RU2619336C1 - Способ профилактики оспы овец и коз - Google Patents
Способ профилактики оспы овец и коз Download PDFInfo
- Publication number
- RU2619336C1 RU2619336C1 RU2016132745A RU2016132745A RU2619336C1 RU 2619336 C1 RU2619336 C1 RU 2619336C1 RU 2016132745 A RU2016132745 A RU 2016132745A RU 2016132745 A RU2016132745 A RU 2016132745A RU 2619336 C1 RU2619336 C1 RU 2619336C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- animals
- sheep
- ozone
- sanitation
- room
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L9/00—Disinfection, sterilisation or deodorisation of air
- A61L9/015—Disinfection, sterilisation or deodorisation of air using gaseous or vaporous substances, e.g. ozone
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для профилактики оспы овец и коз. Способ включает выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных. Остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. По результатам диагностики выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью. В помещении с животными-носителями вируса санацию осуществляют в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут. В помещении со здоровыми животными санацию осуществляют в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут. Способ высокоэффективен при профилактике оспы овец и коз. 4 табл., 1 пр.
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу профилактики оспы овец и коз.
Известен способ санации животноводческих помещений в присутствии животных, в котором осуществляют обработку животноводческих помещений озоновоздушной смесью, отличающийся тем, что обработку осуществляют озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 с периодичностью 24 часа в течение 1,5-2 часа, которую готовят с помощью озонатора, установленного непосредственно в животноводческом помещении (RU №2542504).
Недостатком данного способа является невозможность его использования для проведения дезинфекции помещений в присутствии животных в случае их заражения вирусом африканской чумы свиней, т.к. для уничтожения данной инфекции необходима обработка озоно-воздушной смесью с более высокой концентрацией озона.
Известен способ оздоровления хозяйств от лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС), включающий оздоровительные мероприятия, которые проводят по вариантам в зависимости от первоначальной инфицированности стада, определенной по результатам серологического исследования, изоляцию инфицированных ВЛКРС животных и немедленную сдачу на убой больных животных, отличающийся тем, что при первоначальной инфицированности стада до 2,5% инфицированных животных немедленно сдают на убой, а остальных животных исследуют каждые 3 месяца с обязательным удалением инфицированных животных; в хозяйствах, где выявлено 2,6-10,0% животных, инфицированных ВЛКРС, инфицированных животных собирают на отдельной ферме, откуда молодняк после откорма коров после отела и по мере прекращения лактации сдают на убой, оставшихся животных исследуют серологическим методом на ВЛКРС и вновь выявленных инфицированных животных немедленно переводят на указанную ферму; при первоначальной инфицированности стада 10,1-40,0% всех животных в хозяйстве делят на две группы: серопозитивные и серонегативные и содержат их изолированно друг от друга, инфицированных животных каждые 6 месяцев исследуют гематологическим методом и признанных больными сдают на убой, а коров и нетелей, не инфицированных ВЛКРС, исследуют серологическим методом с интервалом три месяца, при этом вновь выявленных серопозитивных животных переводят в группу инфицированных коров; при первоначальной инфицированности стада более 40,0% всех взрослых животных исследуют только гематологическим методом через каждые 6 месяцев и выявленных больных сдают на убой (RU №2268589).
Недостатком данного способа является продолжительность диагностирования лейкоза крупного рогатого скота серологическим методом, что в свою очередь способствует прогрессивному развитию заболевания, ведущему к массовой гибели животных.
Техническим результатом является расширение функциональных возможностей способа профилактики оспы овец и коз.
Технический результат достигается тем, что в способе профилактики оспы овец и коз, включающем выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, согласно изобретению остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут.
Новизна заявляемого способа профилактики оспы овец и коз состоит в идентификации вируса в пробах патологического материала с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени в течение суток, что в свою очередь позволяет выявить животных-носителей вируса оспы овец и коз на начальной стадии их инфицирования, а также осуществление санации помещений, в которых отдельно друг от друга присутствуют животные-носители вируса и здоровые животные.
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, направлены на достижение технического результата и не выявлены при изучении данной и смежной областей науки и техники и, следовательно, соответствуют критерию «изобретательский уровень».
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемых технических решений критерию «новизна».
Заявляемый способ профилактики оспы овец и коз рекомендовано использовать в специализированных ветеринарных, животноводческих, сельскохозяйственных предприятиях.
Способ профилактики оспы овец и коз осуществляют следующим образом.
В стаде животных ведут забор проб крови от каждого. Для получения сыворотки пробирки с кровью отстаивают при комнатной температуре до полного образования сгустка, затем центрифугируют. После сыворотку в количестве не менее 1 мл переносят одноразовыми наконечниками с фильтром в одноразовые пробирки объемом 1,5 мл. Помимо крови, в качестве исследуемого образца также используют содержимое везикул, пустул после предварительной очистки их поверхности спиртом, папулы и оспенные корки, фрагменты измененных органов (лимфатические узлы, селезенка, легкие). Для подготовки пробы к проведению полимеразной цепной реакции используют различные методики, с помощью которых осуществляют экстракцию ДНК из полученных образцов сыворотки крови животных и удалении или нейтрализации посторонних примесей для получения препарата /ДНК с чистотой, пригодной для проведения полимеразной цепной реакции.
