RU2596395C1 - Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy - Google Patents

Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy Download PDF

Info

Publication number
RU2596395C1
RU2596395C1 RU2015138435/10A RU2015138435A RU2596395C1 RU 2596395 C1 RU2596395 C1 RU 2596395C1 RU 2015138435/10 A RU2015138435/10 A RU 2015138435/10A RU 2015138435 A RU2015138435 A RU 2015138435A RU 2596395 C1 RU2596395 C1 RU 2596395C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sample
medium
yeast
drug
microbiological purity
Prior art date
Application number
RU2015138435/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Викторовна Гунар
Надежда Геннадьевна Сахно
Ирина Александровна Буйлова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр экспертизы средств медицинского применения" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр экспертизы средств медицинского применения" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр экспертизы средств медицинского применения" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2015138435/10A priority Critical patent/RU2596395C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2596395C1 publication Critical patent/RU2596395C1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: pharmaceutics.
SUBSTANCE: invention relates to pharmaceutics and microbiology. Method of determining microbiological purity of medicinal agents comprises preparation of a drug sample by diluting in tryptic soy broth or medium No. 8. Method includes seeding a sample on a liquid accumulation selective medium with subsequent incubation thereon. Then, method includes re-seeding on diagnostic culture media with subsequent biochemical identification of selected microorganisms.
EFFECT: invention reduces amount sample used and minimises loss of sample during analysis.
1 cl, 5 ex

Description

Изобретение относится к методам измерения или испытания, использующим жизнеспособные микроорганизмы, и касается способа определения микробиологической чистоты лекарственных средств для таргетной терапии.The invention relates to methods of measurement or testing using viable microorganisms, and relates to a method for determining the microbiological purity of drugs for targeted therapy.

Наиболее близким к заявленному является способ определения микробиологической чистоты отдельных биотехнологических лекарственных средств [1], который позволяет количественно определять жизнеспособные клетки бактерий и грибов по их способности размножаться и образовывать колонии на плотной питательной среде. При этом каждая колония является результатом размножения одной клетки. Для выявления отдельных видов патогенных микроорганизмов используют комплекс жидких и плотных питательных сред, соответствующих специфическим потребностям определяемых микроорганизмов, а также биохимические тесты для их идентификации.Closest to the claimed is a method for determining the microbiological purity of individual biotechnological drugs [1], which allows you to quantify viable cells of bacteria and fungi by their ability to multiply and form colonies in a dense nutrient medium. Moreover, each colony is the result of the reproduction of one cell. To identify certain types of pathogenic microorganisms, a complex of liquid and dense nutrient media corresponding to the specific needs of the identified microorganisms is used, as well as biochemical tests to identify them.

Способ включает стадии:The method includes the steps of:

- пробоподготовку образца лекарственного средства (не менее 10 г);- sample preparation of a sample of the drug (at least 10 g);

- добавление измельченного образца к 100 мл фосфатно-буферного раствора и посев в 4 чашки Петри, а также в жидкую неселективную накопительную среду для определения патогенных бактерий;- adding the ground sample to 100 ml of phosphate-buffered solution and plating in 4 Petri dishes, as well as in a liquid non-selective storage medium for the determination of pathogenic bacteria;

- инкубацию посевов с питательными средами для выделения бактерий при температуре (32,5±±2,5)°С, для выращивания дрожжевых и плесневых грибов - при температуре (22,5±2,5)°С;- incubation of crops with nutrient media for the isolation of bacteria at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C, for the cultivation of yeast and molds at a temperature of (22.5 ± 2.5) ° C;

- пересев на жидкую селективную питательную среду;- reseeding on a liquid selective nutrient medium;

- пересев на диагностические питательные среды;- reseeding on diagnostic nutrient media;

- микроскопическое исследование;- microscopic examination;

- биохимическую идентификацию выделенных микроорганизмов;- biochemical identification of isolated microorganisms;

- количественный и качественный учет результатов.- quantitative and qualitative accounting of results.

К недостаткам известного способа определения микробиологической чистоты лекарственных средств следует отнести значительное количество образца для анализа, разведение которого не полностью используется при испытании.The disadvantages of the known method for determining the microbiological purity of drugs include a significant amount of the sample for analysis, the dilution of which is not fully used in the test.

