RU2670674C1 - Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules - Google Patents

Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules Download PDF

Info

Publication number
RU2670674C1
RU2670674C1 RU2017115448A RU2017115448A RU2670674C1 RU 2670674 C1 RU2670674 C1 RU 2670674C1 RU 2017115448 A RU2017115448 A RU 2017115448A RU 2017115448 A RU2017115448 A RU 2017115448A RU 2670674 C1 RU2670674 C1 RU 2670674C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
interleukin
blood
cytokines
magnetically controlled
antibodies
Prior art date
Application number
RU2017115448A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Илья Петрович Гонтарь
Ольга Ивановна Емельянова
Ольга Александровна Русанова
Лариса Александровна Маслакова
Ирина Александровна Зборовская
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии"
Priority to RU2017115448A priority Critical patent/RU2670674C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2670674C1 publication Critical patent/RU2670674C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/34Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely to immunology and biotechnology. Blood is passed through a granular preparation with immobilized concentrated monoclonal antibodies to interleukin-12 and interleukin-23. At the same time, for the immobilization of antibodies to IL-12 and IL-23, a polyacrylamide carrier with magnetic properties is used at a ratio of the carrier : iron 2:1, which is granulated by emulsion polymerization.EFFECT: method allows to provide a more expressed decrease in concentration of cytokines in the perfusion blood without changing the content of the formed elements of the blood, makes it possible to reuse the used granules.1 cl, 3 ex, 3 tbl

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к ревматологии, иммунологии и биотехнологии, и может быть использовано для совершенствования лечения псориатического артрита и псориаза.The invention relates to the field of medicine, namely to rheumatology, immunology and biotechnology, and can be used to improve the treatment of psoriatic arthritis and psoriasis.

Известно, что ведущим звеном патогенеза многих аутоиммунных заболеваний, включая псориатический артрит (ПсА), является активация клеточного иммунитета с поляризацией по типу Th1 и Th17 [Молочков В.А., Бадокин В.В., Альбанова В.И. и др. Псориаз и псориатический артрит.: Товарищество научных изданий КМК. Авторская академия, 2007-332 с].It is known that the leading link in the pathogenesis of many autoimmune diseases, including psoriatic arthritis (PsA), is the activation of cellular immunity with Th1 and Th17 polarization [Molochkov VA, Badokin VV, Albanova V.I. and others. Psoriasis and psoriatic arthritis .: Fellowship of scientific publications KMK. Author's Academy, 2007-332 p.].

При ПсА, как и при других заболеваниях, сопровождающихся иммунными нарушениями, наблюдается патологическое образование интерлейкина-12 (ИЛ-12) и интерлейкина-23 (ИЛ-23). О роли ИЛ-12 в патогенезе артрита свидельствует ряд клинических исследований. Было выявлено, что уровень ИЛ-12 коррелирует с уровнями ФНО, ИЛ-8 и ИЛ-10. Повышенное содержания ИЛ-1, ИЛ-2, ИЛ-10, ИФН& и ФНО обнаружено в синовиальной ткани у пациентов с ПсА.When PsA, as with other diseases involving immune disorders, pathological formation of interleukin-12 (IL-12) and interleukin-23 (IL-23) is observed. A number of clinical studies are indicative of the role of IL-12 in the pathogenesis of arthritis. It has been found that the level of IL-12 correlates with the levels of TNF, IL-8 and IL-10. Elevated levels of IL-1, IL-2, IL-10, IFN & and TNF were found in synovial tissue in patients with PsA.

