RU2609858C1 - Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза - Google Patents
Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза Download PDFInfo
- Publication number
- RU2609858C1 RU2609858C1 RU2016115780A RU2016115780A RU2609858C1 RU 2609858 C1 RU2609858 C1 RU 2609858C1 RU 2016115780 A RU2016115780 A RU 2016115780A RU 2016115780 A RU2016115780 A RU 2016115780A RU 2609858 C1 RU2609858 C1 RU 2609858C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dose
- multilocularis
- days
- echinococcosis
- larval stage
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/002—Protozoa antigens
- A61K39/005—Trypanosoma antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/56—Materials from animals other than mammals
- A61K35/62—Leeches; Worms, e.g. cestodes, tapeworms, nematodes, roundworms, earth worms, ascarids, filarias, hookworms, trichinella or taenia
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
- A61K35/68—Protozoa, e.g. flagella, amoebas, sporozoans, plasmodium or toxoplasma
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине и касается способа профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза, включающий введение клеточного антигена из протосколексов Echinococcus multilocularis, где одновременно с клеточным антигеном из протосколексов Е.multilocularis вводят подкожно биопрепарат, представляющий собой мембранную фракцию клеток эпимастигот Trypanosoma cruzi. Изобретение обеспечивает развитие защитной иммунной реакции, предохраняющей от последующего заражения. 2 пр., 2 табл.
Description
Изобретение относится к ветеринарной и медицинской гельминтологии и может быть использовано для иммунопрофилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза.
Echinococcus multilocularis - возбудитель альвеолярной формы эхинококкоза (гидатидоза) относится к числу наиболее патогенных социально опасных гельминтов. Вызываемое этим паразитом заболевание имеет большое распространение в различных зонах земного шара, представляет серьезную угрозу для здоровья человека и является актуальной проблемой для ветеринарной медицины. Большое влияние эхинококкозов на экономику и здоровье населения признаны Комитетом Экспертов ВОЗ. Зоны высокого риска болезни альвеолярной формой эхинококкоза (гидатидоза) давно известны во Франции, Швейцарии, Германии (1); Японии (2, 3, 4); Словакии (5). За последние годы отмечено широкое распространение цистного и альвеолярного гидатидоза также в России, что связано с возросшей миграцией населения, развалом устоявшихся экономических отношений, а также в связи с ухудшением социальной жизни и снижения санитарно-эпидемиологического контроля (6, 7, 8).
По мнению исследователей с каждым годом отмечается увеличение числа случаев заболевания людей и альвеолярный эхинококкоз (гидатидоз) становится важной проблемой ветеринарии и здравоохранения в этих странах и требует немедленной организации методов борьбы и профилактики. Степень отрицательного влияния этой инвазии на здоровье зараженных людей трудно оценить. В запущенных случаях болезнь, как правило, неизлечима, поскольку в этот период уже значительно поражена печень, а метастазы подобно раковой опухоли уже имеются и в других органах и тканях. В этом случае даже пересадка печени может оказаться малоэффективной.
Такая ситуация выдвигает проблему разработки мер профилактики и лечения этого опасного гельминтозооноза в качестве одной из приоритетных направлений гельминтологической науки и практики.
В борьбе с ларвальной стадией альвеолярного эхинококкоза наиболее приемлемым и осуществимым являются три пути: химиотерапия, вакцинопрофилактика, иммунотерапия.
Проведение химиотерапии всегда сопровождается большими дозами химических препаратов и длительным их применением. Но даже в этом случае этот способ недостаточно эффективен, поскольку помимо развития резистентности паразита к лечебному химиопрепарату, в процессе лечения происходит только приостановка его развития, а не окончательная гибель, что впоследствии приводит к возобновлению заболевания и возникновению метастазов.
К способам профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза относится использование специфических и неспецифических стимуляторов иммунной системы, позволяющих повысить резистентность животных и человека к заражению, подавлять рост метацестод Е. multilocularis и вызывать гибель популяции паразита.
Неспецифическая резистентность хлопковых крыс к заражению Е. multilocularis с полным подавлением роста метацестод паразита достигалась введением им внутрибрюшинно 26,4x106 единиц БЦЖ. Эта доза хорошо переносилась и на 100% убивала ларвоцисты паразита у экспериментально зараженных монгольских песчанок (9).
Аналогичный достаточно сильный эффект защиты достигался у мышей относительно низкими дозами вакцины БЦЖ (103 - 107 колониеобразующих единиц), который выражался значительно меньшими размерами паразитарных узлов по сравнению с контрольными (10). Однако по данным Reuben et al. (11) при дозе 105 - 107 единиц БЦЖ у мышей развивались туберкулезные гранулемы.
