RU2630668C1 - Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds - Google Patents
Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds Download PDFInfo
- Publication number
- RU2630668C1 RU2630668C1 RU2016130510A RU2016130510A RU2630668C1 RU 2630668 C1 RU2630668 C1 RU 2630668C1 RU 2016130510 A RU2016130510 A RU 2016130510A RU 2016130510 A RU2016130510 A RU 2016130510A RU 2630668 C1 RU2630668 C1 RU 2630668C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- substance
- solution
- mol
- chitosan
- composition
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/43—Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
- A61K38/46—Hydrolases (3)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/06—Ointments; Bases therefor; Other semi-solid forms, e.g. creams, sticks, gels
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к протеолитическому ферменту (протеаза) Bacillus subtilis, иммобилизованному на носителе и композиции для лечения гнойно-некротических ран на его основе и может быть использовано в медицине, биотехнологии и биохимии для гидролиза белков.The invention relates to a proteolytic enzyme (protease) of Bacillus subtilis, immobilized on a carrier and composition for the treatment of purulent necrotic wounds based on it and can be used in medicine, biotechnology and biochemistry for protein hydrolysis.
Протеолитические ферменты ускоряют биосинтез коллагена и других белков мышц, нормализуют уровень показателей окислительно-восстановительных процессов, тем самым значительно уменьшая время заживления ран, обладают мощным противовоспалительным и противоотечным действием (Диагностика и лечение ранений/ Под ред. Ю.Г. Шапошникова. - М.: Медицина, 1984 г., с. 200, 218) [1].Proteolytic enzymes accelerate the biosynthesis of collagen and other muscle proteins, normalize the level of indicators of redox processes, thereby significantly reducing wound healing time, have a powerful anti-inflammatory and anti-edematous effect (Diagnosis and treatment of wounds / Edited by Yu.G. Shaposhnikov. - M. : Medicine, 1984, p. 200, 218) [1].
Известны способы иммобилизации путем адсорбции фермента на матрицах с высокоразвитой поверхностью (Иммобилизованные ферменты. Под. ред. И.В. Березина. T. 1, М., Изд-во МГУ, 1976, с. 79-140) [2]. Недостатком таких способов является малая прочность связи фермента с носителем, в результате чего фермент в процессе эксплуатации может диффундировать с носителя в раствор.Known methods of immobilization by adsorption of the enzyme on matrices with a highly developed surface (Immobilized enzymes. Under the editorship of IV Berezin. T. 1, M., Publishing House of Moscow State University, 1976, S. 79-140) [2]. The disadvantage of these methods is the low bond strength of the enzyme with the carrier, as a result of which the enzyme can diffuse from the carrier into the solution during operation.
Известен способ получения водорастворимого иммобилизованного ферментного препарата (авторское свидетельство СССР №730694, МПК С08В 37/02, опубл. 30.04.80) [3], включающий стадии:A known method of producing a water-soluble immobilized enzyme preparation (USSR author's certificate No. 730694, IPC С08В 37/02, publ. 30.04.80) [3], which includes the stages:
- активирование носителя - декстрана с мол. массой 20 кДа, в реакции периодатного окисления (степень окисления носителя γ=6-48%);- activation of the carrier - dextran with a pier. mass of 20 kDa, in the reaction of periodic oxidation (oxidation state of the carrier γ = 6-48%);
- приготовление реакционной смеси: окисленный декстран растворяют в воде до концентрации 50 мг/мл и смешивают с раствором фермента - террилитина, в 0,1 М боратном буфере рН 8,5;- preparation of the reaction mixture: oxidized dextran is dissolved in water to a concentration of 50 mg / ml and mixed with a solution of the terrilithin enzyme in 0.1 M borate buffer pH 8.5;
- иммобилизация фермента: реакционную смесь перемешивают в течение 2 часов при 21±1°С, затем добавляют 0,1 М раствор боратного буфера, содержащего боргидрид натрия и перемешивают еще в течение 40 мин;- enzyme immobilization: the reaction mixture is stirred for 2 hours at 21 ± 1 ° C, then a 0.1 M solution of borate buffer containing sodium borohydride is added and stirred for another 40 minutes;
- обессоливание иммобилизованного ферментного препарата путем диализа на холоде (4±2°С) против дистиллированной воды в течение 48 часов;- desalination of the immobilized enzyme preparation by dialysis in the cold (4 ± 2 ° C) against distilled water for 48 hours;
- отделение избытка не связавшегося фермента гель-фильтрацией;- separation of excess unbound enzyme by gel filtration;
- лиофильное высушивание.- freeze drying.
Получают препарат с удельной активностью 7,4 ПЕ/мг.Get the drug with a specific activity of 7.4 PE / mg.
Недостатками известного способа являются: сложность процесса (длительный процесс получения активированного носителя, процесс гель-фильтрации трудно масштабируется, значительные затраты времени, энергетических ресурсов и сырья), фермент в процессе эксплуатации может диффундировать вместе с носителем в кровоток при кровоточивости раневой поверхности и вызвать аллергические реакции. Кроме того - некоторое неудобство при применении: раствор высыхает через 0,5-1 час и повязку необходимо смачивать или менять повязку.The disadvantages of this method are: the complexity of the process (the long process of obtaining an activated carrier, the gel filtration process is difficult to scale, a significant investment of time, energy and raw materials), the enzyme during operation can diffuse with the carrier into the bloodstream during bleeding of the wound surface and cause allergic reactions . In addition, there is some inconvenience during use: the solution dries after 0.5-1 hours and the dressing must be moistened or the dressing changed.