Перед выделением ДНК осуществляют подготовку исследуемых проб с помощью набора реагентов «ПЦР-ОСПА-ФАКТОР», состоящего из 2 комплектов (таблица 1 и 2).
В отдельной пробирке смешивают компоненты набора из расчета на каждую реакцию 10 мкл ПЦР СМЕСЬ РОХ, 5 мкл смеси ПЦР БУФЕР РОХ, 0,5 мкл TAQ POLYMERASE. Перемешивают смесь на вортексе и сбрасывают капли кратковременным центрифугированием. Затем отбирают необходимое количество пробирок для амплификации ДНК исследуемых и контрольных проб, вносят по 15 мкл приготовленной реакционной смеси. Используя наконечники с фильтром, в подготовленные пробирки добавляют:
1) отрицательный контроль ПЦР (К-) - вносят в пробирку по 10 мкл ОКО;
2) по 10 мкл Д НК из исследуемых образцов в соответствующие пробирки;
3) положительный контроль ПЦР (К+) - вносят в пробирку 10 мкл ПКО.
При этом не наносят маркировку на крышку пробирок, т.к. это затрудняет процесс считывания амплификатором.
Далее осуществляют полимеразную цепную реакцию с флуоресцентным детектором в режиме реального времени на амплификаторе Rotor-Gene 3000/6000. Прибор программируют, устанавливают параметры температурно-временного режима амплификации, детекцию флуоресцентного сигнала назначают после стации отжига праймеров, после чего начинают процесс амплификации с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. В его основе лежит принцип флуоресцентной детекции продуктов полимеразной цепной реакции непосредственно в ходе амплификации. Детекция продуктов амплификации проводится прямо в реакционной среде через стенки или крышку закрытой пробирки.
ПЦР с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени имеет ряд значительных преимуществ:
- объединение этапов амплификации и детекции результатов. Появляется возможность оценить кинетику процесса, которая зависит от начального количества исследуемого материала;
- существенное снижение риска контаминации и ошибок при анализе результатов;
- высокая специфичность реакции за счет использования высокоспецифичных флуоресцентных зондов;
- высокая производительность;
- упрощение требований к организации ПЦР-лаборатории;
- возможность количественной оценки исходной ДНК матрицы;
- регистрация и учет данных в электронном формате.
ПЦР в реальном времени характеризуется возможностью проведения качественного и количественного анализа. Регистрируемое в процессе амплификации нарастание сигнала от отделенного флуорофора прямо пропорционально увеличению концентрации синтезированных специфических продуктов и отражает концентрацию ДНК в исходной матрице.
Учет результатов полимеразной цепной реакции, согласно указанной выше инструкции, проводят по наличию или отсутствию пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией. Образец считают положительным (вирус оспы овец и коз присутствует), если наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы. Образец считают отрицательным (вирус оспы овец и коз отсутствует), если не наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы.
В результате проведения полимеразной цепной реакции с флуоресцентным детектором в режиме реального времени при выявлении первоначального инфицирования вирусом оспы овец и коз 2,5-3% голов животных от общего количества в стаде, инфицированных особей сдают на убой, после чего животных-носителей инфекции и здоровых особей переводят в отдельные помещения. Затем осуществляют санацию помещений в присутствии животных с помощью озоновоздушной смеси, при этом в помещении с животными-носителями вируса ее проводят в течение месяца 3 раза в неделю с концентрацией озона 5 мг/м3 в течение 25 минут. В помещении со здоровыми животными санацию проводят в течение двух недель 2 раза в неделю с концентрацией озона 4 мг/м3 в течение 18 минут.
Результаты проведения опытов по санации помещений показывают, что санация помещения озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 является малоэффективной при содержании общего микробного числа по результатам анализа санитарно-микробиологического контроля воздуха в животноводческом помещении более 200 тыс./м3, уровнем аммиака более 20 мг/м3 и сероводорода более 15 мг/м3, т.к. незначительно повлияла на снижение указанных показателей.
После санации помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 7-10 мг/м3 наблюдалось значительное снижение параметров ОМЧ, аммиака и сероводорода в воздухе, однако последствием такой дезинфекции являлось ухудшение общего самочувствия животных, снижение их активности и аппетита. Поэтому по итогам проведенных испытаний наиболее оптимальной признана санация с концентрациями озона 4 и 5 мг/м3, т.к. санация озоновоздушной смесью с данными концентрациями озона не оказывала токсикологического побочного эффекта, а также снижала уровень содержания вредных веществ в животноводческих помещениях до регламентированных норм. Данные по содержанию вредных соединений в воздухе животноводческих помещений до и после санации в зависимости от концентрации озона в озоновоздушной смеси представлены в таблицах 3 и 4.
