RU2137835C1 - Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation - Google Patents
Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation Download PDFInfo
- Publication number
- RU2137835C1 RU2137835C1 RU98120178A RU98120178A RU2137835C1 RU 2137835 C1 RU2137835 C1 RU 2137835C1 RU 98120178 A RU98120178 A RU 98120178A RU 98120178 A RU98120178 A RU 98120178A RU 2137835 C1 RU2137835 C1 RU 2137835C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- enzyme
- carrier
- polyethylene oxide
- reaction mixture
- peo
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способу иммобилизации протеолитических ферментов, и может найти применение в медицине и ветеринарии при получении препаратов иммобилизованных ферментов. The invention relates to biotechnology, in particular to a method for immobilizing proteolytic enzymes, and may find application in medicine and veterinary medicine in the preparation of preparations of immobilized enzymes.
Известны различные способы иммобилизации ферментов на носителях. Various methods for immobilizing enzymes on carriers are known.
Известны способы иммобилизации путем адсорбции фермента на носителях с высокоразвитой поверхностью, а также путем включения фермента в различные гелевые структуры (Иммобилизованные ферменты. Под. ред. И.В. Березина. T.1, М., Изд-во МГУ, 1976, с. 79-140). Known methods of immobilization by adsorption of the enzyme on carriers with a highly developed surface, as well as by incorporating the enzyme into various gel structures (Immobilized Enzymes. Ed. By IV Berezin. T.1, M., Moscow State University Publishing House, 1976, p. 79-140).
Недостатком таких способов является малая прочность связи фермента с носителем, в результате чего фермент в процессе эксплуатации может диффундировать с носителя в раствор. The disadvantage of these methods is the low bond strength of the enzyme with the carrier, as a result of which the enzyme can diffuse from the carrier into the solution during operation.
Известны также способы иммобилизации, заключающиеся в ковалентном связывании фермента с предварительно активированным носителем. Активация носителя необходима для создания на нем функциональных групп, способных взаимодействовать с молекулами фермента. Immobilization methods are also known, which consist in covalently binding an enzyme to a preactivated carrier. Activation of the carrier is necessary to create functional groups on it that can interact with enzyme molecules.
Известен, например, способ получения иммобилизованного протеолитического комплекса, включающий растворение содержащего альдегидные группы носителя в буферном растворе и последующее присоединение протеолитического комплекса, полученного из Aspergillus oryzae KC. В качестве носителя используют ксилоуронид, растворенный в 0,1 М трис-оксиметиламинометановом буфере pH 8,05, а присоединение фермента осуществляют при соотношении носитель-фермент 1:1 - 3 (а.с. N 1041567, кл. C 12 N 11/10, опубл. 15.09.83. Бюл. N34). A method is known, for example, for producing an immobilized proteolytic complex, comprising dissolving an aldehyde-containing carrier in a buffer solution and then attaching a proteolytic complex obtained from Aspergillus oryzae KC. As the carrier, xyluronide is used, dissolved in 0.1 M Tris-hydroxymethylaminomethane methanol buffer pH 8.05, and the enzyme is attached at a carrier-enzyme ratio of 1: 1 - 3 (A.S. N 1041567, class C 12
Недостатки известного способа - дефицитный и дорогостоящий носитель - ксилоуронид, низкая стабильность целевого продукта, необходимость хранения препарата в условиях холодильника при 0-4oC.The disadvantages of this method is a scarce and expensive carrier - xyluronide, low stability of the target product, the need to store the drug in a refrigerator at 0-4 o C.
Известен также способ получения водорастворимого иммобилизованного ферментного препарата (ИФП), включающий следующие последовательные стадии (а.с. N 730694, кл. C 08 B 37/02, опубл. 30.04.80, Бюл. N16):
1. Активирование носителя - декстрана с мол. массой 20 кДа, в реакции периодатного окисления (степень окисления носителя γ = 6-48%).There is also known a method of obtaining a water-soluble immobilized enzyme preparation (IFP), which includes the following successive stages (and.with. N 730694, class C 08 B 37/02, publ. 30.04.80, Bull. N16):
1. Activation of the carrier - dextran with a pier. mass of 20 kDa, in the reaction of periodic oxidation (oxidation state of the carrier γ = 6-48%).
