии, в частности, к получению и применению клеточных линий, используемых для клеточных технологий в медицине, среди которых создание биомедицинских клеточных продуктов - противоопухолевых вакцин, диагностических наборов и тест-систем для разработки новых лекарственных средств и новых терапевтических подходов, тестирование активности различных фармацевтических препаратов.The invention relates to the field of medical biotechnology, in particular, to the production and use of cell lines used for cell technology in medicine, among which the creation of biomedical cell products - antitumor vaccines, diagnostic kits and test systems for the development of new drugs and new therapeutic approaches, testing the activity of various pharmaceuticals.

Прогресс современной биомедицинской науки и биотехнологии в значительной степени обусловлен применением культивируемых in vitro клеток различного происхождения. Метод культур клеток является уникальным и вместе с тем широко применяется в настоящее время, как в практических, так и в научных исследованиях. Появилась возможность использования клеток животных для получения генно-инженерных препаратов, заместительной терапии, производство препаратов для иммунопрофилактики, диагностики и лечения в значительной мере зависит от стабильности и воспроизводимости свойств используемых клеток. Основой получения любого безопасного биопродукта должна быть стандартизованная и аттестованная культура клеток. В настоящее время использование подобных клеточных линий является неотъемлемым условием при проведении исследований или разработке новых технологий, а также для обеспечения стабильного и безопасного производства биотехнологических препаратов (Мензоров А.Г., Серов О.Л. Зачем нужны коллекции линий клеток // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2016. - Т. 20(6). - С. 945-948. DOI 10.18699/VJ16.215).The progress of modern biomedical science and biotechnology is largely due to the use of in vitro cultured cells of various origins. The method of cell culture is unique and at the same time is widely used at present, both in practical and in scientific research. It became possible to use animal cells to obtain genetically engineered drugs, substitution therapy, the production of drugs for immunoprophylaxis, diagnosis and treatment largely depends on the stability and reproducibility of the properties of the cells used. The basis for any safe bio-product should be a standardized and certified cell culture. Currently, the use of such cell lines is an essential condition for research or the development of new technologies, as well as to ensure stable and safe production of biotechnological preparations (Menzorov A.G., Serov OL.Why do we need collections of cell lines // Vavilovsky Journal of Genetics and selection. - 2016. - T. 20 (6). - S. 945-948. DOI 10.18699 / VJ16.215).

Рак почки занимает одно из ведущих мест по темпам прироста среди онкоурологических заболеваний. По данным статистики, в 2016 г. в России было зарегистрировано 108,9 случаев злокачественных новообразований почки на 100000 тыс. населения по сравнению с 78,5 в 2011 г. (Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, Г.В. Петровой Состояние онкологической помощи населению России в 2016 году. - М.: МНИОИ им. П.А. Герцена - филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России, 2017. - илл. - 236 с. ISBN 978-5-85502-231-5). Течение этого заболевания таково, что у 25-50% больных на момент установления диагноза уже определяются метастазы, приблизительно у половины пациентов болезнь приобретет системный характер в разные сроки после оперативного лечения. Биологической особенностью почечноклеточного рака является способность к метастазированию в любые органы и ткани организма. Традиционные виды системного лечения, назначаемые при распространенных формах опухолей, оказываются неэффективными у больных почечноклеточным раком. Однако рак почки относится к группе новообразований, чувствительных к иммунотерапевтическому воздействию (Cho Y.H., Kim M.S., Chung H.S., Chang E.Novel immunotherapy in metastatic renal cell carcinoma // Investig Clin Urol. - 2017 - Vol. 58(4). - P. 220-227. doi: 10.411 l/icu.2017.58.4.220).Kidney cancer is one of the leading growth rates among oncourological diseases. According to statistics, in 2016, 108.9 cases of malignant neoplasms of the kidney were recorded in Russia per 100,000 thousand of the population, compared with 78.5 in 2011 (Edited by A.D. Kaprin, V.V. Starinsky, G.V. Petrova The state of oncological care for the population of Russia in 2016. - M.: P. Herzen MNIIO - branch of FSBI “NIIRTS” Ministry of Health of Russia, 2017. - ill. - 236 pp. ISBN 978-5-85502 -231-5). The course of this disease is such that in 25-50% of patients at the time of diagnosis, metastases are already being determined, in about half of patients, the disease will acquire a systemic character at different times after surgical treatment. The biological feature of renal cell carcinoma is the ability to metastasize to any organs and tissues of the body. Traditional types of systemic treatment prescribed for common forms of tumors are ineffective in patients with renal cell carcinoma. However, kidney cancer belongs to the group of neoplasms sensitive to immunotherapeutic effects (Cho YH, Kim MS, Chung HS, Chang E. Novel immunotherapy in metastatic renal cell carcinoma // Investig Clin Urol. - 2017 - Vol. 58 (4). - P . 220-227. Doi: 10.411 l / icu.2017.58.4.220).

