RU2618606C1 - Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами - Google Patents
Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами Download PDFInfo
- Publication number
- RU2618606C1 RU2618606C1 RU2015156900A RU2015156900A RU2618606C1 RU 2618606 C1 RU2618606 C1 RU 2618606C1 RU 2015156900 A RU2015156900 A RU 2015156900A RU 2015156900 A RU2015156900 A RU 2015156900A RU 2618606 C1 RU2618606 C1 RU 2618606C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- photonic crystal
- substrate
- biosensor
- nanowires
- affinity molecules
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B82—NANOTECHNOLOGY
- B82Y—SPECIFIC USES OR APPLICATIONS OF NANOSTRUCTURES; MEASUREMENT OR ANALYSIS OF NANOSTRUCTURES; MANUFACTURE OR TREATMENT OF NANOSTRUCTURES
- B82Y20/00—Nanooptics, e.g. quantum optics or photonic crystals
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01L—SEMICONDUCTOR DEVICES NOT COVERED BY CLASS H10
- H01L21/00—Processes or apparatus adapted for the manufacture or treatment of semiconductor or solid state devices or of parts thereof
Landscapes
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
Использование: для создания регенеруемого биосенсора. Сущность изобретения заключается в том, что способ включает в себя изготовление подложки биосенсора с массивом нанопроволок, формирующих фотонный кристалл, подготовку поверхности подложки для модификации аффинными молекулами, активацию поверхности аффинными молекулами, специфичными к целевым аналитам, присутствие целевых аналитов выявляют добавлением специфичных к ним детектирующих молекул, несущих на себе флуоресцентную метку, выбранную таким образом, чтобы максимум флуоресценции метки совпадал по длине волны с резонансной модой фотонного кристалла, приводя к увеличению интенсивности флуоресценции метки на этой длине волны, после чего поверхность биосенсора регенерируют для повторных использований. Технический результат: обеспечение возможности многократного использования биосенсора. 13 з.п. ф-лы, 3 ил.
Description
Изобретение относится к области медицины и нанотехнологии, в частности к способу создания регенеруемого биосенсора для высокочувствительной детекции биологических аналитов. Способ создания регенерируемого нанопроволочного биосенсора может применяться для производства высокочувствительных планарных биосенсоров нового типа, совместимых со стандартными флуоресцентными ридерами. Нанопроволочный биосенсор представляет собой фотонный кристалл, на поверхности которого иммобилизованы аффинные молекулы, способные специфически связываться с биологическими аналитами. Детекция аналитов с помощью биосенсора основана на формировании на поверхности нанопроволочного массива диагностического комплекса, который состоит из распознающей аффинной молекулы, аналита и детектирующей молекулы, связанной с флуоресцентной меткой. Повышение чувствительности детекции с помощью биосенсора по сравнению с известными методами основано на усилении фотолюминесцентного сигнала метки, длина волны фотолюминесценции которой находится в области резонанса фотонного кристалла. Основные требования, которым должен удовлетворять биосенсор, - это эффективное усиление фотолюминесцентного сигнала метки, а также возможность его регенерации для последующих циклов анализа.
Известен способ, включающий применение массива нанопроволок для усиления сигнала флуоресценции в биосенсоре с диэлектрической поверхностью (патент US 20080246961). Недостатком данного способа является то, что массив нанопроволок неупорядочен и помещается сверху на поверхность биосенсора, которая может представлять собой, в том числе, одномерный фотонный кристалл, который не обладает высокими показателями добротности. Кроме того, неупорядоченный массив нанопроволок, помещенный на поверхность биосенсора, препятствует свободному распространению аналита по поверхности биосенсора и эффективному связыванию целевых аналитов; возможность регенерации поверхности биосенсора также отсутствует.
Известен также способ усиления сигнала флуоресценции в биосенсоре с помощью двумерного фотонного кристалла (патент US 7768640). В данном способе фотонный кристалл формируется массивом упорядоченных отверстий на поверхности биосенсора. Аналит, содержащий флуоресцентные метки с длиной волны флуоресценции, попадающей в область резонанса фотонного кристалла, помещается на поверхность биосенсора. Для детектирования используется сигнал флуоресцирующих меток, усиленный фотонным кристаллом на длине волны резонанса за счет эффектов ближнего поля и сильного когерентного рассеяния. Этот способ выбран в качестве прототипа предложенного решения.