Между совокупностью существенных признаков заявляемого способа и достигаемым техническим результатом существует причинно-следственная связь, а именно: использование триптиказо-соевого бульона или питательной среды №8 в качестве универсального разбавителя (растворителя) и среды для культивирования позволяет сократить объем образца для анализа в 7 раз.Between the totality of the essential features of the proposed method and the achieved technical result, there is a causal relationship, namely: the use of trypticase-soy broth or nutrient medium No. 8 as a universal diluent (solvent) and culture medium allows to reduce the sample volume for analysis by 7 times.

Предлагаемое техническое решение отличается от известного [1] тем, что на стадии пробоподготовки используется уменьшенное количество образца, разведение которого полностью используется для анализа. В качестве универсального разбавителя применяется триптиказо-соевый бульон или питательная среда №8.The proposed technical solution differs from the known one [1] in that a reduced amount of the sample is used at the sample preparation stage, the dilution of which is fully used for analysis. Trypticase-soy broth or nutrient medium No. 8 are used as a universal diluent.

Задачей изобретения является сокращение количества образца для оценки качества по показателю «Микробиологическая чистота», времени пробоподготовки и минимизация потерь лекарственного средства при анализе.The objective of the invention is to reduce the number of samples for assessing quality in terms of "Microbiological purity", the time of sample preparation and minimizing drug losses during analysis.

Поставленная задача решается благодаря применению неселективной питательной среды в качестве разбавителя уменьшенного количества образца при определении отдельных видов патогенных бактерий.The problem is solved through the use of a non-selective nutrient medium as a diluent of a reduced amount of the sample when determining certain types of pathogenic bacteria.

Питательные среды, описанные в [1], являются универсальными, свободными от ингибиторов и индикаторов, предназначенными для широкого спектра микробиологических задач. Богатая питательная основа данных сред подходит для культивирования большинства микроорганизмов, в том числе требовательных к условиям роста.The nutrient media described in [1] are universal, free of inhibitors and indicators, designed for a wide range of microbiological tasks. The rich nutrient basis of these media is suitable for the cultivation of most microorganisms, including those that require growth conditions.

Предложенное изменение позволяет в 7 раз сократить количество образца для анализа таргетных препаратов по показателю «Микробиологическая чистота».The proposed change allows you to 7 times reduce the number of samples for the analysis of targeted drugs on the indicator "Microbiological purity".

Сущность предложенного изобретения заключается в следующем:The essence of the proposed invention is as follows:

- образец в количестве 1,4 г разбавляют 14 мл триптиказо-соевого бульона или среды №8;- a sample in an amount of 1.4 g is diluted with 14 ml of trypticase-soy broth or medium No. 8;

- 4 мл полученного разведения используют для количественного определения аэробных бактерий и грибов, производя посев в 4 стерильные чашки Петри (по 1 мл в каждую), 2 из которых заливают плотной питательной средой для выращивания бактерий, 2 другие - средой для выращивания дрожжевых и плесневых грибов;- 4 ml of the obtained dilution is used for the quantitative determination of aerobic bacteria and fungi, sowing in 4 sterile Petri dishes (1 ml each), 2 of which are filled with a dense nutrient medium for growing bacteria, 2 others - medium for growing yeast and mold fungi ;

- оставшиеся 10 мл разведения используют для выделения E.coli.- the remaining 10 ml of dilution is used to isolate E. coli.

Стадию инкубации и последующие операции выполняют так же, как в известном способе.Stage incubation and subsequent operations are performed in the same way as in the known method.

Техническим результатом заявляемого изобретения является уменьшение объема пробы, минимизация потерь лекарственного средства при анализе, расширение арсенала способов оценки микробиологической чистоты лекарственных препаратов таргетной терапии.The technical result of the claimed invention is to reduce the volume of the sample, minimizing the loss of the drug in the analysis, expanding the arsenal of methods for assessing the microbiological purity of drugs targeted therapy.

Возможность осуществления заявляемого изобретения показана следующими примерами.The possibility of carrying out the claimed invention is shown by the following examples.