2. Приготовление реакционной смеси: окисленный декстран растворяют в воде до концентрации 50 мг/мл и смешивают с раствором фермента - террилитина, в 0,1 М боратном буфере pH 8,5. 2. Preparation of the reaction mixture: oxidized dextran is dissolved in water to a concentration of 50 mg / ml and mixed with a solution of the terrilithin enzyme in 0.1 M borate buffer pH 8.5.
3. Иммобилизация фермента: реакционную смесь перемешивают в течение 2 часов при 21±1oC, затем добавляют 0,1 М раствор боратного буфера, содержащего боргидрид натрия и перемешивают еще в течение 40 мин.3. Enzyme immobilization: the reaction mixture is stirred for 2 hours at 21 ± 1 ° C, then a 0.1 M solution of borate buffer containing sodium borohydride is added and stirred for another 40 minutes.
4. Обессоливание ИФП: путем диализа на холоде (4±2oC) против дистиллированной воды в течение 48 часов.4. Desalting IFP: by dialysis in the cold (4 ± 2 o C) against distilled water for 48 hours.
5. Отделение избытка несвязавшегося фермента гель-фильтрацией. 5. Separation of excess unbound enzyme by gel filtration.
6. Лиофильное высушивание. 6. Freeze drying.
Получают препарат с удельной активностью 7,4 ПЕ/мг. Get the drug with a specific activity of 7.4 PE / mg.
Недостатками известного способа являются - сложность процесса (длительный процесс активирования носителя, значительные затраты времени, энергетических ресурсов и сырья). The disadvantages of this method are the complexity of the process (a long process of activating the media, a significant investment of time, energy and raw materials).
- низкое качество целевого продукта. - low quality of the target product.
Ближайшим к заявляемому способу - прототипом является способ получения иммобилизованного протеолитического комплекса, заключающийся в следующем (а. с. N 1442548, кл. C 12 N 11/00, опубл. 07.12.88, Бюл. N45):
1. Протосубтилин Г10Х, представляющий собой комплекс бактериальных нейтральных и щелочных протеаз из Вас. subtilis, растворяют в 0,05 М боратном буфере pH 8,4 при 2-4oC в течение 30 мин, а нерастворившийся осадок отделяют центрифугированием при 7000 g в течение 30 мин. К полученному супернатанту добавляют 10%-ный водный раствор полиэтиленоксида с мол. массой 600 - 2000 Да, преимущественно 1500 Да, в соотношении носитель - протосубтилин 1: (7,5-8,5). Смесь фермента с носителем облучают тормозным γ - излучением в дозе 2,3 - 2,7 Мрад. При этом получают водорастворимый иммобилизованный ферментный препарат с протеолитической активностью 80 - 120 ПЕ/мл. Препарат представляет собой прозрачную жидкость желтоватого цвета, которую хранят при 4 - 8oC.Closest to the claimed method, the prototype is a method of obtaining an immobilized proteolytic complex, which consists in the following (a.p. N 1442548, class C 12
1. Protosubtilin G10X, which is a complex of bacterial neutral and alkaline proteases from you. subtilis, dissolved in 0.05 M borate buffer pH 8.4 at 2-4 o C for 30 minutes, and the insoluble precipitate was separated by centrifugation at 7000 g for 30 minutes To the obtained supernatant add a 10% aqueous solution of polyethylene oxide per mol. weighing 600 - 2000 Yes, mainly 1500 Yes, in the ratio of the carrier - protosubtilin 1: (7.5-8.5). A mixture of the enzyme with the carrier is irradiated with inhibitory γ - radiation in a dose of 2.3 - 2.7 Mrad. A water-soluble immobilized enzyme preparation with a proteolytic activity of 80-120 PE / ml is obtained. The drug is a clear yellowish liquid, which is stored at 4 - 8 o C.