ИЛ-12 и ИЛ-23 представляют собой гетеродимерные цитокины, состоящие из двух субъединиц гликозилированных протеинов, связанных дисульфидными мостиками и имеющих общую для обоих цитокинов субъединицу р40. При связывании общей субъединицы р40 с субъединицей р35 образуется ИЛ-12, а с субъединицей р19- ИЛ23, каждая из этих субъединиц названа в соответствии со своей молекулярной массой. Эти цитокины продуцируются преимущественно макрофагами, дендритными клетками. Они оказывают действие путем связывания с двухцепочечными гетеродимерными рецепторными комплексами, экспрессируемыми на поверхности CD4+Т-лимфоцитов и естественных киллеров (NК-клеток). Через общую субъединицу р40 ИЛ-12 и ИЛ-23 связываются с цепью 1 рецептора к ИЛ-12. Специфичность сигнала обеспечивается связыванием уникальной субъединицы каждого цитокина с уникальной субъединицей рецепторного комплекса: ИЛ-12р35 связывается с рецептором 2 к ИЛ-12, а ИЛ-23р19 связывается с рецептором к ИЛ-23, запуская внутриклеточную сигнализацию и активируя клетки, несущие эти рецепторы. ИЛ-23 стимулирует Th17-лимфоциты, которые начинают продуцировать провоспалительные факторы, включая ИЛ-17, которые в свою очередь, также стимулируют образование других провоспалительных агентов [Toti D.C., Feldman S.R. Interleukin-12, interleukin-23, and psoriasis: current prospects. J. Am Acad Dermatol 2007; 57:1059-68.].IL-12 and IL-23 are heterodimeric cytokines consisting of two subunits of glycosylated proteins that are linked by disulfide bridges and have a p40 subunit common to both cytokines. When the common p40 subunit binds to the p35 subunit, IL-12 is formed, and with the p19 subunit - IL23, each of these subunits is named according to its molecular weight. These cytokines are produced predominantly by macrophages, dendritic cells. They act by binding to double-stranded heterodimeric receptor complexes expressed on the surface of CD4 + T-lymphocytes and natural killer cells (NK-cells). Through the common subunit p40 IL-12 and IL-23 bind to chain 1 of the receptor for IL-12. The specificity of the signal is provided by the binding of a unique subunit of each cytokine with a unique subunit of the receptor complex: IL-12p35 binds to receptor 2 for IL-12, and IL-23p19 binds to the receptor for IL-23, triggering intracellular signaling and activating cells carrying these receptors. IL-23 stimulates Th17 lymphocytes, which begin to produce pro-inflammatory factors, including IL-17, which in turn also stimulate the formation of other pro-inflammatory agents [Toti DC, Feldman SR Interleukin-12, interleukin-23, and psoriasis: current trends. J. Am Acad Dermatol 2007; 57: 1059-68.].

В настоящее время для лечения ПсА широко используется парентеральное введение ингибитора ИЛ-12 и ИЛ-23: моноклональные антитела к ИЛ-12 и ИЛ-23 (устекинумаб, CILAG, Швейцария). Этот коммерческий препарат - ингибитор интерлейкина, представляющий собой человеческие моноклональные антитела класса IgG1k, продуцируемые рекомбинантной клеточной линией и проходящие многоступенчатую очистку, включая инактивацию и удаление вирусных частиц. Устекинумаб обладает высоким сродством и специфичностью к субъединице р40 интерлейкинов человека ИЛ-12 и ИЛ-23. Препарат блокирует биологическую активность ИЛ-12 и ИЛ-23, предотвращая их связывание с рецептором ИЛ-12R-бетта1, экспрессируемый на поверхности иммунных клеток. Устекинумаб связывается с субъединицей р40 ИЛ-12 и ИЛ-23, одновременно нейтрализуя обе молекулы. Для этого препарата убедительно показан выраженный положительный лечебный эффект: быстрое и выраженное снижение активности заболевания, а также значительное замедление деструкции суставов. Однако существующие ингибиторы ИЛ-12 и ИЛ-23 обладают большим количеством побочных эффектов, связанных с введением иммуногенных молекул в организм пациента (синтез антител к ингибиторам ИЛ-12 и ИЛ-23, частые аллергические и инфузионные реакции). Кроме того, высокая стоимость имеющихся в настоящее время препаратов значительно ограничивает их применение для одного и того же больного.At present, parenteral administration of an inhibitor of IL-12 and IL-23 is widely used for the treatment of PsA: monoclonal antibodies to IL-12 and IL-23 (Ustekinumab, CILAG, Switzerland). This commercial drug is an interleukin inhibitor, which is a human monoclonal antibody of the IgG1k class, produced by a recombinant cell line and undergoing a multi-step purification, including inactivation and removal of viral particles. Ustekinumab has a high affinity and specificity for the p40 subunit of human IL-12 and IL-23 interleukins. The drug blocks the biological activity of IL-12 and IL-23, preventing their binding to the receptor IL-12R-beta1, expressed on the surface of immune cells. Ustekinumab binds to the p40 subunit IL-12 and IL-23, while simultaneously neutralizing both molecules. A pronounced positive therapeutic effect is convincingly shown for this drug: a rapid and pronounced decrease in the activity of the disease, as well as a significant slowdown in the destruction of the joints. However, the existing inhibitors of IL-12 and IL-23 have a large number of side effects associated with the introduction of immunogenic molecules into the patient's body (the synthesis of antibodies to inhibitors of IL-12 and IL-23, frequent allergic and infusion reactions). In addition, the high cost of currently available drugs significantly limits their use for the same patient.