Основным недостатком приведенного выше способа является затрудненное проникновение аналита в глубину сенсора, а именно, в отверстия, формирующие фотонный кристалл (имеющие диаметр порядка 100 нм), что приводит к падению чувствительности биосенсора. Еще одним недостатком, следующим из формы подложки, является невозможность регенерации поверхности биосенсора для повторного использования вследствие затрудненного проникновения регенерирующего раствора вглубь фотонной структуры.
Технический результат изобретения заключается в увеличении чувствительности детекции биологических аналитов, а также в расширении возможности применения биосенсоров на основе фотонных кристаллов в лабораторной и клинической практике благодаря возможности многократного использования биосенсора, за счет регенерации его аналитической поверхности.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе создания регенерируемого биосенсора фотонный кристалл формируют в виде подложки, несущей на себе двумерный упорядоченный массив нанопроволок; поверхность подложки готовят для модификации аффинными молекулами, проводят активацию аффинными молекулами, специфичными к целевым аналитам, далее, присутствие целевых аналитов выявляют добавлением специфичных к ним детектирующих молекул, несущих на себе флуоресцентную метку выбранную таким образом, чтобы максимум флуоресценции метки совпадал по длине волны с резонансной модой фотонного кристалла, приводя к увеличению интенсивности флуоресценции метки на этой длине волны, после чего поверхность биосенсора регенерируют для повторных использований.
Существует также вариант, в котором в качестве материала исходной подложки используют пластины кремния, SiO2. Si3N4, SiC.
Существует вариант, в котором нанопроволоки, формирующие фотонный кристалл, получают в результате травления подложки.
Возможен вариант, в котором нанопроволоки, формирующие фотонный кристалл, выращивают на поверхности подложки.
Возможен также вариант, в котором нанопроволоки, имеющие диаметр от 50 до 500 нм и высоту от 100 до 800 нм, располагают в узлах двумерной гексагональной решетки.
Существует вариант, в котором в массиве нанопроволок удаляют одну или несколько нанопроволок, что формирует дефект, внутри которого локализуется резонансная мода излучения.
Существует вариант, в котором поверхность подложки окисляют химически в растворах, содержащих перекись водорода и серную кислоту для создания поверхностной пленки SiO2.
Существует вариант, в котором поверхность подложки окисляют термически, нагревая до температур от 400 до 1000°С для создания поверхностной пленки SiO2.
Возможен вариант, в котором после окисления проводят силанизацию поверхностного слоя молекулами (3-аминопропил)триэтоксисилана, позволяющими модифицировать поверхность нанопроволочных структур функциональными группами -NH2, и обрабатывают молекулами янтарного ангидрида - линкерами, создающими на поверхности группы -СООН.
Возможен вариант, в котором после силанизации поверхностного слоя на поверхности биосенсора иммобилизуют распознающие аффинные молекулы, способные с высокой специфичностью связывать целевой аналит.
Возможен также вариант, в котором для детекции целевого аналита на поверхности биосенсора формируют иммуноферментный комплекс, который состоит из аффинной молекулы, целевого аналита и специфичной к нему детектирующей молекулы, несущей на себе флуоресцентную метку.
Существует также вариант, в котором в качестве флуоресцентной метки используют органические красители.
Существует также вариант, в котором в качестве флуоресцентной метки используют полупроводниковые нанокристаллы.
Возможен также вариант, в котором после проведения измерений проводят регенерацию поверхности биосенсора, для повторного использования с помощью обработки регенерирующим и нейтрализующим растворами.
На фиг. 1 изображена схема изготовления поверхности подложки биосенсора, где: 1 - создание никелевой маски методом электронно-лучевой литографии; 2 - травление подложки методом реактивного ионного травления для получения массива нанопроволок; 3 - окисление поверхности; 4 - силанизация и модификация поверхности группами -СООН; 5 - иммобилизация распознающих аффинных молекул на поверхности.
На фиг. 2 изображена схема рабочего цикла биосенсора, где: 1 - блокировка неактивированной части подложки; 2 - нанесение биологического аналита; 3 - нанесение детектирующих молекул, несущих флуоресцентную метку; 4 - анализ флуоресцентного сигнала; 5 - возбуждение флуоресценции; 6 - регенерация поверхности подложки.