Недостатками известного способа являются:
- недостаточно высокое качество целевого продукта;
- низкая стабильность препарата при хранении (через две недели хранения при комнатной температуре препарат теряет 80% активности).The disadvantages of this method are:
- insufficiently high quality of the target product;
- low stability of the drug during storage (after two weeks of storage at room temperature, the drug loses 80% activity).
Известно, что водные растворы иммобилизованных ферментных препаратов (ИФП) нестабильны в процессе хранения, поэтому задача получения высокостабильных лекарственных форм ИФП является актуальной. It is known that aqueous solutions of immobilized enzyme preparations (IFP) are unstable during storage, so the task of obtaining highly stable dosage forms of IPP is relevant.
Технической задачей изобретения является повышение стабильности целевого продукта. An object of the invention is to increase the stability of the target product.
Поставленная задача достигается предлагаемым способом, заключающимся в следующем. The problem is achieved by the proposed method, which consists in the following.
Готовят реакционную смесь путем растворения протеолитического фермента (ПФ), преимущественно протосубтилина ГЗХ, в Na-фосфатном буферном растворе (pH 7,2 - 8,2) полиэтиленоксида (ПЭО) с мол. массой 1500 - 4000 Да при соотношении фермент: носитель 1:(2-6). Полученную смесь очищают путем солевого осаждения балластных белков и удаления последних фильтрованием. Фильтрат подвергают облучению тормозным γ-излучением в дозе 0,9 - 1,1 Мрад. К полученному иммобилизованному на ПЭО протеолитическому ферменту добавляют ПЭО с мол. массой 4000 Да в количестве 50-300 мг/мл, раствор подвергают стерилизующей фильтрации, фасуют во флаконы вместимостью 10 см3 по 1,2 и 5 мл и лиофильно высушивают.The reaction mixture is prepared by dissolving a proteolytic enzyme (PF), mainly GZH protosubtilin, in a Na-phosphate buffer solution (pH 7.2 - 8.2) of polyethylene oxide (PEO) with a mol. mass of 1500 - 4000 Yes, with the ratio of enzyme: carrier 1: (2-6). The resulting mixture was purified by salt precipitation of ballast proteins and removing the latter by filtration. The filtrate is subjected to irradiation with bremsstrahlung γ-radiation in a dose of 0.9 - 1.1 Mrad. To the obtained proteolytic enzyme immobilized on PEO, PEO with mol. weighing 4000 Da in an amount of 50-300 mg / ml, the solution is subjected to sterilizing filtration, Packed in bottles with a capacity of 10 cm 3 of 1.2 and 5 ml and freeze-dried.
В результате получают препарат с активностью 460 ПЕ во флаконе (коммерческое название "Имозимаза аморфная"), представляющий собой таблеткообразную пористую массу, от белого до белого с кремовым оттенком цвета, хорошо растворимую в воде. Срок хранения препарата при температуре до 20oC составляет 2 года.The result is a preparation with an activity of 460 PE in a vial (commercial name "Imosimase amorphous"), which is a tablet-like porous mass, white to white with a cream tint, readily soluble in water. The shelf life of the drug at temperatures up to 20 o C is 2 years.
Получаемый заявляемым способом ИФП может быть применен в любой области медицины и ветеринарии для лечения различных заболеваний, где необходим ферментативный гидролиз белков некротических тканей и гнойных масс. Obtained by the claimed method, IFP can be used in any field of medicine and veterinary medicine for the treatment of various diseases where enzymatic hydrolysis of proteins of necrotic tissues and purulent masses is necessary.