Активная иммунотерапия включает в себя: 1) неспецифическую иммунотерапию (индуцирование активного воспалительного процесса, неспецифическая вакцинация, местное и системное использование БЦЖ, применение левамизола, интерферонов α и γ, фактора некроза опухолей, интерлейкинов, колониестимулирующих факторов, высоких доз антиэстрогенов), 2) специфическую иммунотерапию с иммунизацией опухолевыми антигенами (вакцинотерапию), 3) генную терапию. В настоящее время ведется поиск опухолеассоциированных антигенов (ОАА), использование которых в качестве мишеней для иммунотерапии позволило бы вывести эти методы на качественно новый уровень (Schumacher T.N., Schreiber R.D. Neoantigens in cancer immunotherapy // Science. - 2015. - Vol. 348, Issue 6230. - P. 69-74. DOI: 10.1126/science. 4971). Процесс создания и отбора опухолевых клеточных линий, способных стабильно продуцировать высокий уровень ОАА, является базой для производства противоопухолевых клеточных вакцин, в том числе вакцин на основе дендритных клеток (ДК). Создание противоопухолевых вакцин с использованием ДК является перспективным направлением в терапии онкологических заболеваний, так как позволяет активировать защитные системы организма больного, используя естественные пути распознавания опухолевых антигенов и их последующую элиминацию. Опухолевые антигены, полученные из разрушенных клеток опухоли, в большей степени подходят для нагрузки ДК, так как в этом случае в клетку попадает весь набор опухолеассоциированных и опухолеспецифических антигенов (Балдуева И.А. Иммунотерапия злокачественных новообразований: взгляд в будущее. Аллергология и иммунология - 2014. - №4. - С. 266-268). В качестве носителей ОАА используют аутологичные и аллогенные цельные или лизированные опухолевые клетки, причем каждая опухолевая клеточная линия обладает специфическим уникальным набором ОАА, и расширение спектра клеточных линий позволяет создать более широкий пул данных антигенов, которые могут стать доступны для таких антигенпрезентирующих клеток? как ДК в процессе манипуляций in vitro при создании противоопухолевых вакцин, что позволяет с наибольшей эффективностью индуцировать противоопухолевый иммунитет (Monjazeb A.M., Hsiao Н.Н., Sckisel G.D., Murphy W.J. The role of antigen-specific and non-specific immunotherapy in the treatment of cancer // J Immunotoxicol. - 2012. - Jul-Sep; 9(3). - P. 248-58. - doi: 10.3109/1547691X.2012.685527). ДК-вакцины успешно применяют для лечения пациентов с раком почки как в виде монотерапии, так и в составе комбинированной противоопухолевой терапии (Amin A., Dudek A.Z., Logan T.F. et al. Survival with AGS-003, an autologous dendritic cell-based immunotherapy, in combination with sunitinib in unfavorable risk patients with advanced renal cell carcinoma (RCC): Phase 2 study results // J Immunother Cancer. 2015 Apr 21; 3:14. doi: 10.1186/s40425-015-0055-3).Active immunotherapy includes: 1) non-specific immunotherapy (inducing an active inflammatory process, non-specific vaccination, local and systemic use of BCG, the use of levamisole, interferons α and γ, tumor necrosis factor, interleukins, colony-stimulating factors, high doses of antiestrogens), 2) specific immunotherapy with immunization with tumor antigens (vaccine therapy), 3) gene therapy. Currently, a search is underway for tumor-associated antigens (OAAs), the use of which as targets for immunotherapy would bring these methods to a whole new level (Schumacher TN, Schreiber RD Neoantigens in cancer immunotherapy // Science. - 2015. - Vol. 348, Issue 6230. - P. 69-74. DOI: 10.1126 / science. 4971). The process of creating and selecting tumor cell lines capable of stably producing high levels of OAA is the basis for the production of antitumor cell vaccines, including dendritic cell (DC) vaccines. The creation of antitumor vaccines using DC is a promising direction in the treatment of cancer, as it allows you to activate the protective system of the patient’s body, using the natural ways of recognizing tumor antigens and their subsequent elimination. Tumor antigens obtained from destroyed tumor cells are more suitable for loading DK, since in this case the whole set of tumor-associated and tumor-specific antigens enters the cell (Baldueva I.A. Immunotherapy of malignant neoplasms: a look into the future. Allergology and Immunology - 2014 . - No. 4. - S. 266-268). Autologous and allogeneic whole or lysed tumor cells are used as OAA carriers, each tumor cell line having a specific unique set of OAAs, and expanding the spectrum of cell lines allows you to create a wider pool of these antigens that can become available for such antigen-presenting cells? as a DC in the process of in vitro manipulation when creating antitumor vaccines, which allows the most effective induction of antitumor immunity (Monjazeb AM, Hsiao NN, Sckisel GD, Murphy WJ The role of antigen-specific and non-specific immunotherapy in the treatment of cancer // J Immunotoxicol. - 2012. - Jul-Sep; 9 (3) .- P. 248-58. - doi: 10.3109 / 1547691X.2012.685527). DC vaccines have been successfully used to treat patients with kidney cancer, both as monotherapy and as part of combination antitumor therapy (Amin A., Dudek AZ, Logan TF et al. Survival with AGS-003, an autologous dendritic cell-based immunotherapy, in combination with sunitinib in unfavorable risk patients with advanced renal cell carcinoma (RCC): Phase 2 study results // J Immunother Cancer. 2015 Apr 21; 3:14. doi: 10.1186 / s40425-015-0055-3).

