RU2583924C1 - METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL - Google Patents
METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL Download PDFInfo
- Publication number
- RU2583924C1 RU2583924C1 RU2015112568/15A RU2015112568A RU2583924C1 RU 2583924 C1 RU2583924 C1 RU 2583924C1 RU 2015112568/15 A RU2015112568/15 A RU 2015112568/15A RU 2015112568 A RU2015112568 A RU 2015112568A RU 2583924 C1 RU2583924 C1 RU 2583924C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dna
- atopobium vaginae
- amplification
- detection
- sneathia sanguinegens
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6804—Nucleic acid analysis using immunogens
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2531/00—Reactions of nucleic acids characterised by
- C12Q2531/10—Reactions of nucleic acids characterised by the purpose being amplify/increase the copy number of target nucleic acid
- C12Q2531/113—PCR
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2561/00—Nucleic acid detection characterised by assay method
- C12Q2561/101—Taqman
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2565/00—Nucleic acid analysis characterised by mode or means of detection
- C12Q2565/10—Detection mode being characterised by the assay principle
- C12Q2565/125—Electrophoretic separation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/16—Primer sets for multiplex assays
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к медицине, а именно к клинической лабораторной диагностике и медицинской микробиологии, и может быть использовано в медицинской практике для ускоренного обнаружения и идентификации Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале для последующей диагностики бактериального вагиноза.The present invention relates to medicine, namely to clinical laboratory diagnostics and medical microbiology, and can be used in medical practice for the accelerated detection and identification of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. in clinical material for the subsequent diagnosis of bacterial vaginosis.
Установлено, что при бактериальном вагинозе (нарушении состояния микрофлоры влагалища) часто обнаруживаются микроорганизмы Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. Показано, что наличие данных микроорганизмов в клиническом материале коррелирует со степенью тяжести бактериального вагиноза. Соответственно, их раннее обнаружение имеет диагностическое значение [Fredricks D.N., Fiedler T.L., Marrazzo J.M. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N. Engl. J. Med. 2005. 353:1899-1911].It was found that with bacterial vaginosis (a violation of the state of the vaginal microflora), microorganisms Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp are often found. It was shown that the presence of these microorganisms in the clinical material correlates with the severity of bacterial vaginosis. Accordingly, their early detection has diagnostic value [Fredricks D.N., Fiedler T.L., Marrazzo J.M. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N. Engl. J. Med. 2005.353: 1899-1911].
В микробиологической практике для детекции и идентификации микроорганизмов в клиническом материале используют главным образом методы микроскопического исследования микропрепаратов (окраска по Граму, метиленовым синим и др.) и культурный метод (выделение чистых культур микроорганизмов) [Методики клинических лабораторных исследований: Справочное пособие. Том 3. / Под ред. В.В. Меньшикова. - М.: Лабора, 2009. - 880 с]. Указанные методы имеют ряд существенных недостатков: микроскопическое исследование с окраской микропрепарата по методу Грама позволяет дифференцировать по тинкториальным признакам лишь чистые культуры бактерий, выделенные преимущественно в виде колонии с поверхности плотных агаризованных сред. При окраске клинического материала (соскобы, отделяемое слизистых и др.) стандартизация условий жизнедеятельности бактерий и, соответственно, поддержание постоянства их тинкториальных признаков невозможно, поэтому в подавляющем большинстве случаев однозначная дифференцировка грамположительных и грамотрицательных бактерий по цвету проблематична. Микроскопия как метод в принципе не позволяет устанавливать видовую принадлежность микроорганизмов. Кроме того, при микроскопии микропрепаратов можно выявить микроорганизмы, присутствующие в биоматериале в количестве, обычно превышающем 105 КОЕ/мл, тогда как многие факультативно-анаэробные и аэробные бактерии могут проявлять патогенный эффект при сравнительно небольшом их количестве (до 104 КОЕ/мл), которое не выявляется при микроскопии. Недостатками световой микроскопии является то, что выявляют не более 10 морфотипов, при этом многие виды и роды бактерий, обнаруживаемые в микропрепаратах, морфологически однотипны. Например, Atopobium vaginae не имеет специфических микроскопических признаков и выглядит под микроскопом как коринебактерии, довольно часто встречающиеся у здоровых женщин. Световая микроскопия не позволяет дифференцировать ультраструктурные особенности исследуемых бактерий, в связи с этим идентификация бактерий до вида, опираясь при этом лишь на данные о форме, размерах и взаимном расположении, невозможна. Наконец, к недостаткам метода можно отнести субъективизм и зависимость результата исследования от квалификации врача-лаборанта. Поэтому в целом диагностическая ценность микроскопического исследования клинического материала относительно невысока, и микроскопия как метод применяется преимущественно для скрининга.In microbiological practice, for the detection and identification of microorganisms in clinical material, mainly microscopic studies of micropreparations (Gram stain, methylene blue, etc.) and the cultural method (isolation of pure cultures of microorganisms) are used [Methods of clinical laboratory research: A reference manual.