Известен способ получения водорастворимого иммобилизованного протеолитического комплекса (авторское свидетельство СССР №1442548, МПК С12N 11/00, опубл. 07.12.88) [4], заключающийся в следующем:A known method of obtaining a water-soluble immobilized proteolytic complex (USSR author's certificate No. 1442548, IPC С12N 11/00, publ. 07.12.88) [4], which consists in the following:
Протосубтилин Г10Х, представляющий собой комплекс бактериальных нейтральных и щелочных протеаз из Вас. subtilis, растворяют в 0,05 М боратном буфере рН 8,4 при 2-4°С в течение 30 мин, а нерастворившийся осадок отделяют центрифугированием при 7000 g в течение 30 мин. К полученному супернатанту добавляют 10%-ный водный раствор полиэтиленоксида с мол. массой 600-2000 Да, преимущественно 1500 Да, в соотношении носитель - протосубтилин 1:(7,5-8,5). Смесь фермента с носителем облучают тормозным γ-излучением в дозе 2,3-2,7 мрад. При этом получают водорастворимый иммобилизованный ферментный препарат с протеолитической активностью 80-120 ПЕ/мл. Препарат представляет собой прозрачную жидкость желтоватого цвета, которую хранят при 4-8°С.Protosubtilin G10X, which is a complex of bacterial neutral and alkaline proteases from you. subtilis, dissolved in 0.05 M borate buffer, pH 8.4 at 2-4 ° C for 30 minutes, and the insoluble precipitate was separated by centrifugation at 7000 g for 30 minutes. To the obtained supernatant add a 10% aqueous solution of polyethylene oxide per mol. weighing 600-2000 Yes, mainly 1500 Yes, in the ratio of the carrier - protosubtilin 1: (7.5-8.5). The mixture of the enzyme with the carrier is irradiated with bremsstrahlung γ-radiation at a dose of 2.3-2.7 mrad. In this case, a water-soluble immobilized enzyme preparation with a proteolytic activity of 80-120 PE / ml is obtained. The drug is a clear yellowish liquid, which is stored at 4-8 ° C.
Известен способ получения водорастворимого иммобилизованного протеолитического комплекса (патент РФ №2137835, МПК C12N 11/00, опубл. 20.09.1999) [5], включающий приготовление реакционной смеси, содержащей протосубтилин с полиэтиленоксидом мол. массой 1500-4000 Да, с последующим облучением полученной смеси тормозным γ-излучением, отличающийся тем, что соотношение фермент - носитель устанавливают равным 1:(2-6), из реакционной смеси перед облучением проводят солевое осаждение балластных белков путем последовательного добавления в реакционную смесь сначала фосфорнокислого натрия до конечной концентрации 0,45%, а затем хлорида кальция до конечной концентрации 0,63%. Целевой продукт подвергают лиофильной сушке в присутствии полиэтиленоксида с мол. массой 4000 Да в количестве 50-300 мг/мл.A known method of obtaining a water-soluble immobilized proteolytic complex (RF patent No. 2137835, IPC C12N 11/00, publ. 09/20/1999) [5], including the preparation of a reaction mixture containing protosubtiline with polyethylene oxide mol. weighing 1500-4000 Yes, followed by irradiation of the resulting mixture with bremsstrahlung γ-radiation, characterized in that the ratio of the enzyme-carrier is set to 1: (2-6), before the irradiation, the ballast proteins are salt precipitated by irradiation by sequential addition to the reaction mixture first, sodium phosphate to a final concentration of 0.45%, and then calcium chloride to a final concentration of 0.63%. The target product is subjected to freeze drying in the presence of polyethylene oxide with a mol. weighing 4000 Yes in an amount of 50-300 mg / ml.
Недостатками известных способов [5, 6] являются:The disadvantages of the known methods [5, 6] are:
- радиационная модификация бактериальных протеаз полиэтиленоксидом приводит к гетерогенности получаемого продукта (способ иммобилизации не исключает десорбцию комплекса протеаз с матрицы, так как фермент в этом случае не является ковалентно связанным с носителем),- radiation modification of bacterial proteases with polyethylene oxide leads to heterogeneity of the obtained product (the method of immobilization does not exclude the desorption of the complex of proteases from the matrix, since the enzyme in this case is not covalently linked to the carrier),
- фермент в процессе эксплуатации может диффундировать вместе с носителем в кровоток при кровоточивости раневой поверхности и вызвать аллергические реакции.- the enzyme during operation can diffuse with the carrier into the bloodstream during bleeding of the wound surface and cause allergic reactions.
Кроме того, некоторое неудобство при применении: раствор высыхает через 0,5-1 час и повязку необходимо смачивать или ее менять.In addition, there is some inconvenience in use: the solution dries after 0.5-1 hours and the dressing must be moistened or changed.
Известен препарат «Повязка для лечения ран» (патент РФ №2219954, МПК A61L 15/08, опубл. 27.12.203) [6], состоящая из перфорированной пленки хитозана (1,0-6,0 ч) в поливиниловом спирте (60,0-95,0 ч), содержащая биологически активные добавки, в том числе - протеазы (0,5-30,0 ч), глутаровый альдегид (0,1-2,0 ч) и органическую кислоту (0,5-4,0 ч).Known drug "Dressing for the treatment of wounds" (RF patent No. 2219954, IPC A61L 15/08, publ. 12/27/203) [6], consisting of a perforated film of chitosan (1.0-6.0 h) in polyvinyl alcohol (60 , 0-95.0 h), containing biologically active additives, including proteases (0.5-30.0 h), glutaraldehyde (0.1-2.0 h) and organic acid (0.5- 4.0 h).
Однако ферменты, глутаровый альдегид и органическая кислота в процессе использования повязки могут диффундировать в кровоток при кровоточивости раневой поверхности и вызвать аллергические реакции (как отмечено в описании, происходит «десорбция из пленки хитозана биологически активных веществ»). Активность ферментов слабо проявляется в 60-95%-ном спирте.However, enzymes, glutaraldehyde and organic acid during use of the dressing can diffuse into the bloodstream when the wound surface is bleeding and cause allergic reactions (as noted in the description, “desorption of biologically active substances from the chitosan film” occurs). The activity of enzymes is weakly manifested in 60-95% alcohol.
Известен способ получения средства для лечения гнойно-некротических ран (патент РФ №1814764, МПК A61K 47/48, опубл. 20.03.1995) [7], заключающийся в обработке 2%-ного геля хитозана 2%-ным раствором глутарового альдегида в фосфатном буфере при рН 7,5, взятых в соотношении 1:1, выдерживании при температуре 18-20°C в течение 30 мин, отмывании и пропускании через него экстракта гепатопанкреаса камчатского краба, содержащего комплекс ферментов: ТНК-азу, РНК-азу, щелочную фосфатазу, фосфодиэстеразу 1 типа и протеазу.A known method of obtaining funds for the treatment of purulent-necrotic wounds (RF patent No. 1814764, IPC A61K 47/48, publ. 03.20.1995) [7], which consists in processing a 2% chitosan gel with a 2% solution of glutaraldehyde in phosphate buffer at pH 7.5, taken in the ratio 1: 1, keeping at a temperature of 18-20 ° C for 30 minutes, washing and passing through it the hepatopancreas extract of king crab containing a complex of enzymes: TNK-aza, RNA-ase, alkaline phosphatase, phosphodiesterase type 1 and protease.