Техническим результатом изобретения является расширение арсенала клеточных линий, используемых для создания цельноклеточных и генноинженерных противоопухолевых вакцин, что дает возможность повысить эффективность лечения и увеличить продолжительность жизни при лечении злокачественных новообразований.The technical result of the invention is the expansion of the arsenal of cell lines used to create whole-cell and genetically engineered antitumor vaccines, which makes it possible to increase the effectiveness of treatment and increase life expectancy in the treatment of malignant neoplasms.

Кроме того, полученная новая клеточная линия может использоваться для тестирования активности различных фармацевтических препаратов, создания диагностических наборов, тест-систем и экспериментальных моделей для разработки новых лекарственных средств и новых терапевтических подходов.In addition, the obtained new cell line can be used to test the activity of various pharmaceuticals, create diagnostic kits, test systems and experimental models for the development of new drugs and new therapeutic approaches.

Указанный технический результат достигается применением клеточной линии светлоклеточного рака почки человека RC291C, экспрессирующей раково-тестикулярные антигены, хранящейся в специализированной коллекции культур клеток позвоночных Российской коллекции клеточных культур под регистрационным номером РККК (П) 724Д, для приготовления биомедицинских клеточных продуктов, тестирования противоопухолевых био- и химиопрепаратов.The specified technical result is achieved by using the cell line of human kidney cell cancer of the kidney RC291C, expressing cancer testicular antigens stored in a specialized collection of vertebrate cell cultures of the Russian collection of cell cultures under registration number RKKK (P) 724D, for the preparation of biomedical cell products, testing of anti-tumor bio- and chemotherapy drugs.

Полученная клеточная линия RC291C обладает стабильными культуральными и морфологическими характеристиками. Родословная клеточной линии RC291C представлена следующим образом.The obtained cell line RC291C has stable cultural and morphological characteristics. The pedigree of the cell line RC291C is presented as follows.

Клеточная линия получена из метастаза опухоли в легкое больной Ц., 65 л., проходившей лечение в специализированном онкологическом медицинском учреждении/. Материал получен при хирургическом удалении метастатического образования. Получение клеточной линии RC291C осуществлено следующим образом.The cell line was obtained from metastasis of the tumor into the lung of patient C., 65 l., Undergoing treatment in a specialized oncological medical institution. Material obtained by surgical removal of a metastatic lesion. Obtaining cell line RC291C as follows.

Опухолевая ткань получена хирургическим путем. Измельченные стерильным скальпелем образцы опухоли (1-3 мм3) подвергали механической дезагрегации в автоматическом режиме Медимашины (DAKO, Дания) в течение 30-60 сек, помещая их на стерильные ножи медиконы. Полученную суспензию клеток пропускали последовательно через стерильные нейлоновые фильтры 100 мкм, 70 мкм, 50 мкм, суспендировали в полной питательной среде и переносили в культуральную посуду, в которой осуществляли культивирование в течение длительного времени. Стабильно растущая клеточная линия была получена на 22 пассаже.Tumor tissue obtained by surgery. Tumor samples ground with a sterile scalpel (1-3 mm 3 ) were subjected to mechanical disaggregation in automatic mode of the Medimachine (DAKO, Denmark) for 30-60 seconds, placing them on sterile medicon knives. The resulting cell suspension was passed sequentially through sterile nylon filters of 100 μm, 70 μm, 50 μm, suspended in a complete nutrient medium and transferred to a culture dish in which cultivation was carried out for a long time. A stably growing cell line was obtained at passage 22.

