RU2617043C1 - Вакцина против ящура и способ её получения и применения - Google Patents

Вакцина против ящура и способ её получения и применения Download PDF

Info

Publication number
RU2617043C1
RU2617043C1 RU2016110822A RU2016110822A RU2617043C1 RU 2617043 C1 RU2617043 C1 RU 2617043C1 RU 2016110822 A RU2016110822 A RU 2016110822A RU 2016110822 A RU2016110822 A RU 2016110822A RU 2617043 C1 RU2617043 C1 RU 2617043C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
mouth disease
foot
vaccine
antigen
virus
Prior art date
Application number
RU2016110822A
Other languages
English (en)
Inventor
Анатолий Яковлевич Самуйленко
Светлана Анатольевна Гринь
Владимир Иванович Еремец
Светлана Георгиевна Дресвянникова
Ирина Николаевна Матвеева
Николай Васильевич Мельник
Владимир Николаевич Боровой
Леонид Андреевич Дудников
Андрей Владимирович Гринь
Наталия Анатольевна Бондарева
Леонид Корольевич Киш
Сергей Николаевич Красуткин
Юрий Иванович Барсуков
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности" (ФГБНУ ВНИТИБП)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности" (ФГБНУ ВНИТИБП) filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности" (ФГБНУ ВНИТИБП)
Priority to RU2016110822A priority Critical patent/RU2617043C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2617043C1 publication Critical patent/RU2617043C1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/125Picornaviridae, e.g. calicivirus
    • A61K39/135Foot- and mouth-disease virus

Abstract

Группа изобретений относится к медицине, а именно к биотехнологии и иммунологии, и может быть использована для получения вакцины против ящура. Вакцина включает вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия, сапонин и в качестве адъюванта дополнительно используют натриевую соль сукцината хитозана при следующем соотношении компонентов, мас.%: сапонин 0,25-0,75, натриевая соль сукцината хитозана 05,-1,5, гидроокись алюминия в гликолевом буфере с рН 7,-8,6 15,0-25,0 и вирусный антиген ящура – остальное. Группа изобретений относится также к способу получения вакцины против ящура. Использование данной группы изобретений позволяет повысить иммуногенность целевого продукта при вакцинации животных от ящура. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 9 пр., 1 табл.