На фиг. 3 схематично изображен массив нанопроволок, формирующих фотонный кристалл с линейным дефектом в центре
Фотонный кристалл формируется массивом упорядоченных нанопроволок на подложке методом плазменного травления кремниевых пластин по маске, нанесенной с помощью электронно-лучевой литографии. Далее окисляют поверхность кремниевых пластин с массивами нанопроволок для создания поверхностной пленки SiO2 (возможен вариант, в котором качестве материала для изготовления подложки используется пластина со слоем SiO2 на поверхности, в таком случае стадия окисления поверхности не производится), проводят силанизацию этого поверхностного слоя молекулами (3-аминопропил)триэтоксисилана, позволяющими модифицировать поверхность нанопроволочных структур функциональными группами -NH2, и обрабатывают молекулами янтарного ангидрида - линкерами, создающими на поверхности группы -СООН, необходимые для последующей иммобилизации аффинных молекул. Ковалентная иммобилизация аффинных молекул осуществляется путем образования пептидной связи между поверхностными -СООН группами и -NH2, входящими в состав аффинных молекул.
Для детекции аналита при помощи биосенсора на поверхности сенсора формируют диагностический комплекс, состоящий из распознающей аффинной молекулы, аналита и детектирующей флуоресцентной метки. В качестве флуоресцентной метки могут быть использованы конъюгаты аффинных молекул, химически связанные с флуорофором - флуоресцентным нанокристаллом или органическим флуоресцентным красителем с длиной волны максимума флуоресценции в видимом или ИК-диапазоне. При этом максимум люминесценции метки должен совпадать по длине волны с резонансной модой фотонного кристалла для достижения усиления люминесценции. Для проведения анализа сигнала поверхность образца освещают с помощью источника излучения, спектр которого перекрывается со спектром поглощения используемых флуоресцентных меток, и производят измерение интенсивности излучения на длине волны резонанса фотонного кристалла.
После проведения анализа может быть проведена регенерация поверхности биосенсора для его повторного использования. Регенерация включает последовательную обработку биосенсора регенерирующим раствором, разрушающим диагностический комплекс на поверхности биосенсора, последующую обработку поверхности нейтрализующим раствором (для предотвращения инактивации распознающих аффинных молекул) и финальную отмывку высвободившихся компонентов комплекса раствором с физиологическим значением pH.
Приведены примеры конкретной реализации предлагаемого способа.
Пример 1
Перед проведением литографических процедур производится подготовка кремниевых пластин КДБ (100). Подготовка кремниевых пластин производится в следующей технологической последовательности: обработка пластины в HF в течение 10 минут для удаления естественного приповерхностного слоя оксида кремния, промывание пластины деионизованной водой в течение 5 мин, высушивание пластины на спин-коатере при 3000 об/мин в течение 1 мин. Нанесение резистов для проведения электронно-лучевой литографии производится методом спин-коатинга. Для этого выполняются следующие процедуры: подложка помещается на держатель и включается вакуумный прижим по обратной стороне подложки, на вращающуюся подложку при скорости 600 об/мин наносится резист PMGI SF3, скорость оборотов увеличивается до 3500 об/мин и подложка вращается на протяжении 1 мин для удаления избытка резиста, пластина с нанесенным резистом отжигается при 185°С на протяжении 30 сек. Подложка с нанесенным первым слоем резиста помещается на держатель, и включается вакуумный прижим по обратной стороне подложки; на вращающуюся подложку при скорости 600 об/мин наносится резист РММА 950 А2, включается вращение подложки с резистом при 6000 об/мин. на протяжении 1 мин, производится повторный отжиг подложки при 185°С на протяжении 60 сек. Контроль однородности полученного покрытия производится при помощи оптического микроскопа. Перед выполнением литографии в ПО прибора создается топология образца в негативном изображении. Каждая подложка биосенсора представляет собой шесть аналитических лунок диаметром 7 мм. Каждая аналитическая лунка представляет собой массив вертикальных нанопроволок высотой 800 нм и диаметром 150 нм, ориентированных в узлах гексагональной решетки с параметром 350 нм, имеющим дефект в виде ряда отсутствующих проволок в центре. Контроль качества проявления резистов проводится при помощи растрового электронного микроскопа, совмещенного с установкой электронно-лучевой литографии.
