RU2619336C1 - Способ профилактики оспы овец и коз - Google Patents

Способ профилактики оспы овец и коз Download PDF

Info

Publication number
RU2619336C1
RU2619336C1 RU2016132745A RU2016132745A RU2619336C1 RU 2619336 C1 RU2619336 C1 RU 2619336C1 RU 2016132745 A RU2016132745 A RU 2016132745A RU 2016132745 A RU2016132745 A RU 2016132745A RU 2619336 C1 RU2619336 C1 RU 2619336C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
animals
sheep
ozone
sanitation
room
Prior art date
Application number
RU2016132745A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Юрьевич Черных
Василий Александрович Баннов
Алексей Владимирович Мищенко
Владимир Николаевич Шевкопляс
Роман Анатольевич Кривонос
Андрей Георгиевич Кощаев
Георгий Анастасович Джаилиди
Юрий Андреевич Лысенко
Александр Анатолиевич Лысенко
Светлана Георгиевна Дресвянникова
Альберт Николаевич Чернов
Александр Алексеевич Шевченко
Карина Петровна Федоренко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет"
Priority to RU2016132745A priority Critical patent/RU2619336C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2619336C1 publication Critical patent/RU2619336C1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L9/00Disinfection, sterilisation or deodorisation of air
    • A61L9/015Disinfection, sterilisation or deodorisation of air using gaseous or vaporous substances, e.g. ozone
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00Medicinal preparations containing inorganic active ingredients