Морфологические признаки клеточной линии RC291C характеризуются следующим образом.The morphological characteristics of the cell line RC291C are characterized as follows.

Культура представлена клетками полигональной или округлой формы, содержащими крупные ядра с одним или двумя ядрышками. Встречаются многоядерные клетки. Ядра 78% клеток окрашиваются в ходе иммуноцитохимической реакции с моноклональными антителами против маркера пролиферации Ki-67.The culture is represented by polygonal or round cells containing large nuclei with one or two nucleoli. Multinucleated cells are found. The nuclei of 78% of the cells are stained during the immunocytochemical reaction with monoclonal antibodies against the Ki-67 proliferation marker.

Маркерные признаки клеточной линии RC291C следующие.Marker signs of the RC291C cell line are as follows.

Методом проточной цитометрии определена поверхностная экспрессия антигенов HLAA/B/C, раково-тестикулярных антигенов NY-ESO-1 и семейств MAGE, GAGE. Методом иммуноцитохимии определена экспрессия антигена RCC (renal cell carcinoma antigen).Using surface cytometry, surface expression of HLAA / B / C antigens, cancer-testicular antigens NY-ESO-1, and the MAGE, GAGE families were determined. The method of immunocytochemistry determined the expression of RCC antigen (renal cell carcinoma antigen).

Культуральные свойства клеточной линии RC291C представлены следующим образом.The cultural properties of the cell line RC291C are presented as follows.

Клеточная линия культивируется в питательной среде DMEM/F12 с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки, глутамина (365 мг/л), инсулина (5 мкг/мл), трансферрина (5 мкг/мл), селена (5 нг/мл), антибиотиков (пенициллин со стрептомицином в концентрации: 100 ед/мл и 100 мкг/мл соответственно). Культивирование осуществляется при 37°С, 5% CO2, 100% влажности. Культура имеет адгезионный монослойный тип роста. Во флаконы объемом 25 см2 в 5 мл среды засевают 1×106 клеток. При субкультивировании клетки снимают 2 раза в неделю в соотношении 1:2 с использованием стандартного раствора 0,25% трипсина.The cell line is cultured in DMEM / F12 medium supplemented with 20% fetal calf serum, glutamine (365 mg / l), insulin (5 μg / ml), transferrin (5 μg / ml), selenium (5 ng / ml), antibiotics (penicillin with streptomycin at a concentration of 100 u / ml and 100 μg / ml, respectively). Cultivation is carried out at 37 ° C, 5% CO 2 , 100% humidity. The culture has an adhesive monolayer type of growth. In vials of 25 cm 2 in 5 ml of medium sow 1 × 10 6 cells. When subcultured, cells are removed 2 times a week in a 1: 2 ratio using a standard solution of 0.25% trypsin.

Условия криоконсервации следующие.Cryopreservation conditions are as follows.

Для длительного хранения клетки консервируют путем замораживания в жидком азоте. Криосреда: DMEM/F12 50%, эмбриональная телячья сыворотка 40%, DMSO 10%; 3×106 клеток/мл на ампулу. Клетки клеточной линии ресуспендируют в среде для замораживания. Режим замораживания: жидкий азот, снижение температуры на 1°С в минуту до -25°С, затем быстрое замораживание до минус 70°С. Хранение в жидком азоте при температуре -196°С. Размораживание быстрое, при 37°С. Клетки разводят в 10 мл бессывороточной среды и осаждают центрифугированием, ресуспендируют в 5 мл той же среды, содержащей 20% эмбриональной телячьей сыворотки, и переносят в культуральный флакон объемом 25 см2. Жизнеспособность клеток оценивают по включению трипанового синего. Жизнеспособность клеток после криоконсервации составляет 92%.For long-term storage, cells are preserved by freezing in liquid nitrogen. Cryomedia: DMEM / F12 50%, fetal calf serum 40%, DMSO 10%; 3 × 10 6 cells / ml per vial. Cell line cells are resuspended in freezing medium. Freezing mode: liquid nitrogen, temperature decrease by 1 ° С per minute to -25 ° С, then quick freezing to minus 70 ° С. Storage in liquid nitrogen at a temperature of -196 ° C. Defrosting is quick at 37 ° C. Cells are diluted in 10 ml of serum-free medium and precipitated by centrifugation, resuspended in 5 ml of the same medium containing 20% fetal calf serum, and transferred to a 25 cm 2 culture vial. Cell viability is assessed by the inclusion of trypan blue. Cell viability after cryopreservation is 92%.