Description

Предлагаемое изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при изготовлении вакцины против ящура.
Известен способ изготовления вакцины против ящура типа О, включающий культивирование вирусного антигена в суспензионной культуре клеток ВНК-21 в течение 10-15 часов при 36-37°C, причем культивирование прекращают при достижении количества мертвых клееток 90-95%, после чего вирус ящура подвергают инактивации, очищают от балластных примесей, концентрируют полученный антиген и соединяют концентрат антигена с адъювантом. Вакцина, полученная данным способом, содержит авирулентный и очищенный антигенный материал в виде иммуногенных компонентов (146S+75S) вируса ящура типа О, гель гидроокиси алюминия, сапонин и поддерживающую среду (патент РФ №2212895, МПК A61K 39/135, C12N 7/00, 27.09.2003).
Недостатком известного способа изготовления вакцины является негарантированный уровень полученного антигенного материала в связи с оценкой его количества методом определения (146S+75S)-компонентов, т.к. капсид вируса 75S, как неполная структура антигена, склонна к разрушению до капсомеров 12S при температурных колебаниях и других физико-химических факторах.
Известны также вакцина и способ изготовления вакцины против ящура, включающий культивирование вирусного антигена в суспензионной культуре клеток ВНК-21 при температуре 36-37°C, очистку вирусной суспензии от балластных примесей, инактивацию, концентрирование полученного антигена вируса ящура и соединение концентрата антигена с адъювантом, причем, начиная с 6-8 часов культивирования вирусного антигена, через каждые 2 часа определяют процент мертвых клеток, и при достижении его уровня 95% и выше осуществляют дальнейшее культивирование в течение 2-8 часов в зависимости от типа вируса (патент РФ №2332233, МПК A61K 39/135, Бюл. №24, 27.08.2008).
Недостатком известного технического решения является не только недостаточная иммуногенность целевого продукта, но и то, что при изготовлении вакцины не учитывается показатель специфического местного иммунитета.
Задачей предлагаемого изобретения является повышение эффективности предложения за счет повышения его иммуногенности и снижения заболеваемости сельскохозяйственных животных.
Поставленная задача решается в вакцине против ящура, включающей вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия и адъювант - сапонин тем, что в качестве адъюванта дополнительно используют натриевую соль сукцината хитозана при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000001
Также поставленная задача решается в вакцине против ящура, включающей вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия и адъювант - сапонин тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа А штамм А22 №550.
Также поставленная задача решается в вакцине против ящура, включающей вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия и адъювант - сапонин тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа О штамм O1 Manisa или штамм O1 №1618.
Также поставленная задача решается в вакцине против ящура, включающей вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия и адъювант - сапонин тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа Азия-1 штамм Шамир.
Также поставленная задача решается в способе получения вакцины против ящура, включающем культивирование вирусного антигена в суспензионной культуре клеток, очистку вирусной суспензии от балластных примесей, инактивацию, концентрирование полученного антигена вируса ящура гидроокисью алюминия и соединение концентрата антигена с адъювантом - сапонином, отличающемся тем, что культивирование вирусного антигена проводят в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13, а в качестве адъюванта используют смесь натриевой соли сукцината хитозана и сапонина.
Также поставленная задача решается в способе применения вакцины против ящура, включающем вакцинацию в вакцинальной дозе антигенного материала, тем, что вакцинирование проводят смесью вакцин, одна из которых содержит антиген, изготовленный на основе вируса ящура, распространенного в регионе применения вакцины, а другая - антиген, изготовленный на основе вируса ящура, распространенного в пограничном районе региона применения ее, взятых в соотношении 1:0,1-0,2 соответственно, в суммарной дозе антигенов - 7-10 мкг, а при ревакцинации через 7-8 суток используют половину вакцинальной дозы.
Культура клеток ВНК-21-13-13 известна (патент №2553552, «ВНК-21/13-13-перевиваемая монослойно-суспензионная сублиния клеток почки новорожденного сирийского хомячка, предназначенная для репродукции вируса ящура и вируса бешенства», МПК C12N 5/071, опубликовано 20.06.2015 Бюл. №17).
Штаммы вируса ящура типа А (штамм А22 №550), типа О (штамм O1 Manisa или штамм O1 №1618) и типа Азия-1 (штамм Шамир) известны (патент РФ №2332233, МПК A61K 39/135, опубликовано 27.08.2008, Бюл. №24).
В патентной и научно-технической литературе не известны технические решения, содержащие признаки, аналогичные заявляемым предложениям, т.е. предложенные технические решения соответствует критерию «новизна» и «изобретательский уровень».
Все режимы способа осуществимы в лабораторных и промышленных условиях, направлены на решение реальной технической задачи, т.е. предложение «промышленно применимо».
Пример 1. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура А22 №550, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 36°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 95% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 2 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура А22 №550 добавляют 12% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 7,4 до конечной концентрации 15%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас. %:
Figure 00000002
Полученную вакцину 1 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 2. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура А22 №550, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 37°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 98% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 1,5 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура А22 №550 добавляют 15% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 8,6 до конечной концентрации 25%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000003