Однако в известном способе получения средства технологически сложно пропускать жидкости через гели и обеспечивать точные концентрации хитозана (для получения средства используется 2%-ный гель хитозана). В случае, если используется 1%-ный гель, суспензия носителя получается жидкой и менее пригодной для получения мазевых форм. При концентрации хитозана 3-4% резко увеличивается плотность носителя. Времени активации матрицы в течение 30 мин явно недостаточно [8], а 2%-ный гель хитозана имеет небольшие сроки хранения, т.к. склонен к высыханию.However, in the known method of obtaining funds, it is technologically difficult to pass liquids through gels and provide accurate concentrations of chitosan (to obtain funds, a 2% chitosan gel is used). If a 1% gel is used, the suspension of the carrier is obtained liquid and less suitable for the preparation of ointment forms. With a concentration of chitosan of 3-4%, the density of the carrier increases sharply. The activation time of the matrix for 30 min is clearly not enough [8], and a 2% chitosan gel has short shelf life, because prone to dry.
Наиболее близким аналогом (прототипом) заявляемой субстанции протеолитического фермента Bacillus subtilis является препарат иммобилизованной протеазы Bacillus subtilis на носителе в виде аминоэтилцеллюлозы, активированной глутаровым альдегидом, описанный в способе получения иммобилизованного протеолитического комплекса, заключающемся в активации аминоэтилцеллюлозы глутаровым альдегидом с последующей иммобилизацией протеазы. В результате получают комплекс иммобилизованной протеазы с удельной активностью 32-40 ед. акт/г сухого веса (патент РФ №686377, МПК A61K 37/48, опубл. 15.12.1993) [8].The closest analogue (prototype) of the claimed substance of the proteolytic enzyme Bacillus subtilis is a preparation of immobilized protease Bacillus subtilis on a carrier in the form of aminoethyl cellulose activated by glutaraldehyde, described in a method for producing an immobilized proteolytic complex, which involves activating aminoethyl cellulose with glutamate glutamate. The result is a complex of immobilized protease with a specific activity of 32-40 units. act / g dry weight (RF patent No. 686377, IPC A61K 37/48, publ. 15.12.1993) [8].
Однако данная субстанция имеет недостаточную чистоту ферментативного комплекса перед иммобилизацией на носитель (используемый в способе препарат Протосубтилин ГЗХ содержит в качестве наполнителей: поваренную соль, мел, кукурузную муку, продукты жизнедеятельности Bacillus subtilis. Для очистки используется осаждение хлористым кальцием (собирают надосадочную жидкость) и этанолом (используют осадок). При этом не все примеси, имеющие аминогруппы, удаляются из субстанции и могут снижать выход иммобилизованной протеазы. Препарат "Профезим-10 мл" используется в виде взвеси, которая требует создания условий "влажной камеры" путем наложения марлевой повязки. Как показала практика, эта форма препарата неудобна при лечении ожогов и ран, так как при смене повязок происходит повреждение грануляций раны, что не способствует быстрому ее заживлению.However, this substance has insufficient purity of the enzymatic complex before immobilization on a carrier (the Protosubtilin GX preparation used in the method contains the following excipients: sodium chloride, chalk, cornmeal, Bacillus subtilis waste products. Calcium chloride precipitation is used for purification (the supernatant is collected) and ethanol (use a precipitate.) However, not all impurities having amino groups are removed from the substance and can reduce the yield of immobilized protease. The drug "Profesim-10 ml" isp It is used in the form of a suspension, which requires the creation of a “wet chamber” by applying a gauze dressing. Practice has shown that this form of the drug is inconvenient in the treatment of burns and wounds, since when changing dressings, granulation of the wound is damaged, which does not contribute to its rapid healing.
Наиболее близким аналогом (прототипом) заявляемой композиции для лечения гнойно-некротических ран является препарат химически иммобилизованной на аминоэтилцеллюлозе протеазы Bacillus subtilis (Профезим) в составе композиции на основе полиэтиленгликоля (ПЭГ 5000) и глицерина (патент РФ №2150936, МПК A61K 9/06, опубл. 20.06.2000) [9] (масс. %):The closest analogue (prototype) of the claimed composition for the treatment of purulent necrotic wounds is a preparation of the Bacillus subtilis protease (Profesim) chemically immobilized on aminoethyl cellulose in the composition based on polyethylene glycol (PEG 5000) and glycerin (RF patent No. 2150936, IPC A61K 9/06, publ. 06/20/2000) [9] (wt.%):
Однако ранозаживляющая композиция имеет недостаточную скорость заживления ран, а также жидкую консистенцию мази (недостаточную вязкость). Последний фактор позволяет распределяться (растекаться) препарату по значительной поверхности тела, снижая количество действующего вещества на раневой поверхности.However, the wound healing composition has an insufficient rate of wound healing, as well as a liquid consistency of ointment (insufficient viscosity). The last factor allows the drug to spread (spread) over a significant surface of the body, reducing the amount of active substance on the wound surface.
Техническим результатом заявляемого изобретения является повышение ранозаживляющих свойств субстанции и композиции препарата на ее основе за счет повышение степени очистки протеолитических ферментов и использования в качестве носителя хитозана, активированного глутаровым альдегидом, а также улучшения реологических свойств (вязкости) мазевой формы лекарственной композиции.The technical result of the claimed invention is to increase the wound healing properties of the substance and composition of the drug based on it by increasing the degree of purification of proteolytic enzymes and using chitosan activated by glutaraldehyde as a carrier, as well as improving the rheological properties (viscosity) of the ointment form of the drug composition.