Определяющими существенными отличиями заявляемого способа от прототипа являются:
1. Ковалентное связывание фермента с носителем осуществляют при экспериментально подобранном, оптимальном соотношении фермент:носитель, равном 1: (2-6), что позволяет повысить качество и стабильность целевого продукта, так как при соотношении фермент - носитель менее 1: 2 не достигается устойчивой стабилизации, а при соотношении более 1: 6 происходит частичное осаждение ферментативного белка носителем.The determining significant differences of the proposed method from the prototype are:
1. Covalent binding of the enzyme to the carrier is carried out at an experimentally selected, optimal ratio of enzyme: carrier equal to 1: (2-6), which improves the quality and stability of the target product, since when the ratio of the enzyme-carrier less than 1: 2 is not achieved stable stabilization, and with a ratio of more than 1: 6, a partial precipitation of the enzymatic protein by the carrier occurs.
2. Перед иммобилизацией проводят очистку ферментного препарата от балластных белков путем последовательного добавления в реакционную смесь фосфорнокислого натрия и хлористого кальция. В результате реакции
происходит коагуляция и осаждение балластных белков, чему способствует выпадающий в осадок фосфат кальция. Данная стадия позволяет простым способом (без использования центрифугирования) обеспечить освобождение от балласта, что способствует повышению качества целевого продукта и снижению дозы тормозного γ-излучения в 2-3 раза по сравнению с прототипом (с 2,3 - 2,7 до 0,9 - 1,1 Мрад).2. Before immobilization, the enzyme preparation is purified from ballast proteins by successive addition of sodium phosphate and calcium chloride to the reaction mixture. As a result of the reaction
coagulation and precipitation of ballast proteins occurs, which is facilitated by precipitated calcium phosphate. This stage allows a simple method (without the use of centrifugation) to ensure release from ballast, which improves the quality of the target product and reduces the dose of bremsstrahlung γ-radiation by 2-3 times compared with the prototype (from 2.3 - 2.7 to 0.9 - 1.1 Mrad).
Перед лиофилизацией в ИФП вводят целевую добавку (наполнитель), в качестве которой используют ПЭО с мол.массой 4000 Да в количестве 50 - 300 мг/мл, что позволяет предохранить ИФП от потери активности при лиофильном высушивании, а также повысить стабильность препарата при хранении. Неожиданно оказалось, что именно данный синтетический полимер - ПЭО с мол. массой 4000 Да в концентрации от 50 до 300 мг/мл является оптимальным наполнителем для получения лекарственной формы ИПФ, так как он одновременно выполняет функцию и стабилизатора и структурообразователя, позволяющего получить после лиофилизации таблеткообразную пористую плотную массу препарата. Использование ПЭО-4000 в качестве наполнителя вызвано также его доступностью (выпускается отечественной промышленностью), разрешенностью использования в медицине и приемлемой ценой. Before lyophilization, the target additive (filler) is introduced into the IFP, which is used as a PEO with a molar mass of 4000 Da in an amount of 50 - 300 mg / ml, which helps protect the IFP from loss of activity during freeze drying, as well as increase the stability of the drug during storage. Unexpectedly, it turned out that this particular synthetic polymer - PEO with mol. weighing 4000 Da in a concentration of 50 to 300 mg / ml is the optimal filler for the preparation of the IPF dosage form, since it simultaneously serves as both a stabilizer and a structurant, which makes it possible to obtain a tablet-like porous dense mass of the preparation after lyophilization. The use of PEO-4000 as a filler is also caused by its availability (produced by the domestic industry), permission to use in medicine and reasonable price.
В таблице 1 представлены данные по влиянию добавок ПЭО-4000 на качество целевого продукта (формирование таблетки). Table 1 presents data on the effect of PEO-4000 additives on the quality of the target product (tablet formation).
Из таблицы 1 видно, что добавление к ИПФ ПЭО-4000 в количестве 50 - 300 мг/мл, преимущественно 50 - 100 мг/мл, обеспечивает формирование таблеткообразной плотной массы препарата. From table 1 it can be seen that the addition of PEO-4000 to IPF in an amount of 50-300 mg / ml, mainly 50-100 mg / ml, ensures the formation of a tablet-like dense mass of the drug.