Контаминация исследована следующим образом.Contamination is investigated as follows.

При длительном наблюдении бактерии и грибы в культуре не обнаружены. Иммунофлуоресцентный тест на микоплазму отрицателен.With prolonged observation, bacteria and fungi were not found in the culture. Mycoplasma immunofluorescence test is negative.

Кариологическая характеристика клеточной линии RC291C следующая:The karyological characteristics of the RC291C cell line are as follows:

47,X,-X,+t(1;7)(q21;p22),+t(1:7)(q21;p22),+del(4)(q),+t(7:?)(p22;?),-8,del(9)(p22),-14,-15,+del(17)(q),+20,-21.47, X, -X, + t (1; 7) (q21; p22), + t (1: 7) (q21; p22), + del (4) (q), + t (7:?) ( p22;?), - 8, del (9) (p22), - 14, -15, + del (17) (q), + 20, -21.

При этом del (4)(q) встречается в 62% клеток в виде del (4)(q23) и в 38% клеток в виде del (4)(q31). Делеция del(17)(q) встречается в 77% клеток в виде del(17)(q11.2) и в 23% клеток в виде del(17)(q22). Наиболее часто встречаемые маркеры, характеризующие культуру RC291C:Moreover, del (4) (q) occurs in 62% of cells as del (4) (q23) and in 38% of cells as del (4) (q31). Deletion of del (17) (q) occurs in 77% of cells as del (17) (q11.2) and in 23% of cells as del (17) (q22). The most common markers characterizing the culture of RC291C:

1. Нереципрокная (невзаимная) транслокация между 1 и 7 хромосомами [t(l;7)(q21;p22)]. Выявлена в 95% случаев, при этом в количестве 2 в 75% клеток, в количестве 1 - в 16% клеток, в количестве 3 - в 4 клетках из 100.1. Non-reciprocal (non-reciprocal) translocation between chromosomes 1 and 7 [t (l; 7) (q21; p22)]. Identified in 95% of cases, with 2 in 75% of the cells, 1 in 16% of the cells, 3 in 4 of the 100 cells.

2. Дериват хромосомы 7, или транслокация 7 в локусе р22 [t(7;?)(p22;?)]. Выявлена в 56% клеток, при этом в основном в количестве 1 и только в 4%>клеток в количестве 2.2. Derivative of chromosome 7, or translocation 7 at the p22 locus [t (7;?) (P22 ;?)]. It was detected in 56% of the cells, while mostly in the amount of 1 and only 4%> cells in the amount of 2.

3. Изохромосома 9q выявлена в 35% клеток, в основном в количестве 1.3. Isochromosome 9q was detected in 35% of cells, mainly in an amount of 1.

4. Делеция хромосомы 4 в локусе q23 встречается в 72% клеток, при этом в основном в количестве 1.4. Deletion of chromosome 4 at the q23 locus occurs in 72% of the cells, with a majority of 1.

5. Делеция 4q13 встречается в 29% клеток, при этом в 6% клеток в количестве 2.5. Deletion of 4q13 occurs in 29% of cells, while in 6% of cells in an amount of 2.

6. Делеция 7 хромосомы в локусе q11.2 встречается в 55% клеток, при этом в 12% клеток в количестве 2 и в 3% клеток в количестве 3.6. Deletion of chromosome 7 at the q11.2 locus occurs in 55% of cells, while in 12% of cells in an amount of 2 and in 3% of cells in an amount of 3.

7. Делеция 6 хромосомы в локусе q23 отмечена в 5% клеток.7. Deletion of chromosome 6 at the q23 locus was noted in 5% of the cells.

8. Делеция 9 хромосомы в локусе р22 отмечена в 61% клеток, в основном в количестве 1.8. Deletion of chromosome 9 at the p22 locus was observed in 61% of cells, mainly in an amount of 1.

9. Маркер в виде 10(р) отмечен в 9% клеток.9. A marker in the form of 10 (p) is noted in 9% of the cells.

Использование клеточной линии RC291C представлено следующими примерами.The use of the cell line RC291C is represented by the following examples.