Защита от альвеолярного гидатидоза достигалась также стимулированием хлопковых крыс клеточным перитонеальным экссудатом, полученным через 3 дня после внутрибрюшинного введения фитогемагглютинина. Такая процедура в значительной мере предохраняла животных от развития ларвоцист Echinococcus multilocularis в брюшной полости и во внутренних органах (12).
Известен случай профилактики вторичного альвеолярного гидатидоза, предусматривающий использование специфического компонента - антигена культивируемых клеток протосколексов Е. multilocularis и иммуномодулятора - риботана, повышающего иммунореактивность специфического антигена (13).
Профилактическим действием, защищающим хлопковых крыс от инвазии Echinococcus multilocularis, обладали клеточные мембраны Micobacterium bovis штамма BCG (BCG - CW), которые вводили экспериментальным животным в дозе 150 мкг за две недели до внутрибрюшинной инокуляции им выводковых капсул Е. multilocularis в эмульсии вазелинового масла в солевом растворе Твин-80. Этот способ предлагается авторами для профилактики метастаз у больных альвеококкозом (14). Однако ранее было установлено, что при повышенных дозах БЦЖ у экспериментальных животных развиваются туберкулезные гранулемы, что требует более тщательной отработки дозы этой вакцины и разработки лечения туберкулом (15).
Наиболее близким к заявляемому техническим решением является использование специфического компонента - антигена культивируемых клеток протосколексов Е. multilocularis и иммуномодулятора риботана, повышающего иммунореактивность специфического антигена. Однако этот способ не обеспечивает 100%-ный эффект защиты.
Учитывая серьезную опасность ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза для людей и перспективность развития вакцинопрофилактики этой инвазии была проведена работа по разработке способа профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза на модели мышь - Е. multilocularis; кролик - Е. multilocularis с использованием специфического антигена Е. multilocularis и неспецифического биопрепарата, представляющего собой мембранную фракцию клеток эпимастигот (МФКЭ) Т. cruzi, полученную в ступенчатом градиенте сахарозы, распологающуюся на границе слоев 30-60%. Способность продуцировать противоопухолевое начало является видовым свойством Т. cruzi и доказано многими исследователями как у нас в стране, так и за рубежом (16).
Задачей предлагаемого изобретения является создание способа иммунизации, обеспечивающего развитие защитной иммунной реакции, предохраняющей от последующего заражения.
Поставленная задача решается тем, что одновременно с клеточным антигеном из протосколексов Е. multilocularis животным вводят подкожно МФКЭ - причем дозу вводимого МФКЭ через каждые 10 дней увеличивают в 2-3 раза. Количественный расчет клеточного антигена из протосколексов Е. multilocularis проводят по содержанию белка, а МФКЭ в единицах действия (ЕД). Одна ЕД содержит 1 млн клеток в 1 мл. Белок в клеточном антигене определяли спектрофотометрически по Layne (17). Клеточный антиген - антигеноактивные метаболиты клеток протосколексов Е. multilocularis, получают из приготовленной первичной клеточной культуры протосколексов E. multilocularis, последующего культивирования клеток в искусственных питательных средах с добавлением необходимых факторов роста, получения перевиваемой клеточной культуры и отбора антигеноактивных серий метаболитов клеток с использованием иммуноферментной реакции. Клеточный антиген вызывает иммунный ответ у кроликов и реагирует с гомологичной антисывороткой, образуя в реакции иммунодиффузии в агаровом геле не менее 5-6 комплексов антиген - антитело в виде проявленных полос преципитации.
Непосредственно перед проведением экспериментов на животных - моделях определяли необходимое количество иммунизирующей дозы клеточного антигена Е. multilocularis (по белку) в объемном выражении и смешивали с рассчитанной увеличивающейся дозой МФКЭ по ЕД. Полученный иммунопрепарат использовали для профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза на животных - моделях при 3-кратном подкожном введении с интервалом 10 дней и последующем проверочном заражении иммунизированных и контрольных животных инвазивным материалом Echinococcus multilocularis через 20 дней после последней иммунизации.
Первая иммунизирующая доза иммунопрепарата для мышей составила 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена и 5 ЕД МФКЭ; вторая - 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена и 10 ЕД МФКЭ; третья - 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена и 20 ЕД МФКЭ; для кроликов - первая доза - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена и 5 ЕД МФКЭ; вторая - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена и 15 ЕД МФКЭ и третья - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена и 45 ЕД МФКЭ.
Технический результат заявленного изобретения заключается в разработке способа, обладающего высоким защитным эффектом против ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза.
