RU2643955C1 - Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований - Google Patents

Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований Download PDF

Info

Publication number
RU2643955C1
RU2643955C1 RU2017113441A RU2017113441A RU2643955C1 RU 2643955 C1 RU2643955 C1 RU 2643955C1 RU 2017113441 A RU2017113441 A RU 2017113441A RU 2017113441 A RU2017113441 A RU 2017113441A RU 2643955 C1 RU2643955 C1 RU 2643955C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sampling
sample
cells
selection
conjunctival
Prior art date
Application number
RU2017113441A
Other languages
English (en)
Inventor
Галина Мэлсовна Чернакова
Елена Александровна Клещева
Саният Магомедовна Муртазалиева
Дмитрий Юрьевич Майчук
Марина Владимировна Мезенцева
Леонид Иванович Руссу
Ирина Александровна Суетина
Original Assignee
Галина Мэлсовна Чернакова
Елена Александровна Клещева
Саният Магомедовна Муртазалиева
Дмитрий Юрьевич Майчук
Марина Владимировна Мезенцева
Леонид Иванович Руссу
Ирина Александровна Суетина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Галина Мэлсовна Чернакова, Елена Александровна Клещева, Саният Магомедовна Муртазалиева, Дмитрий Юрьевич Майчук, Марина Владимировна Мезенцева, Леонид Иванович Руссу, Ирина Александровна Суетина filed Critical Галина Мэлсовна Чернакова
Priority to RU2017113441A priority Critical patent/RU2643955C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2643955C1 publication Critical patent/RU2643955C1/ru

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/30Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Abstract

Изобретение относится к отбору проб, в частности к отбору и подготовке пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований с целью выявления этиологии воспалительных заболеваний переднего отрезка глаза. Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы включает забор материала зондом в области наибольшей плотности клеток при оттягивании нижнего века путем движения петлей по конъюнктиве нижнего века, нижней переходной складке и в области слезного мясца не менее чем двумя скользящими движениями. После чего материал помещают в пробирку с 0,1 мл физиологического раствора, перемешивают, отстаивают при комнатной температуре не менее 4 часов перед проведением анализа пробы и осуществляют забор и помещение пробы в камеру наконечника ручного автоматизированного счетчика клеток. Забор материала проводят после местной анестезии раствором проксиметакаина. Изобретение позволяет упростить способ подготовки клеток конъюнктивы, уменьшить инвазивность и повысить достоверность (стандартизация) отбора пробы. 1 з.п. ф-лы, 1 табл., 4 ил.

