RU2595423C2 - METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 - Google Patents
METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 Download PDFInfo
- Publication number
- RU2595423C2 RU2595423C2 RU2014149782/10A RU2014149782A RU2595423C2 RU 2595423 C2 RU2595423 C2 RU 2595423C2 RU 2014149782/10 A RU2014149782/10 A RU 2014149782/10A RU 2014149782 A RU2014149782 A RU 2014149782A RU 2595423 C2 RU2595423 C2 RU 2595423C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hutu
- cells
- vibrio cholerae
- adhesive
- vibrios
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в лабораторной диагностике для определения индекса адгезии холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 (Бенгал).The present invention relates to medical microbiology and can be used in laboratory diagnostics to determine the adhesion index of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios (Bengal).
В настоящее время существуют различные способы определения уровня адгезии холерных вибрионов, которая является одним из главных показателей патогенности возбудителя холеры. Известные способы с применением эритроцитов (1), адгезии холерных вибрионов к эпителию кишечника кролика (2) утратили свою актуальность в решении этого вопроса в связи с вступлением в 2013 г. в силу директивы Европейского парламента на проведение экспериментов с лабораторными животными, согласно которым данные методы не соответствуют требованиям биоэтики.Currently, there are various ways to determine the level of adhesion of cholera vibrios, which is one of the main indicators of the pathogenicity of the cholera pathogen. Known methods using red blood cells (1), adhesion of cholera vibrios to the intestinal epithelium of a rabbit (2) have lost their relevance in solving this issue due to the entry into force in 2013 of the European Parliament directive on experiments with laboratory animals, according to which these methods do not meet the requirements of bioethics.
Предлагаемый способ предусматривает, использование перевиваемой монослойной человеческой клеточной линии аденокарциномы двенадцатиперстной кишки HuTu-80, как наиболее эффективной модели эпителиоцитов кишечника человека для определения адгезивной активности холерных вибрионов.The proposed method involves the use of transplantable monolayer human cell line of adenocarcinoma of the duodenum HuTu-80, as the most effective model of human intestinal epithelial cells to determine the adhesive activity of cholera vibrios.
Известен способ выявления эпидемической значимости холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 по их адгезивной способности (см. патент RU №2332460, кл. C12Q
Однако недостатком этого способа в условиях лаборатории является нестабильность эритроцитов II группы крови человека, трудность в их получении и стандартизации.However, the disadvantage of this method in the laboratory is the instability of red blood cells of the II group of human blood, the difficulty in obtaining and standardizing them.
За прототип выбран способ определения адгезивных свойств бактерий рода Enterococcus с помощью клеточной линии СаСо-2 (см. патент RU №2501861, кл. C12Q
Недостатком прототипа является то, что известный способ не может быть использован при мониторинге холеры, так как подготовительный этап СаСо-2 к эксперименту длительный (культура растет в течение 14 дней) и трудоемкий.The disadvantage of the prototype is that the known method cannot be used for monitoring cholera, since the preparatory phase of CaCO-2 for the experiment is long (the culture grows within 14 days) and time-consuming.
При этом культура СаСо-2 при культивировании требует внесения в ростовую среду дополнительных питательных веществ, что приводит к удорожанию исследований.In this case, the CaCO-2 culture during cultivation requires the introduction of additional nutrients into the growth medium, which leads to a rise in the cost of research.
Кроме того, применение трипсина и версена на этапе снятия монослоя с прикрепившимися бактериальными клетками отрицательно влияет на клеточную стенку холерных вибрионов, что приводит к большим погрешностям в исследованиях, а метод серийных разведений влияет на точность результатов.In addition, the use of trypsin and versene at the stage of removing the monolayer with attached bacterial cells adversely affects the cell wall of cholera vibrios, which leads to large errors in research, and the serial dilution method affects the accuracy of the results.
Технической задачей предлагаемого изобретения является разработка нового способа, имеющего высокую точность выявления адгезивной способности холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 с использованием клеточной культуры HuTu-80.The technical task of the invention is to develop a new method having high accuracy in detecting the adhesive ability of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios using HuTu-80 cell culture.