Удобным инструментом подавления активности цитокинов (ИЛ-12 ИЛ-23) при аутоиммунных заболеваниях является сорбция этих цитокинов крови с помощью магнитоуправляемых гранул. Известен метод удаления цитокинов с помощью углеродного сорбента с локально модифицированной аминокапроновой кислотой поверхностью. В дальнейшем данный способ обозначается как прототип [Долгих Т.И., Пьянова Л.Г., Бакланова О.И. и соавт.: Адсорбция цитокинов на поверхности модифицированного углеродного сорбента in vitro при перитоните. Общая реаниматология 2009, V; 6.-66-69 с]. Согласно последнему, сорбция цитокинов из биологических жидкостей осуществлялась через твердофазный носитель (модифицированной поверхности углеродного адсорбента аминокапроновой кислотой с последующей ее поликонденсацией).A convenient tool for the suppression of cytokine activity (IL-12, IL-23) in autoimmune diseases is the sorption of these blood cytokines using magnetically controlled granules. A known method of cytokine removal using a carbon sorbent with a surface locally modified with aminocaproic acid. In the future, this method is referred to as a prototype [Dolgikh T.I., Pyanova L.G., Baklanova O.I. et al .: Adsorption of cytokines on the surface of a modified carbon sorbent in vitro with peritonitis. General Resuscitation 2009, V; 6.-66-69 s]. According to the latter, the sorption of cytokines from biological fluids was carried out through a solid-phase carrier (modified surface of the carbon adsorbent with aminocaproic acid, followed by its polycondensation).

Через колонку заполненную сорбентом пропускали плазму больных, где до и после сорбции определяли содержание цитокинов методом иммуноферментного анализа с помощью тест-систем ООО «Протеиновый контур» (Санкт-Петербург, Россия).Plasma of patients was passed through a column filled with a sorbent, where, before and after sorption, cytokine content was determined by enzyme immunoassay using test systems of Protein Contour LLC (St. Petersburg, Russia).

Модифицирование поверхности углеродного адсорбента аминокапроновой кислотой приводило к увеличению содержания поверхностных функциональных групп (кислород -и азотсодержащих), тем самым повышая эффективность сорбции ряда цитокинов только за счет различной гидрофобности, однако такая сорбция не является селективной. Снижение содержания цитокинов в результате данной процедуры составляло 92,64%. Однако предложенный в прототипе носитель не является магнитоуправляемым, что затрудняет удержание сорбента во взвешенном состоянии в сорбционной колонке без магнитного поля, в результате чего, в процессе адсобции происходит уплотнение слоя носителя, следствием чего и является травматизация форменных элементов и частичная потеря углеродного сорбента.Modifying the carbon adsorbent surface with aminocaproic acid led to an increase in the content of surface functional groups (oxygen and nitrogen-containing), thereby increasing the efficiency of sorption of a number of cytokines only due to different hydrophobicity, but this sorption is not selective. The decrease in the content of cytokines as a result of this procedure was 92.64%. However, the carrier proposed in the prototype is not magnetically controlled, which makes it difficult to keep the sorbent in suspension in the sorption column without a magnetic field, as a result of which the carrier layer is compacted during the adsobtion process, resulting in a trauma to the formed elements and partial loss of the carbon sorbent.

Иммобилизация цитокинов, примененная в прототипе, как правило, препятсвует получению сорбентов с максимально высокой емкостью и регенерация такого сорбента обычно затруднена.The immobilization of cytokines applied in the prototype, as a rule, prevents the preparation of sorbents with the highest capacity and the regeneration of such a sorbent is usually difficult.