Description

Изобретение относится к отбору проб, в частности к отбору и подготовке пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований в области медицины (офтальмологии), и может быть использовано для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований с целью выявления этиологии воспалительных заболеваний переднего отрезка глаза.
Отбор пробы и лабораторная диагностика при воспалительных заболеваниях переднего отрезка глаза является необходимым условием в определении тактики лечения пациента, а также контроля и прогнозирования изменений показателей локального иммунитета под влиянием лекарственных препаратов. В настоящее время основным материалом для проведения бактериологического, вирусологического, биохимического и иммунологического исследований в офтальмологии является слезная жидкость (патент №2165082, опубл. 2000 г.; Стукалов С.Е. Иммунологические исследования в офтальмологии. - Воронеж, 1975. - 224 с.; Пучковская Н.А., Шульгина Н.С., Минев М.Г., Игнатов Р.К. Иммунология глазной патологии. - М: Медицина, 1983. - 208 с.).
Однако получение пробы не всегда представляется возможным у пациентов со сниженной слезопродукцией, наличием роговично-конъюнктивального ксероза. Следует отметить, что воспалительные заболевания переднего отрезка глаза практически в 100% случаев осложняются развитием синдрома сухого глаза (Майчук Д.Ю. и др. «Синдром красного глаза», М., 2010. - 108 с.) и затрудняет получение достаточного количества материала для проведения исследования. Кроме того, определение экспрессии генов различных биологически активных веществ (в т.ч. цитокинов), исследование латентной внутриклеточной инфекции более информативно проводить на клеточном материале.
Отбору проб - забору конъюнктивальных клеток с целью проведения цитологического исследования и верификации диагноза «синдром сухого глаза» посвящены единичные работы.
Отбор и подготовка пробы - изъятие материала осуществляется с помощью фильтровальной бумаги либо специальными приборами с последующей оценкой клеточного состава методом импрессионной цитологии (Vadrevu V.L. et al. Enhancement to the cjnjunctival impression cytology technique and examples of applications in a clinico-biocheical study of dry eye. - CLAO J., 1994. - Vol. 20; №1. - P. 59-63; Singh R. et al. Impression cytology of the ocular surface. - Br. J. of Ophthalmol, 2005. - Vol. 89; №7. - P. 1655-1659). Предложенные методы забора клеток конъюнктивы связаны либо с недостаточным количеством клеточного материала, необходимого для проведения исследования, либо с малой доступностью приборов, либо с трудоемкостью подсчета клеток в пробе.
Как правило, подсчет клеток конъюнктивы в пробе производится при помощи светового микроскопа, что является субъективным и достаточно трудоемким методом. В последнее время в различных областях медицины применяют счетчики клеток (в гематологии для подсчета форменных элементов крови, в паразитологии для определения количества личинок в крови и др.) (PLoSNeglTropDis. 2014 Sep 18; 8(9):е3180. doi: 10.1371/journal.pntd.0003180. eCollection 2014. Repurposed automated handheld counter as a point-of-care tool to identify individuals ‘at risk’ of serious post-ivermectin encephalopathy. Bennuru S1, Pion SD2, Kamgno J3, Wanji S4, Nutman TB1.). Счетчики определяют не только количество клеток в образце, но и их размеры и объем, что позволяет предположить о виде клеточной структуры. Подобные приборы позволяют автоматизировать подсчет клеток, определение их размеров и объема, что исключает субъективный фактор и возможность получения ошибочных данных, а также упрощает процедуру и позволяет получить результаты в короткий срок.
Таким образом, приведенные данные обусловливают актуальность оптимизации отбора пробы путем взятия клеточного материала конъюнктивы, а именно разработку метода взятия клеточного материала конъюнктивы с дальнейшим подсчетом клеток при помощи автоматизированного счетчика с целью стандартизации метода забора и использования его для лабораторной диагностики инфекционных заболеваний и иммунологических исследований при воспалительной патологии глазной поверхности.