Пример 1. Использование клеточной линии RC291C для приготовления противоопухолевых вакцин на основе активированных дендритных клеток.Example 1. The use of the cell line RC291C for the preparation of antitumor vaccines based on activated dendritic cells.

1. Клеточную линию RC291C культивировали в пластиковых флаконах в полной питательной среде DMEM/F12 с добавлением 20% эмбриональной телячьей сыворотки, глутамина (365 мг/л), инсулина (5 мкг/мл), трансферрина (5 мкг/мл), селена (5 нг/мл), пенициллина (100 ед/мл), стрептомицина (100 мкг/мл). Культивирование осуществляли при 37°С, 5% CO2, 100%) влажности в СО2-инкубаторе «Heracel» (TermoElectronLTDGmbH, Германия).1. The RC291C cell line was cultured in plastic bottles in complete DMEM / F12 culture medium supplemented with 20% fetal calf serum, glutamine (365 mg / l), insulin (5 μg / ml), transferrin (5 μg / ml), selenium ( 5 ng / ml), penicillin (100 units / ml), streptomycin (100 μg / ml). Cultivation was carried out at 37 ° C, 5% CO 2 , 100%) humidity in a Heracel CO 2 incubator (TermoElectronLTDGmbH, Germany).

2. При достижении конфлюэнтного монослоя производили пересев клеток и дальнейшее пассирование культуры с рассевом 1:2.2. Upon reaching the confluent monolayer, the cells were reseeded and the culture was further passaged with a 1: 2 sieving.

3. Из флакона удаляли культуральную среду, омывали поверхность флакона небольшим количеством ферментативного раствора (0,25% трипсина и 0,02% раствора версена в равных пропорциях) и затем к клеткам добавляли 1-3 мл этого раствора. Помещали флаконы в CO2-инкубатор и проводили визуальный контроль состояния клеток.3. The culture medium was removed from the vial, the surface of the vial was washed with a small amount of enzymatic solution (0.25% trypsin and 0.02% versene solution in equal proportions), and then 1-3 ml of this solution was added to the cells. The vials were placed in a CO 2 incubator and the cells were visually checked.

4. Клетки собирали серологической пипеткой, отмывали двукратным центрифугированием в 10 мл 0,9% раствора хлорида натрия при 1000 об/мин в течение 10 мин.4. Cells were collected with a serological pipette, washed twice by centrifugation in 10 ml of a 0.9% sodium chloride solution at 1000 rpm for 10 minutes.

5. Производили подсчет клеток и оценку их жизнеспособности.5. Cells were counted and their viability evaluated.

6. Для приготовления опухолевого лизата клеток линии RC291C проводили шесть последовательных циклов моментального замораживания до -196°С и оттаивания до комнатной температуры в фосфатно-солевом буфере без криопротектора, качество лизиса контролировали с помощью 0,1% трипанового синего и светового микроскопа.6. To prepare a tumor lysate of RC291C cell lines, six consecutive cycles of instant freezing to -196 ° С and thawing to room temperature in phosphate-buffered saline without cryoprotectant were carried out; the quality of lysis was monitored using a 0.1% trypan blue and light microscope.

7. Осуществляли осаждение клеточного детрита центрифугированием (10 мин, 3000 об/мин), фильтрацию надосадочной фракции через фильтр 0,2 мкм и расфасовку опухолевого лизата в криопробирки для хранения при -20°С до использования.7. Cell detritus was precipitated by centrifugation (10 min, 3000 rpm), the supernatant fraction was filtered through a 0.2 μm filter and the tumor lysate was packed in cryovials for storage at -20 ° С until use.

8. Вносили лизат с клеточной линией RC291C в культуры незрелых дендритных клеток пациентов на 5-й день культивирования (иммунофенотип CD14-CD1a+CD83-) в соотношении 3 лизированные опухолевые клетки на 1 ДК, добавляли ростовые факторы: гранулоцитарно-макрофагальный фактор роста (72 нг/мл), интерлейкин - 4 (20 нг/мл) и фактор некроза опухолей альфа (20 нг/мл). Инкубировали в условиях 37°С, 5% CO2, 100% влажности в CO2-инкубаторе «Heracel» (TermoElectronLTDGmbH, Германия) в течение 48 часов.8. A lysate with the RC291C cell line was introduced into the cultures of immature dendritic cells of patients on the 5th day of cultivation (immunophenotype CD14 - CD1a + CD83 - ) in the ratio of 3 lysed tumor cells per DC, growth factors were added: granulocyte-macrophage growth factor (72 ng / ml), interleukin - 4 (20 ng / ml) and tumor necrosis factor alpha (20 ng / ml). Incubated at 37 ° C, 5% CO 2 , 100% humidity in a Heracel CO 2 incubator (TermoElectronLTDGmbH, Germany) for 48 hours.