Поставленная задача достигается тем, что способ оценки адгезивных свойств холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 на клеточной культуре HuTu-80 включает следующие стадии:This object is achieved in that the method for evaluating the adhesive properties of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios in HuTu-80 cell culture comprises the following steps:
а) проводят подготовку монослоя клеток HuTu-80 путем их выращивания в пластиковых флаконах объемом 50 мл, по 100-150 тыс. на 1 мл с последующим трипсинизированием культуры и внесением ее в пенфлаконы с дисками (диски 12,0 X 0,11 SPL Lifesciences) по 50 тыс. клеток в объеме 1 мл;a) prepare a monolayer of HuTu-80 cells by growing them in plastic bottles of 50 ml, 100-150 thousand per 1 ml followed by trypsinization of the culture and adding it to penflon with disks (disks 12.0 X 0.11 SPL Lifesciences ) 50 thousand cells in a volume of 1 ml;
б) готовят бактериальную суспензию штаммов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139, которые выращивают на агаре Мартена (рН 7,7) в течение 18 часов, после этого петлей засевают в бульон LB (рН 7,7) и выдерживают в термостате при 37°С в течение трех часов;b) prepare a bacterial suspension of the Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 strains, which are grown on Marten agar (pH 7.7) for 18 hours, after which the loop is seeded in LB broth (pH 7.7) and incubated at 37 ° C for three hours;
в) эксперимент проводят в пенфлаконах с дисками, на которых сформировался разреженный монослой HuTu-80, туда добавляют 10 мкл бактериальной суспензии и 1 мл среды DMEM с 5% сыворотки эмбриональной бычьей, до концентрации холерных вибрионов 106 м.к. /мл, затем проводят инкубирование в течение 90 минут при 37°С, удаляют питательную среду, дважды промывают монослой раствором Хенкса рН 7,4, фиксируют 5% формалином 1 час, после этого высушивают и окрашивают диски по Романовскому - Гимза 1:5 в течение 40 минут;c) the experiment is carried out in pen-bottles with disks on which a diluted HuTu-80 monolayer was formed, 10 μl of bacterial suspension and 1 ml of DMEM medium with 5% bovine fetal serum are added to a concentration of cholera vibrios of 106 m.k. / ml, then incubation is carried out for 90 minutes at 37 ° C, the nutrient medium is removed, washed twice with a monolayer of Hanks solution pH 7.4, fixed with 5% formalin for 1 hour, then dried and stained with Romanovsky-Giemsa disks 1: 5 in for 40 minutes;
г) проводят по окрашенным дискам подсчет связанных бактериальных клеток, для этого диски промывают раствором Хенкса рН 7,4, достают из флаконов, высушивают, просматривают под микроскопом и определяют адгезивные свойства холерных вибрионов по числу вибрионов, связавшихся с 100 клетками HuTu-80, и рассчитывают индекс адгезии по формулеd) the stained bacterial cells are counted on stained discs, for this, the discs are washed with Hanks pH 7.4, removed from the vials, dried, examined under a microscope and the adhesive properties of cholera vibrios are determined by the number of vibrios bound to 100 HuTu-80 cells, and calculate the adhesion index by the formula
ИА - индекс адгезии,IA - adhesion index,
∑КБ - суммарное количество клеток бактерий, прикрепившихся к одной клетке линии HuTu-80,∑KB - the total number of bacterial cells attached to one cell of the HuTu-80 line,
100К - 100 клеток линии HuTu-80,100K - 100 cells of the HuTu-80 line,
оценивают результаты по полученному количественному индексу адгезии, если он больше 20 делают вывод, что исследуемый штамм - высокоадгезивный, от 10 до 20 - среднеадгезивный штамм, меньше 10 - штамм низкоадгезивный.evaluate the results according to the obtained quantitative index of adhesion, if it is more than 20, conclude that the studied strain is highly adhesive, from 10 to 20 is medium adhesive, less than 10 is a low adhesive strain.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Для проведения способа необходима клеточная линия HuTu-80 (двенадцатиперстная кишка человека), которую получают из Российской коллекции клеточных культур позвоночных института цитологии РАН (г. Санкт-Петербург).To carry out the method, a HuTu-80 cell line (human duodenum) is required, which is obtained from the Russian collection of vertebrate cell cultures of the Institute of Cytology RAS (St. Petersburg).