Из уровня техники известен стандарт в сборе материала при импрессионной цитологии. Таким стандартом является методика Kruse F.E. (Brewitt Н., Zierhut М. Trockenes Auge: Anatomie, Physiologie, Pathophysiologic, Diagnostik, Therapie. / H. Brewitt, M. Zierhut (Hrsg.). - Heilderberg: Kaden, 2001. - 180 p.). Для сбора материала эпителиальных клеток используется целлюлозно-ацетатный фильтр (Millipore VSWP 0,025 mm). Диск из целлюлозно-ацетатного фильтра вырезают по шаблону соответственно площадке грузика, то есть 4 на 6 мм., упаковывают в индивидуальные эпендорфы для стерилизации и прикрепляют клейкой стороной к тонометру. Диском из целлюлозно-ацетатного фильтра надавливают на бульбарную конъюнктиву в течение несколько секунд после инстилляций местных анестетиков. Готовый препарат покрывают полистиролом и покровным стеклом и изучают методом световой микроскопии при увеличении 150-300.
Недостатки данного аналога - неудобен и длителен.
Известен способ подготовки пробы клеток конъюнктивы к цитологическому исследованию (прототип), включающий соскоб эпителия бульбарной конъюнктивы для диагностики изменений конъюнктивы глазного яблока патент 2282843 С2, G01N 1/30, опубл. 2006 г. Пробу берут расслаивателем (ALKON) после предварительной местной анестезии раствором 0,5% дикаина и наносят на поверхность чистого обезжиренного предметного стекла, высушивают естественным путем, фиксируют 96% этиловым спиртом, окрашивают по Романовскому-Гимзе, затем краску смывают проточной водой, соскобы высушивают естественным путем. Цитологические препараты микроскопируют.
Недостатком прототипа является его инвазивность и риск повреждения конъюнктивы: перфорация конъюнктивы, кровоизлияние. А раствор дикаина, используемый в данном способе, является токсичным.
Техническим результатом изобретения является упрощение способа подготовки клеток конъюнктивы и уменьшение инвазивности способа. Кроме того, повышается достоверность (стандартизация) отбора пробы.
Таким образом, решается важная техническая задача - разработка и стандартизация метода отбора пробы и взятия клеточного материала с конъюнктивы нижнего века для проведения ряда исследования (вирусологических, бактериальных, цитологических, иммунологических) при диагностике заболеваний.
Технический результат достигается тем, что способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований включает забор материала зондом в области наибольшей плотности клеток при оттягивании нижнего века путем движения петлей по конъюнктиве нижнего века, нижней переходной складке и в области слезного мясца не менее чем двумя скользящими движениями, после чего материал помещают в пробирку с 0,1 мл физиологического раствора, перемешивают, отстаивают при комнатной температуре не менее 4 часов перед проведением анализа пробы и осуществляют забор и помещение пробы в камеру наконечника ручного автоматизированного счетчика клеток.
Забор материала поводят после местной анестезии раствором проксиметакаина.
Раскрытие изобретения
Забор материала осуществляется зондом (например, производства ООО «Центромед», Москва), после местной анестезии раствором проксиметакаина («Алкаин», Алкон, США). Необходимо оттянуть нижнее веко и провести петлей по конъюнктиве нижнего века, нижней переходной складке и в области слезного мясца двумя-тремя легкими, скользящими движениями, как показано, например, на фото 1, 2, 3. Взятие клеточного материала в области конъюнктивы нижнего века обусловлено тем фактом, что плотность клеток в данной области самая высокая.
После забора материал помещают в пробирку с 0,1 мл физиологического раствора, перемешивают и перед проведением анализа пробы отстаивают при комнатной температуре 4 часа.