В табл. 2 и 3 представлены данные по хранению лиофильно высушенного препарата "Имозимаза" при комнатной температуре (18 - 20oC) в сравнении с хранением жидкой формы препарата, полученного по способу - прототипу.In the table. 2 and 3 presents data on the storage of the lyophilized dried preparation "Imozimaza" at room temperature (18 - 20 o C) in comparison with the storage of the liquid form of the drug obtained by the method prototype.
Из табл. 2 и 3 видно, что через 28 дней хранения при температуре 20 - 25oC ИФП, полученный по способу - прототипу теряет 50 - 78% исходной протеолитической активности, а через 12 месяцев хранения потеря активности составляет более 95%. ИФП, полученный заявляемым способом, может храниться при комнатной температуре без потери активности в течение 12 месяцев.From the table. 2 and 3 it is seen that after 28 days of storage at a temperature of 20 - 25 o C, the IFP obtained by the prototype method loses 50 - 78% of the initial proteolytic activity, and after 12 months of storage the loss of activity is more than 95%. The IFP obtained by the claimed method can be stored at room temperature without loss of activity for 12 months.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами конкретного выполнения. The invention is illustrated by the following examples of specific performance.
Пример 1. Example 1
Готовят реакционную смесь. Для этого 30 г ПЭО-1500 растворяют в 300 мл 0,025 М Na-фосфатного буфера (pH 8,2), добавляют 7,5 г протосубтилина ГЗХ (соотношение фермент: носитель 1:4), смесь перемешивают при температуре 18- 20oC в течение 30 минут. Затем проводят осаждение балластных белков путем коагуляции. Для этого в смесь последовательно добавляют до полного растворения 1,3 г натрия фосфорнокислого (Na2HPO4•12H2O) до конечной концентрации 0,45% и 1,9 г хлорида кальция (CaCl2•6H2O) до конечной концентрации 0,63%. После добавления хлорида кальция в реакционной смеси выпадает осадок нерастворимого фосфата кальция, который адсорбирует балластные белки. Смесь выдерживают 12 часов при температуре +4 +8oC для полного осаждения балластных белков. Далее реакционную смесь фильтруют через бумажные фильтры ("белая лента"). Объем фильтрата составляет 300 мл. Полученный фильтрат облучают тормозным γ-излучением в дозе 1 Мрад. В процессе облучения происходит иммобилизация фермента на полимерном носителе. Выход по активности составляет 85%. После облучения в раствор, содержащий иммобилизованный на ПЭО-1500 протосубтилин (ИФП), вводят ПЭО-4000 в количестве 15 г на 300 мл раствора (50 мг/мл) и перемешивают до полного растворения. Затем проводят стерилизующую фильтрацию полученной смеси через мембранный фильтр (Millipore) с размером пор 0,2 микрона. Стерильный фильтрат разливают в стерильные флаконы вместимостью 10 см3 по 1 мл и лиофильно высушивают. После лиофилизации получают препарат, содержащий в одном флаконе 6,4 мг ИПФ (по белку) с активностью 300 ПЕ, 100 мг ПЭО-1500, 50 мг ПЭО- 4000.Prepare the reaction mixture. To do this, 30 g of PEO-1500 are dissolved in 300 ml of 0.025 M Na-phosphate buffer (pH 8.2), 7.5 g of protosubtilin GZH (enzyme: carrier ratio 1: 4) are added, the mixture is stirred at a temperature of 18-20 o C within 30 minutes. Then carry out the deposition of ballast proteins by coagulation. To do this, 1.3 g of sodium phosphate (Na 2 HPO 4 • 12H 2 O) is added to the mixture until complete dissolution to a final concentration of 0.45% and 1.9 g of calcium chloride (CaCl 2 • 6H 2 O) to a final concentration 0.63%. After adding calcium chloride in the reaction mixture, a precipitate of