По итогам санации видно, что обработка помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 4-5 мг/м3 в течение 15-25 минут снижает уровень загрязнения воздуха вредными соединениями до предельно-допустимых значений, при этом не оказывая вредного токсикологического воздействия на состояние здоровья животных.
Результаты проведенных мероприятий в животноводческих помещениях в присутствии животных позволяют сделать вывод о том, что данный способ профилактики оспы овец и коз свиней эффективен в качестве улучшения и сохранения санитарного состояния на животноводческих предприятиях.
Claims (1)
- Способ профилактики оспы овец и коз, включающий выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, отличающийся тем, что остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 мин, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 мин.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) | 2016-08-08 | 2016-08-08 | Способ профилактики оспы овец и коз |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) | 2016-08-08 | 2016-08-08 | Способ профилактики оспы овец и коз |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2619336C1 true RU2619336C1 (ru) | 2017-05-15 |
Family
ID=58715937
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016132745A RU2619336C1 (ru) | 2016-08-08 | 2016-08-08 | Способ профилактики оспы овец и коз |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2619336C1 (ru) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104147145A (zh) * | 2014-07-31 | 2014-11-19 | 许峰 | 一种预防和治疗羊痘的药剂 |
RU2542504C1 (ru) * | 2014-03-06 | 2015-02-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Способ санации животноводческих помещений в присутствии животных |
-
2016
- 2016-08-08 RU RU2016132745A patent/RU2619336C1/ru active IP Right Revival
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2542504C1 (ru) * | 2014-03-06 | 2015-02-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Способ санации животноводческих помещений в присутствии животных |
CN104147145A (zh) * | 2014-07-31 | 2014-11-19 | 许峰 | 一种预防和治疗羊痘的药剂 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ДИЕВ В.И. И ДР. Оспа овец и коз: эпизоотическая ситуация и профилактика// Ветеринария, 2003; N 11. С. 3-6 . * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2680094C1 (ru) | Тест-система для выявления ДНК возбудителя лептоспироза (Leptospira spp.) у сельскохозяйственных животных | |
Galinska et al. | Brucellosis in humans-etiology, diagnostics, clinical forms | |
Al-Majali | Seroepidemiology of caprine brucellosis in Jordan | |
Boyle | Streptococcus equi subspecies equi infection (strangles) in horses | |
CN105010235A (zh) | 猪场净化疫病的方法 | |
RU2619337C1 (ru) | Способ профилактики нодулярного дерматита КРС | |
RU2619336C1 (ru) | Способ профилактики оспы овец и коз | |
RU2629399C1 (ru) | Способ профилактики африканской чумы свиней | |
Nickell et al. | Onset and duration of transient infections among antibody-diverse beef calves exposed to a bovine viral diarrhea virus persistently infected calf | |
Maksimović et al. | Molecular detection of Brucella spp. in clinical samples of seropositive ruminants in Bosnia and Herzegovina | |
Leghari et al. | Prevalence and Risk Factors Associated with Bovine Tuberculosis in Cattle in Hyderabad and Tando Allahyar Districts, Sindh, Pakistan. | |
Nagy et al. | Timing of seroconversion and acquisition of positive polymerase chain reaction assay results in calves experimentally infected with bovine leukemia virus | |
Andersen et al. | A new tool for air sample-based surveillance of Campylobacter and Salmonella in poultry flocks | |
Chisi et al. | Use of Brucella abortus species specific polymerase chain reaction assay for the diagnosis of bovine brucellosis | |
Lazić et al. | Detection of equine arteritis virus in the semen of stallions in the republic of serbia | |
Sharma et al. | Isolation and molecular characterization of Brucella melitensis from abortion storms in sheep with its zoonotic implications | |
Mansour et al. | Orf disease in local goat; clinical and phylogenetic study in Al-Qadisiyah governorate, Iraq | |
Elijah et al. | Detection and Investigation of Atypical Porcine Pestivirus within a Breed-to-Finish Farm and Off-Site Nursery and Finisher Locations | |
RU2700478C1 (ru) | Способ выявления ДНК возбудителя лептоспироза (Leptospira spp.) у сельскохозяйственных животных | |
RU2756474C1 (ru) | Тест-система для обнаружения РНК вируса SARS-CoV-2 в биоматериале от животных, пищевых продуктах и объектах окружающей среды методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени | |
RU2766344C1 (ru) | Способ выявления и идентификации коронавирусов у крупного рогатого скота | |
RU2702170C1 (ru) | Способ диагностики энзоотической пневмонии свиней методом полимеразной цепной реакции | |
Zanella et al. | Hepatitis E Virus Investigation on Farrowing and Nursery Pigs From a Farm Free of In-Feed Antimicrobials: A Case Report | |
VIRUS et al. | Selected highlights from other journals | |
Breyer et al. | Campylobacter fetus in abomasal fluid from spontaneously aborted bovine and ovine fetuses |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180809 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20191216 |