Подготовленную суспензию клеток помещают в ручной автоматизированный счетчик клеток Scepter™Millipore™ (Германия) путем забора образца в камеру 1, встроенную в наконечник 2 прибора 3 (фиг. 1).
Далее осуществляется автоматический подсчет клеток, определение их объема и диаметра. В основе работы прибора лежит принцип Культера (импедансометрии): измеряется импульс электрического напряжения, возникающий при прохождении частицы (эукариотической клетки) через трубку (ампулу) малого диаметра из непроводящего материала. Импульс напряжения возникает в результате увеличения сопротивления между электродами в момент, когда частица (клетка), увлекаемая потоком токопроводящей жидкости, проходит сквозь ампулу, при этом величина (амплитуда) импульса пропорциональна объему частицы. Автоматический счет числа импульсов и сортировка их по амплитудам позволяют получать кривые распределения частиц по размерам.
Забор материала (клетки конъюнктивы) вышеуказанным способом осуществляли у здоровых добровольцев (n=30) и у пациентов с острым конъюнктивитом (n=30). При помощи счетчика клеток ScepterTM MilliporeTM определяли концентрацию клеток в 1 мл суспензии, диаметр клеток (мкм) и объем клеток (пл). Подсчет средних значений показателей осуществляли при помощи компьютерной программы SPSS Statistics версии 20. Средняя концентрация клеток в 1 мл образца у здоровых добровольцев составила 3,76±3,04, у пациентов с острым конъюнктивитом - 3,94±4,02, при этом р-уровень значимости различий превышает 0,9, следовательно, разница средних значений недостоверна (таблица 1). По другим параметрам счетчика нет разницы, это говорит о том, что количество клеток одно и то же (не важно здоровый глаз или больной), следовательно, метод можно признать стандартизированным.
Figure 00000001
Сравнение средних значений диаметра клетки и объема клетки между двумя группами также не выявило значимых различий (р=0,691 и p=0,721 соответственно) (таблица 1). Таким образом, полученные результаты свидетельствуют о том, что такие показатели, как концентрация клеток в образце, их диаметр и объем у здоровых добровольцев и у пациентов с воспалением слизистой оболочки глаза не имеют значимых отличий. Следовательно, забор конъюнктивальных клеток конъюнктивы нижнего века при помощи универсального зонда можно считать стандартизированным и использовать в проведении лабораторной диагностики у пациентов с воспалительными заболеваниями переднего отрезка глаза.
Предлагаемый метод получения конъюнктивальных клеток был использован у пациентов с острым конъюнктивитом (n=30) с целью выявления возбудителя заболевания и определения экспрессии генов цитокинов до начала терапии и спустя 7 дней от начала терапии.
Приводим примеры клинического использования.
Пример 1. Пациентка Д., 27 лет, обратилась в отделение неотложной помощи филиала №1 ГКБ им. С.П. Боткина с жалобами на покраснение правого глаза, слезотечение. Из анамнеза: жалобы появились 2 дня назад на фоне полного здоровья, отметила попадание пыли в глаза накануне появления симптомов заболевания. Было проведено обследование: биомикроскопия бульбарной конъюнктивы, конъюнктивы век и переходных складок, роговицы, бесконтактная тонометрия. Поставлен диагноз: OD - острый конъюнктивит неясной этиологии. Проведено бактериологическое и вирусологическое (определение ДНК аденовируса, герпесвирусов, РНК энтеровируса) исследование конъюнктивального мазка, взятого вышеуказанным способом в день первого обращения и на 7 сутки после назначенной терапии (антибактериальной, противовоспалительной). Бактериологическое исследование проводили при помощи метода полимеразной цепной реакции, вирусологическое - методом полимеразной цепной реакции в реальном времени с количественным определением содержания патогена в конъюнктивальном мазке. Результаты исследований: в конъюнктивальном мазке пациентки обнаружена гемофильная палочка (Н. Influenza) - абсолютный патоген, в концентрации 4000 коп/мл и метициллинрезистентные коагулазонегативные стафилококки (англ. MRCoNS) - условные патогены, а также возможные представители нормальной микрофлоры конъюнктивы, в концентрации менее 2200 коп/мл. На 7 сутки от начала терапии признаки воспаления конъюнктивы (отек, гиперемия) отсутствовали, в конъюнктивальном мазке обнаруживали MRCoNS в концентрации менее 800 коп/мл.