Полученную вакцину 2 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 3. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура O1 Manisa, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 36°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 95% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 2 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура O1 Manisa добавляют 12% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 7,4 до конечной концентрации 15%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000004
Полученную вакцину 3 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 4. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура O1 Manisa, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 37°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 98% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 1,5 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура O1 Manisa добавляют 15% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 8,6 до конечной концентрации 25%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000005
Полученную вакцину 4 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 5. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура O1 №1618, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 36°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 95% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 2 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура O1 №1618 добавляют 12% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 7,4 до конечной концентрации 15%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000006
Полученную вакцину 5 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 6. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура O1 №1618, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 37°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 98% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 1,5 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура O1 №1618 добавляют 15% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 8,6 до конечной концентрации 25%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000007
Полученную вакцину 6 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 7. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура Шамир, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 36°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 95% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 2 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура Шамир добавляют 12% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 7,4 до конечной концентрации 15%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000008
Полученную вакцину 7 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Пример 8. Для изготовления моновалентной вакцины используют вирус ящура Шамир, который культивируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13 при температуре 37°C. Через 6 часов культивирования осуществляют отбор проб через каждые 2 часа и подсчитывают живые и мертвые клетки. При достижении количества мертвых клеток более 98% отбор проб прекращают, а культивирование осуществляют еще в течение 1,5 часов.
После накопления необходимого количества вирусную суспензию подвергают сепарированию. К полученному антигену вируса ящура Шамир добавляют 15% гидроокись алюминия в гликолевом буфере с pH 8,6 до конечной концентрации 25%. Полученную вирусную суспензию с гидроокисью алюминия отправляют на инактивацию. Инактивацию осуществляют путем добавления при перемешивании димера этиленимина до концентрации 0,04% и температуры до 30°C. Далее к реакционной среде добавляют сапонин натриевую соль сукцината хитозана в качестве адъюванта, получая вакцину 1 при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000009
Полученную вакцину 8 расфасовывают и проверяют на стерильность, авирулентность, безвредность, иммуногенную активность.
Результаты исследования иммуногенной активности моновалентных вакцин при исследовании на крупном рогатом скоте представлена в данных таблицы 1.
Пример 9. В 30% хозяйствах региона применения вакцины вакцинируют молодняк крупного рогатого скота прививают с 4-х месяцев, молодняк овец и коз - с 3-х месяцев всех клинически здоровых животных, вакцинирование проводят смесью вакцин, одна из которых содержит антиген, изготовленный на основе вируса ящура типа А, в частности штамм А22 №550, распространенного в регионе применения вакцины, а другая - антиген, изготовленный на основе вируса ящура типа Азия-1, в частности штамм Шамир, распространенного в пограничном районе региона применения ее, в частности, взятых в соотношении 1:0,1, соответственно, в суммарной дозе антигенов - 7 мкг, а при ревакцинации через 7 суток используют половину вакцинальной дозы.
Также в 30% хозяйствах региона применения вакцины вакцинируют молодняк крупного рогатого скота прививают с 4-х месяцев, молодняк овец и коз - с 3-х месяцев всех клинически здоровых животных, вакцинирование проводят смесью вакцин, одна из которых содержит антиген, изготовленный на основе вируса ящура типа А, в частности штамм А22 №550, распространенного в регионе применения вакцины, а другая - антиген, изготовленный на основе вируса ящура типа Азия-1, в частности штамм Шамир, распространенного в пограничном районе региона применения ее, в частности, взятых в соотношении 1:0,2, соответственно, в суммарной дозе антигенов - 10 мкг, а при ревакцинации через 8 суток используют половину вакцинальной дозы.
В остальных 40% хозяйствах Дагестана вакцинируют молодняк крупного рогатого скота прививают с 4-х месяцев, молодняк овец и коз - с 3-х месяцев всех клинически здоровых животных. Вакцинирование и ревакцинирование проводят известной вакциной, согласно известной инструкции по применению.
Место инъекции обрабатывают 70%-ным этиловым спиртом или другим дезинфицирующим раствором. Для каждого животного используют отдельную иглу или шприц однократного применения. Каждый флакон перед применением и в процессе вакцинации и ревакцинации необходимо тщательно взбалтывать.
В результате ни в одном из 60% хозяйств, применяющих вакцинирование, согласно заявляемому способу, заболеваний ящура не установлено. В то же время в хозяйствах, использующих известную вакцину, заболевание ящуром установлено.
Таким образом, заявленное предложение позволяет в 1,5-2,3 раз повысить иммуногенность целевого продукта и полностью провести защиту сельскохозяйственных животных от ящура при выявлении в пограничных районах региона применения вакцинирования заболеваний ящуром, вызванных иным штаммом вируса ящура, чем распространенного в регионе применения вакцины.
Figure 00000010