Предлагаемый способ включает в себя следующие этапы:The proposed method includes the following steps:
1) подготовительный;1) preparatory;
а) размораживание клеточной линии и ее адаптацию к условиям выполнения эксперимента;a) thawing the cell line and its adaptation to the conditions of the experiment;
б) культивирование штаммов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 на питательных средах для постановки опытов;b) cultivation of strains of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 in nutrient media for experiments;
2) проведение эксперимента - взаимодействие клеток холерных вибрионов с перевиваемой монослойной человеческой клеточной линией аденокарциномы двенадцатиперстной кишки HuTu-80;2) conducting an experiment - the interaction of cholera vibrio cells with a transplanted monolayer human duodenal adenocarcinoma cell line HuTu-80;
3) учет результатов воздействия клеток Vibrio cholerae с перевиваемой монослойной человеческой клеточной линией аденокарциномы двенадцатиперстной кишки HuTu-80.3) taking into account the results of exposure to Vibrio cholerae cells with the transplanted monolayer human duodenal adenocarcinoma cell line HuTu-80.
Этап 1, а - Ампулы с клеточной культурой достают из биохранилища и размораживают при температуре 37°С, выдерживая ампулу на водяной бане в течение 2-3 минут. С помощью теста прижизненной окраски трипановым синим определяют их жизнеспособность, последняя должна быть не менее 80-85%.Stage 1, a - Ampoules with cell culture are removed from the bio-storage and thawed at a temperature of 37 ° C, keeping the ampoule in a water bath for 2-3 minutes. Using the test of intravital staining with trypan blue, their viability is determined, the latter should be at least 80-85%.
Суспензию монослойных клеток переносят в пробирку с 199 средой для отмывания от примесей защитной среды и центрифугируют при 1000 об/мин в течение 10 минут, супернатант удаляют, осадок клеток ресуспендируют в полной среде выращивания при рН7,5.The suspension of monolayer cells was transferred to a test tube with 199 medium for washing away from the impurities of the protective medium and centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes, the supernatant was removed, the cell pellet was resuspended in a complete growth medium at pH 7.5.
Клетки высевают в пластиковые флаконы объемом 50 мл, 100-150 тысяч на 1 мл. Культивирование проводят в СО2-инкубаторе (Naure) при температуре 37°С и концентрации СО2 - 5%, с периодичностью высева 2-3 раза в неделю. Для снятия клеточного монослоя HuTu-80 используют растворы трипсина и версена в соотношении 1:3. В процессе тиражирования клеточной культуры с помощью инвертированного микроскопа (Nikon) оценивают их морфологию и отсутствие посторонней бактериальной микрофлоры.Cells are seeded in plastic bottles with a volume of 50 ml, 100-150 thousand per 1 ml. Cultivation is carried out in a CO 2 incubator (Naure) at a temperature of 37 ° C and a CO 2 concentration of 5%, with a seeding frequency of 2-3 times a week. Trypsin and versene solutions in a 1: 3 ratio are used to remove the HuTu-80 cell monolayer. In the process of replicating a cell culture using an inverted microscope (Nikon), their morphology and the absence of extraneous bacterial microflora are evaluated.
Для постановки опыта используют свежую трипсинизированную культуру клеток линии HuTu-80. В пенфлаконы с дисками (диски 12,0 X 0,11 SPL Lifesciences) вносят по 50 тысяч клеток в объеме 1 мл. На следующий день с помощью инвертированного микроскопа оценивают образование разреженного монослоя.For the experiment, a fresh trypsinized cell culture of the HuTu-80 line is used. 50 thousand cells in a volume of 1 ml are introduced into pen-bottles with disks (12.0 X 0.11 SPL Lifesciences disks). The next day, using an inverted microscope, the formation of a rarefied monolayer is evaluated.