Для проведения реактивного ионного травления (РИТ) на пластину предварительно наносят стойкую в условиях РИТ позитивную маску из никеля. Для этого производят следующие процедуры: пластина с проявленным слоем резиста крепится на держателе и переносится в камеру, производится вакуумирование системы, производится термическое напыление слоя никеля толщиной 10 нм; после металлизации пластина помещается в ацетон на 60 мин для удаления металла в не защищенной резистом области (процесс "lift-off") и очистки пластины от остатка резиста РММА, для удаления остатков резиста PMGI пластина помещается в N,N-диметилформамид на 60 мин. По завершении процесса получают кремниевую пластину с нанесенной никелевой маской.
Реактивное ионное травление массива нанопроволок производится по следующей технологической последовательности: пластина с никелевой маской переносится в загрузочный шлюз установки реактивного плазменного травления SPTS LPX ICP, шлюз вакуумируется и запускается процесс травления фотонных кристаллов (Аргон 15 sccm; Кислород 10 sccm; SF6 85 sccm; мощность 180 Вт 10 мин). Контроль качества изготовленных массивов нанопроволок производится на растровом электронном микроскопе.
После проведения РИТ полученные кремниевые пластины очищают от загрязнений путем выдерживания в изопропиловом спирте в течение 2 часов при слабом встряхивании, затем поверхность пластин промывают двукратным погружением в свежую порцию метилового спирта. Окончательную очистку проводят путем выдерживания в деионизованной воде в течение 2 часов при слабом встряхивании.
Производится подготовка окисляющего раствора. Для этого смешивают серную кислоту, перекись водорода и деионизованную воду в объемном соотношении 1:3:6. Полученный раствор перемешивают в течение 2 минут со скоростью 600 об/мин и далее помещают в холодильную камеру при температуре +4°С.
Предварительно очищенную кремневую пластину с массивом нанопроволок погружают в раствор-окислитель и проводят окисление при слабом перемешивании течение 30 минут.
По завершении процедуры окисленную пластину промывают, опустив в деионизованную воду, при слабом перемешивании в течении 30 минут. Далее отработанную воду заменяют на новую, и процедуру отмывки повторяют.
Для функционализации поверхности окисленных нанопроволок аминогруппами производят следующую процедуру. В 15 мл н-гексана помещают (3-аминопропил)триэтоксисилан (APTES) к количестве, эквивалентном 5 мкл на каждый квадратный сантиметр поверхности; полученный раствор перемешивают на вортексе в течение 10 минут. Далее окисленную кремневую пластину помещают в полученный раствор и производят перемешивание на лабораторном шейкере в течение 12 часов.
По завершении процедуры пластину выдерживают в чистом хлороформе в течение 15 минут, далее операцию повторяют 2 раза с заменой хлороформа.
Окончательную функционализацию поверхности кремниевых нанопроволок проводят следующим образом. Готовят раствор янтарного ангидрида (ЯА) в N,N-диметилформамиде в количестве, эквивалентном введенному ранее APTES. В полученный раствор помещают кремниевую пластину, прошедшую стадию обработки APTES, и производят перемешивание реакционного раствора на шейкере в течение 30 мин.
Обработанную пластину выдерживают в чистом хлороформе в течение 15 минут, далее операцию повторяют 2 раза заменой хлороформа.
Для иммобилизации распознающих аффинных молекул на поверхности нанопроволок проводят следующие процедуры: на поверхность пластины площадью 1 см2 наносят по 100 мкл водного раствора активирующих агентов 1-Этил-3-(3-диметиламинопропил)карбодиимида и сульфо-N-гидроксисукцинимида (EDC + Sulfo-NHS) с концентрацией 1-50 мг/мл и инкубируют при комнатной температуре в течение 20 минут, по окончании активации пластину отмывают от избытка активирующих агентов с помощью натрий-фосфатного буфера, рН 7,2). Для этого пластину помещают в емкость, заполненную PBS, и инкубируют в течение 5 минут в режиме покачивания на шейкере. Процедуру отмывки повторяют 3 раза, затем на поверхность пластины наносят по 100 мкл раствора распознающих аффинных молекул, растворенных предварительно в PBS до концентрации 0,000001-1 мг/мл. Реакцию инкубируют в течение ночи на +4°С, на следующий день массивы троекратно отмывают от избытка несвязавшихся аффинных молекул с помощью натрий-фосфатного буфера, рН 7,2 и инкубируют в блокирующем растворе (фосфатно-солевой буфер, рН 7,4 (PBS) с добавлением 0.5% бычьего сывороточного альбумина, BSA) в течение 2 часов при комнатной температуре.