Средства и методыMeans and methods

При доказательстве возможности определения микробиологической чистоты лекарственных средств для таргетной терапии использовали:When proving the possibility of determining the microbiological purity of drugs for targeted therapy used:

1. Тест-штаммы микроорганизмов:1. Test strains of microorganisms:

- Candida albicans АТСС 10231,- Candida albicans ATCC 10231,

- Escherichia coli АТСС 8739,- Escherichia coli ATCC 8739,

- Bacillus subtilis ATCC 6633,- Bacillus subtilis ATCC 6633,

- Aspergillus brasiliensis ATCC 16404.- Aspergillus brasiliensis ATCC 16404.

2. Питательные среды:2. Culture media:

2.1. производства фирмы «Биомерье», Франция2.1. manufactured by Biomerier, France

- триптиказо-соевый агар;- trypticase soy agar;

- триптиказо-соевый бульон;- trypticase-soy broth;

- агар Сабуро;- agar Saburo;

- бульон Мак-Конки;- McConkey Broth;

- агар Мак-Конки.- McConkey agar.

2.2. производства ФБУН Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (п. Оболенск, Россия):2.2. FBUN State Scientific Center for Applied Microbiology and Biotechnology (Obolensk, Russia):

- среда №1 ГРМ;- Wednesday No. 1 of the timing;

- среда №2 ГРМ (Сабуро);- Wednesday No. 2 GRM (Saburo);

- среда для выделения энтеробактерий (агар Эндо ГРМ);- medium for the isolation of enterobacteria (Endo timing agar);

- среда №8 ГРМ;- Wednesday No. 8 of the timing;

- среда №3 ГРМ.- Wednesday No. 3 of the timing.

3. Реактивы: раствор натрия хлорида 0,9%.3. Reagents: 0.9% sodium chloride solution.

4. Расходные материалы: стерильные пробирки биологические; пипетки серологические 1, 5, 10 мл; флаконы стерильные одноразовые 125 мл; чашки Петри 90 мм стерильные одноразовые.4. Consumables: sterile biological tubes; serological pipettes 1, 5, 10 ml; sterile disposable vials 125 ml; Petri dishes 90 mm sterile disposable.

5. Аттестованное и поверенное оборудование: инкубаторы фирмы Binder (Германия), ламинарный шкаф класс II тип А2 фирмы Labconco (США), счетчик колоний Scan 100 фирмы Interscience (Франция).5. Certified and verified equipment: incubators from Binder (Germany), laminar cabinet class II type A2 from Labconco (USA), colony counter Scan 100 from Interscience (France).

При доказательстве возможности применения заявляемого изобретения проводили расчет коэффициента восстановления (R) микроорганизмов по формуле (1):When proving the possibility of using the claimed invention, the coefficient of recovery (R) of microorganisms was calculated by the formula (1):

Figure 00000001
Figure 00000001

N - количество колоний, выделенных в ходе анализа (КОЕ);N is the number of colonies isolated during analysis (CFU);

N0 - количество внесенных клеток микроорганизмов (КОЕ).N 0 - the number of introduced cells of microorganisms (CFU).

Приемлемым считали коэффициент восстановления не ниже 50%.A recovery factor of at least 50% was considered acceptable.

Пример 1. Определение микробиологической чистоты лекарственного средства эрлотиниб таблетки 100 мг.Example 1. Determination of the microbiological purity of the drug erlotinib tablets 100 mg.

Отбирали 1 г вещества. Образец растворяли в 10 мл триптиказо-соевого бульона. Вносили тест-штаммы в количестве 50 КОЕ/г каждого микроорганизма.1 g of material was taken. The sample was dissolved in 10 ml of trypticase-soy broth. Test strains were introduced in an amount of 50 CFU / g of each microorganism.

По 1 мл подготовленного образца вносили в 4 чашки Петри, 2 из которых заливали 10-15 мл триптиказо-соевого агара - для определения содержания аэробных микроорганизмов, а 2 оставшихся - 10-15 мл агара Сабуро для выделения дрожжевых и плесневых грибов.1 ml of the prepared sample was introduced into 4 Petri dishes, 2 of which were filled with 10-15 ml of trypticase-soya agar to determine the content of aerobic microorganisms, and the remaining 2 10-15 ml of Saburo agar to isolate yeast and molds.