Указанный технический результат достигается созданием субстанции протеолитического фермента на основе Протосубтилина ГЗХ, используемой в качестве основного компонента композиции для лечения гнойно-некротических ран, имеющей ферментативную активность 17-19 ед.акт. нейтральной протеазы/г влажной массы и полученной путем суспендирования указанного сухого фермента в фосфатном буфере А в количестве 0,1 Моль/л при рН 7,6, очистки осаждением солью до конечной концентрации 0,1 Моль/л и удалением осадка центрифугированием, гель-фильтрации фермента на колонке с акрилексом Р-15, используя фосфатный буфер А, активации хитозана 25%-ным раствором глутарового альдегида в течение 5-6 часов с последующей иммобилизацией на активированном хитозане очищенного протеолитического фермента Протосубтилина ГЗХ при температуре 6-8°С в течение 18 часов, последовательной отмывки полученной субстанции водой, раствором Трис-HCl в концентрации 0,1 Моль/л при рН 7,6, раствором натрий-фосфата в концентрации 0,5 Моль/л при рН 7,4 и суспендирования субстанции в растворе Трис-HCl в концентрации 0,01 Моль/л при рН 7,4, содержащем 0,9%-ный NaCl.The specified technical result is achieved by the creation of a substance of a proteolytic enzyme based on Protosubtilin GZH, used as the main component of the composition for the treatment of purulent-necrotic wounds, with an enzymatic activity of 17-19 units. neutral protease / g wet weight and obtained by suspending the specified dry enzyme in phosphate buffer A in an amount of 0.1 mol / l at pH 7.6, purification by salt precipitation to a final concentration of 0.1 mol / l and removing the precipitate by centrifugation, gel filtering the enzyme on a column of acrylex P-15, using phosphate buffer A, activating chitosan with a 25% solution of glutaraldehyde for 5-6 hours, followed by immobilization on the activated chitosan of the purified proteolytic enzyme GZH at a temperature 6-8 ° C for 18 hours, sequentially washing the resulting substance with water, a solution of Tris-HCl at a concentration of 0.1 mol / l at pH 7.6, a solution of sodium phosphate at a concentration of 0.5 mol / l at pH 7, 4 and suspending the substance in a Tris-HCl solution at a concentration of 0.01 mol / L at a pH of 7.4 containing 0.9% NaCl.
Указанный технический результат достигается также тем, что композиция для лечения гнойно-некротических ран, включающая субстанцию протеолитического фермента (протеазы) Bacillus subtilis, иммобилизованного на носителе, целевые добавки и основу, согласно изобретению, в качестве субстанции протеолитического фермента (протеазы) Bacillus subtilis, иммобилизованного на носителе она содержит субстанцию по п. 1 формулы изобретения, в качестве целевых добавок - эмульгатор Т-2, твин 20 и 0,05%-ный раствор хлоргексидина биглюконат, а в качестве основы - масло вазелиновое при следующем количественном содержании компонентов (масс. %):The specified technical result is also achieved by the fact that the composition for the treatment of purulent-necrotic wounds, comprising a substance of the proteolytic enzyme (protease) of Bacillus subtilis immobilized on a carrier, target additives and a base, according to the invention, as a substance of the proteolytic enzyme (protease) of Bacillus subtilis, immobilized on the carrier it contains a substance according to claim 1 of the claims, as the target additives is an emulsifier T-2, tween 20 and a 0.05% solution of chlorhexidine bigluconate, and as a base - petroleum jelly th with the following quantitative content of components (wt.%):
В соответствии с ГОСТ 20264.2-88, стр. 2 (http://www.internet-law.ru/gosts/gost/28652/) за единицу протеолитической активности принята способность фермента превращать за 1 мин при температуре 30°С казеинат натрия в неосаждаемое трихлоруксусной кислотой состояние в количестве, соответствующем 1 мкмолю тирозина. Протеолитическую активность выражают числом указанных единиц в 1 г испытуемого препарата.In accordance with GOST 20264.2-88, page 2 (http://www.internet-law.ru/gosts/gost/28652/), the ability of the enzyme to convert sodium caseinate into 1 min at a temperature of 30 ° C is taken as non-precipitated trichloroacetic acid state in an amount corresponding to 1 μmol tyrosine. Proteolytic activity is expressed by the number of units indicated in 1 g of the test drug.
Изобретение иллюстрируется электрофореграммой комплекса протеолитических ферментов, приведенной на фиг. 1. Электрофорез в 12% ПААГ в денатурирующих условиях, окрашивание Кумасси R-250, где: К - комплекс протеолитических ферментов; М - маркеры молекулярных масс (20-150 кДа).The invention is illustrated by an electrophoregram of the complex of proteolytic enzymes shown in FIG. 1. Electrophoresis in 12% SDS page under denaturing conditions, Coomassie R-250 staining, where: K - a complex of proteolytic enzymes; M - molecular weight markers (20-150 kDa).
Пример 1. Характеристика субстанции протеолитического фермента (протеазы) Bacillus subtipis, иммобилизованного на хитозане, активированном глутаровым альдегидом.Example 1. Characterization of the substance of the proteolytic enzyme (protease) of Bacillus subtipis immobilized on chitosan activated by glutaraldehyde.
Субстанция протеолитического фермента на основе Протосубтилина ГЗХ используется в качестве основного компонента композиции для лечения гнойно-некротических ран, имеет ферментативную активность 17-19 ед.акт. нейтральной протеазы/г влажной массы и получена путем суспендирования указанного сухого фермента в фосфатном буфере А в количестве 0,1 Моль/л при рН 7,6, очистки осаждением солью до конечной концентрации 0,1 Моль/л и удалением осадка центрифугированием, гель-фильтрации фермента на колонке с акрилексом Р-15, используя фосфатный буфер А, активации хитозана 25%-ным раствором глутарового альдегида в течение 5-6 часов с последующей иммобилизацией на активированном хитозане очищенного протеолитического фермента Протосубтилина ГЗХ при температуре 6-8°С в течение 18 часов, последовательной отмывки полученной субстанции водой, раствором Трис-HCl в концентрации 0,1 Моль/л при рН 7,6, раствором натрий-фосфата в концентрации 0,5 Моль/л при рН 7,4 и суспендирования субстанции в растворе Трис-HCl в концентрации 0,01 Моль/л при рН 7,4, содержащем 0,9%-ный NaCl.The substance of the proteolytic enzyme based on Protosubtilin GZH is used as the main component of the composition for the treatment of purulent-necrotic wounds, has an enzymatic activity of 17-19 units. neutral protease / g wet weight and obtained by suspending the specified dry enzyme in phosphate buffer A in an amount of 0.1 mol / l at pH 7.6, purification by salt precipitation to a final concentration of 0.1 mol / l and removing the precipitate by centrifugation, gel filtering the enzyme on a column of acrylex P-15, using phosphate buffer A, activating chitosan with a 25% solution of glutaraldehyde for 5-6 hours, followed by immobilization of the purified proteolytic enzyme Protosubtilin GZH on activated chitosan at a temperature of 6-8 ° C for 18 hours, sequentially washing the resulting substance with water, a Tris-HCl solution at a concentration of 0.1 mol / l at pH 7.6, a sodium phosphate solution at a concentration of 0.5 mol / l at pH 7.4 and suspension substances in a Tris-HCl solution at a concentration of 0.01 mol / L at a pH of 7.4 containing 0.9% NaCl.