Этап 1, б - Культуры холерных вибрионов готовят непосредственно перед опытом. Для этого штаммы выращивают на агаре Мартена (рН 7,7) в течение 18 часов, по истечении этого срока засевают одну стандартную петлю (d=2 мм) исследуемой культуры в бульон LB (Luria-Bertani) (рН 7,7), выдерживают в термостате при температуре 37°С в течение трех часов. После этого с помощью денсиламетра (Erba Lachema) определяют концентрацию холерных вибрионов в бульонных культурах. Все культуры доводят до концентрации 108 м.к./мл.Stage 1, b - Vibrio cholerae cultures are prepared immediately before the experiment. For this, the strains are grown on Marten agar (pH 7.7) for 18 hours, after which time one standard loop (d = 2 mm) of the test culture is inoculated into LB broth (Luria-Bertani) (pH 7.7), maintained in the thermostat at a temperature of 37 ° C for three hours. After that, with the help of densimeter (Erba Lachema) determine the concentration of cholera vibrios in broth cultures. All cultures were adjusted to a concentration of 10 8 m.k. / ml.
Второй этап заключается в определении адгезивных свойств холерных вибрионов, для этого в 1 мл среды DMEM с 5% сыворотки эмбриональной бычьей добавляют по 10 мкл стандартизованной взвеси до получения конечной концентрации 106 м.к./мл испытуемых штаммов холерных вибрионов и вносят в пенфлаконы с дисками (диски 12,0 X 0,11 SPL Lifesciences), на которых сформирован разреженный монослой HuTu-80. Инкубируют в течение 90 минут при 37°С в СО2-инкубаторе (Naure), затем удаляют питательную среду и промывают разреженный монослой дважды раствором Хенкса (рН 7,4) от несвязавшихся с монослоем клеток холерных вибрионов, фиксируют 5% формалином 1 час для соблюдения требований биологической безопасности, высушивают и окрашивают диски по Романовскому - Гимза 1:5 в течение 35-40 минут. Окрашенные диски три раза промывают раствором Хенкса (рН 7,4) достают из флаконов.The second stage is to determine the adhesive properties of cholera vibrios, for this, 10 μl of standardized suspension are added to 1 ml of DMEM medium with 5% bovine serum to obtain a final concentration of 10 6 MK / ml of the tested cholera vibrio strains and added to penflon bottles with disks (12.0 X 0.11 SPL Lifesciences disks) on which a sparse HuTu-80 monolayer is formed. Incubated for 90 minutes at 37 ° C in a CO 2 incubator (Naure), then the nutrient medium was removed and the diluted monolayer was washed twice with Hanks solution (pH 7.4) from cholera vibrios that did not contact the monolayer and fixed with 5% formalin for 1 hour. compliance with biological safety requirements, dry and stain discs according to Romanovsky - Giemsa 1: 5 for 35-40 minutes. The colored discs are washed three times with Hanks' solution (pH 7.4) and removed from the vials.
Третий этап, учет результатов, включает просмотр дисков под световым микроскопом фирмы Nikon (увеличение 100X10). Просмотр дисков всегда начинают с контроля. Адгезивные свойства бактерий определяют по числу вибрионов, связавшихся со 100 клетками HuTu-80 и рассчитывают индекс адгезии по формулеThe third step, recording results, includes viewing discs under a Nikon light microscope (magnification 100X10). Browse discs always begin with control. The adhesive properties of bacteria are determined by the number of vibrios that bind to 100 HuTu-80 cells and the adhesion index is calculated by the formula
ИА - индекс адгезии,IA - adhesion index,
∑КБ - суммарное количество клеток бактерий, прикрепившихся к одной клетке линии HuTu-80,∑KB - the total number of bacterial cells attached to one cell of the HuTu-80 line,
100К - 100 клеток линии HuTu-80.100K - 100 cells of the HuTu-80 line.
Оценка индекса адгезии: больше 20 - высокоадгезивный штамм, от 10 до 20 - среднеадгезивный штамм, меньше 10 - низкоадгезивный штамм.Assessment of the adhesion index: more than 20 is a highly adhesive strain, from 10 to 20 is a medium adhesive strain, less than 10 is a low adhesive strain.
Применение способа для оценки адгезивных свойств холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 подтверждено в Ростовском противочумном институте (г. Ростов-на-Дону) на 20 штаммах.The use of the method for assessing the adhesive properties of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios was confirmed at the Rostov Anti-Plague Institute (Rostov-on-Don) on 20 strains.