Примеры конкретного исполнения
Пример 1. Протективные свойства заявленного способа оценивали при экспериментальной ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза на мышах.
Исследования провели на 48 белых беспородных мышах, массой 20,0 г, распределенных на 4 равноценные группы (табл. 1).
Первая группа мышей была иммунизирована подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней иммунопрепаратом из расчета: первая иммунизация - 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена с 5 ЕД МФКЭ; вторая - 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена с 10 ЕД МФКЭ; третья - 0,2 (60 мкг белка) клеточного антигена с 20 ЕД МФКЭ.
Вторая группа мышей была иммунизирована подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней МФКЭ в дозе 5 ЕД, 10 ЕД и 20 ЕД соответственно, каждую дозу вводили в 0,2 мл стерильного физиологического раствора.
Третья группа мышей получала подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней по 0,2 мл (60 мкг белка) клеточного антигена.
Четвертая контрольная группа мышей получала 3-кратно подкожно с интервалом 10 дней по 0,2 мл стерильного физиологического раствора.
По истечении 20 дней мышей всех 4-х групп заразили протосколексами и ацефалоцистами Е. multilocularis в дозе 750±50 экз/мышь. Убой подопытных мышей провели через 90 дней после заражения. Результаты эксперимента, представленные в табл. 1, показали, что все мыши первой группы, иммунизированные иммунопрепаратом (клеточный антиген + МФКЭ), оставались незараженными, у них в органах и в брюшной полости ларвоцисты паразита не были обнаружены. Таким образом, эффективность защиты составила 100%.
У мышей второй группы, иммунизированных только МФКЭ без клеточного антигена ,защитный эффект составил 75,0%, у трех мышей из этой группы были обнаружены единичные ларвоцисты в брюшной полости без зародышевых элементов.
Мыши третьей группы, которые были иммунизированы только клеточным антигеном без МФКЭ, оказались защищенными от инвазии на 66,7%. У четырех мышей из этой группы были обнаружены ларвоцисты в брюшной полости и на паренхиме печени.
Мыши четвертой контрольной группы были все заражены, у них обнаружены многочисленные ларвоцисты во всех внутренних органах и в брюшной полости размером до 1,2 см в диаметре, массой 0,105-1086 г с протосколексами.
Пример 2. Протективные свойства заявленного способа при экспериментальной ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза на кроликах (табл. 2).
Исследования провели на 6 кроликах массой 1,5 кг, распределенных на 2 группы по 3 кролика в каждой.
Кролики первой группы были иммунизированы иммунопрепаратом (клеточный антиген + МФКЭ) подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней: первая доза - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена с 5 ЕД МФКЭ; вторая - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена с 15 ЕД МФКЭ и третья - 0,5 мл (4,5 мг белка) клеточного антигена с 45 ЕД МФКЭ.
Вторая контрольная группа кроликов получала подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней по 0,5 мл стерильного физраствора.
По истечении 20 дней, со дня последней иммунизации, все подопытные кролики были заражены протосколексами и ацефалоцистами в количестве 750±50 экз/животное. Убой кроликов провели на 90-й день после заражения. Результаты эксперимента, представленные в табл. 2, показали, что все кролики первой группы оставались свободными от инвазии. Таким образом, эффективность защиты составила 100%. Кролики контрольной группы все были заражены, в брюшной полости и во внутренних органах были обнаружены многочисленные ларвоцисты паразита 2,5-3,0 см в диаметре со сформировавшимися протосколексами.
Источники информации
1. Berke О., Keyserlingk М. Von, Broil S., Kreienbrock L. // Berk Miinch. Tierarztl. Wschr. - 2002. - V. 115, №11-12. - S. 428-434.
2. Giman A.E., Nonaka M., Oku V., Kamiya MM Jap. J. Vet. Res., 2002. - V. 49, №4. - P. 287-296.
3. Gnoue T. // Jap. J. Vet. Res., 2003. - V. 51, №1. - P. 39.
4. Liu Ch. // Jap J. Vet. Res. - 2004. - V. 52, №1, P. 39.
5. Miterpakova M., Reiterova K., Turcekova L., Dubinsky P. // Helmintologia. - 2003. - V. 40, №3. - P. 180.
6. Маркин А.В. // Теория и практика борьбы с паразитарными болезями. - 1999. - c. 152-154.
7. Мусаев Г.X.// Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 1999. - с. 170-171.
8. Kovalenko F.P. et al. // Acta Parasitologica, 8 Europ Microcolloquium of Parasitol. - 2002. - V. 45, №3. - p. 241-242.