Решаемая задача состоит в разработке способа снижения содержания цитокинов (ИЛ-12, ИЛ-23) путем пропускания биологических жидкостей через предварительно полученный методом эмульсионной полимеризации в потоке газообразного азота оригинальный сорбент, представляющий собой магнитоуправляемые полиакриламидные гранулы (МПГ) с иммобилизированными антителами к ИЛ-12 и ИЛ-23, что обеспечивает более выраженное снижение концентрации цитокинов в перфузируемой крови по сравнению с прототипом, а также возможность многократного использования разработанных нами гранул.The problem to be solved is to develop a method for reducing the content of cytokines (IL-12, IL-23) by passing biological fluids through the original sorbent previously obtained by emulsion polymerization in a stream of gaseous nitrogen, which is a magnetically controlled polyacrylamide granules (MPG) with immobilized antibodies to IL-12 and IL-23, which provides a more pronounced decrease in the concentration of cytokines in perfused blood compared to the prototype, as well as the possibility of multiple use otannyh contact pellets.

Получение МПГ производится следующим способом. В сосуд, содержащий гексан и эмульгатор, подается под давлением по трубке химически инертный газ таким образом, чтобы создавать интенсивное перемешивание. В колбу для полимеризации вносится раствор окиси железа с гидрофильными свойствами и персульфат аммония, затем добавляется раствор, содержащий мономеры акриамида, метиленбисакриламида, NNN'N'-тетраметилендиамина и антител к ИЛ-12 и ИЛ-23 (устекинумаб). После завершения полимеризации МПГ отмывают от непрореагировавших мономеров, эмульгатора и гексана. Далее МПГ вносят в колонку и через нее перфузируется биологическая жидкость, например нативная гепаринизированная кровь. Регенерация препарата производится путем пропускания через колонку 1М буфера глицин-HCI рН 2,2 дважды по 10 мин.Getting PGM is as follows. A vessel containing hexane and an emulsifier is pressurized through a tube of chemically inert gas in such a way as to create intense mixing. A solution of iron oxide with hydrophilic properties and ammonium persulfate is added to the polymerization flask, then a solution containing the monomers acryamide, methylenebisacrylamide, NNN'N'-tetramethylenediamine and antibodies to IL-12 and IL-23 (ustekinumab) is added. After the polymerization is completed, the PGMs are washed from unreacted monomers, emulsifier and hexane. Next, PGM is introduced into the column and a biological fluid, for example, native heparinized blood is perfused through it. Regeneration of the drug is carried out by passing through the column 1M glycine-HCl buffer pH 2.2 twice for 10 minutes.

Пример 1. Получение МПГ с иммобилизированными антителами к ИЛ-12 и ИЛ-23 В 2 мл 0,15М раствора натрия хлорида растворяли соответственно 300 мг и 100 мг акриламида и метиленбисакриламида (Reanal, Венгрия), после чего к такому раствору добавляли 0,4 мг моноклональных антител к ИЛ-12 и ИЛ-23. В сосуд, содержащий 100 мл гексана и 0,5 мл эмульгатора СПЭН-85, подавали под давлением 0,2-1 атм газообразный азот по трубке сечением 0,8 мм таким образом, чтобы создавать интенсивное перемешивание в течение 5 мин. В колбу для полимеризации вносили 1 мл физиологического раствора рН 7,4 с 200 мг окиси железа с гидрофильными свойствами и 10 мг персульфата аммония. Через 1-2 мин. Добавляли 2 мл вышеупомянутого раствора, содержащего мономеры акриламида, метиленбисакриламида, иммобилизируемое вещество (антитела к ИЛ-12 и ИЛ-23), а также 20 мкл NNN'N' - тетраметилэтилендиамина.Example 1. Preparation of PGMs with immobilized antibodies to IL-12 and IL-23 In 2 ml of 0.15 M sodium chloride solution were dissolved, respectively, 300 mg and 100 mg of acrylamide and methylene bisacrylamide (Reanal, Hungary), after which 0.4 was added to such a solution. mg of monoclonal antibodies to IL-12 and IL-23. In a vessel containing 100 ml of hexane and 0.5 ml of the emulsifier SPAN-85, nitrogen gas was fed under a pressure of 0.2-1 atm in a tube with a cross section of 0.8 mm so as to create vigorous stirring for 5 minutes. In the polymerization flask was added 1 ml of physiological solution pH 7.4 with 200 mg of iron oxide with hydrophilic properties and 10 mg of ammonium persulfate. After 1-2 minutes Added 2 ml of the above solution containing monomers of acrylamide, methylenebisacrylamide, immobilizable substance (antibodies to IL-12 and IL-23), as well as 20 μl of NNN'N '- tetramethylethylenediamine.