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для профилактики оспы овец и коз. Способ включает выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных. Остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. По результатам диагностики выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью. В помещении с животными-носителями вируса санацию осуществляют в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут. В помещении со здоровыми животными санацию осуществляют в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут. Способ высокоэффективен при профилактике оспы овец и коз. 4 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу профилактики оспы овец и коз.
Известен способ санации животноводческих помещений в присутствии животных, в котором осуществляют обработку животноводческих помещений озоновоздушной смесью, отличающийся тем, что обработку осуществляют озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 с периодичностью 24 часа в течение 1,5-2 часа, которую готовят с помощью озонатора, установленного непосредственно в животноводческом помещении (RU №2542504).
Недостатком данного способа является невозможность его использования для проведения дезинфекции помещений в присутствии животных в случае их заражения вирусом африканской чумы свиней, т.к. для уничтожения данной инфекции необходима обработка озоно-воздушной смесью с более высокой концентрацией озона.
Известен способ оздоровления хозяйств от лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС), включающий оздоровительные мероприятия, которые проводят по вариантам в зависимости от первоначальной инфицированности стада, определенной по результатам серологического исследования, изоляцию инфицированных ВЛКРС животных и немедленную сдачу на убой больных животных, отличающийся тем, что при первоначальной инфицированности стада до 2,5% инфицированных животных немедленно сдают на убой, а остальных животных исследуют каждые 3 месяца с обязательным удалением инфицированных животных; в хозяйствах, где выявлено 2,6-10,0% животных, инфицированных ВЛКРС, инфицированных животных собирают на отдельной ферме, откуда молодняк после откорма коров после отела и по мере прекращения лактации сдают на убой, оставшихся животных исследуют серологическим методом на ВЛКРС и вновь выявленных инфицированных животных немедленно переводят на указанную ферму; при первоначальной инфицированности стада 10,1-40,0% всех животных в хозяйстве делят на две группы: серопозитивные и серонегативные и содержат их изолированно друг от друга, инфицированных животных каждые 6 месяцев исследуют гематологическим методом и признанных больными сдают на убой, а коров и нетелей, не инфицированных ВЛКРС, исследуют серологическим методом с интервалом три месяца, при этом вновь выявленных серопозитивных животных переводят в группу инфицированных коров; при первоначальной инфицированности стада более 40,0% всех взрослых животных исследуют только гематологическим методом через каждые 6 месяцев и выявленных больных сдают на убой (RU №2268589).
Недостатком данного способа является продолжительность диагностирования лейкоза крупного рогатого скота серологическим методом, что в свою очередь способствует прогрессивному развитию заболевания, ведущему к массовой гибели животных.
Техническим результатом является расширение функциональных возможностей способа профилактики оспы овец и коз.
Технический результат достигается тем, что в способе профилактики оспы овец и коз, включающем выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, согласно изобретению остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут.
Новизна заявляемого способа профилактики оспы овец и коз состоит в идентификации вируса в пробах патологического материала с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени в течение суток, что в свою очередь позволяет выявить животных-носителей вируса оспы овец и коз на начальной стадии их инфицирования, а также осуществление санации помещений, в которых отдельно друг от друга присутствуют животные-носители вируса и здоровые животные.
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, направлены на достижение технического результата и не выявлены при изучении данной и смежной областей науки и техники и, следовательно, соответствуют критерию «изобретательский уровень».
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемых технических решений критерию «новизна».
Заявляемый способ профилактики оспы овец и коз рекомендовано использовать в специализированных ветеринарных, животноводческих, сельскохозяйственных предприятиях.
Способ профилактики оспы овец и коз осуществляют следующим образом.
В стаде животных ведут забор проб крови от каждого. Для получения сыворотки пробирки с кровью отстаивают при комнатной температуре до полного образования сгустка, затем центрифугируют. После сыворотку в количестве не менее 1 мл переносят одноразовыми наконечниками с фильтром в одноразовые пробирки объемом 1,5 мл. Помимо крови, в качестве исследуемого образца также используют содержимое везикул, пустул после предварительной очистки их поверхности спиртом, папулы и оспенные корки, фрагменты измененных органов (лимфатические узлы, селезенка, легкие). Для подготовки пробы к проведению полимеразной цепной реакции используют различные методики, с помощью которых осуществляют экстракцию ДНК из полученных образцов сыворотки крови животных и удалении или нейтрализации посторонних примесей для получения препарата /ДНК с чистотой, пригодной для проведения полимеразной цепной реакции.
Перед выделением ДНК осуществляют подготовку исследуемых проб с помощью набора реагентов «ПЦР-ОСПА-ФАКТОР», состоящего из 2 комплектов (таблица 1 и 2).
Figure 00000001
Figure 00000002
В отдельной пробирке смешивают компоненты набора из расчета на каждую реакцию 10 мкл ПЦР СМЕСЬ РОХ, 5 мкл смеси ПЦР БУФЕР РОХ, 0,5 мкл TAQ POLYMERASE. Перемешивают смесь на вортексе и сбрасывают капли кратковременным центрифугированием. Затем отбирают необходимое количество пробирок для амплификации ДНК исследуемых и контрольных проб, вносят по 15 мкл приготовленной реакционной смеси. Используя наконечники с фильтром, в подготовленные пробирки добавляют:
1) отрицательный контроль ПЦР (К-) - вносят в пробирку по 10 мкл ОКО;
2) по 10 мкл Д НК из исследуемых образцов в соответствующие пробирки;
3) положительный контроль ПЦР (К+) - вносят в пробирку 10 мкл ПКО.
При этом не наносят маркировку на крышку пробирок, т.к. это затрудняет процесс считывания амплификатором.
Далее осуществляют полимеразную цепную реакцию с флуоресцентным детектором в режиме реального времени на амплификаторе Rotor-Gene 3000/6000. Прибор программируют, устанавливают параметры температурно-временного режима амплификации, детекцию флуоресцентного сигнала назначают после стации отжига праймеров, после чего начинают процесс амплификации с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. В его основе лежит принцип флуоресцентной детекции продуктов полимеразной цепной реакции непосредственно в ходе амплификации. Детекция продуктов амплификации проводится прямо в реакционной среде через стенки или крышку закрытой пробирки.
ПЦР с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени имеет ряд значительных преимуществ:
- объединение этапов амплификации и детекции результатов. Появляется возможность оценить кинетику процесса, которая зависит от начального количества исследуемого материала;
- существенное снижение риска контаминации и ошибок при анализе результатов;
- высокая специфичность реакции за счет использования высокоспецифичных флуоресцентных зондов;
- высокая производительность;
- упрощение требований к организации ПЦР-лаборатории;
- возможность количественной оценки исходной ДНК матрицы;
- регистрация и учет данных в электронном формате.
ПЦР в реальном времени характеризуется возможностью проведения качественного и количественного анализа. Регистрируемое в процессе амплификации нарастание сигнала от отделенного флуорофора прямо пропорционально увеличению концентрации синтезированных специфических продуктов и отражает концентрацию ДНК в исходной матрице.
Учет результатов полимеразной цепной реакции, согласно указанной выше инструкции, проводят по наличию или отсутствию пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией. Образец считают положительным (вирус оспы овец и коз присутствует), если наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы. Образец считают отрицательным (вирус оспы овец и коз отсутствует), если не наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы.
В результате проведения полимеразной цепной реакции с флуоресцентным детектором в режиме реального времени при выявлении первоначального инфицирования вирусом оспы овец и коз 2,5-3% голов животных от общего количества в стаде, инфицированных особей сдают на убой, после чего животных-носителей инфекции и здоровых особей переводят в отдельные помещения. Затем осуществляют санацию помещений в присутствии животных с помощью озоновоздушной смеси, при этом в помещении с животными-носителями вируса ее проводят в течение месяца 3 раза в неделю с концентрацией озона 5 мг/м3 в течение 25 минут. В помещении со здоровыми животными санацию проводят в течение двух недель 2 раза в неделю с концентрацией озона 4 мг/м3 в течение 18 минут.
Результаты проведения опытов по санации помещений показывают, что санация помещения озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 является малоэффективной при содержании общего микробного числа по результатам анализа санитарно-микробиологического контроля воздуха в животноводческом помещении более 200 тыс./м3, уровнем аммиака более 20 мг/м3 и сероводорода более 15 мг/м3, т.к. незначительно повлияла на снижение указанных показателей.
После санации помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 7-10 мг/м3 наблюдалось значительное снижение параметров ОМЧ, аммиака и сероводорода в воздухе, однако последствием такой дезинфекции являлось ухудшение общего самочувствия животных, снижение их активности и аппетита. Поэтому по итогам проведенных испытаний наиболее оптимальной признана санация с концентрациями озона 4 и 5 мг/м3, т.к. санация озоновоздушной смесью с данными концентрациями озона не оказывала токсикологического побочного эффекта, а также снижала уровень содержания вредных веществ в животноводческих помещениях до регламентированных норм. Данные по содержанию вредных соединений в воздухе животноводческих помещений до и после санации в зависимости от концентрации озона в озоновоздушной смеси представлены в таблицах 3 и 4.
Figure 00000003
Figure 00000004
По итогам санации видно, что обработка помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 4-5 мг/м3 в течение 15-25 минут снижает уровень загрязнения воздуха вредными соединениями до предельно-допустимых значений, при этом не оказывая вредного токсикологического воздействия на состояние здоровья животных.
Результаты проведенных мероприятий в животноводческих помещениях в присутствии животных позволяют сделать вывод о том, что данный способ профилактики оспы овец и коз свиней эффективен в качестве улучшения и сохранения санитарного состояния на животноводческих предприятиях.