Более специфичным и чувствительным является культуральный метод. Однако многие представители микробиоты и бактерии, с которыми связывают дисбиотические состояния, включая Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp., являются облигатными анаэробами и не культивируются в обычных условиях. Более того, культуральное исследование отличает продолжительность (до 7 дней) и высокая себестоимость (специальные питательные среды и др.), а также целый ряд серьезных требований к преаналитическому этапу (сроки, транспортные среды и др.). Себестоимость культурального исследования возрастает на порядки в ходе биохимической идентификации выделенных культур, основанной на дополнительной характеристике колоний по более чем 50-70 биохимическим признакам, при этом не исключаются ошибки, обусловленные фенотипической изменчивостью бактерий.More specific and sensitive is the cultural method. However, many representatives of the microbiota and bacteria with which dysbiotic states are associated, including Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp., Are obligate anaerobes and are not cultured under normal conditions. Moreover, cultural research is distinguished by duration (up to 7 days) and high cost (special nutrient media, etc.), as well as a number of serious requirements for the preanalytical stage (dates, transport media, etc.). The cost of cultural research increases by orders of magnitude during the biochemical identification of selected cultures, based on the additional characteristics of colonies by more than 50-70 biochemical characteristics, while errors caused by phenotypic variability of bacteria are not excluded.
В связи с этим для достоверного обнаружения Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. перспективными представляются молекулярно-биологические методы исследования, в частности полимеразная цепная реакция (ПЦР) с детекцией продуктов амплификации в агарозном геле.In this regard, for reliable detection of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. Molecular biological research methods, in particular, polymerase chain reaction (PCR) with the detection of amplification products in agarose gel, seem to be promising.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) - метод амплификации ДНК in vitro, с помощью которого в течение нескольких часов можно выявить специфическую последовательность ДНК [Mullis К.В. The unusual origin of the polymerase chain reaction. Sci. Am., 1990, 262, 56]. Суть метода ПЦР состоит в том, что из исследуемого образца предварительно выделяется тотальная ДНК, далее вносятся олигонуклеотидные затравки (праймеры), ограничивающие специфические фрагменты искомой ДНК. В процессе амплификации происходит нарастание концентрации ДНК в геометрической прогрессии и поэтому, даже если в исходном растворе первоначально находилась только одна двуцепочечная молекула ДНК, то за 30-40 циклов в растворе накапливается около 108 молекул ампликона. Этого количества достаточно для достоверной визуальной детекции этого фрагмента методом электрофореза в агарозном геле. Метод позволяет в короткие сроки (в течение нескольких часов) выявить и идентифицировать любые микроорганизмы в любом биоматериале, полученном из области патологического процесса, без выделения чистой культуры при использовании специально подобранных специфичных праймеров. Достоинствами метода ПЦР являются высокая специфичность и чувствительность, универсальность процедуры, простота и удобство проведения анализа.Polymerase chain reaction (PCR) is an in vitro DNA amplification method that can be used to detect a specific DNA sequence within a few hours [K. Mullis The unusual origin of the polymerase chain reaction. Sci. Am., 1990, 262, 56]. The essence of the PCR method is that total DNA is preliminarily extracted from the test sample, then oligonucleotide seeds (primers) are introduced that limit specific fragments of the desired DNA. During the amplification process, the concentration of DNA increases exponentially, and therefore, even if only one double-stranded DNA molecule was initially present in the initial solution, about 10 8 amplicon molecules accumulate in the solution over 30-40 cycles. This amount is sufficient for reliable visual detection of this fragment by agarose gel electrophoresis. The method allows in a short time (within a few hours) to identify and identify any microorganisms in any biomaterial obtained from the pathological process without isolating a pure culture using specially selected specific primers. The advantages of the PCR method are high specificity and sensitivity, universality of the procedure, simplicity and convenience of analysis.