9. В результате получали активированные ДК с иммунофенотипом CD14-/CD1a-/CD83+/CD80+/CD86+/HLADR+/CD209+/CCR7+.9. As a result, activated DCs with the immunophenotype CD14 - / CD1a - / CD83 + / CD80 + / CD86 + / HLADR + / CD209 + / CCR7 + were obtained.

Пример 2. Использование клеточной линии RC291C для создания экспериментальной системы in vitro, позволяющей оценить активность цитотоксических Т-лимфоцитов.Example 2. The use of the cell line RC291C to create an experimental in vitro system that allows to evaluate the activity of cytotoxic T-lymphocytes.

1. Клеточную линию RC291C культивировали, как описывается выше. После пересева клетки собирали, осуществляли подсчет их количества, оценку жизнеспособности и высевали в планшету Е-16 (ACEA Bioscience Inc., США) в количестве 10 тыс. кл/лунка.1. The cell line RC291C was cultured as described above. After subculture, the cells were harvested, their number was counted, their viability was assessed, and 10 thousand cells / well were sown on an E-16 plate (ACEA Bioscience Inc., USA).

2. Два часа инкубировали планшету с клетками RC291C в условиях 37°С, 5% CO2, 100% влажности в CO2-инкубаторе «Heracel» (TermoElectron LTD GmbH, Германия).2. For two hours, the plate with RC291C cells was incubated at 37 ° C, 5% CO 2 , 100% humidity in a Heracel CO 2 incubator (TermoElectron LTD GmbH, Germany).

3. Вносили в каждую лунку планшеты специфически активированные CD3+CD8+ лимфоциты больного раком почки в соотношении 1 оп. кл. /5 лимфоцитов, 1/10 и 1/50, соответственно.3. Specific activated CD3 + CD8 + lymphocytes of a kidney cancer patient in a ratio of 1 op were added to each well of the plate. class / 5 lymphocytes, 1/10 and 1/50, respectively.

4. Инкубировали в условиях CO2-инкубатора 30 минут, после чего устанавливали планшету в автоматический клеточный анализатор xCELLigence (ACEA Bioscience Inc., США). Программировали систему регистрации параметров жизнеспособности и пролиферации прикрепившихся культивируемых опухолевых клеток RC291C на 48 ч.4. Incubated under the conditions of a CO 2 incubator for 30 minutes, after which the plate was placed in an xCELLigence automatic cell analyzer (ACEA Bioscience Inc., USA). Programmed a system for recording the parameters of viability and proliferation of adherent cultured tumor cells RC291C for 48 hours

5. Оценили изменения жизнеспособности и скорости роста культуры RC291C по изменению значений электрического импеданса, которые автоматически контролировались системой xCELLigence и были выражены в виде клеточного индекса (CI).5. The changes in the viability and growth rate of the RC291C culture were evaluated by the change in the electrical impedance values, which were automatically controlled by the xCELLigence system and expressed as a cell index (CI).

6. Наблюдали прогрессивное уменьшение CI культуры RC291C при кокультивировании в течение 48 ч. с активированными CD3+CD8+ лимфоцитами: 1,049 в контроле и 0,0027 при соотношении опухолевая клетка/лимфоцит 1/50.6. A progressive decrease in the CI culture of RC291C was observed upon cultivation for 48 hours with activated CD3 + CD8 + lymphocytes: 1.049 in the control and 0.0027 in the ratio of tumor cell / lymphocyte 1/50.

Заявляемый способ расширяет арсенал клеточных линий, используемых для создания цельноклеточных и генноинженерных противоопухолевых вакцин, способствуе тповышению эффективности лечения и увеличению продолжительность жизни пациентов при лечении злокачественных новообразований. Полученная новая клеточная линия RC291C может использоваться для создания противоопухолевых вакцин, диагностических наборов, тест-систем с целью разработки новых лекарственных средств и новых терапевтических подходов, для тестирования эффективности различных фармацевтических препаратов.The inventive method expands the arsenal of cell lines used to create whole-cell and genetically engineered antitumor vaccines, helping to increase the effectiveness of treatment and increase the life expectancy of patients in the treatment of malignant neoplasms. The obtained new cell line RC291C can be used to create antitumor vaccines, diagnostic kits, test systems in order to develop new drugs and new therapeutic approaches, to test the effectiveness of various pharmaceutical preparations.