Пример 2
Процесс проводят аналогично описанному в примере 1, однако процесс окисления пластин кремния производят термически в печи в атмосфере кислорода при температуре 800°С в течение 10 минут, плавно повышая температуру с комнатной до 800°С в течение 5 минут, также плавно понижая после проведения процедуры окисления.
Пример 3
Процесс проводят аналогично описанному в примере 1, однако дефект фотонного кристалла представляет собой от 1 до 11 отсутствующих проволок в центральном ряду. Получают локализацию излучения меток в данной области.
Пример 4
Процесс проводят аналогично описанному в примере 1, однако после измерения флуоресцентного сигнала меток проводят регенерацию биосенсора для его последующего использования по следующей процедуре. Готовят 500 мл 0,1 М буферного раствора Tris-HCl (нейтрализующий раствор). Для этого в мерную колбу на 500 мл помещают 6,05 г Trizma® base BioUltra, добавляют 400 мл воды степени чистоты MilliQ. Перемешивают до полного растворения кристаллов и титруют раствор 0,1 М HCl до рН 8,5. Доводят объем водой до 500 мл. Готовят 500 мл 0,1 М буферного раствора глицин-HCl, рН 2,8 (регенерирующий раствор). Для этого в мерную колбу на 500 мл помещают 2.85 г глицина, добавляют 400 мл воды степени чистоты MilliQ. Перемешивают до полного растворения кристаллов и далее титруют раствор 0,1 М HCl до рН 2,8. Доводят объем водой до 500 мл. На поверхность биосенсора, с иммобилизованным на его поверхности диагностическим комплексом, наносят 200 мкл регенерирующего раствора, инкубируют в течение 5-10 минут в режиме покачивания на шейкере. Удаляют регенерирующий раствор и наносят 200 мкл нейтрализующего раствора. Инкубируют в течение 5 минут в режиме покачивания на шейкере. Удаляют нейтрализующий буфер и наносят 200 мкл PBS, инкубируют в течение 5 минут в режиме покачивания. Повторяют процедуру отмывки 3 раза. Для оценки степени регенерации измеряют флуоресценцию сенсора при длине волны испускания флуорофоров, входящих в состав иммунодиагностического комплекса.
Таким образом, из описания видно, что данный способ расширит возможности применения биосенсоров на основе фотонных кристаллов в лабораторной и клинической практике благодаря возможности многократного использования, за счет регенерации аналитической поверхности, а также повысит аналитическую чувствительность детекции биологических аналитов.
Claims (14)
1. Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами, включающий создание фотонного кристалла в виде подложки для детекции, отличающийся тем, что фотонный кристалл формируют в виде подложки, несущей на себе двумерный упорядоченный массив нанопроволок, поверхность подложки готовят для модификации аффинными молекулами, проводят активацию аффинными молекулами, специфичными к целевым аналитам, присутствие целевых аналитов выявляют добавлением специфичных к ним детектирующих молекул, несущих на себе флуоресцентную метку, выбранную таким образом, чтобы максимум флуоресценции метки совпадал по длине волны с резонансной модой фотонного кристалла, приводя к увеличению интенсивности флуоресценции метки на этой длине волны, после чего поверхность биосенсора регенерируют для повторных использований.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве материала исходной подложки используют пластины кремния, SiO2. Si3N4, SiC.
3. Способ по п. 2, отличающийся тем, что при формировании фотонного кристалла нанопроволоки получают в результате травления подложки.
4. Способ по п. 2, отличающийся тем, что при формировании фотонного кристалла нанопроволоки выращивают на поверхности подложки.