Пример 2. Композиция для лечения гнойно-некротических ран в виде мази с минимальным содержанием компонентов (масс. %):Example 2. Composition for the treatment of purulent-necrotic wounds in the form of an ointment with a minimum content of components (wt.%):
Пример 3. Композиция «ПРОТОЗАН» в виде мази для лечения гнойно-некротических ран (масс. %):Example 3. The composition "PROTOSAN" in the form of an ointment for the treatment of purulent-necrotic wounds (wt.%):
Для получения субстанции по примеру 1 и композиции по примерам 2 и 3 использовали препараты: «Протосубтилин ГЗХ», ТУ 9291-029-13684916-2010 («Сиббиофарм», Россия), хитозан («Апифарм», Россия). (Можно использовать хитозан от компании ЗАО Биопрогресс, Щелково, Россия). Активность нейтральной протеазы определяли по методу Ансона в модификации (Грачева И.М., Грачев Ю.П., Мосичев М.С. и др. Лабораторный практикум по технологии ферментных препаратов. - М.: Легкая и пищевая пром-сть (1982). СС. 36-41) [10]. Степень деацетилирования хитозана определяли методом потенциометрического титрования (Кучина Ю.А., Долгопятова Н.В., Новиков В.Ю., Сагайдачный В.А., Морозов Н.Н. Инструментальные методы определения степени деацетилирования хитина//Вестник МГТУ, т. 15, №1, 107-113 (2012)) [11]. Использовали акрилекс Р-15, («Реанал», Венгрия); реактивы (глутаровый альдегид, бензохинон, соли) квалификации «х.ч.».To obtain the substance according to example 1 and the composition according to examples 2 and 3, the following preparations were used: Protosubtilin GZH, TU 9291-029-13684916-2010 (Sibbiopharm, Russia), chitosan (Apifarm, Russia). (You can use chitosan from the company Bioprogress CJSC, Schelkovo, Russia). Neutral protease activity was determined by the Anson method in modification (Gracheva I.M., Grachev Yu.P., Mosichev M.S. et al. Laboratory workshop on the technology of enzyme preparations. - M .: Light and food industry (1982) . SS. 36-41) [10]. The degree of chitosan deacetylation was determined by potentiometric titration (Kuchina Yu.A., Dolgopyatova N.V., Novikov V.Yu., Sagaidachny V.A., Morozov N.N. Instrumental methods for determining the degree of chitin deacetylation // Vestnik MGTU, t. 15, No. 1, 107-113 (2012)) [11]. Used acrylic P-15, ("Reanal", Hungary); reagents (glutaraldehyde, benzoquinone, salts) of the chemically pure grade.
Пример 4. Подготовка ферментного препарата для иммобилизации.Example 4. Preparation of an enzyme preparation for immobilization.
Для очистки ферментов по 5 г порошка «Протосубтилин ГЗХ» суспендировали в 15 мл натрий-фосфатного буфера А (0,1 Моль/л; рН 7,6). Не растворившиеся компоненты удаляли центрифугированием (8000g, 20 мин). Добавляли 1 мл раствора хлорида кальция до конечной концентрации 0,1 Моль/л, перемешивали 20 мин и образовавшийся осадок удаляли центрифугированием. Для удаления из раствора низкомолекулярных окрашенных компонентов и солей проводили гель-фильтрацию на колонке (55 мл) с акрилексом Р-15, используя буфер А. В результате получали 20-22 мл комплекса протеолитических ферментов, содержащих 125-135 мг белка и активностью нейтральной протеазы 480-520 ед.акт. (24-26 ед.акт./мл), (3,85 ед.акт/мг белка против 2 ед.акт./мг в прототипе (Патент РФ 686377 [8]).To clean the enzymes, 5 g of Protosubtilin GZH powder were suspended in 15 ml of sodium phosphate buffer A (0.1 mol / L; pH 7.6). Insoluble components were removed by centrifugation (8000g, 20 min). Added 1 ml of a solution of calcium chloride to a final concentration of 0.1 mol / L, stirred for 20 minutes and the resulting precipitate was removed by centrifugation. To remove low molecular weight colored components and salts from the solution, gel filtration was performed on a column (55 ml) with P-15 acrylex using buffer A. As a result, 20-22 ml of a complex of proteolytic enzymes containing 125-135 mg of protein and neutral protease activity were obtained 480-520 units (24-26 units act./ml), (3.85 units act./mg protein versus 2 units act./mg in the prototype (RF Patent 686377 [8]).
На фиг. 1 приведена электрофореграмма комплекса протеолитических ферментов. Электрофорез в 12% ПААГ в денатурирующих условиях, окрашивание Кумасси R-250. Где:In FIG. 1 shows the electrophoregram of a complex of proteolytic enzymes. Electrophoresis in 12% SDS page under denaturing conditions, Coomassie R-250 staining. Where:
К - комплекс протеолитических ферментов;K - a complex of proteolytic enzymes;
М - маркеры молекулярных масс (20-150 кДа).M - molecular weight markers (20-150 kDa).
Пример 5. Активация носителя. Для сравнительного эксперимента по 3 г порошка хитозана помещали в воду, затем на стеклянных фильтрах промывали буфером Б (0,2 Моль/л; рН 7,8). Каждый образец суспендировали в 20 мл буфера Б.Example 5. Activation of the media. For a comparative experiment, 3 g of chitosan powder was placed in water, then washed on glass filters with buffer B (0.2 mol / L; pH 7.8). Each sample was suspended in 20 ml of buffer B.