Claims (1)

  1. Способ профилактики оспы овец и коз, включающий выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, отличающийся тем, что остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 мин, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 мин.
RU2016132745A 2016-08-08 2016-08-08 Способ профилактики оспы овец и коз RU2619336C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) 2016-08-08 2016-08-08 Способ профилактики оспы овец и коз

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) 2016-08-08 2016-08-08 Способ профилактики оспы овец и коз

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2619336C1 true RU2619336C1 (ru) 2017-05-15

Family

ID=58715937

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) 2016-08-08 2016-08-08 Способ профилактики оспы овец и коз

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2619336C1 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104147145A (zh) * 2014-07-31 2014-11-19 许峰 一种预防和治疗羊痘的药剂
RU2542504C1 (ru) * 2014-03-06 2015-02-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Способ санации животноводческих помещений в присутствии животных

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2542504C1 (ru) * 2014-03-06 2015-02-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" Способ санации животноводческих помещений в присутствии животных
CN104147145A (zh) * 2014-07-31 2014-11-19 许峰 一种预防和治疗羊痘的药剂

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ДИЕВ В.И. И ДР. Оспа овец и коз: эпизоотическая ситуация и профилактика// Ветеринария, 2003; N 11. С. 3-6 . *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2680094C1 (ru) Тест-система для выявления ДНК возбудителя лептоспироза (Leptospira spp.) у сельскохозяйственных животных
Galinska et al. Brucellosis in humans-etiology, diagnostics, clinical forms
Al-Majali Seroepidemiology of caprine brucellosis in Jordan
Boyle Streptococcus equi subspecies equi infection (strangles) in horses
CN105010235A (zh) 猪场净化疫病的方法
RU2619337C1 (ru) Способ профилактики нодулярного дерматита КРС
RU2619336C1 (ru) Способ профилактики оспы овец и коз
RU2629399C1 (ru) Способ профилактики африканской чумы свиней
Nickell et al. Onset and duration of transient infections among antibody-diverse beef calves exposed to a bovine viral diarrhea virus persistently infected calf
Maksimović et al. Molecular detection of Brucella spp. in clinical samples of seropositive ruminants in Bosnia and Herzegovina
Leghari et al. Prevalence and Risk Factors Associated with Bovine Tuberculosis in Cattle in Hyderabad and Tando Allahyar Districts, Sindh, Pakistan.
Nagy et al. Timing of seroconversion and acquisition of positive polymerase chain reaction assay results in calves experimentally infected with bovine leukemia virus
Andersen et al. A new tool for air sample-based surveillance of Campylobacter and Salmonella in poultry flocks
Chisi et al. Use of Brucella abortus species specific polymerase chain reaction assay for the diagnosis of bovine brucellosis
Lazić et al. Detection of equine arteritis virus in the semen of stallions in the republic of serbia
Sharma et al. Isolation and molecular characterization of Brucella melitensis from abortion storms in sheep with its zoonotic implications
Mansour et al. Orf disease in local goat; clinical and phylogenetic study in Al-Qadisiyah governorate, Iraq
Elijah et al. Detection and Investigation of Atypical Porcine Pestivirus within a Breed-to-Finish Farm and Off-Site Nursery and Finisher Locations
RU2700478C1 (ru) Способ выявления ДНК возбудителя лептоспироза (Leptospira spp.) у сельскохозяйственных животных
RU2756474C1 (ru) Тест-система для обнаружения РНК вируса SARS-CoV-2 в биоматериале от животных, пищевых продуктах и объектах окружающей среды методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
RU2766344C1 (ru) Способ выявления и идентификации коронавирусов у крупного рогатого скота
RU2702170C1 (ru) Способ диагностики энзоотической пневмонии свиней методом полимеразной цепной реакции
Zanella et al. Hepatitis E Virus Investigation on Farrowing and Nursery Pigs From a Farm Free of In-Feed Antimicrobials: A Case Report
VIRUS et al. Selected highlights from other journals
Breyer et al. Campylobacter fetus in abomasal fluid from spontaneously aborted bovine and ovine fetuses

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180809

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20191216