Claims (6)

1. Вакцина против ящура, включающая вирусный антиген ящура, гидроокись алюминия, адъювант – сапонин, отличающаяся тем, что в качестве адъюванта дополнительно используют натриевую соль сукцината хитозана при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Figure 00000011
2. Вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа А штамм А22 №550.
3. Вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа О штамм O1 Manisa или штамм O1 №1618.
4. Вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в качестве вируса ящура используют вирус ящура типа Азия-1 штамм Шамир.
5. Способ получения вакцины против ящура по п. 1, включающий культивирование вирусного антигена в суспензионной культуре клеток, очистку вирусной суспензии от балластных примесей, инактивацию, концентрирование полученного антигена вируса ящура гидроокисью алюминия и соединение концентрата антигена с адъювантом - сапонином, отличающийся тем, что культивирование вирусного антигена проводят в суспензионной культуре клеток ВНК-21-13-13, а в качестве адъюванта используют смесь натриевой соли сукцината хитозана и сапонина.
RU2016110822A 2016-03-24 2016-03-24 Вакцина против ящура и способ её получения и применения RU2617043C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016110822A RU2617043C1 (ru) 2016-03-24 2016-03-24 Вакцина против ящура и способ её получения и применения

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016110822A RU2617043C1 (ru) 2016-03-24 2016-03-24 Вакцина против ящура и способ её получения и применения

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2617043C1 true RU2617043C1 (ru) 2017-04-19

Family

ID=58642638

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016110822A RU2617043C1 (ru) 2016-03-24 2016-03-24 Вакцина против ящура и способ её получения и применения

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2617043C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2785113C1 (ru) * 2021-12-21 2022-12-02 Федеральное Казенное Предприятие "Щелковский Биокомбинат" Вакцина против ящура (варианты)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2143921C1 (ru) * 1999-04-21 2000-01-10 Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных Вакцина против ящура типа а и способ ее изготовления
WO2002000251A1 (fr) * 2000-06-29 2002-01-03 Merial Vaccin contre la fievre aphteuse
RU2212895C2 (ru) * 2001-11-01 2003-09-27 Федеральное государственное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных Вакцина против ящура типа о и способ ее изготовления
US20160022803A1 (en) * 2013-03-15 2016-01-28 Glaxosmithkline Biologicals S.A. Vaccine

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2143921C1 (ru) * 1999-04-21 2000-01-10 Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных Вакцина против ящура типа а и способ ее изготовления
WO2002000251A1 (fr) * 2000-06-29 2002-01-03 Merial Vaccin contre la fievre aphteuse
RU2212895C2 (ru) * 2001-11-01 2003-09-27 Федеральное государственное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных Вакцина против ящура типа о и способ ее изготовления
US20160022803A1 (en) * 2013-03-15 2016-01-28 Glaxosmithkline Biologicals S.A. Vaccine

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2785113C1 (ru) * 2021-12-21 2022-12-02 Федеральное Казенное Предприятие "Щелковский Биокомбинат" Вакцина против ящура (варианты)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2593718C1 (ru) Вакцина инактивированная эмульсионная против ящура типов а, о, азия-1
CN103083659A (zh) 新型无油佐剂制备方法及用途
RU2603003C1 (ru) Вакцина инактивированная сорбированная против ящура типов а, о, азия-1
Perez et al. Production methods for rabies vaccine
Mazija et al. Immunogenicity and safety of Queensland V4 and Ulster 2C strains of Newcastle disease virus given to maternally immune, newly hatched chickens by nebulization
CN110302374B (zh) 犬用疫苗及其制备方法和应用
RU2617043C1 (ru) Вакцина против ящура и способ её получения и применения
Mebatsion Introduction to Veterinary Vaccines
RU2372938C1 (ru) Инактивированная бивалентная вакцина против вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота и способ профилактики вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота
US3585108A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
JP5946453B2 (ja) 変異狂犬病ウイルス及びワクチン
RU2631129C1 (ru) Способ изготовления вакцины против ящура и вакцина против ящура
US3704203A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
RU2463073C1 (ru) Вакцина против трансмиссивного гастроэнтерита свиней и способ ее применения
RU2587323C1 (ru) Способ получения гипериммунной сыворотки против парагриппа-3 крупного рогатого скота
RU2504400C1 (ru) Вакцина ассоциированная против парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи крупного рогатого скота эмульсионная инактивированная
RU2798293C1 (ru) Вакцина против ящура из штамма А/Афганистан/2017 нового генотипа A/ASIA/Iran-05 FAR-11 культуральная инактивированная сорбированная
RU2815536C1 (ru) Вакцина против ящура генотипа A/AFRICA/G-I из штамма "А/Танзания/2013" культуральная инактивированная сорбированная
CN102657860A (zh) 一种犬细小病毒蜂胶灭活疫苗及其制备方法
RU2810131C1 (ru) Вакцина против ящура генотипа O/ME-SA/PanAsia2ANT-10 из штамма "О N2356/Пакистан/2018" культуральная инактивированная сорбированная
RU2652889C1 (ru) Способ изготовления вакцины инактивированной эмульсионной против ящура и вакцина инактивированная эмульсионная против ящура
RU2457859C1 (ru) Вакцина против вирусной диареи крупного рогатого скота
RU2005490C1 (ru) Способ профилактики чумы плотоядных
US11492387B2 (en) Broad spectrum vaccine, preparing method and application thereof
RU2231365C1 (ru) Способ изготовления вакцины против вирусной гемморрагической болезни кроликов