После завершения полимеризации гранулы в течение 10-15 мин. отмывали ацетоном и физиологическим раствором с детергентом Твин-20 (0,05%) от непрореагировавших мономеров, эмульгатора и гексана. Гранулы имели стандартную сферическую форму с размером частиц геля 10-100 мкм. Соотношение полимерный носитель : железо = 2:1 (в пересчете на сухую массу).After completion of the polymerization of the granules within 10-15 minutes washed with acetone and saline with a tween-20 detergent (0.05%) from unreacted monomers, emulsifier and hexane. The granules had a standard spherical shape with a gel particle size of 10-100 microns. The ratio of polymeric carrier: iron = 2: 1 (in terms of dry weight).

Пример 2. Определение удельной сорбционной емкости МПГ Для МПГ с иммобилизированными антителами к ИЛ-12 и ИЛ-23, полученных согласно примеру 1, определяли удельную сорбционную емкость.Example 2. Determination of the specific sorption capacity of PGM For PGMs with immobilized antibodies to IL-12 and IL-23, obtained according to Example 1, the specific sorption capacity was determined.

С этой целью через мини-колонку с объемом рабочей камеры 0,2 мл, заполненную МПГ, пропускали растворы ИЛ-12 и ИЛ-23 (1 мл) с возрастающими концентрациями, после перфузии каждого раствора МПГ заменяли, контур промывали 1 М глицин-HCI буфером, рН 2,2 и стандартным фосфатно-солевым буферным раствором. Концентрацию ИЛ-12 и ИЛ-23 в пропущенных через МПГ растворах определяли методом ИФА с использованием коммерческих наборов (Bender Med.Systems, США для ИЛ-12, Bender Med.Systems, Vienna, Austria для ИЛ-23)). При изучении растворов ИЛ-12 и ИЛ-23 с исходными концентрациями 5, 10, 50, 100, 500, 1500 пг/мл после перфузии через МПГ ИЛ-12 и ИЛ-23 практически не определялись. В растворе ИЛ-12 и ИЛ-23 с исходной концентрацией 1500 пг/мл конечная концентрация ИЛ-12 и ИЛ-23 составила 24,3пг/мл. Следовательно, сорбционная емкость МПГ составила 7,38 нг/мл ИЛ-12 и ИЛ-23 сорбента. Сопоставление данного параметра МПГ с прототипом не представляется возможным ввиду отсутствия данных о концентрациях ИЛ-12 и ИЛ-23 в описании прототипа.To this end, IL-12 and IL-23 solutions (1 ml) with increasing concentrations were passed through a mini-column with a working chamber volume of 0.2 ml filled with PGM, after perfusion of each PGM solution was replaced, the circuit was washed with 1 M glycine-HCI buffer, pH 2.2 and standard phosphate-saline buffer solution. The concentrations of IL-12 and IL-23 in the solutions passed through PGM were determined by ELISA using commercial kits (Bender Med.Systems, USA for IL-12, Bender Med.Systems, Vienna, Austria for IL-23)). When studying solutions of IL-12 and IL-23 with initial concentrations of 5, 10, 50, 100, 500, 1500 pg / ml after perfusion through the PGM IL-12 and IL-23 were practically not detected. In a solution of IL-12 and IL-23 with an initial concentration of 1500 pg / ml, the final concentration of IL-12 and IL-23 was 24.3 pg / ml. Therefore, the sorption capacity of the PGM was 7.38 ng / ml IL-12 and IL-23 sorbent. Comparison of this parameter of the PGM with the prototype is not possible due to the lack of data on the concentrations of IL-12 and IL-23 in the description of the prototype.