ПримерExample
Адгезивные свойства определяли у штаммов холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor 18775, Vibrio cholerae El Tor 18777, Vibrio cholerae O139 17258, выделенных от человека и из объектов окружающей среды и характеризующиеся наличием или отсутствием генов холерного токсина и токсинкорегулируемых пилей адгезии.Adhesive properties were determined for Vibrio cholerae El Tor 18775, Vibrio cholerae El Tor 18777, Vibrio cholerae O139 17258 strains of cholera vibrios isolated from humans and from environmental objects and characterized by the presence or absence of cholera toxin genes and toxin-regulated adhesion peels.
Постановку опыта проводят в боксе биологической безопасности (БМБ) II класса. Культуры холерных вибрионов готовят непосредственно перед опытом. Для этого штаммы выращивают на агаре Мартена (рН 7,7) в течение 18 часов, по истечении этого срока засевают одну стандартную петлю (d=2 мм) исследуемой культуры в бульон LB (рН 7,7), выдерживают в термостате при 37°С в течение 3 часов. После этого с помощью денсиламетра (Erba Lachema) определяют концентрацию холерных вибрионов в бульонных культурах. Все культуры стандартизуют до концентрации 108 мк. кл/мл. В 1 мл среды DMEM с 5% эмбриональной бычьей сыворотки добавляют 10 мкл стандартизованной взвеси, получая конечную концентрацию вибрионов 106 м.к./мл. Вносят в пенфлаконы с дисками (диски 12,0 X 0,11 SPL Lifesciences), на которых присутствует разреженный монослой HuTu-80.The experiment is conducted in the biological safety box (BMB) of class II. Vibrio cholera cultures are prepared immediately before the experiment. For this, the strains are grown on Marten agar (pH 7.7) for 18 hours, after this period one standard loop (d = 2 mm) of the test culture is inoculated into LB broth (pH 7.7), incubated at 37 ° C for 3 hours. After that, with the help of densimeter (Erba Lachema) determine the concentration of cholera vibrios in broth cultures. All cultures are standardized to a concentration of 10 8 microns. cells / ml In 1 ml of DMEM medium with 5% fetal bovine serum, 10 μl of standardized suspension was added to obtain a final concentration of vibrios of 10 6 mc / ml. They are introduced into pen-bottles with disks (12.0 X 0.11 SPL Lifesciences disks) in which a diluted HuTu-80 monolayer is present.
Пенфлакон с интактной культурой служит отрицательным контролем. Все пробы инкубируют в CO2-инкубаторе при 37°С в течение 90 минут. По истечении указанного времени опытные и контрольные образцы отмывают раствором Хенкса рН 7,4 от неприкрепившихся клеток холерных вибрионов и фиксируют 5% формалином 1 час для соблюдения требований биологической безопасности, высушивают и окрашивают диски по Романовскому - Гимза 1:5 в течение 35-40 минут. Окрашенные диски три раза промывают раствором Хенкса рН 7,4, достают из флаконов, высушивают, просматривают под световым микроскопом.An intact culture penflacon serves as a negative control. All samples are incubated in a CO 2 incubator at 37 ° C for 90 minutes. After this time, the experimental and control samples are washed with Hanks solution pH 7.4 from non-adherent cells of cholera vibrios and fixed with 5% formalin for 1 hour to comply with biological safety requirements, the disks are dried and stained according to Romanovsky - Giemsa 1: 5 for 35-40 minutes . The colored discs are washed three times with Hanks solution pH 7.4, removed from the vials, dried, viewed under a light microscope.
Адгезивные свойства холерных вибрионов определяют по числу вибрионов, связавшихся со 100 клетками HuTu-80, и рассчитывают индекс адгезии по формуле.The adhesive properties of cholera vibrios are determined by the number of vibrios that bind to 100 HuTu-80 cells, and the adhesion index is calculated by the formula.
Испытуемые штаммы холерных вибрионов отличались по индексу адгезии, который представлен в расчетах и таблице.The tested strains of cholera vibrios differed in the adhesion index, which is presented in the calculations and the table.