insoluble calcium phosphate precipitates, which adsorbs ballast proteins. The mixture was incubated for 12 hours at a temperature of +4 +8 o C for complete precipitation of ballast proteins. Next, the reaction mixture is filtered through paper filters ("white tape"). The filtrate volume is 300 ml. The resulting filtrate is irradiated with bremsstrahlung γ-radiation at a dose of 1 Mrad. In the process of irradiation, the enzyme is immobilized on a polymer carrier. The activity yield is 85%. After irradiation, PEO-4000 in the amount of 15 g per 300 ml of solution (50 mg / ml) is introduced into a solution containing protosubtiline (IPP) immobilized on PEO-1500 and mixed until completely dissolved. Then carry out sterilizing filtration of the resulting mixture through a membrane filter (Millipore) with a pore size of 0.2 microns. The sterile filtrate is poured into sterile vials with a capacity of 10 cm 3 of 1 ml and freeze-dried. After lyophilization, a preparation is obtained containing in one vial 6.4 mg of IPF (protein) with an activity of 300 PE, 100 mg of PEO-1500, 50 mg of PEO-4000.
Препарат растворяется в воде в течение 1 минуты, сохраняет стабильность в течение 2 лет. The drug dissolves in water for 1 minute, remains stable for 2 years.
Пример 2. Example 2
Готовят реакционную смесь. Для этого 75 г ПЭО-1500 растворяют в 300 мл 0,025 М Na-фосфатного буфера (pH 8,2), добавляют 15 г протосубтилина, смесь перемешивают в течение 30 минут и последовательно добавляют до полного растворения натрий фосфорнокислый до конечной концентрации 0,45% и кальций хлористый до конечной концентрации 0,63%. Смесь выдерживают 12 часов до полного осаждения балластных белков, затем осадок отфильтровывают на бумажном фильтре. Полученный очищенный фильтрат (V - 300 мл) облучают тормозным γ-излучением в дозе 1,0 Мрад на ускорителе электронов ЭЛВ-2. Выход по активности составляет 86%. В раствор, содержащий ИФП добавляют 30 г ПЭО-4000 (100 мг/мл), перемешивают до полного растворения, проводят стерилизующую фильтрацию полученной смеси через мембранный фильтр с размером пор 0,2 микрона. Стерильный фильтрат разливают в стерильные флаконы вместимостью 10 см3 по 1 мл и лиофильно высушивают. Один флакон содержит 13 мг ИПФ (по белку) с активностью 660 ПЕ, 250 мг ПЭО-1500, 100 мг ПЭО-4000.Prepare the reaction mixture. To do this, 75 g of PEO-1500 are dissolved in 300 ml of 0.025 M Na-phosphate buffer (pH 8.2), 15 g of protosubtiline are added, the mixture is stirred for 30 minutes and sodium phosphate is added successively until complete dissolution to a final concentration of 0.45% and calcium chloride to a final concentration of 0.63%. The mixture is kept for 12 hours until the ballast proteins are completely precipitated, then the precipitate is filtered off on a paper filter. The obtained purified filtrate (V - 300 ml) is irradiated with bremsstrahlung γ-radiation at a dose of 1.0 Mrad at an electron accelerator ELV-2. The activity yield is 86%. 30 g of PEO-4000 (100 mg / ml) are added to the solution containing IFP, stirred until complete dissolution, sterilized filtration of the resulting mixture is carried out through a membrane filter with a pore size of 0.2 microns. The sterile filtrate is poured into sterile vials with a capacity of 10 cm 3 of 1 ml and freeze-dried. One vial contains 13 mg IPF (protein) with an activity of 660 PE, 250 mg PEO-1500, 100 mg PEO-4000.
Препарат сохраняет стабильность в течение 2 лет при хранении при температуре не выше 20oC.The drug remains stable for 2 years when stored at a temperature not exceeding 20 o C.