Claims (1)

Применение клеточной линии светлоклеточного рака почки человека RC291C, экспрессирующей раково-тестикулярные антигены, хранящейся в специализированной коллекции культур клеток позвоночных Российской коллекции клеточных культур под регистрационным номером РККК (П) 724Д, для приготовления биомедицинских клеточных продуктов и тестирования противоопухолевых био- и химиопрепаратов.The use of the human kidney cell cancer cell line RC291C expressing cancer-testicular antigens stored in a specialized collection of vertebrate cell cultures of the Russian collection of cell cultures under registration number RKKK (P) 724D for the preparation of biomedical cell products and testing antitumor bio- and chemotherapeutic drugs.
RU2018111913A 2018-04-02 2018-04-02 Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma RU2673729C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018111913A RU2673729C1 (en) 2018-04-02 2018-04-02 Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018111913A RU2673729C1 (en) 2018-04-02 2018-04-02 Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2673729C1 true RU2673729C1 (en) 2018-11-29

Family

ID=64603591

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018111913A RU2673729C1 (en) 2018-04-02 2018-04-02 Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2673729C1 (en)

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МИНГАЛЕЕВА Р.Н. и др. Применение культур клеток и тканей для скрининга противоопухолевых препаратов in vitro. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия, том VIII, N2, 2013, с.20-28. *
МИНГАЛЕЕВА Р.Н. и др. Применение культур клеток и тканей для скрининга противоопухолевых препаратов in vitro. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия, том VIII, N2, 2013, с.20-28. Отв. Ред. М.С. БОГДАНОВА, Клеточные культуры, Информационный бюллетень, Выпуск 26, Санкт-Петербург, 2010, с.42. *
Отв. Ред. М.С. БОГДАНОВА, Клеточные культуры, Информационный бюллетень, Выпуск 26, Санкт-Петербург, 2010, с.42. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101644984B1 (en) Method For Producing Natural Killer Cells, Natural Killer Cells Produced Thereby, And Composition For Treating Cancers And Infectious Diseases Containing The Same
AU2023202977A1 (en) Optimally activated dendritic cells that induce an improved or increased anti-tumor immune response
RU2573940C1 (en) Cell line of human kidney cancer ibgvat r 6
Sabado et al. Dendritic cell vaccines
RU2673729C1 (en) Application of cell line of rc291c clear cell adenocarcinoma
KR100363587B1 (en) Dendritic cell-cancer fusion hybrid for anti-cancer cellular vaccine
RU2573938C1 (en) Cell line of human kidney cancer ibgvat r 27
RU2642265C1 (en) Application of cell line of 369 admel human skin melanoma
RU2402602C1 (en) CELL LINE OF HUMAN MELANOMA mel Rac, APPLIED FOR OBTAINING ANTITUMOUR VACCINE
RU2650757C1 (en) Human colorectal cancer cell line 485 colo can
AR Aleixo et al. Immunotherapy with dendritic cells as a cancer treatment: perspectives and therapeutic potential
RU2650759C1 (en) Human ovarian cancer cell line 533 oos
RU2742244C1 (en) Human bladder cancer cell line 587 blcan tvv
RU2287576C1 (en) HUMAN MELANOMA CELLULAR LINE mel Ibr USED IN PREPARING ANTITUMOR VACCINE
RU2733230C1 (en) Human bladder cancer cell line 198 blcan rla
RU2675541C1 (en) APPLICATION OF HUMAN SKIN MELANOMA CELL LINE 388mel
RU2740800C1 (en) Human synovial sarcoma cell line 716 ss mnv
RU2796356C9 (en) HUMAN ALVEOLAR SARCOMA CELL LINE 9927 AlS SIO
RU2796356C1 (en) Human alveolar sarcoma cell line 9927 ais sio
RU2287575C1 (en) HUMAN MELANOMA CELLULAR LINE mel P USED IN PREPARING ANTITUMOR VACCINE
RU2287578C1 (en) HUMAN MELANOMA CELLULAR LINE mel Kor USED IN PREPARING ANTITUMOR VACCINE
RU2742245C1 (en) Human bladder cancer cell line 398 blcan kae
RU2779948C1 (en) Human bladder cancer cell line 190 bican kag
RU2714208C1 (en) Cell product for loading and activation of human dendrite cells
RU2722867C1 (en) Osteogenic human sarcoma cell line 793 ossar rvv