5. Способ по п. 3, 4, отличающийся тем, что нанопроволоки, имеющие диаметр от 50 до 500 нм и высоту от 100 до 800 нм, располагают в узлах двумерной гексагональной решетки.
6. Способ по п. 5, отличающийся тем, что при формировании фотонного кристалла в массиве нанопроволок удаляют одну или несколько нанопроволок для формирования дефекта, внутри которого локализуется резонансная мода излучения.
7. Способ по п. 6, отличающийся тем, что при подготовке для модификации аффинными молекулами поверхность подложки окисляют химически в растворах, содержащих перекись водорода и серную кислоту для создания поверхностной пленки SiO2.
8. Способ по п. 6, отличающийся тем, что при подготовке для модификации аффинными молекулами поверхность подложки окисляют термически, нагревая до температур от 400 до 1000°C для создания поверхностной пленки SiO2.
9. Способ по п. 7, 8, отличающийся тем, что при подготовке для модификации аффинными молекулами проводят силанизацию поверхностного слоя молекулами (3-аминопропил)триэтоксисилана, позволяющими модифицировать поверхность нанопроволочных структур функциональными группами -NH2, и обрабатывают молекулами янтарного ангидрида - линкерами, создающими на поверхности группы -COOH.
10. Способ по п. 9, отличающийся тем, что при активации аффинными молекулами на поверхности биосенсора иммобилизуют распознающие аффинные молекулы, способные с высокой специфичностью связывать целевой аналит.
11. Способ по п. 10, отличающийся тем, что для детекции целевого аналита на поверхности биосенсора формируют иммуноферментный комплекс, который состоит из аффинной молекулы, целевого аналита и специфичной к нему детектирующей молекулы, несущей на себе флуоресцентную метку.
12. Способ по п. 11, отличающийся тем, что в качестве флуоресцентной метки используют органические красители.
13. Способ по п. 11 отличающийся тем, что в качестве флуоресцентной метки используют полупроводниковые нанокристаллы.
14. Способ по п. 12, 13, отличающийся тем, что регенерацию поверхности биосенсора, для повторного использования, проводят обработкой регенерирующим и нейтрализующим растворами.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015156900A RU2618606C1 (ru) | 2015-12-30 | 2015-12-30 | Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015156900A RU2618606C1 (ru) | 2015-12-30 | 2015-12-30 | Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2618606C1 true RU2618606C1 (ru) | 2017-05-04 |
Family
ID=58697673
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015156900A RU2618606C1 (ru) | 2015-12-30 | 2015-12-30 | Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2618606C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU190370U1 (ru) * | 2018-11-29 | 2019-06-28 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский ядерный университет МИФИ" (НИЯУ МИФИ) | Подложка для связывания ориентированным образом молекул образца для последующей модификации свойств молекул образца |
CN112697757A (zh) * | 2020-12-10 | 2021-04-23 | 浙江理工大学 | 一种用于Cr(Ⅵ)即时检测的荧光传感器的制备方法及其产品 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20080246961A1 (en) * | 2007-04-05 | 2008-10-09 | The Board Of Trustees Of The University Of Illinois | Biosensors with porous dielectric surface for fluorescence enhancement and methods of manufacture |
US7521769B2 (en) * | 2005-07-08 | 2009-04-21 | Sru Biosystems, Inc. | Photonic crystal biosensor structure and fabrication method |
US20090179637A1 (en) * | 2008-01-11 | 2009-07-16 | The Board Of Trustees Of The University Of Illinois | Label-free biosensors based upon distributed feedback laser |
RU2435730C1 (ru) * | 2010-07-13 | 2011-12-10 | Российская Федерация, от имени которой выступает Государственный заказчик Министерство образования и науки | Способ изготовления наноразмерных проволочных кремниевых структур |
US20130065777A1 (en) * | 2009-12-04 | 2013-03-14 | Trustees Of Boston University | Nanostructure biosensors and systems and methods of use thereof |
-
2015