Перспективны возможности ПЦР реакции в контексте возможности одновременной детекции и идентификации в одной пробирке геномной ДНК микроорганизмов нескольких разных видов, так называемая мультиплексная ПЦР (multiplex PCR). Это обеспечивается одновременным внесением в реакционную смесь нескольких пар видоспецифичных праймеров, амплификацией и обнаружением видоспецифичных ампликонов, различающихся между собой размерами.The possibilities of a PCR reaction are promising in the context of the possibility of simultaneous detection and identification in a single test tube of genomic DNA of microorganisms of several different species, the so-called multiplex PCR (multiplex PCR). This is ensured by the simultaneous introduction of several pairs of species-specific primers into the reaction mixture, amplification and detection of species-specific amplicons of different sizes.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является способ идентификации микроорганизмов микрофлоры влагалища, в том числе Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp., включающий ПЦР-амплификацию 16S pPHK с детекцией результатов в 2-3% агарозном геле и проведение сравнительного анализа конкретных представителей нормо- и условно-патогенной биоты у женщин с бактериальным вагинозом и без него [Fredricks D.N., Fiedler T.L., Marrazzo J.M. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N. Engl. J. Med. 2005. 353:1899-1911]. Однако данный способ не позволяет проводить ПЦР детекцию в режиме мутиплексной реакции.The closest analogue (prototype) is a method for identifying microorganisms of the vaginal microflora, including Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp., Including PCR amplification of 16S pPHK with detection of results in 2-3% agarose gel and comparative analysis of specific representatives of normative and conditionally pathogenic biota in women with and without bacterial vaginosis [Fredricks DN, Fiedler TL, Marrazzo JM Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N. Engl. J. Med. 2005.353: 1899-1911]. However, this method does not allow PCR detection in the mutiplex reaction mode.
Задачей изобретения является разработка способа мультиплексной идентификации Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале.The objective of the invention is to develop a method for the multiplex identification of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. in clinical material.
Технический результат, достигаемый при использовании изобретения, - сокращение продолжительности исследования, существенное увеличение чувствительности и специфичности одновременной детекции в клиническом материале бактерий четырех видов: Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp.The technical result achieved by using the invention is to reduce the duration of the study, significantly increase the sensitivity and specificity of the simultaneous detection of four types of bacteria in the clinical material: Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе ПЦР-детекции Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале, включающем выделение ДНК из исследуемого материала, амплификацию и электрофорез, согласно изобретению проводят мультиплексную ПЦР с использованием специфичных праймеров к Atopobium vaginae: 5′ gcgtaggcggtctgttaggtca 3′ и 5′ gttagctgcggcacggaaagtat 3′, к Leptotrichia amnionii: 5′ ctacggcactaaaggagag 3′ и 5′ cccgaggatgtcaagat 3′, к Sneathia sanguinegens: 5′ gcgatacatggcaaaactaagaaa 3′ и 5′ tgtgtacaagaccccgagaac 3′ и к Eggerthella spp.: 5′ ttgctcaagcggaacctctaatct 3′ и 5′ acgtttccgccgcttcacctaca 3′ в циклическом режиме, предусматривающем начальный цикл в течение 1 мин при температуре 94°C; затем 30 циклов, каждый из которых включает стадию денатурации в течение 30 сек при 94°C, стадию отжига праймеров в течение 30 сек при температуре 59°C и стадию элонгации в течение 30 сек при температуре 72°C; заключительный цикл в течение 2 мин при температуре 72°C, при электрофоретическом обнаружении ампликонов размерами 286 п.н. и/или 768 п.н. и/или 135 п.н. и/или 428 п.н. определяют наличие Atopobium vaginae и/или Leptotrichia amnionii и/или Sneathia sanguinegens и/или Eggerthella spp. соответственно.The specified technical result is achieved by the fact that in the method of PCR detection of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. in clinical material, including DNA extraction from the test material, amplification and electrophoresis, according to the invention, multiplex PCR is carried out using specific primers for Atopobium vaginae: 5
Изобретение иллюстрируется фигурой, на которой представлена электрофореграмма результатов амплификации с использованием мультиплексной тест-системы.The invention is illustrated by a figure, which shows an electrophoregram of the amplification results using a multiplex test system.
Подбор праймеров. В качестве ДНК-мишеней выбраны последовательности генов 16S рРНК. Выбор именно этих генов обусловлен доступностью огромных массивов данных о структуре генов рРНК у самых разнообразных микроорганизмов. Гены рРНК обнаружены у всех клеточных форм жизни, происходят от общего предка и функционально постоянны, генетически стабильны. Ген 16S рРНК имеет высококонсервативные и вариабельные участки. Использование в качестве мишеней для отжига праймеров высококонсервативных участков позволяет надежно идентифицировать искомые бактерии до вида, избегая ошибок, связанных с генетической изменчивостью.Primer selection. As target DNA, the sequences of 16S rRNA genes were selected. The choice of these genes is due to the availability of huge amounts of data on the structure of rRNA genes in a wide variety of microorganisms. RRNA genes were found in all cellular life forms, descend from a common ancestor and are functionally constant, genetically stable. The 16S rRNA gene has highly conserved and variable regions. The use of highly conserved regions as targets for primer annealing makes it possible to reliably identify the desired bacteria to a species, avoiding errors associated with genetic variation.
Для конструирования тест-системы был осуществлен поиск последовательностей ДНК БВ-ассоциированных бактерий, представленных в международном банке нуклеотидных последовательностей GenBank (www.ncbi.nlm.nih.gov): Atopobium vaginae (Y17195.1), Leptotrichia amnionii (EF218612), Sneathia sanguinegens (AJ344093), Eggerthella spp. (AY738656). При использовании программы «MegAlign» (США) был проведен сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей указанных микроорганизмов и обнаружены наиболее консервативные и видоспецифичные участки, которые позволяют с наибольшей достоверностью определять видовую принадлежность бактерий. С использованием программы «PrimerSelect» пакета компьютерных программ «Lasergene» («DNASTAR, Inc.», США) были подобраны пары олигонуклеотидных праймеров, отвечающие следующим требованиям: неспособность образовывать между собой стабильные димеры и формировать шпилечные структуры; температура отжига 55-70°C; 3′-конец праймера размером 10 нуклеотидов абсолютно комплементарен цепи ДНК; минимальная разность температур отжига праймеров одной пары; длина праймера 18-30 нуклеотидов. Далее осуществлялся поиск сходных последовательностей по всей базе данных генов с помощью программы «Megablast», доступной на вебсайте NCBI (www.ncbi.nlm.nih.gov), что позволило установить отсутствие гомологии фрагмента анализируемого гена исследуемого микроорганизма аналогичным генам других микроорганизмов. Это предполагает возможность их использования в качестве мишени и видоспецифичность подобранных последовательностей праймеров. Для идентификации генетического материала исследуемых микроорганизмов методом мультиплексной ПЦР были подобраны пары праймеры (таблица 1).To construct a test system, we searched for DNA sequences of BV-associated bacteria represented in the GenBank international nucleotide sequence bank (www.ncbi.nlm.nih.gov): Atopobium vaginae (Y17195.1), Leptotrichia amnionii (EF218612), Sneathia sanguinegens (AJ344093), Eggerthella spp. (AY738656). When using the MegAlign program (USA), a comparative analysis of the nucleotide sequences of these microorganisms was carried out and the most conservative and species-specific sites were found that allow the species species to be identified with the highest reliability. Using the PrimerSelect program of the Lasergene software package (DNASTAR, Inc., USA), pairs of oligonucleotide primers were selected that meet the following requirements: inability to form stable dimers between themselves and form hairpin structures; annealing temperature 55-70 ° C; The 3′-end of a 10 nucleotide primer is completely complementary to the DNA strand; the minimum temperature difference between the annealing primers of one pair; primer length 18-30 nucleotides. Further, similar sequences were searched across the entire gene database using the Megablast program, available on the NCBI website (www.ncbi.nlm.nih.gov), which made it possible to establish the absence of homology of the fragment of the analyzed gene of the studied microorganism to similar genes of other microorganisms. This suggests the possibility of their use as a target and the species-specificity of the selected primer sequences. To identify the genetic material of the studied microorganisms by multiplex PCR, primer pairs were selected (table 1).
Предлагаемый способ детекции включает три этапа: выделение генетического материала, мультиплексную амплификацию (ПЦР) и электрофорез.The proposed detection method includes three stages: the selection of genetic material, multiplex amplification (PCR) and electrophoresis.
На первом этапе из клинического материала (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяют тотальную ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и получения достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляют с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис». Набор реагентов «ДНК-сорб-АМ» - одна из модификаций метода Boom, максимально адаптированная к выделению ДНК из различных типов клинического материала для диагностики урогенитальных инфекций [Boom R., et al. 1990. Rapid and Simple Method for Purification of Nucleic Acids. J. Clin. Microbiol. 28: 495-503].At the first stage, total DNA is isolated from the clinical material (detachable from the posterior fornix of the vagina). DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and to obtain a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction is carried out using a standard set of DNA-sorb-AM series AmpliPrime firm Interlabservis. The DNA-sorb-AM reagent kit is one of the modifications of the Boom method that is maximally adapted to DNA extraction from various types of clinical material for the diagnosis of urogenital infections [Boom R., et al. 1990. Rapid and Simple Method for Purification of Nucleic Acids. J. Clin. Microbiol. 28: 495-503].
1. В пробирку с 100 мкл исследуемого материала вносят 300 мкл лизирующего раствора. Отдельным наконечником в пробирку вносят 25 мкл ресуспендированного сорбента.1. In a test tube with 100 μl of the test material, add 300 μl of lysis solution. A separate tip in the tube make 25 μl of resuspended sorbent.
2. Пробы тщательно перемешивают на вортексе и прогревают 5 мин при температуре 65°C. После окончания инкубации содержимое повторно перемешивают на вортексе и оставляют при комнатной температуре на 2 мин.2. Samples are thoroughly mixed on a vortex and warmed for 5 minutes at 65 ° C. After incubation, the contents are re-mixed on a vortex and left at room temperature for 2 minutes.
3. Сорбент осаждают центрифугированием при 10 тыс об/мин в течение 30 сек. Надосадочную жидкость удаляют с использованием вакуумного отсасывателя.3. Sorbent precipitated by centrifugation at 10 thousand rpm for 30 seconds. The supernatant is removed using a vacuum aspirator.
4. Далее в пробирку вносят 1 мл отмывочного раствора, перемешивают на вортексе до полного ресуспензирования сорбента.4. Next, 1 ml of the washing solution is added to the test tube, mixed on a vortex until the sorbent is fully resuspended.
5. Сорбент осаждают центрифугированием при 10 тыс об/мин в течение 30 сек. Надосадочную жидкость удаляют с использованием вакуумного отсасывателя.5. The sorbent is precipitated by centrifugation at 10 thousand rpm for 30 seconds. The supernatant is removed using a vacuum aspirator.
6. Пробирки помещают в термостат с температурой 65°C на 5-10 мин для подсушивания сорбента, при этом крышки пробирок открыты.6. The tubes are placed in a thermostat with a temperature of 65 ° C for 5-10 minutes to dry the sorbent, while the caps of the tubes are open.
7. В пробирки добавляют по 100 мкл ТЕ-буфера для элюции ДНК. Перемешивают на вортексе до полного ресуспензирования сорбента. Помещают в термостат с температурой 65°C на 5 мин.7. 100 μl of TE elution buffer for DNA elution is added to the tubes. Vortex is mixed until the sorbent is fully resuspended. Place in a thermostat with a temperature of 65 ° C for 5 minutes.
8. Центрифугируют пробирки при 12 тыс об/мин в течение 1 мин на микроцентрифуге.8. Centrifuge the tubes at 12 thousand rpm for 1 min in a microcentrifuge.
Надосадочная жидкость содержит препарат очищенной ДНК, готовый к постановке ПЦР. Сроки хранения препаратов: 1 неделя - при +2-8°C или 1 год - при минус 16°C.The supernatant contains a purified DNA preparation, ready for PCR. Shelf life of drugs: 1 week - at + 2-8 ° C or 1 year - at minus 16 ° C.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. Полученный препарат ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 3 мкл исследуемой ДНК, 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е. каждый, таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. The resulting DNA preparation was added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 3 μl of the test DNA, 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu each, Table 1), 0.5 μl of Taq polymerase and 12.5 μl of mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносят по 1 капле стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификацию искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляют на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2). На первом этапе проводят денатурацию ДНК при 94°C в течение 1 мин, затем 30 циклов, каждый из которых включает стадию денатурации ДНК в течение 30 сек при 94°C, стадию отжига праймеров в течение 30 сек при температуре 59°C и стадию элонгации в течение 30 сек при температуре 72°C. На заключительном этапе реакционную смесь выдерживают при температуре 72°C в течение 2 мин.3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. they are carried out on a Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2). At the first stage, DNA is denatured at 94 ° C for 1 min, then 30 cycles, each of which includes the stage of DNA denaturation for 30 sec at 94 ° C, the stage of primer annealing for 30 sec at 59 ° C, and the elongation stage for 30 seconds at a temperature of 72 ° C. At the final stage, the reaction mixture is maintained at a temperature of 72 ° C for 2 minutes.
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Анализ осуществляют с использованием стандартных наборов на сертифицированном оборудовании (Биоком, г. Москва) в 1,7% горизонтальном агарозном геле. В качестве электролита для электрофореза применяют 1х-ный ТБЕ буфер. Параметры электрофореза: сила тока 400 мА, мощность 80 Вт, напряжение 120 В. Электрофорез проводят в течение 25-30 минут. Детекцию результатов проводят путем окрашивания агарозного геля бромистым этидием с последующей визуализацией при освещении УФ на трансиллюминаторе «УВТ-1» (Биоком, Россия). Документирование результатов проводят с использованием системы для фотодокументации: цифровой видеокамеры «Mintron» и программы «Biotest-D» (Биоком, Россия). Продукты амплификации проявляются в виде светящейся оранжево-красной полосы. Для контроля длин продуктов амплификации используют соответствующий маркер длин ДНК 100+bp DNA Ladder (ЕвроГен), состоящий из 9 фрагментов ДНК в диапозоне 100-1000 п.н. и дополнительного фрагмента 1500 п.н.The analysis is carried out using standard kits on certified equipment (Biocom, Moscow) in a 1.7% horizontal agarose gel. As an electrolyte for electrophoresis, a 1-TBE buffer is used. Electrophoresis parameters:
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. При электрофоретическом обнаружении продукта амплификации размером 286 п.н. констатируют факт присутствия Atopobium vaginae в клиническом материале, при наличии ПЦР-продукта размером 768 п.н. - Leptotrichia amnionii, размер ПЦР-продукта 135 п.н. - указывает на присутствие Sneathia sanguinegens, размер ПЦР-продукта 428 п.н. - Eggerthella spp.To interpret the results of the analysis, Table 1 is used. When electrophoretic detection of the amplification product is 286 bp in size. state the presence of Atopobium vaginae in the clinical material in the presence of a 768 bp PCR product. - Leptotrichia amnionii,
Сущность изобретения поясняется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.
Пример 1.Example 1
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №1 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 1 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленными авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 1.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продукта амплификации размером 286 п.н. указывает на присутствие Atopobium vaginae в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of an amplification product of 286 bp indicates the presence of Atopobium vaginae in the clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens, and Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 2.Example 2
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №2 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 2 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 2.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продукта амплификации размером 768 п.н. указывает на присутствие Leptotrichia amnionii в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Atopobium vaginae, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of an amplification product of 768 bp indicates the presence of Leptotrichia amnionii in clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Atopobium vaginae, Sneathia sanguinegens, and Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 3.Example 3
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №3 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 3 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл), следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is introduced into the reaction mixture (25 μl), of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 3.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продукта амплификации размером 428 п.н. указывает на присутствие Eggerthella spp. B клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii и Sneathia sanguinegens в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of an amplification product of 428 bp in size. indicates the presence of Eggerthella spp. B clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, and Sneathia sanguinegens in the clinical material.
Пример 4.Example 4
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №4 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 4 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 4.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продукта амплификации размером 135 п.н. указывает на присутствие Sneathia sanguinegens в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii и Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of an amplification product of 135 bp indicates the presence of Sneathia sanguinegens in the clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, and Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 5.Example 5
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №5 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From clinical sample No. 5 (detachable from the posterior vaginal fornix), a total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 5.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 286 п.н. и 428 п.н. указывает на присутствие Atopobium vaginae и Eggerthella spp. в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Leptotrichia amnionii и Sneathia sanguinegens в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of amplification products of 286 bp in size. and 428 bp indicates the presence of Atopobium vaginae and Eggerthella spp. in clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Leptotrichia amnionii and Sneathia sanguinegens in the clinical material.
Пример 6.Example 6
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №6 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 6 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл), следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is introduced into the reaction mixture (25 μl), of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 6.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 135 п.н. и 768 п.н. указывает на присутствие Sneathia sanguinegens и Leptotrichia amnionii в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Atopobium vaginae и Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of amplification products of 135 bp and 768 bp indicates the presence of Sneathia sanguinegens and Leptotrichia amnionii in clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Atopobium vaginae and Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 7.Example 7
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинических образцов №7, 8, 9 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From clinical samples No. 7, 8, 9 (detachable from the posterior vaginal fornix), a total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 7, 8, 9.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 135 п.н., 286 п.н. и 768 п.н. указывает на присутствие Sneathia sanguinegens, Atopobium vaginae и Leptotrichia amnionii в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of amplification products of 135 bp, 286 bp and 768 bp indicates the presence of Sneathia sanguinegens, Atopobium vaginae and Leptotrichia amnionii in the clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 8.Example 8
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №10 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 10 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 10.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 135 п.н. и 428 п.н. указывает на присутствие Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Atopobium vaginae и Leptotrichia amnionii в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of amplification products of 135 bp and 428 bp indicates the presence of Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. in clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Atopobium vaginae and Leptotrichia amnionii in the clinical material.
Пример 9.Example 9
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №11 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From clinical sample No. 11 (detachable from the posterior vaginal fornix), a total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПНР.III stage. Electrophoretic analysis of products of the NDP.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 11.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 286 п.н. и 768 п.н. указывает на присутствие Atopobium vaginae и Leptotrichia amnionii в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the results of the analysis. Detection of amplification products of 286 bp in size. and 768 bp indicates the presence of Atopobium vaginae and Leptotrichia amnionii in the clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. in clinical material.
Пример 10.Example 10
I этап. Выделение тотальной ДНК.I stage. Isolation of total DNA.
Из клинического образца №12 (отделяемое из заднего свода влагалища) выделяется препарат тотальной ДНК. Выделение ДНК проводят в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3.2569-09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности». Для обеспечения необходимой степени чистоты ДНК и достаточного ее количества используют методику нуклеосорбции. Выделение ДНК осуществляли с использованием стандартного набора «ДНК-сорб-АМ» серии «АмплиПрайм» фирмы «Интерлабсервис».From the clinical sample No. 12 (detachable from the posterior vaginal fornix), the total DNA preparation is isolated. DNA isolation is carried out under the conditions regulated by the Methodological guidelines of MU 1.3.2569-09 “Organization of the work of laboratories using nucleic acid amplification methods when working with material containing microorganisms of pathogenicity groups I-IV”. To ensure the necessary degree of DNA purity and a sufficient amount of it, a nucleosorption technique is used. DNA extraction was carried out using a standard set of DNA-sorb-AM of the AmpliPrim series from Interlabservice.
II этап. Амплификация ДНК.II stage. Amplification of DNA.
1. 3 мкл полученной ДНК вносят в реакционную смесь (25 мкл) следующего состава: 2.5 мкл 10×Taq - буфера, 2.5 мкл раствора dNTP, по 0.5 мкл каждого праймера (8 праймеров по 2 о.е., таблица 1), 0.5 мкл Taq-полимеразы и 12.5 мкл mQ.1. 3 μl of the obtained DNA is added to the reaction mixture (25 μl) of the following composition: 2.5 μl of 10 × Taq buffer, 2.5 μl of dNTP solution, 0.5 μl of each primer (8 primers of 2 pu, table 1), 0.5 μl Taq polymerase and 12.5 μl mQ.
2. Для предотвращения испарения в каждую пробирку дополнительно вносится 1 капля стерильного минерального масла.2. To prevent evaporation, an additional 1 drop of sterile mineral oil is added to each tube.
3. Амплификация искомых фрагментов генов 16S рибосомальной РНК (рРНК) Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp. осуществляется на амплификаторе «Терцик МС-2» («ДНК-технология», Россия) в соответствии с установленным авторами оптимальным режимом (таблица 2).3. Amplification of the desired fragments of 16S ribosomal RNA (rRNA) genes Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp. it is carried out on the Tertsik MS-2 thermocycler (DNA-technology, Russia) in accordance with the optimal regime established by the authors (table 2).
III этап. Электрофоретический анализ продуктов ПЦР.III stage. Electrophoretic analysis of PCR products.
Результаты представлены на фигуре, дорожка 12.The results are presented in the figure,
Для интерпретации результатов анализа используют таблицу 1. Обнаружение продуктов амплификации размером 286 п.н., 428 п.н. и 768 п.н. указывает на присутствие Atopobium vaginae, Eggerthella spp. и Leptotrichia amnionii в клиническом материале. Отсутствие других четких полос указывает на отсутствие Sneathia sanguinegens в клиническом материале.Table 1 is used to interpret the analysis results. Detection of amplification products of 286 bp, 428 bp and 768 bp indicates the presence of Atopobium vaginae, Eggerthella spp. and Leptotrichia amnionii in clinical material. The absence of other distinct bands indicates the absence of Sneathia sanguinegens in the clinical material.
Таким образом, предлагаемый способ мультиплексной ПЦР-детекции в клиническом материале позволяет с высокой чувствительностью и специфичностью выявлять и идентифицировать Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens и Eggerthella spp.Thus, the proposed method for multiplex PCR detection in clinical material allows with high sensitivity and specificity to identify and identify Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens and Eggerthella spp.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015112568/15A RU2583924C1 (en) | 2015-04-06 | 2015-04-06 | METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015112568/15A RU2583924C1 (en) | 2015-04-06 | 2015-04-06 | METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2583924C1 true RU2583924C1 (en) | 2016-05-10 |
Family
ID=55960258
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015112568/15A RU2583924C1 (en) | 2015-04-06 | 2015-04-06 | METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2583924C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2670206C1 (en) * | 2017-12-26 | 2018-10-19 | Общество с ограниченной ответственностью "НекстБио" | Set of synthetic oligonucleotides for identification of atopobium vaginae dna in vaginal mucosa |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014165810A2 (en) * | 2013-04-05 | 2014-10-09 | Akins Robert A | Systems and methods to assess microbiomes and treatments thereof |
-
2015
- 2015-04-06 RU RU2015112568/15A patent/RU2583924C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014165810A2 (en) * | 2013-04-05 | 2014-10-09 | Akins Robert A | Systems and methods to assess microbiomes and treatments thereof |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
FREDRICKS D.N. et al. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N Engl J Med. 2005 Nov 3; 353(18): 1899-1911 [Найдено 18.01.2016] [он-лайн]. Найдено из Интернет: URL: http://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMoa043802. ИЛЬИЧ А.В. Молекулярная диагностика бактериального вагиноза. Профессиональный портал "МирВрача", 29 апреля 2013 [Найдено 18.01.2016] [он-лайн]. Найдено из Интернет: URL: https://mirvracha.ru/article/show/553. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2670206C1 (en) * | 2017-12-26 | 2018-10-19 | Общество с ограниченной ответственностью "НекстБио" | Set of synthetic oligonucleotides for identification of atopobium vaginae dna in vaginal mucosa |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP2430188B1 (en) | A method and kit for detecting antibiotic resistant bacteria | |
Jamal et al. | Rapid identification of pathogens directly from blood culture bottles by Bruker matrix-assisted laser desorption laser ionization-time of flight mass spectrometry versus routine methods | |
AU2006209416B2 (en) | Method of quantitatively analysing microorganism targeting rRNA | |
KR100388548B1 (en) | A method for detecting Mycobacterium tuberculosis by PCR amplification of REP13E12 repeated sequence | |
CN107365869B (en) | Method and primer for detecting Klebsiella pneumoniae by loop-mediated isothermal amplification technology | |
Zhao et al. | Enumeration of viable non-culturable Vibrio cholerae using droplet digital PCR combined with propidium monoazide treatment | |
US20110200984A1 (en) | Using nucleic acids for clinical microbiology testing | |
JP2002537824A (en) | Bacterial identification | |
KR20170085995A (en) | Method for Gut Microbiota Analysis Using Real-time PCR | |
RU2583924C1 (en) | METHOD FOR MULTIPLEX PCR DETECTION OF Atopobium vaginae, Leptotrichia amnionii, Sneathia sanguinegens AND Eggerthella spp. IN CLINICAL MATERIAL | |
EP2999798B1 (en) | Method for simultaneous detection of bacteria and fungi in a biological preparation by pcr, primers as well as bacteria and fungi detection kit | |
RU2608651C1 (en) | METHOD OF IDENTIFICATION OF CLINICALLY SIGNIFICANT FAMILIES OF β-LACTAMASES IN GRAM-NEGATIVE MICROORGANISMS | |
EP1888745A2 (en) | Dna fragments, primers and method for amplification of the dna fragments and kit including the aforementioned primers for the detection and identification of clinically relevant candida species | |
CN110029179B (en) | Nucleotide molecules and application thereof in identification of corynebacterium striatum | |
RU2455364C2 (en) | Method of identifying mycobacteria by polymerase chain reaction | |
CN110129459B (en) | LAMP primer combination for detecting 5 gram-positive bacteria in intraocular fluid and application | |
TWI658048B (en) | Specific primers for detection of photobacterium damselae subsp. piscicida and the method of use thereof | |
Uzcátegui-Negrón et al. | Reclassification by molecular methods of actinobacteria strains isolated from clinical cases in Venezuela | |
JP2007020423A (en) | Nucleic acid fragment for detecting intestinal bacterial group | |
KR20200048082A (en) | Kit for diagnosing infection due to orientia tsutsugamushi | |
CN109182599A (en) | For detect the specific primer of grass carp hemorrhage virus to, probe, detection kit | |
CN111424102B (en) | Multiple PCR (polymerase chain reaction) rapid detection kit for specific bacteria of cosmetics and detection method thereof | |
EP2723891B1 (en) | Diagnostic methods for detecting clostridium difficile | |
CN107604085B (en) | LAMP (loop-mediated isothermal amplification) detection primer group, kit and method for ureaplasma parvum | |
Baitlesov et al. | Improving the typical methods of Brucella |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20170407 |