6 мл раствора образца инкубировали при температуре (32,5±2.5)°С в течение 48 ч. Чашки Петри, залитые триптиказо-соевым агаром и агаром Сабуро, инкубировали в течение 120 ч при температурах (32,5±2.5)°С и (22,5±2.5)°С соответственно.6 ml of the sample solution was incubated at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C for 48 hours. Petri dishes, filled with trypticase-soy agar and Saburo agar, were incubated for 120 hours at temperatures (32.5 ± 2.5) ° C and (22.5 ± 2.5) ° С, respectively.

После инкубации на агаризованных питательных средах подсчитывали количество колоний микроорганизмов и по формуле (1) рассчитывали коэффициент восстановления выделенных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов.After incubation on agarized nutrient media, the number of colonies of microorganisms was counted, and the recovery coefficient of the isolated bacteria, yeast, and molds was calculated using formula (1).

По истечении периода инкубации 1 мл раствора образца вносили в 9 мл бульона Мак-Конки, инкубировали в течение 48 ч при температуре (32,5±2.5)°С, производили пересев бактериологической петлей на агар Мак-Конки, инкубировали в течение 24 ч при температуре (32,5±2.5)°С, после чего наблюдали типичный рост колоний Escherichia coli.After the incubation period, 1 ml of the sample solution was added to 9 ml of McConkey broth, incubated for 48 hours at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° С, the bacteriological loop was passaged on MacConkey agar, incubated for 24 hours at temperature (32.5 ± 2.5) ° С, after which a typical growth of Escherichia coli colonies was observed.

Результат: в процессе испытания было проведено количественное определение бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, которыми был инокулирован образец лекарственного средства эрлотиниб, таблетки 100 мг. Коэффициент восстановления аэробных микроорганизмов составил 75%, дрожжевых и плесневых грибов - 101%. С применением предлагаемого способа из контаминированного лекарственного средства были выделены бактерии Escherichia coli.Result: during the test, a quantitative determination of bacteria, yeast and molds was carried out, which was used to inoculate a sample of the drug erlotinib, 100 mg tablets. The recovery coefficient of aerobic microorganisms was 75%, yeast and mold fungi - 101%. Using the proposed method, Escherichia coli bacteria were isolated from the contaminated drug.

Пример 2. Определение микробиологической чистоты лекарственного средства траметиниб таблетки 1 мг.Example 2. Determination of the microbiological purity of the drug trametinib tablets 1 mg.

Отбирали 1 г вещества. Образец растворяли в 10 мл среды №8 ГРМ. Вносили тест-штаммы в количестве 50 КОЕ/г каждого микроорганизма.1 g of material was taken. The sample was dissolved in 10 ml of timing medium No. 8. Test strains were introduced in an amount of 50 CFU / g of each microorganism.

По 1 мл подготовленного образца вносили в 4 чашки Петри, 2 из которых заливали 10-15 мл среды №1 ГРМ - для определения содержания аэробных микроорганизмов, а 2 оставшихся - 10-15 мл среды №2 ГРМ для выделения дрожжевых и плесневых грибов.1 ml of the prepared sample was introduced into 4 Petri dishes, 2 of which were filled with 10-15 ml of timing medium No. 1 to determine the content of aerobic microorganisms, and the remaining 2 were filled with 10-15 ml of timing medium No. 2 to isolate yeast and molds.

6 мл раствора образца инкубировали при температуре (32,5±2.5)°С в течение 48 ч. Чашки Петри, залитые средами №1 ГРМ и №2 ГРМ, инкубировали в течение 120 ч при температурах (32,5±2.5)°С и (22,5±2.5)°С соответственно.6 ml of the sample solution was incubated at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C for 48 hours. Petri dishes, filled with media No. 1 of timing and No. 2 timing, were incubated for 120 hours at temperatures (32.5 ± 2.5) ° C and (22.5 ± 2.5) ° C, respectively.

После инкубации на агаризованных питательных средах подсчитывали количество колоний микроорганизмов и по формуле (1) рассчитывали коэффициент восстановления выделенных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов.After incubation on agarized nutrient media, the number of colonies of microorganisms was counted, and the recovery coefficient of the isolated bacteria, yeast, and molds was calculated using formula (1).