Пример 2. Пациент Н., 36 лет, обратился в отделение неотложной помощи филиала №1 ГКБ им. С.П. Боткина с жалобами на покраснение обоих глаз, слезотечение, светобоязнь. Из анамнеза: жалобы появились 3 дня назад, сначала покраснел правый глаз, через сутки - левый и присоединились явления ринита и фарингита. Температура тела повысилась до 38,0°. Было проведено обследование: биомикроскопия бульбарной конъюнктивы, конъюнктивы век и переходных складок, роговицы, бесконтактная тонометрия. Поставлен диагноз: OU - острый конъюнктивит предположительно аденовирусный. Проведено бактериологическое и вирусологическое исследование конъюнктивального мазка вышеуказанными способами в день первого обращения и на 7 сутки терапии (антибактериальной, противовирусной, противовоспалительной). Результаты исследований: в конъюнктивальном мазке пациента обнаружена ДНК аденовируса и метициллинрезистентный золотистый стафилококк (англ. MRSA) - в малой концентрации - менее 900 коп/мл. При повторном обращении (7 сутки от начала терапии) пациент отмечал улучшение состояния. Объективно наблюдали снижение интенсивности симптомов воспаления, ДНК аденовируса не обнаруживали, при проведении бактериологического исследования выявили MRSA менее 800 коп/мл.
Иммунологическое исследование. Иммунологическое исследование конъюнктивального мазка проводили путем определения матричной РНК (мРНК) 21 цитокина (интерферон-α (ИФН-α), ИФН-β, ИФН-γ, ИФН-λ1, ИФН-λ2, ИФН-λ3, интерлейкин-1β (ИЛ-1β), ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10, ИЛ-12, ИЛ-17, ИЛ-18, фактор некроза опухолей-α (ФНО-α), сосудистый эндотелиальный фактор роста А (СЭФР-А), СЭФР-С, СЭФР-R1, СЭФР-R2, СЭФР-R3) методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией.
Пример 3. Пациентка С., 46 лет, обратилась в отделение неотложной помощи филиала №1 ГКБ им. С.П. Боткина с жалобами на покраснение обоих глаз, слезотечение, светобоязнь. Из анамнеза: жалобы появились 2 дня назад на фоне субфебрильной температуры и катаральных явлений. Было проведено обследование: биомикроскопия бульбарной конъюнктивы, конъюнктивы век и переходных складок, роговицы, бесконтактная тонометрия. Поставлен диагноз: OU - острый конъюнктивит предположительно аденовирусный. Проведено иммунологическое исследование конъюнктивального мазка в день первого обращения и на 7 сутки терапии (антибактериальной, противовирусной, противовоспалительной). Результаты исследований: при первом обращении в конъюнктивальном мазке определены мРНК ИФН-γ, ИЛ-18, ФНО-α. На 7 день от начала терапии на фоне снижения интенсивности симптомов воспаления экспрессии генов цитокинов не выявлено.
Пример 4. Пациент Д., 35 лет, обратился в отделение неотложной помощи филиала №1 ГКБ им. С.П. Боткина с жалобами на покраснение правого глаза, отек век, гнойное отделяемое. Из анамнеза: жалобы появились 4 дня назад на фоне полного здоровья. Со слов пациента - «потер глаз грязной рукой». Было проведено обследование: биомикроскопия бульбарной конъюнктивы, конъюнктивы век и переходных складок, роговицы, бесконтактная тонометрия. Поставлен диагноз: OU - острый гнойный конъюнктивит неясной этиологии. Проведено иммунологическое исследование конъюнктивального мазка в день первого обращения и на 7 сутки терапии (антибактериальной, противовоспалительной). Результаты исследований: при первом обращении в конъюнктивальном мазке определены ФНО-α, СЭФР-R1, СЭФР-R3. На 7 день от начала терапии на фоне снижения интенсивности симптомов выявляли экспрессию генов ИФН-α.