Штамм Vibrio cholerae El Tor 18775 ∑КБ=2036.Strain Vibrio cholerae El Tor 18775 ∑ KB = 2036.
Штамм Vibrio cholerae El Tor 18777 ∑КБ=1017.Strain Vibrio cholerae El Tor 18777 ∑ KB = 1017.
Штамм Vibrio cholerae O139 17258 ∑КБ=511.Strain Vibrio cholerae O139 17258 ∑ KB = 511.
Таким образом, способ оценки адгезивных свойств холерных вибрионов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae O139 основан на взаимодействии бактерий с рецепторами, локализованными на клеточной стенки эпителиальных клеток аденокарциномы двенадцатиперстной кашки человека HuTu-80.Thus, the method for evaluating the adhesive properties of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios is based on the interaction of bacteria with receptors located on the cell wall of human duodenal adenocarcinoma HuTu-80 epithelial cells.
Преимущества предлагаемого способа заключаются в том, что используемая культура клеток HuTu-80 стандартна, гомогенна и обладает фиксированным фенотипом, опыты с культурой могут быть многократно повторены, кроме того, возможно прижизненное наблюдение процесса адгезии пи помощи микроскопа, что исключает опыты на животных. Новый способ позволяет изучить исследуемые свойства непосредственно на эпителиальных клетках человека, что дает основание для экстраполяции результатов на организм в целом. При данном способе используются клетки человека, а не животного, что позволяет определить адгезивность бактерий с большей точностью.The advantages of the proposed method are that the HuTu-80 cell culture used is standard, homogeneous and has a fixed phenotype, experiments with the culture can be repeated many times, in addition, intravital observation of the adhesion process using a microscope is possible, which excludes experiments on animals. The new method allows you to study the investigated properties directly on human epithelial cells, which gives the basis for extrapolation of the results to the body as a whole. This method uses human cells, not animal cells, which makes it possible to determine the adhesiveness of bacteria with greater accuracy.
Источники информацииInformation sources
1. Саппо С.Г., Урбанович Л.Я., Колесник B.C. «Использование эритроцитов для выявления адгезивной способности вибрионов». Сборник «Современные аспекты профилактики зоонозных инфекций», Министерство здравоохранения СССР, Иркутск, 1984 г. С. 126 -127.1. Sappo S.G., Urbanovich L.Ya., Kolesnik B.C. "The use of red blood cells to detect the adhesive ability of vibrios." The collection "Modern aspects of the prevention of zoonotic infections", Ministry of Health of the USSR, Irkutsk, 1984, pp. 126 -127.
2. Методические рекомендации по количественной оценке адгезивной активности холерных вибрионов in vitro (Ростов-на-Дону, 1996).2. Guidelines for the quantitative assessment of the adhesive activity of cholera vibrios in vitro (Rostov-on-Don, 1996).
Claims (1)
а) проводят подготовку монослоя клеток HuTu-80 путем их выращивания в пластиковых флаконах объемом 50 мл, по 100-150 тыс. на 1 мл с последующим трипсинизированием культуры и внесением ее в пенфлаконы с дисками (диски 12,0 X 0,11 SPL Lifesciences) по 50 тыс. клеток в объеме 1 мл;
б) готовят бактериальную суспензию штаммов Vibrio cholerae El Tor и Vibrio cholerae О139, которые выращивают на агаре Мартена (рН 7,7) в течение 18 часов, после этого петлей засевают в бульон LB (рН 7,7) и выдерживают в термостате при 37°С в течение трех часов;
в) эксперимент проводят в пенфлаконах с дисками, на которых сформировался разреженный монослой HuTu-80, туда добавляют 10 мкл бактериальной суспензии и 1 мл среды DMEM с 5% сыворотки эмбриональной бычьей, до концентрации холерных вибрионов 106 м.к./мл, затем проводят инкубирование в течение 90 минут при 37°С, удаляют питательную среду, дважды промывают монослой раствором Хенкса рН 7,4, фиксируют 5% формалином 1 час, после этого высушивают и окрашивают диски по Романовскому - Гимза 1:5 в течение 40 минут;
г) проводят по окрашенным дискам подсчет связанных бактериальных клеток, для этого диски промывают раствором Хенкса рН 7,4, достают из флаконов, высушивают, просматривают под микроскопом и определяют адгезивные свойства холерных вибрионов по числу вибрионов, связавшихся с 100 клетками HuTu-80, и рассчитывают индекс адгезии по формуле:
где
ИА - индекс адгезии,
ΣКБ - суммарное количество клеток бактерий, прикрепившихся к одной клетке линии HuTu-80,
100К - 100 клеток линии HuTu-80,
оценивают результаты по полученному количественному индексу адгезии, если он больше 20, делают вывод, что исследуемый штамм - высокоадгезивный, от 10 до 20 - среднеадгезивный штамм, меньше 10 - штамм низкоадгезивный. A method for evaluating the adhesive properties of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139 cholera vibrios on a HuTu-80 cell culture, comprising the following steps:
a) prepare a monolayer of HuTu-80 cells by growing them in plastic bottles of 50 ml, 100-150 thousand per 1 ml followed by trypsinization of the culture and adding it to penflon with disks (disks 12.0 X 0.11 SPL Lifesciences ) 50 thousand cells in a volume of 1 ml;
b) prepare a bacterial suspension of strains of Vibrio cholerae El Tor and Vibrio cholerae O139, which are grown on Marten agar (pH 7.7) for 18 hours, after which the loop is seeded in LB broth (pH 7.7) and incubated in a thermostat at 37 ° C for three hours;
c) the experiment is carried out in pen-bottles with disks on which a diluted HuTu-80 monolayer was formed, 10 μl of bacterial suspension and 1 ml of DMEM medium with 5% bovine fetal serum are added thereto, to a concentration of cholera vibrios of 10 6 m.k. / ml, then carry out incubation for 90 minutes at 37 ° C, remove the nutrient medium, wash the monolayer with Hanks solution pH 7.4 twice, fix with 5% formalin for 1 hour, then dry and stain the discs according to Romanovsky-Giemsa 1: 5 for 40 minutes;
d) the stained bacterial cells are counted on stained discs, for this, the discs are washed with Hanks pH 7.4, removed from the vials, dried, examined under a microscope and the adhesive properties of cholera vibrios are determined by the number of vibrios bound to 100 HuTu-80 cells, and calculate the adhesion index by the formula:
Where
IA - adhesion index,
ΣKB - the total number of bacterial cells attached to one cell of the HuTu-80 line,
100K - 100 cells of the HuTu-80 line,
evaluate the results according to the obtained quantitative index of adhesion, if it is more than 20, conclude that the studied strain is highly adhesive, from 10 to 20 is medium-adhesive strain, less than 10 is a low-adhesive strain.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014149782/10A RU2595423C2 (en) | 2014-12-09 | 2014-12-09 | METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014149782/10A RU2595423C2 (en) | 2014-12-09 | 2014-12-09 | METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2014149782A RU2014149782A (en) | 2016-07-10 |
RU2595423C2 true RU2595423C2 (en) | 2016-08-27 |
Family
ID=56372358
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014149782/10A RU2595423C2 (en) | 2014-12-09 | 2014-12-09 | METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2595423C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2763400C1 (en) * | 2020-12-23 | 2021-12-28 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for suppressing the adhesive properties of cholera vibrio |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2288274C1 (en) * | 2005-04-04 | 2006-11-27 | Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт | Method for assay of sugar inhibitory capacity degree on adhesion process of cholera vibrio |
RU2332460C1 (en) * | 2006-12-26 | 2008-08-27 | Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of detection of epidemiologically relevant cholera vibrions vibrio eltor and vibrio cholerae o139 by their adhesion properties |
RU2501861C1 (en) * | 2012-05-12 | 2013-12-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" Министерства образования и науки Российской Федерации | METHOD FOR DETERMINING ADHESIVE PROPERTIES OF BACTERIA OF ENTEROCOCCUS FAMILY BY MEANS OF CaCo-2 CELL LINE |
-
2014
- 2014-12-09 RU RU2014149782/10A patent/RU2595423C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2288274C1 (en) * | 2005-04-04 | 2006-11-27 | Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт | Method for assay of sugar inhibitory capacity degree on adhesion process of cholera vibrio |