К первой порции добавляли 1 мл, ко второй - 4 мл 25%-ного раствора глутарового альдегида (2,5 и 10 мМ) и перемешивали 5-6 ч при комнатной температуре. После этого образцы активированного хитозана промывали буфером Б на стеклянных фильтрах.1 ml was added to the first portion, 4 ml of a 25% solution of glutaraldehyde (2.5 and 10 mM) was added to the second portion and stirred for 5-6 hours at room temperature. After that, samples of activated chitosan were washed with buffer B on glass filters.
Пример 6. Иммобилизация ферментного комплекса. Каждую порцию активированного носителя вносили в 10 мл раствора фермента (по 250 ед. акт. нейтральной протеазы). Инкубацию проводили 18 ч при перемешивании и температуре 6-8°С. Затем полученные иммобилизованные препараты последовательно промывали водой, раствором Трис-НС1 (0,1 Моль/л, рН 7,6), раствором натрий-фосфата (0,5 Моль/л; рН 7,4).и суспендировали в растворе Трис-HCl (0,01 Моль/л, рН 7,4), содержащем 0,9%-ный NaCl.Example 6. Immobilization of the enzyme complex. Each portion of the activated carrier was introduced into 10 ml of an enzyme solution (250 units of act. Neutral protease). Incubation was carried out for 18 hours with stirring at a temperature of 6-8 ° C. Then, the obtained immobilized preparations were washed successively with water, Tris-HC1 solution (0.1 mol / l, pH 7.6), sodium phosphate solution (0.5 mol / l; pH 7.4). And suspended in Tris-solution HCl (0.01 mol / L, pH 7.4) containing 0.9% NaCl.
Пример 7. Анализ полученных образцов по активностиExample 7. Analysis of the obtained samples by activity
Полученные образцы иммобилизованных ферментов оценивались по массе и активности нейтральной протеазы.The obtained samples of immobilized enzymes were evaluated by the mass and activity of a neutral protease.
Результаты представлены в таблице 1. Из данных таблицы 1 видно, что при соотношении глутарового альдегида 10 мМ на 15 мМ деацетилированных групп хитозана белок практически полностью переходил в иммобилизованное состояние и удельная активность нейтральной протеазы отмечалась до 17 ед. акт./г влажной массы, что соответствует 57 ед. акт./г сухой массы против 32-40 ед. акт./г в прототипе (Патент РФ 686377, кл. А61K 37/48 [8]). При этом активность иммобилизованного фермента сохранялась до 70% (170 от исходных 250 ед. акт.). Препарат, полученный активацией при соотношении глутарового альдегида 10 мМ на 15 мМ деацетилированных групп хитозана, был назван «Протозан».The results are presented in table 1. From the data of table 1 it is seen that at a ratio of glutaraldehyde of 10 mM per 15 mM of deacetylated chitosan groups, the protein almost completely immobilized and the specific activity of the neutral protease was observed up to 17 units. act./g wet mass, which corresponds to 57 units. act. / g dry weight against 32-40 units. act. / g in the prototype (RF Patent 686377, class A61K 37/48 [8]). At the same time, the activity of the immobilized enzyme remained up to 70% (170 from the initial 250 units of act.). The preparation obtained by activation at a glutaraldehyde ratio of 10 mM per 15 mM of deacetylated chitosan groups was called “Protosan”.
После хранения при плюс 37°С в течение 7 суток препараты сохраняли свою активность до 90%.After storage at plus 37 ° C for 7 days, the preparations retained their activity up to 90%.
Пример 8. Получение иммобилизованных протеаз на активированном хитозане в количестве 30г для последующего получения мазевой формыExample 8. Obtaining immobilized proteases on activated chitosan in an amount of 30 g for the subsequent preparation of an ointment form
7,5 г порошка «Протосубтилин ГЗХ» суспендировали в 22 мл натрий-фосфатного буфера А (0,1 Моль/л; рН 7,6). Нерастворившиеся компоненты удаляли центрифугированием (8000g, 20 мин). Добавляли 1,5 мл раствора хлорида кальция до конечной концентрации 0,1 Моль/л, перемешивали 20 мин и образовавшийся осадок удаляли центрифугированием. Для удаления из раствора низкомолекулярных окрашенных компонентов и солей проводили гель-фильтрацию на колонке (75 мл) с акрилексом Р-15, используя буфер А. В результате получали 30-32 мл комплекса протеолитических ферментов, содержащих 370-400 мг белка и активностью нейтральной протеазы 740-800 ед. акт.7.5 g of Protosubtilin GX powder was suspended in 22 ml of sodium phosphate buffer A (0.1 mol / L; pH 7.6). Insoluble components were removed by centrifugation (8000g, 20 min). Added 1.5 ml of a solution of calcium chloride to a final concentration of 0.1 mol / L, stirred for 20 minutes and the resulting precipitate was removed by centrifugation. To remove low molecular weight colored components and salts from the solution, gel filtration was performed on a column (75 ml) with P-15 acrylex using buffer A. The result was 30-32 ml of a complex of proteolytic enzymes containing 370-400 mg of protein and neutral protease activity 740-800 units Act.
9 г порошка хитозана помещали в воду, затем на стеклянных фильтрах промывали буфером Б (0,2 Моль/л; рН 7,8). Образец суспендировали в 60 мл буфера Б.9 g of chitosan powder was placed in water, then washed with buffer B on glass filters (0.2 mol / L; pH 7.8). The sample was suspended in 60 ml of buffer B.
Добавляли 12 мл 25%-ного раствора глутарового альдегида (10 мМ) и перемешивали 5-6 ч при комнатной температуре. После этого образец активированного хитозана промывали буфером Б на стеклянных фильтрах.12 ml of a 25% glutaraldehyde solution (10 mM) were added and stirred for 5-6 hours at room temperature. After that, a sample of activated chitosan was washed with buffer B on glass filters.
Активированный носитель вносили в 30 мл раствора фермента. Инкубацию проводили 18 ч при перемешивании и температуре 6-8°С. Затем полученный иммобилизованный препарат последовательно промывали водой, раствором Трис-HCl (0,1 Моль/л, рН 7,6), раствором натрий-фосфата (0,5 Моль/л; рН 7,4). и суспендировали в растворе Трис-HCl (0,01 Моль/л, рН 7,4), содержащем 0,9%-ный NaCl.The activated carrier was added to 30 ml of the enzyme solution. Incubation was carried out for 18 hours with stirring at a temperature of 6-8 ° C. Then the obtained immobilized preparation was washed successively with water, Tris-HCl solution (0.1 mol / l, pH 7.6), sodium phosphate solution (0.5 mol / l; pH 7.4). and suspended in a Tris-HCl solution (0.01 mol / L, pH 7.4) containing 0.9% NaCl.