Пример 3. Example 3
Способ осуществляют аналогично примеру 1, за исключением того, что соотношение фермент: носитель в реакционной смеси устанавливают 1:2. Для этого 30 г ПЭО-1500 растворяют в 300 мл 0,025 М Na-фосфатного буфера (pH 8,2), добавляют 15 г протосубтилина и смесь перемешивают. К полученному после иммобилизации ИПФ добавляют ПЭО-4000 в количестве 300 мг/мл. Один флакон препарата содержит 17 мг ИПФ (по белку) с активностью 720 ПЕ, 100 мг ПЭО-1500, 300 мг ПЭО-4000. The method is carried out analogously to example 1, except that the ratio of the enzyme: carrier in the reaction mixture is set to 1: 2. For this, 30 g of PEO-1500 are dissolved in 300 ml of 0.025 M Na-phosphate buffer (pH 8.2), 15 g of protosubtilin are added and the mixture is stirred. To the obtained IPF after immobilization, PEO-4000 is added in an amount of 300 mg / ml. One bottle of the drug contains 17 mg of IPF (protein) with an activity of 720 PE, 100 mg of PEO-1500, 300 mg of PEO-4000.
Пример 4. Example 4
Способ осуществляют аналогично примеру 1, за исключением того, что соотношение фермент: носитель в реакционной смеси устанавливают 1:6, а в качестве носителя используют ПЭО-4000. Для этого 30 г ПЭО-4000 растворяют в 300 мл 0,025 М Na-фосфатного буфера (pH 8,2), добавляют 5 г протосубтилина и смесь перемешивают. Перед лиофилизацией к раствору ИФП добавляют ПЭО-4000 в количестве 50 мг/мл. The method is carried out analogously to example 1, except that the ratio of the enzyme: carrier in the reaction mixture is set to 1: 6, and PEO-4000 is used as the carrier. For this, 30 g of PEO-4000 are dissolved in 300 ml of 0.025 M Na-phosphate buffer (pH 8.2), 5 g of protosubtilin are added and the mixture is stirred. Before lyophilization, PEO-4000 in an amount of 50 mg / ml is added to the IFP solution.
Один флакон препарата содержит 1,8 мг ИПФ (по белку) с активностью 190 ПЕ, 150 мг ПЭО-4000. One bottle of the drug contains 1.8 mg of IPF (protein) with an activity of 190 PE, 150 mg of PEO-4000.
Использование предлагаемого способа позволяет по сравнению с прототипом:
- повысить качество целевого продукта;
- увеличить стабильность препарата ИПФ ("Имозимаза") в процессе хранения,
- обеспечить возможность получения устойчивой таблеткообразной пористой массы.Using the proposed method allows, in comparison with the prototype:
- improve the quality of the target product;
- increase the stability of the drug IAP ("Imosimase") during storage,
- to provide the possibility of obtaining a stable tablet-like porous mass.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98120178A RU2137835C1 (en) | 1998-11-10 | 1998-11-10 | Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98120178A RU2137835C1 (en) | 1998-11-10 | 1998-11-10 | Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2137835C1 true RU2137835C1 (en) | 1999-09-20 |
Family
ID=20212065
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU98120178A RU2137835C1 (en) | 1998-11-10 | 1998-11-10 | Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2137835C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003059326A1 (en) * | 2001-12-26 | 2003-07-24 | Zakrytoe Aktsionernoe Obschestvo 'aksis' | Pharmaceutical composition having thrombolytic, anti-inflammatory and cytoprotective properties |
WO2010021570A1 (en) * | 2008-08-18 | 2010-02-25 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" | Method for immobilising biologically active substances on polymer carriers (variants) and conjugates produced by said method |
-
1998