Пример 3. Перфузия крови через МПГExample 3. Blood perfusion through PGM

В колонку объемом 10 мл, оборудованную электромагнитом, вносили МПГ с иммобилизированными антителами к ИЛ-12 и ИЛ-23. Используя колонку, проведена обработка in vitro гепаринизированной крови 10 больных псориатический артритом различной степени активности, которым в течение 12 месяцев не проводилось парентеральное введение ингибиторов цитокинов (ИЛ-12 и ИЛ-23) (устекинумаба). Через колонку перфузировали 20 мл нативной гепаринизированной крови со скоростью 10 мл/ч. В качестве контроля выступала перфузия крови 10 здоровых доноров, параметры процедуры перфузии были аналогичными. После окончания перфузии МПГ отмывали от несвязавшихся белков забуференным физиологическим раствором рН 7,4 и проводили регенерацию 1 М глицин-HCI буфером рН 2,2 двукратно по 10 мин. Концентрацию цитокинов (ИЛ-12 и ИЛ-23) плазмы крови определяли методом ИФА с использованием коммерческих наборов (Bender Med. Systems, США для ИЛ-12 и Bender Med.Systems, Viennna, Austria для Ил-23), также оценивали содержание форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов). Значения всех исследуемых показателей для каждого образца измеряли двукратно- до и после перфузии.In a 10 ml column equipped with an electromagnet, PGM was introduced with immobilized antibodies to IL-12 and IL-23. Using a column, in vitro treatment of heparinized blood was carried out in 10 patients with psoriatic arthritis of varying degrees of activity, who for 12 months did not receive parenteral administration of cytokine inhibitors (IL-12 and IL-23) (Ustekinumab). 20 ml of native heparinized blood was perfused through the column at a rate of 10 ml / h. Blood perfusion of 10 healthy donors was used as a control, the parameters of the perfusion procedure were similar. After the end of the perfusion, the PGM was washed from unbound proteins with buffered physiological solution pH 7.4 and regenerated with 1 M glycine-HCl buffer pH 2.2 twice in 10 minutes each. The concentration of cytokines (IL-12 and IL-23) of blood plasma was determined by ELISA using commercial kits (Bender Med. Systems, USA for IL-12 and Bender Med.Systems, Viennna, Austria for IL-23); blood elements (erythrocytes, leukocytes, platelets). The values of all the studied parameters for each sample were measured twice before and after the perfusion.

Динамика плазменной концентрации ИЛ-12 доноров и больных ПсА в результате осуществления заявляемого способа приведена в таблице 1, ИЛ-23 - в таблице 2, динамика форменных элементов - в таблице 3. Из таблиц 1 и 2 видно, что при перфузии через магнитоуправляемый сорбент достигается значимое снижение содержания ИЛ-12 от исходного на 99,8% (для здоровых лиц) и 99.9% (для больных ПсА) от исходного, а снижение концентрации ИЛ-23 для для больных ПсА - 99,9%. [Shibata S1, Tada Y, Komine M, Hattori N, Osame S, Kanda N, Watanabe S, Saeki H, Tamaki K. Anti-cyclic citrullinated peptide antibodies and IL-23p19 in psoriatic arthritis. J Dermatol Sci. 2009 Jan; 53(1):34-9.]. Поэтому максимально возможное снижение уровня цитокинов имеет большое практическое значение, так как играют ведущую роль в патогенезе ПсА. При перфузии же через прототип, концентрация цитокинов уменьшается на 92,64% от исходного. В прототипе используются чистый углеродный гемосорбент и тот же сорбент, обработанный аминокапроновой кислотой с последующей поликонденсацией. Оба типа сорбентов на микрофотографии имеют структуры игольчатой формы, способные травмировать форменные элементы крови. Поэтому мы дополнительно провели количественную оценку степени травматизации форменных элементов с помощью заявляемого образца.The dynamics of the plasma concentration of IL-12 donors and PsA patients as a result of the implementation of the proposed method are given in table 1, IL-23 in table 2, the dynamics of the formed elements in table 3. From tables 1 and 2 it is clear that when perfusion through a magnetically controlled sorbent is achieved a significant decrease in the content of IL-12 from the source by 99.8% (for healthy individuals) and 99.9% (for PsA patients) from the baseline, and a decrease in the concentration of IL-23 for PsA patients - 99.9%. [Shibata S1, Tada Y, Komine M, Hattori N, Osame S, Kanda N, Watanabe S, Saeki H, Tamaki K. Anti-cyclic citrullinated peptide and IL-23p19 in psoriatic arthritis. J Dermatol Sci. 2009 Jan; 53 (1): 34-9.]. Therefore, the maximum possible reduction in cytokine levels is of great practical importance, since they play a leading role in the pathogenesis of PsA. When perfused through the prototype, the concentration of cytokines is reduced by 92.64% from the initial one. The prototype uses pure carbon hemosorbent and the same sorbent treated with aminocaproic acid, followed by polycondensation. Both types of sorbents in photomicrographs have needle-shaped structures that can injure the blood cells. Therefore, we additionally carried out a quantitative assessment of the degree of injury of the formed elements using the proposed sample.