По истечении периода инкубации 1 мл раствора образца вносили в 9 мл среды №3, инкубировали в течение 48 ч при температуре (32,5±2.5)°С, производили пересев бактериологической петлей на агар Эндо, инкубировали в течение 24 ч при температуре (32,5±2.5)°С, после чего наблюдали типичный рост колоний Escherichia coli.After the incubation period, 1 ml of the sample solution was added to 9 ml of medium No. 3, incubated for 48 hours at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° С, the bacteriological loop was reseed on Endo agar, incubated for 24 hours at a temperature of (32 , 5 ± 2.5) ° С, after which a typical growth of Escherichia coli colonies was observed.

Результат: в процессе испытания было проведено количественное определение бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, которыми был инокулирован образец лекарственного средства тарметиниб, таблетки 1 мг. Коэффициент восстановления аэробных микроорганизмов составил 71%, дрожжевых и плесневых грибов - 91%. С применением предлагаемого способа из контаминированного лекарственного средства были выделены бактерии Escherichia coli.Result: during the test, a quantitative determination of bacteria, yeast and molds was carried out, which was used to inoculate a sample of the drug tarmetinib, 1 mg tablet. The recovery coefficient of aerobic microorganisms was 71%, yeast and mold fungi - 91%. Using the proposed method, Escherichia coli bacteria were isolated from the contaminated drug.

Пример 3. Определение микробиологической чистоты лекарственного средства акситиниб таблетки 7 мг.Example 3. Determination of the microbiological purity of the drug axitinib tablets 7 mg.

Отбирали 1 г вещества. Образец растворяли в 10 мл среды №8 ГРМ. Вносили тест-штаммы в количестве 5 КОЕ/г каждого микроорганизма.1 g of material was taken. The sample was dissolved in 10 ml of timing medium No. 8. Test strains were introduced in an amount of 5 CFU / g of each microorganism.

По 1 мл подготовленного образца вносили в 4 чашки Петри, 2 из которых заливали 10-15 мл среды №1 ГРМ - для определения содержания аэробных микроорганизмов, а 2 оставшихся - 10-15 мл среды №2 ГРМ для выделения дрожжевых и плесневых грибов.1 ml of the prepared sample was introduced into 4 Petri dishes, 2 of which were filled with 10-15 ml of timing medium No. 1 to determine the content of aerobic microorganisms, and the remaining 2 were filled with 10-15 ml of timing medium No. 2 to isolate yeast and molds.

6 мл раствора образца инкубировали при температуре (32,5±2.5)°С в течение 48 ч. Чашки Петри, залитые средами №1 ГРМ и №2 ГРМ, инкубировали в течение 120 ч при температурах (32,5±2.5)°С и (22,5±2.5)°С соответственно.6 ml of the sample solution was incubated at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C for 48 hours. Petri dishes, filled with media No. 1 of timing and No. 2 timing, were incubated for 120 hours at temperatures (32.5 ± 2.5) ° C and (22.5 ± 2.5) ° C, respectively.

После инкубации на агаризованных питательных средах подсчитывали количество колоний микроорганизмов и по формуле (1) рассчитывали коэффициент восстановления выделенных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов.After incubation on agarized nutrient media, the number of colonies of microorganisms was counted, and the recovery coefficient of the isolated bacteria, yeast, and molds was calculated using formula (1).

По истечении периода инкубации 1 мл раствора образца вносили в 9 мл среды №3, инкубировали в течение 48 ч при температуре (32,5±2.5)°С, производили пересев бактериологической петлей на агар Эндо, инкубировали в течение 24 ч при температуре (32,5±2.5)°С, после чего наблюдали типичный рост колоний Escherichia coli.After the incubation period, 1 ml of the sample solution was added to 9 ml of medium No. 3, incubated for 48 hours at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° С, the bacteriological loop was reseed on Endo agar, incubated for 24 hours at a temperature of (32 , 5 ± 2.5) ° С, after which a typical growth of Escherichia coli colonies was observed.