- 1998-11-10 RU RU98120178A patent/RU2137835C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Черкасова Т.А. и др. Ковалентная иммобилизация протеиназ на полимерных матрицах с эпоксигруппами. Прикладная биохимия и микробиология. М.: Наука, 1991, т.27, вып.6, с.807-843. * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003059326A1 (en) * | 2001-12-26 | 2003-07-24 | Zakrytoe Aktsionernoe Obschestvo 'aksis' | Pharmaceutical composition having thrombolytic, anti-inflammatory and cytoprotective properties |
US7429377B2 (en) | 2001-12-26 | 2008-09-30 | Zakrytoe Aktsionernoe Obschestvo “Aksis” | Therapeutic composition containing a plurality of immobilized proteases |
CN1517126B (en) * | 2001-12-26 | 2010-06-16 | 未来科技管理公司 | Drug compastion with thrombolysis, anti-inflammatory and cell protective function |
WO2010021570A1 (en) * | 2008-08-18 | 2010-02-25 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" | Method for immobilising biologically active substances on polymer carriers (variants) and conjugates produced by said method |
EP2327777A1 (en) * | 2008-08-18 | 2011-06-01 | Scientific Future Management SFM | Method for immobilising biologically active substances on polymer carriers (variants) and conjugates produced by said method |
EP2327777A4 (en) * | 2008-08-18 | 2014-09-10 | Scient Future Man Sfm | Method for immobilising biologically active substances on polymer carriers (variants) and conjugates produced by said method |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN1142833B (en) | Poly-beta-1-4-N-acetylglucosamine | |
US4970156A (en) | Immobilization of active protein by cross-linking to inactive protein | |
RU2099354C1 (en) | Purified derivative of cyclodextrine, clathrate complex of purified derivative of cyclodextrine with drug, pharmaceutical composition | |
KR102080929B1 (en) | Sustained release bioactive substance-carrying bone graft and manufacturing method thereof | |
CN107254460B (en) | Carboxymethyl chitosan/sodium alginate composite sponge immobilized papain and application thereof | |
CN108178780B (en) | Short peptide modified tannic acid nano antibacterial agent and preparation method thereof | |
SU1002356A1 (en) | Process for preparing immobilized fibrinolysin | |
US20170000924A1 (en) | E-polylysine hydrogel and preparation method and application thereof | |
JP2000508535A (en) | Continuous production of immobilized allinase and allicin | |
JPS59113889A (en) | Preparation of immobilized enzyme or immobilized microbial cell | |
RU2137835C1 (en) | Method of preparing water-soluble immobilized enzyme preparation | |
WO2003059326A1 (en) | Pharmaceutical composition having thrombolytic, anti-inflammatory and cytoprotective properties | |
US3171831A (en) | Thiolation of proteins by reaction with homocysteine thiolactone in the presence of tertiary amine | |
US4560556A (en) | Fibronectin-physiologically active substance complex and method of preparation thereof | |
CN110755638A (en) | Bone-targeting drug carrier and preparation method and application thereof | |
SU1128601A1 (en) | Urocinase immobilized on fibrinogen | |
Schröder et al. | Inorganic Polyphosphate: Coacervate Formation and Functional Significance in Nanomedical Applications | |
CN2920163Y (en) | Nanometer hemostatic plaster | |
JPH04121187A (en) | Polyethylene glycohol-modified arginine diminase and production thereof | |
RU2235061C2 (en) | Method for preparing calcium hydroxylapatite-base microgranule | |
RU2270861C1 (en) | Method for preparing water-soluble immobilized enzyme protease preparation | |
CA2096690A1 (en) | Hydrophilic creams for delivery of therapeutic agents | |
Vernikovskii et al. | Immobilized proteases for wound cleaning | |
RU2630668C1 (en) | Substance of proteolithic ferment based on protosubtilin gzh immobilized on chitosan and composition for treatment of purulent-necrotic wounds | |
KR100467764B1 (en) | Method for preparing chitosan-acetylsalicyclic acid(aspirin) salt compound and the chitosan-aspirin salt compound thereof |