- 2015-12-30 RU RU2015156900A patent/RU2618606C1/ru active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7521769B2 (en) * | 2005-07-08 | 2009-04-21 | Sru Biosystems, Inc. | Photonic crystal biosensor structure and fabrication method |
US20080246961A1 (en) * | 2007-04-05 | 2008-10-09 | The Board Of Trustees Of The University Of Illinois | Biosensors with porous dielectric surface for fluorescence enhancement and methods of manufacture |
US20090179637A1 (en) * | 2008-01-11 | 2009-07-16 | The Board Of Trustees Of The University Of Illinois | Label-free biosensors based upon distributed feedback laser |
US20130065777A1 (en) * | 2009-12-04 | 2013-03-14 | Trustees Of Boston University | Nanostructure biosensors and systems and methods of use thereof |
RU2435730C1 (ru) * | 2010-07-13 | 2011-12-10 | Российская Федерация, от имени которой выступает Государственный заказчик Министерство образования и науки | Способ изготовления наноразмерных проволочных кремниевых структур |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU190370U1 (ru) * | 2018-11-29 | 2019-06-28 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский ядерный университет МИФИ" (НИЯУ МИФИ) | Подложка для связывания ориентированным образом молекул образца для последующей модификации свойств молекул образца |
CN112697757A (zh) * | 2020-12-10 | 2021-04-23 | 浙江理工大学 | 一种用于Cr(Ⅵ)即时检测的荧光传感器的制备方法及其产品 |
CN112697757B (zh) * | 2020-12-10 | 2024-05-03 | 浙江理工大学 | 一种用于Cr(Ⅵ)即时检测的荧光传感器的制备方法及其产品 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kamińska et al. | Detection of Hepatitis B virus antigen from human blood: SERS immunoassay in a microfluidic system | |
Han et al. | Electrochemiluminescent biosensing of carbohydrate-functionalized CdS nanocomposites for in situ label-free analysis of cell surface carbohydrate | |
EP1373894B1 (en) | Microcavity biosensor, methods of making, and uses thereof | |
Gu et al. | ZnO quantum dot labeled immunosensor for carbohydrate antigen 19-9 | |
Sam et al. | Semiquantitative study of the EDC/NHS activation of acid terminal groups at modified porous silicon surfaces | |
JP5042820B2 (ja) | 生物活性表面を有する物品およびそれらの無溶媒調製法 | |
US6785432B2 (en) | Target molecules detection by waveguiding in a photonic silicon membrane | |
Liu et al. | Specific and reversible immobilization of histidine-tagged proteins on functionalized silicon nanowires | |
Guan et al. | Mesoporous silicon photonic crystal microparticles: towards single-cell optical biosensors | |
US20080149479A1 (en) | Sensor for Detection of Single Molecules | |
JPH07301615A (ja) | 液体媒質中の認識対の構成員である被検体の決定のための電気生化学的方法および系ならびにその電極 | |
Chao et al. | Glass substrates crosslinked with tetracycline-imprinted polymeric silicate and CdTe quantum dots as fluorescent sensors | |
RU2618606C1 (ru) | Способ создания регенерируемого биосенсора на основе комплекса фотонного кристалла с аффинными молекулами | |
De Stefano et al. | Porous silicon-based optical biochips | |
JP2009520101A (ja) | ルミネセンス性金属酸化物フィルム | |
JP2014519361A (ja) | Si含有粒子を用いた時間ゲート蛍光イメージング | |
Aziziyan et al. | Sodium dodecyl sulfate decorated Legionella pneumophila for enhanced detection with a GaAs/AlGaAs nanoheterostructure biosensor | |
Yuan et al. | Upconversion-nanoparticle-functionalized Janus micromotors for efficient detection of uric acid | |
Noblet et al. | Two-dimensional layers of colloidal CdTe quantum dots: assembly, optical properties, and vibroelectronic coupling | |
JP2011027632A (ja) | 生体分子固定化基板、生体分子輸送基板及びバイオチップ | |
JP2004117073A (ja) | 半導体センシングデバイスおよびその製造方法と、該デバイスを有してなるセンサ | |
JP5100291B2 (ja) | 蛍光性ナノ粒子、及び、それを用いて生体物質を観察する方法 | |
JP3942146B2 (ja) | 塩基配列検出用基板の製造方法および塩基配列検出方法 | |
Singh et al. | DNA hybridization on silicon nanowires | |
Demirel et al. | Photocontrollable DNA hybridization on reversibly photoresponsive surfaces |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
QB4A | Licence on use of patent |
Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20181130 Effective date: 20181130 |