Результат: в процессе испытания было проведено количественное определение бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, которыми был инокулирован образец лекарственного средства акситиниб, таблетки 7 мг. Коэффициент восстановления аэробных микроорганизмов составил 93%, дрожжевых и плесневых грибов - 78%. С применением предлагаемого способа из контаминированного лекарственного средства были выделены бактерии Escherichia coli.Result: during the test, a quantitative determination of bacteria, yeast and molds was carried out, with which a sample of the drug axitinib, 7 mg tablets, was inoculated. The recovery coefficient of aerobic microorganisms was 93%, yeast and mold fungi - 78%. Using the proposed method, Escherichia coli bacteria were isolated from the contaminated drug.

Пример 4. Определение микробиологической чистоты лекарственного средства ибрутиниб капсулы 4 мг.Example 4. Determination of the microbiological purity of the drug ibrutinib capsules 4 mg.

Отбирали 1 г вещества. Образец растворяли в 10 мл триптиказо-соевого бульона. Вносили тест-штаммы в количестве 5 КОЕ/г каждого микроорганизма.1 g of material was taken. The sample was dissolved in 10 ml of trypticase-soy broth. Test strains were introduced in an amount of 5 CFU / g of each microorganism.

По 1 мл подготовленного образца вносили в 4 чашки Петри, 2 из которых заливали 10-15 мл триптиказо-соевого агара - для определения содержания аэробных микроорганизмов, а 2 оставшихся - 10-15 мл агара Сабуро для выделения дрожжевых и плесневых грибов.1 ml of the prepared sample was introduced into 4 Petri dishes, 2 of which were filled with 10-15 ml of trypticase-soya agar to determine the content of aerobic microorganisms, and the remaining 2 10-15 ml of Saburo agar to isolate yeast and molds.

6 мл раствора образца инкубировали при температуре (32,5±2.5)°С в течение 48 ч. Чашки Петри, залитые триптиказо-соевым агаром и агаром Сабуро, инкубировали в течение 120 ч при температурах (32,5±2.5)°С и (22,5±2.5)°С соответственно.6 ml of the sample solution was incubated at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C for 48 hours. Petri dishes, filled with trypticase-soy agar and Saburo agar, were incubated for 120 hours at temperatures (32.5 ± 2.5) ° C and (22.5 ± 2.5) ° С, respectively.

После инкубации на агаризованных питательных средах подсчитывали количество колоний микроорганизмов и по формуле (1) рассчитывали коэффициент восстановления выделенных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов.After incubation on agarized nutrient media, the number of colonies of microorganisms was counted, and the recovery coefficient of the isolated bacteria, yeast, and molds was calculated using formula (1).

По истечении периода инкубации 1 мл раствора образца вносили в 9 мл бульона Мак-Конки, инкубировали в течение 48 ч при температуре (32,5±2.5)°С, производили пересев бактериологической петлей на агар Мак-Конки, инкубировали в течение 24 ч при температуре (32,5±2.5)°С, после чего наблюдали типичный рост колоний Escherichia coli.After the incubation period, 1 ml of the sample solution was added to 9 ml of McConkey broth, incubated for 48 hours at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° С, the bacteriological loop was passaged on MacConkey agar, incubated for 24 hours at temperature (32.5 ± 2.5) ° С, after which a typical growth of Escherichia coli colonies was observed.

Результат: в процессе испытания было проведено количественное определение бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, которыми был инокулирован образец лекарственного средства ибрутиниб, капсулы 4 мг. Коэффициент восстановления аэробных микроорганизмов составил 93%, дрожжевых и плесневых грибов - 87%. С применением предлагаемого способа из контаминированного лекарственного средства были выделены бактерии Escherichia coli.Result: during the test, a quantitative determination of bacteria, yeast and molds was carried out, which was used to inoculate a sample of the drug ibrutinib, 4 mg capsules. The recovery coefficient of aerobic microorganisms was 93%, yeast and mold fungi - 87%. Using the proposed method, Escherichia coli bacteria were isolated from the contaminated drug.

Пример 5. Определение микробиологической чистоты субстанции иматиниба мезилат.Example 5. Determination of the microbiological purity of the substance imatinib mesylate.

Отбирали 1 г вещества. Образец растворяли в 10 мл триптиказо-соевого бульона. Вносили тест-штаммы в количестве 50 КОЕ/г каждого микроорганизма.1 g of material was taken. The sample was dissolved in 10 ml of trypticase-soy broth. Test strains were introduced in an amount of 50 CFU / g of each microorganism.