При использовании заявляемого нами способа содержание форменных элементов крови достоверно не изменяется, что является дополнительным преимуществом перед прототипом [таб. 3]. Следовательно, полученные при сопоставлении с прототипом данные свидетельствуют о более значительном снижении концентрации цитокинов в плазме крови как здоровых лиц, так и больных ПсА при использовании заявляемого способа.When using the method proposed by us, the content of blood cells does not significantly change, which is an additional advantage over the prototype [tab. 3]. Consequently, the data obtained by comparison with the prototype indicate a more significant decrease in the concentration of cytokines in the blood plasma of both healthy individuals and PsA patients using the proposed method.

После использования МПГ регенерировали 1М глицин-HCI буфером, рН 2,2. После первой регенерации потеря сорбционной емкости составила 15%. При последующих повторных регенерациях (9 раз) статистически значимых изменений удельной сорбционной емкости не происходило.After use, PGM was regenerated with 1M glycine-HCI buffer, pH 2.2. After the first regeneration, the loss of sorption capacity was 15%. During subsequent repeated regenerations (9 times), no statistically significant changes in the specific sorption capacity occurred.

СПОСОБ УДАЛЕНИЯ ИНТЕРЛЕЙКИНА-12 ИЗ БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ С ПОМОЩЬЮ МАГНИТОУПРАВЛЯЕМЫХ ГРАНУЛMETHOD FOR REMOVING INTERLEUKIN-12 FROM BIOLOGICAL FLUIDS USING MAGNETICALLY CONTROLLED GRANULES

Figure 00000001
Figure 00000001

* - парный критерий Стьюдента* - paired student t-test

СПОСОБ УДАЛЕНИЯ ИНТЕРЛЕЙКИНА-23 ИЗ БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ С ПОМОЩЬЮ МАГНИТОУПРАВЛЯЕМЫХ ГРАНУЛMETHOD FOR REMOVING INTERLEUKIN-23 FROM BIOLOGICAL LIQUIDS USING MAGNETICALLY CONTROLLED GRANULES

Figure 00000002
Figure 00000002

* - парный критерий Стьюдента* - paired student t-test

Figure 00000003
Figure 00000003

*р<0,05 - по сравнению с исходными значениями* p <0.05 compared with baseline values

Claims (1)

Способ одновременного удаления интерлейкина-12 (ИЛ-12) и интерлейкина-23 (ИЛ-23), включающий пропускание крови через гранулированный препарат с иммобилизированными сконцентрированными моноклональными антителами к интерлейкину-12 и интерлейкину-23, отличающийся тем, что для иммобилизации антител к ИЛ-12 и ИЛ-23 используют полиакриламидный носитель с магнитными свойствами при соотношении носитель : железо 2:1, который гранулируют методом эмульсионной полимеризации.Method for simultaneous removal of interleukin-12 (IL-12) and interleukin-23 (IL-23), including passing blood through a granular preparation with immobilized concentrated monoclonal antibodies to interleukin-12 and interleukin-23, characterized in that for immobilization of antibodies to IL -12 and IL-23 use a polyacrylamide carrier with magnetic properties with a carrier: iron ratio of 2: 1, which is granulated by the emulsion polymerization method.
RU2017115448A 2017-05-02 2017-05-02 Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules RU2670674C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017115448A RU2670674C1 (en) 2017-05-02 2017-05-02 Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017115448A RU2670674C1 (en) 2017-05-02 2017-05-02 Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2670674C1 true RU2670674C1 (en) 2018-10-24