9. Rau M.E., Tanner C.E. // Nature, London. - 1975. - V. 256, №5515. - P. 318-319.
10. Reuben J.M., Tanner C. EM Short. Commun., Warszawa. - 1978. - sec. E. - P. 51-52.
11. Reuben J.M., Tanner С.E, Rau M. EM Infect, and Immun. - 1978. - V. 21, №1. - P. 135-139.
12. Reuben J.M., Tanner C.E. // Parasite immunol. - 1983. - v. 5., №1. - 61-66.
13. Бережко и др. Патент №221921 А. 11 окт. 2004 г. Бюл. №19.
14. Reuben J.М., Tanner С.Е, Portelance V. // Infect, and Immun. - 1979. - V. 23, № З..Р. 582-585.
15. Tompson R.C. // Z. Parasitenk. - 1976. - V. 21, № L-P. 31-36.
16. Каллиникова В.Д. Противоопухолевые свойства жгутикового простейшего Tripanosoma cruzi. - М., МГУ. 2004 г. 280 с.
17. Layne Е. // Methods Enzymol. - 1957. - V. З.-Р. 447-454.
Таблица 1 | |||||||
Протективные свойства клеточного антигена (КлАг) протосколексов E. multilocularis в комплексе с биопрепаратом МФКЭ при ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза мышей | |||||||
№ групп | Кол-во мышей в группе | Иммунизирующее средство, доза | Кратность иммунизации | Интервал между иммунизациями | Доза заражения1, экз. | Кол-во заразившихся мышей | Эффективность защиты, % |
1 | 12 | Препарат МФКЭ (5, 10, 20 ЕД) + КлАг (60 мкг белка) | 3 | 10 | 750±50 | 0 | 100 |
2 | 12 | Препарат МФКЭ (5, 10, 20 ЕД) | 3 | 10 | 750±50 | 3 | 75,0 |
3 | 12 | КлАг (60 мкг белка) | 3 | 10 | 750±50 | 4 | 66,7 |
4 Контроль |
12 | Физиологический р-р | 3 | 10 | 750±50 | 12 | 0 |
1 – заражение через 20 дней после последней иммунизации |
Таблица 2 | |||||||
Протективные свойства клеточного антигена (КлАг) протосколексов E. multilocularis в комплексе с биопрепаратом МФКЭ при ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза кроликов | |||||||
№ групп | Кол-во кроликов в группе | Иммунизирующее средство, доза | Кратность иммунизации | Интервал между иммунизациями | Доза заражения* | Кол-во заразившихся кроликов | Эффективность защиты, % |
1 | 3 | МФКЭ (5 ЕД, 15 ЕД, 45 ЕД) + КлАг (4,5 мг белка) в 0,5 мл физраствора | 3 | 10 | 750±50 | - | 100 |
2 Контроль |
3 | Физиологический раствор 0,5 мл | 3 | 10 | 750±50 | 3 | 0 |
* – заражение через 20 дней после последней иммунизации |
Claims (1)
- Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза животных, включающий введение клеточного антигена из протосколексов Echinococcus multilocularis в дозе 3,0 мг/кг массы, 3-кратно подкожно с интервалом 10 дней, отличающийся тем, что одновременно с клеточным антигеном из протосколексов Е.multilocularis вводят подкожно 3-кратно с интервалом 10 дней биопрепарат, представляющий собой мембранную фракцию клеток эпимастигот Trypanosoma cruzi, в начальной дозе 5 ЕД (1 ЕД - 1 млн клеток) с увеличением дозы вводимого биопрепарата через каждые 10 дней в 2-3 раза.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016115780A RU2609858C1 (ru) | 2016-04-22 | 2016-04-22 | Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016115780A RU2609858C1 (ru) | 2016-04-22 | 2016-04-22 | Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2609858C1 true RU2609858C1 (ru) | 2017-02-06 |
Family
ID=58457263
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016115780A RU2609858C1 (ru) | 2016-04-22 | 2016-04-22 | Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2609858C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110283820A (zh) * | 2019-04-29 | 2019-09-27 | 新疆医科大学第一附属医院 | 抑制细粒棘球蚴原头节dna氧化损伤修复基因表达的干扰rna及其应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999060130A1 (en) * | 1998-05-21 | 1999-11-25 | University Of Pittsburgh Of The Commonwealth System Of Higher Education | Expression of recombinant trypanosoma cruzi complement regulatory protein (crp) |
RU2279274C2 (ru) * | 2004-10-11 | 2006-07-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС) | Способ профилактики вторичного альвеолярного эхинококкоза (гидатидоза) |
WO2006108224A1 (en) * | 2005-04-11 | 2006-10-19 | Murdoch University | Antiparasitic compounds |
-
2016