По 1 мл подготовленного образца вносили в 4 чашки Петри, 2 из которых заливали 10-15 мл триптиказо-соевого агара - для определения содержания аэробных микроорганизмов, а 2 оставшихся - 10-15 мл агара Сабуро для выделения дрожжевых и плесневых грибов.1 ml of the prepared sample was introduced into 4 Petri dishes, 2 of which were filled with 10-15 ml of trypticase-soya agar to determine the content of aerobic microorganisms, and the remaining 2 10-15 ml of Saburo agar to isolate yeast and molds.

6 мл раствора образца инкубировали при температуре (32,5±2.5)°С в течение 48 ч. Чашки Петри, залитые триптиказо-соевым агаром и агаром Сабуро, инкубировали в течение 120 ч при температурах (32,5±2.5)°С и (22,5±2.5)°С соответственно.6 ml of the sample solution was incubated at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° C for 48 hours. Petri dishes, filled with trypticase-soy agar and Saburo agar, were incubated for 120 hours at temperatures (32.5 ± 2.5) ° C and (22.5 ± 2.5) ° С, respectively.

После инкубации на агаризованных питательных средах подсчитывали количество колоний микроорганизмов и по формуле (1) рассчитывали коэффициент восстановления выделенных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов.After incubation on agarized nutrient media, the number of colonies of microorganisms was counted, and the recovery coefficient of the isolated bacteria, yeast, and molds was calculated using formula (1).

По истечении периода инкубации 1 мл раствора образца вносили в 9 мл бульона Мак-Конки, инкубировали в течение 48 ч при температуре (32,5±2.5)°С, производили пересев бактериологической петлей на агар Мак-Конки, инкубировали в течение 24 ч при температуре (32,5±2.5)°С, после чего наблюдали типичный рост колоний Escherichia coli.After the incubation period, 1 ml of the sample solution was added to 9 ml of McConkey broth, incubated for 48 hours at a temperature of (32.5 ± 2.5) ° С, the bacteriological loop was passaged on MacConkey agar, incubated for 24 hours at temperature (32.5 ± 2.5) ° С, after which a typical growth of Escherichia coli colonies was observed.

Результат: в процессе испытания было проведено количественное определение бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, которыми был инокулирован образец фармацевтической субстанции иматиниба мезилат. Коэффициент восстановления аэробных микроорганизмов составил 91%, дрожжевых и плесневых грибов - 88%. С применением предлагаемого способа из контаминированного лекарственного средства были выделены бактерии Escherichia coli.Result: during the test, a quantitative determination of bacteria, yeast and molds was carried out, which was used to inoculate a sample of the pharmaceutical substance imatinib mesylate. The recovery coefficient of aerobic microorganisms was 91%, yeast and mold fungi - 88%. Using the proposed method, Escherichia coli bacteria were isolated from the contaminated drug.

Литература.Literature.

1. Государственная фармакопея РФ XII изд. Часть 1. М.: Медицина, 2007: 704.1. The State Pharmacopoeia of the Russian Federation XII ed. Part 1. M .: Medicine, 2007: 704.

Claims (1)

Способ определения микробиологической чистоты препаратов таргетной терапии, включающий пробоподготовку образца лекарственного средства; пересев и инкубирование на жидкой накопительной селективной среде, пересев на диагностические питательные среды с последующей биохимической идентификацией выделенных микроорганизмов, отличающийся тем, что при пробоподготовке образца лекарственного средства в качестве разбавителя используют триптиказо-соевый бульон или среду № 8. A method for determining the microbiological purity of targeted therapy drugs, comprising sample preparation of a drug sample; reseeding and incubation on a selective liquid storage medium, reseeding on diagnostic nutrient media followed by biochemical identification of the isolated microorganisms, characterized in that when sample preparation of the drug sample, trypticase-soy broth or medium No. 8 is used as a diluent.
RU2015138435/10A 2015-09-09 2015-09-09 Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy RU2596395C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015138435/10A RU2596395C1 (en) 2015-09-09 2015-09-09 Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015138435/10A RU2596395C1 (en) 2015-09-09 2015-09-09 Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2596395C1 true RU2596395C1 (en) 2016-09-10