Получали 30 г влажного препарата с активностью 17-19 ед. акт./г влажной массыReceived 30 g of a wet preparation with an activity of 17-19 units. act./g wet weight
Пример 9. Получение мазевой формы препарата иммобилизованных протеаз «Протозан-мазь»Example 9. Obtaining the ointment form of the drug immobilized proteases "Protosan ointment"
Для получения мазевой формы препарата «Протозан-мазь» использовали компоненты в соотношениях, представленных в таблице 2.To obtain the ointment form of the drug "Protozan-ointment" used the components in the ratios shown in table 2.
Масло вазелиновое, эмульгатор Т-2 и Твин - 20 смешивали при плюс 50-55°С до однородной суспензии, охлаждали до 35-40°С и в нее вносили при интенсивном перемешивании комплекс иммобилизованных протеаз в растворе хлоргексидина. Продолжали перемешивание до полной гомогенности мази, 20-30 мин. Мазь расфасовывали по 10 г в пластиковые флаконы или гриппер - пакеты с защелками типа zip-lock.Vaseline oil, emulsifier T-2 and Tween-20 were mixed at plus 50-55 ° С until a homogeneous suspension was cooled to 35-40 ° С and a complex of immobilized proteases in chlorhexidine solution was added to it with vigorous stirring. Stirring was continued until the ointment was completely homogeneous, 20-30 minutes. Ointment was packaged in 10 g in plastic bottles or gripper - packages with zip-lock latches.
Разработанная мазевая форма имела более плотную консистенцию, чем приготовленная на растворе полиэтиленгликоля с глицерином (прототип патент РФ №2150936, [9]) и не растекалась по поверхности. Она была названа «Протозан-мазь».The developed ointment form had a denser consistency than that prepared on a solution of polyethylene glycol with glycerol (prototype RF patent No. 2150936, [9]) and did not spread over the surface. It was called Protozan Ointment.
Пример 10. Изучение ранозаживляющего действия комплексов исследовали на модели термического ожога. В эксперименте использовали крыс самцов линии Вистар массой 250-300 г по 6 животных в группе. На выстриженном участке спины размером 3×3 см2 под барбамиловым наркозом (50 мг/кг, внутрибрюшинно) у животных вызывали термический ожог. Для этого использовали прибор с установленной температурной шкалой и электропаяльником, на конце которого закреплена металлическая пластина размером 1,0×1,5 см2. Размер пластины был выбран таким, чтобы получить площадь ожоговой поверхности, сравнимой с аналогичной в прототипе (патент №2150936, [9]). Время экспозиции нагретой до 190-200°С контактной пластинки составляло 10 секунд.Example 10. The study of the wound healing effect of the complexes was investigated on a thermal burn model. The experiment used rats of males of the Wistar strain weighing 250-300 g of 6 animals in the group. On a clipped back section of 3 × 3 cm 2 under barbamyl anesthesia (50 mg / kg, ip), the animals were thermally burned. For this, a device with an established temperature scale and an electric soldering iron was used, at the end of which a metal plate with a size of 1.0 × 1.5 cm 2 was fixed. The plate size was chosen so as to obtain a burn surface area comparable to that in the prototype (patent No. 2150936, [9]). The exposure time of a contact plate heated to 190-200 ° C was 10 seconds.
Опытных животных распределяли на 4 группы. Крысам первой опытной группы ожоговую рану лечили ежедневными аппликациями суспензии «Протозан», крысам второй - аппликациями мазевой формой «Протозан-мазь», крысам третьей группы - аппликациями суспензии хитозана (без иммобилизованного комплекса протеаз), крысам четвертой группы - аппликациями основы мази. Образцы наносили из расчета 1 г/5 см2 поверхности раны. Состояние раны регистрировали, проводя измерение ее площади, прикладывая к ране прозрачный трафарет. Скорость заживления раны (СЗР) или индекс Поповой, выраженный в процентах, рассчитывали по формуле:Experimental animals were divided into 4 groups. In rats of the first experimental group, the burn wound was treated with daily applications of the Protosan suspension, rats in the second with applications of the Protozan-Ointment ointment, rats in the third group with applications of a suspension of chitosan (without an immobilized protease complex), and rats in the fourth group with applications of the ointment base. Samples were applied at a rate of 1 g / 5 cm 2 of the surface of the wound. The condition of the wound was recorded by measuring its area, applying a transparent stencil to the wound. The rate of wound healing (SZR) or Popova index, expressed as a percentage, was calculated by the formula:
СЗР=(S-Sn)×100/S×t,SZR = (S-Sn) × 100 / S × t,
где S - величина площади раны при предшествующем измерении, Sn - величина площади раны в настоящий момент, t - число дней между первым и последующим измерением (Рациональная антимикробная фармакотерапия: Руководство для практикующих врачей/ Под ред. В.П. Яковлева, С.В. Яковлева. - М., 2003) [12]. Общее состояние животных оценивали на основании поведенческих реакций, аппетита и массы тела. Результаты представлены в таблице 3.where S is the value of the area of the wound in the previous measurement, Sn is the value of the area of the wound at the moment, t is the number of days between the first and subsequent measurement (Rational Antimicrobial Pharmacotherapy: A Guide for Practitioners / Edited by V.P. Yakovlev, S.V. Yakovleva. - M., 2003) [12]. The general condition of the animals was evaluated based on behavioral responses, appetite, and body weight. The results are presented in table 3.
Для сравнения были вычислены скорости заживления ран (СЗР) в прототипе (патент №2150936, [9]) и результаты представлены в таблице 4.For comparison, the speed of wound healing (SZR) in the prototype (patent No. 2150936, [9]) was calculated and the results are presented in table 4.