- 2016-04-22 RU RU2016115780A patent/RU2609858C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999060130A1 (en) * | 1998-05-21 | 1999-11-25 | University Of Pittsburgh Of The Commonwealth System Of Higher Education | Expression of recombinant trypanosoma cruzi complement regulatory protein (crp) |
RU2279274C2 (ru) * | 2004-10-11 | 2006-07-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС) | Способ профилактики вторичного альвеолярного эхинококкоза (гидатидоза) |
WO2006108224A1 (en) * | 2005-04-11 | 2006-10-19 | Murdoch University | Antiparasitic compounds |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
NAGAKURA K., et al., Subcellular fractionation of Trypanosoma cruzi; isolation and characterization of plasma membranes from epimastigotes.Tokai J Exp Clin Med. 1986 Mar;11(1):23-9. ZHOU HX., et al., [Effect of combined pentoxifylline and albendazole against echinococcus multilocularis infection in mice].[Article in Chinese] Zhongguo Ji Sheng Chong Xue Yu Ji Sheng Chong Bing Za Zhi. 2006 Oct;24(5):333-6. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110283820A (zh) * | 2019-04-29 | 2019-09-27 | 新疆医科大学第一附属医院 | 抑制细粒棘球蚴原头节dna氧化损伤修复基因表达的干扰rna及其应用 |
CN110283820B (zh) * | 2019-04-29 | 2023-07-28 | 新疆医科大学第一附属医院 | 抑制细粒棘球蚴原头节dna氧化损伤修复基因表达的干扰rna及其应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Conti et al. | The British variant of the new coronavirus-19 (Sars-Cov-2) should not create a vaccine problem | |
Ogilvie et al. | Immunity in the parasitic relationship between helminths and hosts | |
Koppang et al. | Fish mucosal immunity: gill | |
US9616115B2 (en) | Purified plasmodium and vaccine compositions | |
Tsuji et al. | Recombinant Ascaris 16-Kilodalton protein-induced protection against Ascaris suum larval migration after intranasal vaccination in pigs | |
Cerbán et al. | Signaling pathways that regulate Trypanosoma cruzi infection and immune response | |
Singh et al. | Host-directed therapies for parasitic diseases | |
Silvane et al. | A vaccine based on Kunitz-type molecule confers protection against Fasciola hepatica challenge by inducing IFN-γ and antibody immune responses through IL-17A production | |
Joshi et al. | Studies on the protective efficacy of second-generation vaccine along with standard antileishmanial drug in Leishmania donovani infected BALB/c mice | |
Peón et al. | Regulation of immunity by Taeniids: lessons from animal models and in vitro studies | |
Clarkson | Immunological responses to Histomonas meleagridis in the turkey and fowl. | |
RU2609858C1 (ru) | Способ профилактики ларвальной стадии альвеолярного эхинококкоза | |
Salgado et al. | Pam3CSK4 adjuvant given intranasally boosts anti-Leishmania immunogenicity but not protective immune responses conferred by LaAg vaccine against visceral leishmaniasis | |
RU2279274C2 (ru) | Способ профилактики вторичного альвеолярного эхинококкоза (гидатидоза) | |
Mak et al. | Immunity to pathogens | |
KR101640716B1 (ko) | 면역보조제를 첨가한 스쿠티카충 백신 조성물 | |
Savina et al. | The effect of synthetic adjuvant on the formation of the immune response | |
RU2674767C1 (ru) | Способ иммунотерапии вторичного альвеолярного эхинококкоза | |
RU2764467C1 (ru) | Способ получения специфического иммуномодулятора | |
RU2373955C1 (ru) | СПОСОБ ИММУНОПРОФИЛАКТИКИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО МЕЛИОИДОЗА ИНКАПСУЛИРОВАННЫМИ АНТИГЕНАМИ Burkholderia pseudomallei | |
JP2019513797A (ja) | シャーガスに関する抗原および抗体および組成物、それらの方法および使用 | |
Kamau | Anti-plasmodial and Immunomodulatory Effects of Combined Ajuga remota and Caesalpinia volkensii Leaf Extracts during Malaria Infection in Balb/c Mice | |
Jumaah et al. | Cytokine profiles of the pro-inflammatory and anti-inflammatory response to bacterial antigens when combined with vaccine adjuvant | |
Hasan et al. | PLGA Encapsulated Antigen ES-15 of Haemonchus contortus Improves the Immune Responses in Murine Model | |
Alhallaf | Regulation of immunity and inflammation during parasitic helminth infection by inflammasomes |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180423 |