Family

ID=63923378

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017115448A RU2670674C1 (en) 2017-05-02 2017-05-02 Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2670674C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2113277C1 (en) * 1994-02-07 1998-06-20 Брэдтек Лимитед Magnetic particles, method of manufacturing thereof, composite magnetic material, and method for removing impurity ions from aqueous solution
RU2366958C2 (en) * 2007-11-07 2009-09-10 Илья Петрович Гонтарь Method of blood purification from thyroid hormone antibodies by means of immobilised magnetic agent
RU2441674C1 (en) * 2010-07-09 2012-02-10 Илья Петрович Гонтарь Method for blood purification from dna-containing immune complexes using combined sorbent

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2113277C1 (en) * 1994-02-07 1998-06-20 Брэдтек Лимитед Magnetic particles, method of manufacturing thereof, composite magnetic material, and method for removing impurity ions from aqueous solution
RU2366958C2 (en) * 2007-11-07 2009-09-10 Илья Петрович Гонтарь Method of blood purification from thyroid hormone antibodies by means of immobilised magnetic agent
RU2441674C1 (en) * 2010-07-09 2012-02-10 Илья Петрович Гонтарь Method for blood purification from dna-containing immune complexes using combined sorbent

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ГОЛЕНКИНА Е.А. и др. Иммуномагнитные сорбенты в селекции Т-лимфоцитов человека. Российский биотерапевтический журнал. 2002, N3, Т.1, С.41-48. *
ДОЛГИХ Т.И. Адсорбция цитокинов на поверхности модифицированного углеродного сорбента in vitro при перитоните. Общая реаниматология 2009, V. 6, С. 66, абзац 1. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2386061A2 (en) Imprinted polymer nanoparticles
US20060183223A1 (en) Continuous flow chamber device for separation, concentration, and/or purification of cells
JP5460651B2 (en) Grafting method for improving chromatographic media performance
JP5474881B2 (en) Method for making and using improved chromatographic media
SE526038C2 (en) Polymer affinity matrix, process for its preparation and use thereof
Alkan et al. Selective removal of the autoantibodies from rheumatoid arthritis patient plasma using protein A carrying affinity cryogels
WO2008070659A1 (en) Continuous flow chamber device for separation, concentration, and/or purification of cells
TW201325685A (en) Method for separating macromolecules with different molecular weight by simulated moving bed
RU2670674C1 (en) Method of simultaneous removal of interleukin-12 and interleukin-23 from biological fluids using magnetically controlled granules
JP5631271B2 (en) Method for making and using improved chromatographic media
WO1996020042A1 (en) ADSORBENT FOR ENDOTOXIN, TUMOR NECROSIS FACTOR-α OR INTERLEUKINS, METHOD FOR REMOVAL VIA ADSORPTION, AND ADSORBER
Oda et al. Cytokine adsorptive property of various adsorbents in immunoadsorption columns and a newly developed adsorbent: an in vitro study
RU2441674C1 (en) Method for blood purification from dna-containing immune complexes using combined sorbent
WO2012138429A1 (en) Molecularly imprinted polymers having affinity for natriuretic peptides
CN108456280A (en) A kind of phospholipid organic polymer integral material and its preparation method and application
CN108855002B (en) Adsorbent for removing blood lipoprotein and preparation method thereof
JP2001316420A (en) Production method of absorbent for reducing fibrinogen and/or fibrin level, absorbent, and use thereof for manufacturing absorption device
Zhao et al. Molecular imprinted polymer with cloned bacterial protein template enriches authentic target in cell extract
JPH0622633B2 (en) Adsorbent and removal device using the same
JP3062745B1 (en) Material capable of selectively adsorbing and desorbing protein and method for producing the same
CN109627334B (en) Nano antibody, adsorbent using nano antibody as ligand and application of adsorbent
RU2366958C2 (en) Method of blood purification from thyroid hormone antibodies by means of immobilised magnetic agent
RU2027192C1 (en) Method of freeing blood from rheumatoid factor
Shakhvorostov et al. Molecular imprinting of bovine serum albumin and lysozyme within the matrix of polyampholyte hydrogels based on acrylamide, sodium salt of 2-acrylamido-2-methyl-1-propanesulfonic acid and (3-acrylamidopropyl) trimethyl ammonium chloride
JPH09127116A (en) Substance with protein molecule discriminating function