RU2332460C1 (en) * | 2006-12-26 | 2008-08-27 | Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of detection of epidemiologically relevant cholera vibrions vibrio eltor and vibrio cholerae o139 by their adhesion properties |
RU2501861C1 (en) * | 2012-05-12 | 2013-12-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" Министерства образования и науки Российской Федерации | METHOD FOR DETERMINING ADHESIVE PROPERTIES OF BACTERIA OF ENTEROCOCCUS FAMILY BY MEANS OF CaCo-2 CELL LINE |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
SHAHJAHAN KABIR et al., Characterization of Surface Properties of Vibrio cholerae, Infection and Immunity, 1983 vae., Vol.39, No.3, pp.1048-1058;VANESSA SPERANDIO et al., The OmpU Outer Membrane Protein, a Potential Adherence Factor of Vibrio cholerae, Infection amd Nvvunity, 1995 Nov., Vol.63, No.11, pp.4433-4438. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2763400C1 (en) * | 2020-12-23 | 2021-12-28 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for suppressing the adhesive properties of cholera vibrio |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2014149782A (en) | 2016-07-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Manina et al. | A single-cell perspective on non-growing but metabolically active (NGMA) bacteria | |
Giengkam et al. | Improved quantification, propagation, purification and storage of the obligate intracellular human pathogen Orientia tsutsugamushi | |
Krešić et al. | Canine adipose derived mesenchymal stem cells transcriptome composition alterations: a step towards standardizing therapeutic | |
Poole et al. | Human intestinal enteroids for the study of bacterial adherence, invasion, and translocation | |
AU2013298450B2 (en) | Method for culturing a subpopulation of circulating epithelial tumour cells from a body fluid | |
CN106754719B (en) | Inoculation liquid composition and method for constructing malignant pleural effusion source xenograft tumor animal model by using same | |
RU2595423C2 (en) | METHOD OF ESTIMATION OF ADHESIVE PROPERTIES OF CHOLERA VIBRIOS Vibrio cholerae El Tor AND Vibrio cholerae O139 ON CELL CULTURE HuTu-80 | |
Yasuda et al. | Tumorigenicity assessment of human cell-processed therapeutic products | |
CN104140951B (en) | A kind of method set up and cultivate people induced multi-potent stem cell | |
RU2332460C1 (en) | Method of detection of epidemiologically relevant cholera vibrions vibrio eltor and vibrio cholerae o139 by their adhesion properties | |
CN104988116A (en) | Chemical embryotoxicity prediction model and establishing method thereof | |
Liu et al. | Yersinia ruckeri strain SC09 restrains innate immunity to promote infection process in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) via the type IV secretion system (T4SS) | |
JP2004500855A (en) | Infection model | |
Blehert et al. | Laboratory Maintenance and Culture of Pseudogymnoascus destructans, the Fungus That Causes Bat White‐Nose Syndrome | |
RU2465592C1 (en) | METHOD FOR ASSESSING CYTOTOXICITY OF Burcholderia pseudomallei antigens in vitro | |
RU2611359C1 (en) | Method and set for determination of cholera toxin production and differentiation of epidemiologically significant strains of cholera vibrios of classical and el tor biovars | |
TWI627277B (en) | Medium, including the set of the group, and its application | |
RU2729575C1 (en) | Method for identification of cholera vibrio o1 serogroups of biovars classical and el tor | |
RU2501861C1 (en) | METHOD FOR DETERMINING ADHESIVE PROPERTIES OF BACTERIA OF ENTEROCOCCUS FAMILY BY MEANS OF CaCo-2 CELL LINE | |
Ilkhomovich | Determination Of Cultural Properties Of Leptospira | |
RU2422520C1 (en) | Method of producing and recording marked bacteriophages in cholera germ model | |
RU2604804C1 (en) | Method of determining safety of probiotic microorganisms using cell test systems | |
RU2688334C1 (en) | Method for determining specific activity of anti-rabies immunoglobulin on cell culture using atomic force microscopy | |
CN101942499A (en) | Method for detecting cell apoptosis in germ cell-supporting cell coculture | |
CN107663513B (en) | Efficient separation and extraction method for uterine membrane stem cells and library building method |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20171210 |