Family

ID=56892822

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015138435/10A RU2596395C1 (en) 2015-09-09 2015-09-09 Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2596395C1 (en)

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Государственная фармакопея РФ, М., 2007, ч.1, стр. 156-168;Микробиологическая *
Государственная фармакопея РФ, М., 2007, ч.1, стр. 156-168;Микробиологическая чистота, Общая фармакопейная статья ОФС 42-0067-07, 2007 г, стр. 15-28;Микробиологическая чистота, Общая фармакопейная статья ОФС 42-0067-07, 2007 г, стр. 60-74. САХНО Н.Г., Применение микробиологических методов для стандартизации и контроля качества некоторых антисептических лекарственных препаратов., автореф. дисс. на соискание ученой степени кандидата фармацевтических наук, М, 2013, стр. 10-22. ГУНАР О.В., Методологические основы совершенствования системы микробиологического контроля качества лекарственных средств, автореф. дисс. на соискание ученой степени доктора фармацевтических наук, Пермь, 2009, стр. 29-36. *
ГУНАР О.В., Методологические основы совершенствования системы микробиологического контроля качества лекарственных средств, автореф. дисс. на соискание ученой степени доктора фармацевтических наук, Пермь, 2009, стр. 29-36. *
САХНО Н.Г., Применение микробиологических методов для стандартизации и контроля качества некоторых антисептических лекарственных препаратов., автореф. дисс. на соискание ученой степени кандидата фармацевтических наук, М, 2013, стр. 10-22. *
чистота, Общая фармакопейная статья ОФС 42-0067-07, 2007 г, стр. 15-28;Микробиологическая *
чистота, Общая фармакопейная статья ОФС 42-0067-07, 2007 г, стр. 60-74. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Michel et al. Production of viable cultures of Flavobacterium psychrophilum: approach and control
RU2505813C1 (en) Method for determining microorganism sensitivity to antimicrobial substances
AU2008307831A1 (en) Detection of volatile compounds as markers for mycobacteria tuberculosis
BG61400B1 (en) Means for detecting residual quantities of bactericidal compounds in liquids
CN102146430B (en) Mycobacterium tuberculosis medicament sensitive phenotype detection method and application of method
RU2596395C1 (en) Method of determining microbiological purity of drugs of target therapy
RU2596399C1 (en) Method of determining microbiological purity of pharmaceutical substance, produced biotechnologically
Romo et al. Characterization of the effects of Candida gastrointestinal colonization on clostridioides difficile infection in a murine model
Jabbar et al. Extraction, purification and characterization of Pyocyanin pigment from Pseudomonas aeruginosa and testing its biological efficacy.
CN103060186B (en) Aquatic product Edwardsiella tarda rapid drug allergy detection kit
CN103993065A (en) Diphasic quick differential medium of mycobacterium tuberculosis and application of medium
CN103120689B (en) Application of pyrazol compound as mycobacterium tuberculosis inhibitor
CN103014120B (en) Trace mycobacterium susceptibility test method
Yang et al. Determine the potency of BCG vaccines by flow cytometer
RU2337360C1 (en) Method of determination of bacteriostatic properties of antibodies to virulence factors burkholderia pseudomallei
CN108060207A (en) A kind of minimum bactericidal concentration assay method based on micro native compound
Unver et al. Comparative evaluation of in-vitro methods for antimicrobial activity determination
RU2409679C1 (en) Method of bacterial disinfectant resistance test
RU2511031C1 (en) Method of accelerated growth of staphylococcus aureus for diagnostics of infections associated with delivery of health care
UA140217U (en) METHOD OF STUDY OF SENSITIVITY OF M. TUBERCULOSIS TO SECONDARY METABOLITES OF STREPTOMYCETES
RU2328530C1 (en) Method for determining antagonist activity of probiotics from spore bacteria, against micobacteria
RU2446214C1 (en) Method of determining degree of epidemic hazard of pathogenic and potentially pathogenic bacteria isolated from water for various uses
RU2470075C2 (en) Method of determining maximum concentration of living bacteria
CN103122367B (en) Application of pyridine compound as mycobacterium tuberculosis inhibitor
US20200208200A1 (en) Viability detection and quantification assay of waterborne pathogens by enrichment

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170910