Claims (2)

1. Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований, включающий забор материала зондом в области наибольшей плотности клеток при оттягивании нижнего века путем движения петлей по конъюнктиве нижнего века, нижней переходной складке и в области слезного мясца не менее чем двумя скользящими движениями, после чего материал помещают в пробирку с 0,1 мл физиологического раствора, перемешивают, отстаивают при комнатной температуре не менее 4 часов перед проведением анализа пробы и осуществляют забор и помещение пробы в камеру наконечника ручного автоматизированного счетчика клеток.
2. Способ отбора и подготовки пробы по п. 1, отличающийся тем, что забор материала поводят после местной анестезии раствором проксиметакаина.
RU2017113441A 2017-04-19 2017-04-19 Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований RU2643955C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017113441A RU2643955C1 (ru) 2017-04-19 2017-04-19 Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017113441A RU2643955C1 (ru) 2017-04-19 2017-04-19 Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2643955C1 true RU2643955C1 (ru) 2018-02-06

Family

ID=61173462

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017113441A RU2643955C1 (ru) 2017-04-19 2017-04-19 Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2643955C1 (ru)

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1303881A1 (ru) * 1984-12-06 1987-04-15 Воронежский государственный медицинский институт им.Н.Н.Бурденко Способ приготовлени клеточного материала дл исследовани в гинекологической практике
RU2282843C2 (ru) * 2004-12-14 2006-08-27 Галина Викторовна Кореняк Способ подготовки препарата для диагностики изменений конъюнктивы глазного яблока
WO2010100258A1 (en) * 2009-03-06 2010-09-10 Pierre Roy Eye sampling device
RU2415424C1 (ru) * 2009-11-23 2011-03-27 Владимир Всеволодович Бржеский Способ подготовки клеток конъюнктивы к цитологическому исследованию
WO2014074823A1 (en) * 2012-11-08 2014-05-15 Clearside Biomedical, Inc. Methods and devices for the treatment of ocular diseases in human subjects
RU2578977C1 (ru) * 2015-05-12 2016-03-27 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт глазных болезней" Способ подготовки биологического образца к исследованию при помощи сканирующей электронной микроскопии

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1303881A1 (ru) * 1984-12-06 1987-04-15 Воронежский государственный медицинский институт им.Н.Н.Бурденко Способ приготовлени клеточного материала дл исследовани в гинекологической практике
RU2282843C2 (ru) * 2004-12-14 2006-08-27 Галина Викторовна Кореняк Способ подготовки препарата для диагностики изменений конъюнктивы глазного яблока
WO2010100258A1 (en) * 2009-03-06 2010-09-10 Pierre Roy Eye sampling device
RU2415424C1 (ru) * 2009-11-23 2011-03-27 Владимир Всеволодович Бржеский Способ подготовки клеток конъюнктивы к цитологическому исследованию
WO2014074823A1 (en) * 2012-11-08 2014-05-15 Clearside Biomedical, Inc. Methods and devices for the treatment of ocular diseases in human subjects
RU2578977C1 (ru) * 2015-05-12 2016-03-27 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт глазных болезней" Способ подготовки биологического образца к исследованию при помощи сканирующей электронной микроскопии

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kim et al. Tear cytokines and chemokines in patients with Demodex blepharitis
CHANDLER et al. Quantitative determinations of complement components and immunoglobulins in tears and aqueous humor
Karma et al. Primary intraocular lymphoma: improving the diagnostic procedure
Ansari et al. Quantitative molecular characterization of bovine vitreous and lens with non-invasive dynamic light scattering
Hunter et al. Abnormal axonemes in X-linked retinitis pigmentosa
RU2643955C1 (ru) Способ отбора и подготовки пробы клеток конъюнктивы для проведения бактериологического, вирусологического и иммунологического исследований
Ozseker et al. Serum amyloid A (SAA) in induced sputum of asthmatics: a new look to an old marker
Magnaval et al. Eosinophil cationic protein, specific IgE and IgG4 in human toxocariasis
Yanwei et al. The relationship between dry eye and lactoferrin levels in tears
Wilson et al. Direct-smear fluorescent antibody cytology as a field diagnostic tool for trachoma
Mishra et al. HLA-B27 association with uveitis in an Asian Indian population
Ragab et al. Correlation between the cytology of the nasal middle meatus and BAL in chronic rhinosinusitis
RU2602298C2 (ru) Способ определения совокупной активности антимикробных пептидов как маркера состояния местного иммунитета различных эпителиальных тканей
Sonoda et al. Blood components and OCT reflectivity evaluated in animal model
Bhargava et al. Can conjunctival impression cytology be the first line diagnostic test for evaluation of dry eye syndrome
RU2415424C1 (ru) Способ подготовки клеток конъюнктивы к цитологическому исследованию
RU2356053C1 (ru) Способ дифференциальной диагностики инфекционно-воспалительных осложнений при травме глаза
Kari et al. Conjunctival eosinophilia in atopic and non‐atopic external eye symptoms
Singh Study on Ocular changes and Cytology in Diagnosis of eys Diseases in dogs
Bezkorovayna et al. Characteristics of crystallographic changes in tear in different stages of diabetic retinopathy
Ramírez‐Agámez et al. Cytology of the Endometrium
RU2806032C1 (ru) Способ определения специфической сенсибилизации к оболочкам глаза
Dunagan et al. Intranasal disease and provocation
Juliari et al. The mucin 5AC level in medical faculty students with Computer Vision Syndrome (CVS)
RU2777205C1 (ru) Способ диагностики увеальной меланомы

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200420