Из представленных результатов (таблицы 3 и 4) видно, что скорость заживления раны (СЗР) у животных, леченных комплексом протеазы, иммобилизованной на хитозане «протозан», достоверно отличается от результатов группы прототипа, леченных суспензией «профезим» (первые колонки таблицы). Скорость заживления раны (СЗР) у животных, леченных мазевой формой «протозан-мазь» также достоверно отличается от результатов группы прототипа, леченных 20%-й мазью «профезим» (вторые колонки таблицы). Это свидетельствует о более выраженном репаративном действии комплекса протеаз, иммобилизованных на хитозане. Полное заживление ран у животных экспериментальной группы («протозан-мазь») завершилось на 10-е сутки опыта, тогда как у животных экспериментальной группы прототипа (20%-я мазь «профезим») - на 11-е сутки. Из таблицы 4 видно, что при использовании для лечения ран матрицы - хитозана скорость заживления достоверно отличалась от результатов контрольной группы. Полное заживление ран у животных контрольной группы завершилось на 17-18-е сутки опыта с образованием грубого рубца, который рассасывался медленнее (5-6 дней), чем в опытных группах (1-3 дня). Оба комплекса («протозан» и «протозан-мазь») не вызывали изменений двигательных реакций крыс, не оказывали токсического действия на организм животных в период наблюдения.From the presented results (tables 3 and 4) it can be seen that the rate of wound healing (SZR) in animals treated with the protease complex immobilized on protozan chitosan significantly differs from the results of the prototype group treated with the “profesim” suspension (first columns of the table). The rate of wound healing (SZR) in animals treated with the ointment form of "protosan ointment" also significantly differs from the results of the prototype group treated with 20% ointment "profesim" (second column of the table). This indicates a more pronounced reparative effect of the complex of proteases immobilized on chitosan. Complete healing of wounds in animals of the experimental group (“protosan ointment”) was completed on the 10th day of the experiment, while in animals of the experimental group of the prototype (20% ointment “profesim”) - on the 11th day. From table 4 it is seen that when using the matrix - chitosan for the treatment of wounds, the healing rate was significantly different from the results of the control group. Complete healing of wounds in animals of the control group was completed on the 17-18th day of the experiment with the formation of a rough scar, which absorbed more slowly (5-6 days) than in the experimental groups (1-3 days). Both complexes (“protozan” and “protozan-ointment”) did not cause changes in the motor reactions of rats, did not have a toxic effect on the animal organism during the observation period.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016130510A RU2630668C1 (en) | 2016-07-25 | 2016-07-25 | Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016130510A RU2630668C1 (en) | 2016-07-25 | 2016-07-25 | Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2630668C1 true RU2630668C1 (en) | 2017-09-11 |
Family
ID=59893830
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016130510A RU2630668C1 (en) | 2016-07-25 | 2016-07-25 | Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2630668C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4613502A (en) * | 1983-12-08 | 1986-09-23 | Ceskoslovenska Akademie Ved | Proteolytic, dry biopolymeric composition for treatment of wounds, and method of using same |
WO1993020838A1 (en) * | 1992-04-20 | 1993-10-28 | Rufeld, Inc. | Method and compositions for treatment of pyonecrotic processes |
RU2213557C2 (en) * | 2001-12-26 | 2003-10-10 | Закрытое акционерное общество "Аксис" | Pharmaceutical composition eliciting thrombolytic, anti-inflammatory and cytoprotective properties |
-
2016
- 2016-07-25 RU RU2016130510A patent/RU2630668C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4613502A (en) * | 1983-12-08 | 1986-09-23 | Ceskoslovenska Akademie Ved | Proteolytic, dry biopolymeric composition for treatment of wounds, and method of using same |
WO1993020838A1 (en) * | 1992-04-20 | 1993-10-28 | Rufeld, Inc. | Method and compositions for treatment of pyonecrotic processes |
RU2213557C2 (en) * | 2001-12-26 | 2003-10-10 | Закрытое акционерное общество "Аксис" | Pharmaceutical composition eliciting thrombolytic, anti-inflammatory and cytoprotective properties |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU691322B2 (en) | Wound healing agent | |
CA2587951C (en) | Debriding composition from bromelain and methods of production thereof | |
KR101374448B1 (en) | Medical composition for promotion of skin regeneration | |
CN103356692A (en) | Composite antibacterial gel and preparation method thereof | |
ITMI20090831A1 (en) | EXTRACELLULAR IALURONIDASE FROM STREPTOMYCES KOGANEIENSIS | |
FR2517315A1 (en) | PROCESS FOR THE PREPARATION OF NEW FORMS OF COLLAGEN, NATIVE OR DERETICULATE, HAVING A PRESERVED HELICOIDAL STRUCTURE, ASSOCIATED WITH MUCOPOLYSACCHARIDES AND THEIR APPLICATIONS IN PARTICULAR IN THE COSMETOLOGICAL, PHARMACEUTICAL, ANALYTICAL AND OTHER FIELDS | |
DE1908290A1 (en) | Copolymer that can be used to fix proteins | |
CN1997408A (en) | Wound care products containing keratin | |
DE19903655A1 (en) | Hydrogel comprising protein or enzyme bonded to PEG via urea groups, useful as a dressing for wounds and burns | |
RU2630668C1 (en) | Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds | |
Ramos et al. | Wound healing modulation by a latex protein-containing polyvinyl alcohol biomembrane | |
CN103819685A (en) | Fish scale collagen grafted chitosan as well as preparation method and application thereof | |
JP2023526077A (en) | Low endotoxin gelatin-(meth)acryloyl | |
RU2646804C1 (en) | Ophthalmic agent for regeneration of cornea of the eye | |
KR101639105B1 (en) | Hyaluronic acid purification method and production method | |
JP5328077B2 (en) | Method for producing low endotoxinized gelatin | |
CN116850086A (en) | Epicatechin hydrogel and preparation method and application thereof | |
EP1025860B1 (en) | Protein-containing hydrogels | |
EP3053586B1 (en) | Anti-inflammatory composition for aiding and promoting the healing of chronic ulcerative lesions | |
KR102240111B1 (en) | Cosmetic composition for moisturizing skin and improving skin wrinkles containing nano collagen peptide chelate mineral | |
JP6496484B2 (en) | Wound healing agent | |
CN107693842B (en) | Medical water-resistant gel and preparation method thereof | |
RU2769243C1 (en) | Method for producing heterogeneous enzyme preparation based on ficin and low-molecular chitosan | |
CA2096690A1 (en) | Hydrophilic creams for delivery of therapeutic agents | |
RU2137835C1 (en) | Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation |