RU2582956C2 - METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA - Google Patents

METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA Download PDF

Info

Publication number
RU2582956C2
RU2582956C2 RU2014107633/15A RU2014107633A RU2582956C2 RU 2582956 C2 RU2582956 C2 RU 2582956C2 RU 2014107633/15 A RU2014107633/15 A RU 2014107633/15A RU 2014107633 A RU2014107633 A RU 2014107633A RU 2582956 C2 RU2582956 C2 RU 2582956C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
myoc
poag
dna
primary open
angle glaucoma
Prior art date
Application number
RU2014107633/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2014107633A (en
Inventor
Лиля Усеиновна Джемилева
Семен Леонидович Лобов
Алия Рифовна Зайнитова
Айгуль Шамилевна Загидуллина
Рима Разяповна Саттарова
Рита Игоревна Хусаинова
Вита Леоновна Ахметова
Ирина Михайловна Хидиятова
Александра Станиславовна Карунас
Эльза Камилевна Хуснутдинова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра Российской академии наук (ИБГ УНЦ РАН)
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Башкирский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра Российской академии наук (ИБГ УНЦ РАН), Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Башкирский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра Российской академии наук (ИБГ УНЦ РАН)
Priority to RU2014107633/15A priority Critical patent/RU2582956C2/en
Publication of RU2014107633A publication Critical patent/RU2014107633A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2582956C2 publication Critical patent/RU2582956C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine. Presented is a method for detecting p.Q368X (c.1102C>T) MYOC gene mutation accompanied by a congenital form of primary open-angle glaucoma (POAG). The DNA is recovered from peripheral blood lymphocytes by phenol-chloroform extraction, and a real-time polymerase chain reaction is performed and followed by determining an end-point maximum melting curve. The MYOC gene region is amplified in the presence of two oligonucleotide sequences with EvaGreen dye.
EFFECT: invention provides the effective diagnosis of POAG in patients of hereditary tainted families.
1 dwg, 2 tbl, 2 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к медицинской генетике и офтальмологии, может быть использовано для диагностики врожденных форм наследственной глаукомы.The invention relates to medicine, namely to medical genetics and ophthalmology, can be used to diagnose congenital forms of hereditary glaucoma.

Первичная открытоугольная глаукома (ПОУГ) относится к группе заболеваний с наследственной предрасположенностью, возникающих и развивающихся под взаимодействием наследственности и окружающей среды [Quigley and Broman, 2006]. Вклад генетических факторов в развитие ПОУГ, по данным различных авторов, составляет от 20 до 60% [Liu et al., 2011]. В настоящее время большинство исследователей считают, что основным диагностическим признаком этой разнородной группы заболеваний является специфическая глаукоматозная оптическая нейропатия [Hewitt et al., 2006 b; Liu et al., 2011; Liu and Allingham, 2013]. По социально-экономическому ущербу, влиянию на уровень здоровья и качество жизни пациентов первичная открытоугольная глаукома наравне с диабетической ретинопатией и макулярной дегенерацией составляют три главные патологии в структуре слепоты у человека. Хроническое бессимптомное течение первичной открытоугольной глаукомы, часто проявляющейся в среднем возрасте и неуклонно прогрессирующей в течение всей жизни, в особенности ювенильные формы ПОУГ, которые нередко становятся причиной инвалидности в молодом возрасте, определяют необходимость исследования факторов риска и механизмов развития данного заболевания с целью разработки эффективных методов диагностики и профилактики с учетом индивидуальных особенностей каждого больного. Первичная открытоугольная глаукома (ПОУГ) является самой распространенной клинической формой заболевания и составляет в Европе, Америке и России по разным оценкам от 70 до 90% всех случаев этого заболевания [Libby, 2005; Allingham, 2009; Liu and Allingham, 2013]. По данным Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ), глаукома стоит на втором месте среди всех заболеваний, приводящих к слепоте [http://www.who.int/topics/blindness]. Последние достижения геномных и постгеномных технологий позволили выявить формы ПОУГ с моногенным типом наследования среди многофакторных форм заболевания [Allingham et al., 2009; 2011; 2013]. В ряде популяционных исследований было продемонстрировано, что наличие отягощенного по глаукоме семейного анамнеза является важным фактором риска развития глаукомы [Nemesure et al., 2007; Ramdas et al., 2011]. Выраженная генетическая гетерогенность, различия в механизмах возникновения и разнообразие клинических проявлений различных форм глауком нередко затрудняют поиск и идентификацию мутаций, которая необходима для определения риска возникновения и скорости прогрессирования заболевания у пробандов и их родственников, а также проведения профилактических мероприятий в семьях высокого риска по ПОУГ. В связи с этим изучение этиопатогенеза и генетических аспектов различных форм первичной открытоугольной глаукомы является одной из наиболее актуальных проблем офтальмогенетики и молекулярной медицины. Вместе с тем своевременная и точная диагностика наследственного дефекта при ПОУГ позволит наиболее качественно и в самые ранние сроки назначать лечебные и реабилитационные мероприятия для обеспечения полноценной социальной адаптации лиц с первичной открытоугольной глаукомой.Primary open-angle glaucoma (POAG) refers to a group of diseases with a hereditary predisposition that arise and develops under the influence of heredity and the environment [Quigley and Broman, 2006]. The contribution of genetic factors to the development of POAG, according to various authors, ranges from 20 to 60% [Liu et al., 2011]. Currently, most researchers believe that the main diagnostic sign of this diverse group of diseases is specific glaucomatous optic neuropathy [Hewitt et al., 2006 b; Liu et al., 2011; Liu and Allingham, 2013]. Primary open-angle glaucoma, along with diabetic retinopathy and macular degeneration, constitute the three main pathologies in the structure of human blindness in terms of socio-economic damage, the impact on the level of health and quality of life of patients. The chronic asymptomatic course of primary open-angle glaucoma, often manifested in middle age and steadily progressing throughout life, in particular juvenile forms of POAG, which often cause disability at a young age, determines the need to study risk factors and development mechanisms of this disease in order to develop effective methods diagnosis and prevention, taking into account the individual characteristics of each patient. Primary open-angle glaucoma (POAG) is the most common clinical form of the disease and makes up 70 to 90% of all cases of this disease in Europe, America and Russia [Libby, 2005; Allingham, 2009; Liu and Allingham, 2013]. According to the World Health Organization (WHO), glaucoma is in second place among all diseases leading to blindness [http://www.who.int/topics/blindness]. Recent advances in genomic and postgenomic technologies have allowed the identification of POAG forms with a monogenic inheritance type among multifactorial forms of the disease [Allingham et al., 2009; 2011; 2013]. A number of population-based studies have demonstrated that the presence of a family history of glaucoma-burdened history is an important risk factor for glaucoma [Nemesure et al., 2007; Ramdas et al., 2011]. The pronounced genetic heterogeneity, differences in the mechanisms of occurrence and the variety of clinical manifestations of various forms of glaucoma often complicate the search and identification of mutations, which is necessary to determine the risk of occurrence and the rate of disease progression in probands and their relatives, as well as preventive measures in high-risk families for POAG. In this regard, the study of etiopathogenesis and genetic aspects of various forms of primary open-angle glaucoma is one of the most pressing problems of ophthalmogenetics and molecular medicine. At the same time, timely and accurate diagnosis of a hereditary defect in POAG will allow the most qualitative and earliest possible appointment of therapeutic and rehabilitation measures to ensure full social adaptation of people with primary open-angle glaucoma.

Преимущества предлагаемой разработки перед существующими аналогами заключаются в оптимальности разрабатываемых подходов ДНК-диагностики заболеваний, основанных на выявлении существующего своеобразия генофонда народов Волго-Уральского региона.The advantages of the proposed development over existing analogues are the optimality of the developed approaches for the DNA diagnosis of diseases based on the identification of the existing originality of the gene pool of the peoples of the Volga-Ural region.

Согласно литературным данным, большинство случаев генетически детерминированной первичной открытоугольной глаукомы наследуется, в основном, по аутосомно-доминантному типу [Bhattacharya et al., 2013]. Однако выраженная генетическая гетерогенность заболевания, а также различная пенетрантность мутаций, вызывающих ПОУГ, зачастую не позволяет точно выяснить механизм наследования заболевания [Libby, 2005; Allingham, 2009; Liu and Allingham, 2013]. Среди всех идентифицированных генов, вовлеченных в функционирование оттока водянистой влаги из передней камеры глаза, наиболее значимым является ген миоциллина (MYOC), вклад которого в развитие ПОУГ, по данным различных авторов, достигает 2-10% в различных этнических группах [Fuse et al., 2010; Alingham et al., 2011].According to published data, most cases of genetically determined primary open-angle glaucoma are inherited mainly by the autosomal dominant type [Bhattacharya et al., 2013]. However, the pronounced genetic heterogeneity of the disease, as well as the different penetrance of mutations causing POAG, often does not allow us to accurately determine the mechanism of inheritance of the disease [Libby, 2005; Allingham, 2009; Liu and Allingham, 2013]. Among all the identified genes involved in the functioning of the outflow of aqueous humor from the anterior chamber of the eye, the most significant is the myocillin gene (MYOC), whose contribution to the development of POAG, according to various authors, reaches 2-10% in various ethnic groups [Fuse et al. , 2010; Alingham et al., 2011].

Однако у довольно большого числа семей, которые обращаются к врачу-офтальмологу по поводу выяснения риска возникновения ПОУГ у потомства, как правило, не удается выявить генетический дефект и правильно провести генеалогическое обследование вследствие достаточно высокой генетической гетерогенности данного заболевания и отсутствия данных о фенотипических проявлениях той или иной мутации в генах, повреждение которых вызывает ПОУГ. По данным различных авторов, процент семей с невыявленными генетическими дефектами, приводящими к наследственным формам ПОУГ, в зависимости от этноса составляет, в среднем, около 80% (Ramdas et al., 2011; Child et al., 2013).However, in a fairly large number of families who turn to an ophthalmologist for an explanation of the risk of POAG in the offspring, as a rule, they are not able to identify a genetic defect and correctly conduct a genealogical examination due to the rather high genetic heterogeneity of this disease and the lack of data on phenotypic manifestations of one or another mutation in genes whose damage causes POAG. According to various authors, the percentage of families with undiagnosed genetic defects leading to hereditary forms of POAG, depending on the ethnic group, is, on average, about 80% (Ramdas et al., 2011; Child et al., 2013).

Наиболее часто встречаемая мутация гена миоциллина - p.Q368X (с.1102С>Т) - характерна для 1,6% больных ПОУГ европеоидной расы [Faucher М., et al., 2002]. На ее долю приходится около 30% от всех найденных в гене MYOC мутаций [Resch et al., 2009; Fingert et al., 2011]. В отношении распространенности мутаций p.Q368X (c.1102С>Т) гена MYOC показана расовая и/или этническая специфичность, обусловленная, в ряде случаев, эффектом основателя, а также, возможно, географической и социальной изоляцией некоторых популяций [Brezin А.P. et al., 1998; Campos-Mollo et al., 2007; Fautsch et al., 2010; Fingert et al., 2011 Cheng et al., 2012]. p.Q368X идентифицирована у пациентов с ПОАГ из США [Gong et al., 2004], Канады [Faucher et al., 2002], Австралии [Baird et al. (2003)], Европы [Melki et al., 2003; Hogewind et al., 2007], Южной Америки [Liu et al., 2012; Mendoza-Reinoso et al., 2012] и России [Рахманов B.B., 2005].The most common mutation of the myocillin gene, p.Q368X (p. 1102C> T), is characteristic of 1.6% of patients with POAG of the Caucasian race [Faucher M., et al., 2002]. It accounts for about 30% of all mutations found in the MYOC gene [Resch et al., 2009; Fingert et al., 2011]. With regard to the prevalence of mutations p.Q368X (c.1102C> T) of the MYOC gene, racial and / or ethnic specificity is shown, caused, in some cases, by the founder's effect, and also, possibly, by the geographical and social isolation of some populations [Brezin A.P. et al., 1998; Campos-Mollo et al., 2007; Fautsch et al., 2010; Fingert et al., 2011 Cheng et al., 2012]. p.Q368X has been identified in patients with POAG from the USA [Gong et al., 2004], Canada [Faucher et al., 2002], Australia [Baird et al. (2003)], Europe [Melki et al., 2003; Hogewind et al., 2007], South America [Liu et al., 2012; Mendoza-Reinoso et al., 2012] and Russia [Rakhmanov B.B., 2005].

Встречающиеся в гене миоцилина мутации не равнозначны по своему фенотипическому проявлению. Так, для мутации p.Q368X характерна более поздняя манифестация заболевания и более доброкачественное течение по сравнению с p.Y437H, p.I477N и, особенно, p.P370L, которые приводят к развитию ювенильных форм ПОУГ с агрессивным течением [Campos-Mollo et al., 2007; Cai et al., 2012].Mutations occurring in the myocilin gene are not equivalent in their phenotypic manifestation. So, the p.Q368X mutation is characterized by a later manifestation of the disease and a more benign course compared with p.Y437H, p.I477N and, especially, p.P370L, which lead to the development of juvenile forms of POAG with an aggressive course [Campos-Mollo et al ., 2007; Cai et al., 2012].

Известен способ детекции мутации p.Q368X (с.1102C>Т) в гене миоцилина {MYOC) посредством ПДРФ-анализа (Baird P.N., Dickinson J., Craig J.E., Mackey D.A. The Taal restriction enzyme provides a simple means to identify the Q368STOP mutation of the myocilin gene in primary open angle glaucoma. Am J Ophthalmol. - 2001 - V. 131(4). - P. 510-511). Однако рестрикционый анализ - относительно дорогостоящий и трудоемкий метод, который требует проведения электрофоретического разделения рестриктов в акриламидном или агарозном гелях, последующего ресеквенирования и к тому же на проведение ПДРФ анализа необходимо более 3 суток.A known method for the detection of p.Q368X mutation (p. 1102C> T) in the myocilin gene {MYOC) by RFLP analysis (Baird PN, Dickinson J., Craig JE, Mackey DA The Taal restriction enzyme provides a simple means to identify the Q368 STOP mutation of the myocilin gene in primary open angle glaucoma. Am J Ophthalmol. - 2001 - V. 131 (4). - P. 510-511). However, restriction analysis is a relatively expensive and time-consuming method, which requires electrophoretic separation of the restriction in acrylamide or agarose gels, subsequent sequencing, and moreover, it takes more than 3 days to perform RFLP analysis.

Также известен способ детекции и мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене миоцилина (MYOC) посредством анализа конформационнных полиморфизмов одноцепочечной ДНК (SSCP-анализ) (Craig J.E., Baird P.N., Healey D.L., McNaught A.I., McCartney P.J., Rait J.L., Dickinson J.L., Roe L., Fingert J.H., Stone E.M., Mackey D.A. Evidence for genetic heterogeneity within eight glaucoma families, with the GLC1A Gln368STOP mutation being an important phenotypic modifier. Ophthalmology. - 2001. - V. 108(9). - P. 1607-1620). Наибольшим недостатком этого метода является достаточно низкая чувствительность - от 50 до 97% даже при использовании капиллярного электрофореза. При этом ложноотрицательные результаты не гарантируют отсутствие мутации в образце.Also known is a method for detecting and mutating p.Q368X (p. 1102C> T) in the myocilin gene (MYOC) by analyzing single-stranded DNA conformational polymorphisms (SSCP analysis) (Craig JE, Baird PN, Healey DL, McNaught AI, McCartney PJ, Rait JL, Dickinson JL, Roe L., Fingert JH, Stone EM, Mackey DA Evidence for genetic heterogeneity within eight glaucoma families, with the GLC1A Gln368 STOP mutation being an important phenotypic modifier. Ophthalmology. - 2001 .-- V. 108 (9). - P. 1607-1620). The biggest disadvantage of this method is the rather low sensitivity - from 50 to 97% even when using capillary electrophoresis. Moreover, false-negative results do not guarantee the absence of mutations in the sample.

Глубокое ресеквенирование - анализ, широко применяемый для детекции любых изменений нуклеотидной последовательности, был разработан Фредериком Сенгером в 1977 году и в настоящее время после завершения проекта «Геном человека» широко используется для ресеквенирования нуклеотидной последовательности ДНК человека (Sanger F. Determination of nucleotide sequences in DNA // Biosci Rep. - 2004. - V. 24 (4-5). - P. 237-253). Существенными недостатками этого метода являются его трудоемкость и необходимость дорогостоящего оборудования и реактивов, а также определенное количество времени (около 3 суток).Deep sequencing - an analysis that is widely used to detect any changes in the nucleotide sequence, was developed by Frederick Senger in 1977 and is now widely used after the completion of the Human Genome project to rescan the nucleotide sequence of human DNA (Sanger F. Determination of nucleotide sequences in DNA // Biosci Rep. - 2004. - V. 24 (4-5). - P. 237-253). Significant disadvantages of this method are its complexity and the need for expensive equipment and reagents, as well as a certain amount of time (about 3 days).

Прототипом изобретения является работа Souzeau с соавторами (Souzeau Е., Burdon K.Р., Dubowsky A., Grist S., Usher В., Fitzgerald J.Т., Crawford A., Hewitt A.W., Goldberg I., Mills R.A., Ruddle J.B., Landers J., Mackey D.A., Craig J.E. Higher prevalence of myocilin mutations in advanced glaucoma in comparison with less advanced disease in an Australasian disease registry. Ophthalmology. - 2013. - V. 120(6) - P. 1135-1143.). Основными недостатками ближайшего аналога являются его трудоемкость и необходимость в использовании дорогостоящего оборудования и реактивов.A prototype of the invention is the work of Souzeau et al. (Souzeau E., Burdon K.P., Dubowsky A., Grist S., Usher B., Fitzgerald J.T., Crawford A., Hewitt AW, Goldberg I., Mills RA, Ruddle JB, Landers J., Mackey DA, Craig JE Higher prevalence of myocilin mutations in advanced glaucoma in comparison with less advanced disease in an Australasian disease registry.Ophthalmology. - 2013 .-- V. 120 (6) - P. 1135-1143 .). The main disadvantages of the closest analogue are its complexity and the need to use expensive equipment and reagents.

Техническим результатом изобретения является упрощение способа и повышение точности определения мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене миоцилина (MYOC) и сокращение времени исследования (до 2-х суток) посредством разработки специфических олигонуклеотидных праймеров для ПЦР в реальном времени с анализом кривой плавления в конечной точке амплификации у больных ПОУГ и у гетерозиготных носителей данной мутации. Преимуществом ПЦР с флуоресцентной детекцией является отсутствие необходимости проведения этапов ПДРФ-анализа и электрофореза, что уменьшает риск контаминации и резко сокращает время и трудоемкость проведения анализа. Интерпретация результатов проводится с помощью программных средств амплификатора с возможностью проведения ПЦР в реальном времени (Allelic Discrimination) в автоматическом режиме.The technical result of the invention is to simplify the method and improve the accuracy of determining the mutation p.Q368X (s.1102C> T) in the myocilin gene (MYOC) and reduce the study time (up to 2 days) by developing specific oligonucleotide primers for real-time PCR with analysis melting curve at the end point of amplification in patients with POAG and in heterozygous carriers of this mutation. The advantage of PCR with fluorescence detection is the absence of the need for the stages of RFLP analysis and electrophoresis, which reduces the risk of contamination and dramatically reduces the time and complexity of the analysis. Interpretation of the results is carried out using the software of the amplifier with the possibility of real-time PCR (Allelic Discrimination) in automatic mode.

Указанный технический результат достигается тем, что в способе, включающем выделение ДНК из лимфоцитов периферической крови методом фенольно-хлороформной экстракции и проведение полимеразной цепной реакции в реальном времени с флуоресцентной детекцией, проводят амплификацию фрагментов ДНК, содержащих мутацию p.Q368X (с.1102C>Т) в гене миоцилина (MYOC) в присутствии интеркалирующего красителя EvaGreen® и олигонуклеотидов:The specified technical result is achieved by the fact that in a method involving the extraction of DNA from peripheral blood lymphocytes by phenol-chloroform extraction and real-time polymerase chain reaction with fluorescence detection, DNA fragments containing the mutation p.Q368X are amplified (p.1102C> T ) in the myocilin gene (MYOC) in the presence of the intercalating dye EvaGreen® and oligonucleotides:

Q368X - F, GTCCAGAACTGTCATAAGATA,Q368X - F, GTCCAGAACTGTCATAAGATA,

Q368X - R, CCAAGAATACGGGAACTG,Q368X - R, CCAAGAATACGGGAACTG,

(длина фрагмента 100 п.н.), фланкирующих область с возможным содержанием мутации p.Q368X (c.1102С>Т).(fragment length 100 bp) flanking a region with a possible content of mutation p.Q368X (c. 1102C> T).

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

ДНК выделяют из лимфоцитов периферической крови. В качестве консерванта используют раствор следующего состава: 0,48% лимонной кислоты, 1,32% цитрата натрия, 1,47% глюкозы. При заборе крови к 1 мл консерванта добавляют 4 мл венозной крови и хорошо перемешивают.DNA is isolated from peripheral blood lymphocytes. As a preservative, a solution of the following composition is used: 0.48% citric acid, 1.32% sodium citrate, 1.47% glucose. During blood sampling, 4 ml of venous blood is added to 1 ml of preservative and mixed well.

Для получения ДНК необходимой степени чистоты и достаточного молекулярного веса используется метод выделения ДНК из крови фенольно-хлороформной экстракцией, описанный Метью (Mathew С.С.The isolation of high molecular weight eucariotic DNA. // Methods in Molecular Biology / Ed. Walker J.M.Y.L.: Human Press. 1984. - V. 2. - P. 31-34).To obtain DNA of the required degree of purity and sufficient molecular weight, the method of DNA extraction from blood by phenol-chloroform extraction described by Matthew is used (Mathew C. C. The isolation of high molecular weight eucariotic DNA. // Methods in Molecular Biology / Ed. Walker JMYL: Human Press. 1984. - V. 2. - P. 31-34).

1. Кровь в пробирке с консервантом тщательно перемешивается и переливается в центрифужный стакан объемом 50 мл, туда же добавляем 30 мл охлажденного лизирующего буфера, содержащего 320 мМ сахарозы, 1% раствор тритона Х-100, 5 мМ MgCl2, 10 мМ трис HCl (pH 7,6).1. Blood in a test tube with a preservative is thoroughly mixed and poured into a 50 ml centrifuge glass, add 30 ml of chilled lysis buffer containing 320 mM sucrose, 1% Triton X-100 solution, 5 mM MgCl 2 , 10 mM Tris HCl ( pH 7.6).

2. Смесь центрифугируется 20 мин при 4000 об/мин.2. The mixture is centrifuged for 20 minutes at 4000 rpm.

3. Надосадочную жидкость сливают, к получившемуся осадку приливают 0,4 мл 10% SDS и протеиназу K (концентрация 10 мг/мл). Смесь для лизиса оставляют на 16 часов в термостате при температуре 37°C.3. The supernatant is drained, 0.4 ml of 10% SDS and proteinase K (concentration of 10 mg / ml) are added to the resulting precipitate. The lysis mixture is left for 16 hours in an incubator at a temperature of 37 ° C.

Экстракцию ДНК осуществляют в следующем порядке:DNA extraction is carried out in the following order:

4. К лизату добавляют 0,5 мл фенола, насыщенного 1М трис HCl до pH 7,8.4. To the lysate add 0.5 ml of phenol saturated with 1M Tris HCl to a pH of 7.8.

5. Смесь встряхивают на шейкере и центрифугируют 10 мин при 6000 об/мин.5. The mixture is shaken on a shaker and centrifuged for 10 minutes at 6000 rpm.

6. Отбирают водную фазу, содержащую ДНК и неденатурированные белки.6. Select the aqueous phase containing DNA and undenatured proteins.

7. Отобранную фазу обрабатывают смесью фенол-хлороформа (1:1), а затем хлороформом.7. The selected phase is treated with a mixture of phenol-chloroform (1: 1), and then chloroform.

8. Препараты осаждают двумя объемами охлажденного этанола 96%.8. The preparations are precipitated with two volumes of chilled ethanol 96%.

9. Образовавшийся осадок ДНК растворяют в 1,5 мл деионизированной H2O; раствор хранят при -20°C.9. The resulting DNA precipitate is dissolved in 1.5 ml of deionized H 2 O; the solution is stored at -20 ° C.

В дальнейшем полученную ДНК используют в качестве матрицы для полимеразной цепной реакции в реальном времени (ПЦР) для амплификации нужного фрагмента кодирующего региона гена MYOC. Подготовка образцов для ПЦР проводится в ламинарном боксе с использованием специального комплекта пипеток и наконечников с аэрозольными фильтрами.Subsequently, the obtained DNA is used as a matrix for real-time polymerase chain reaction (PCR) to amplify the desired fragment of the coding region of the MYOC gene. Preparation of samples for PCR is carried out in a laminar box using a special set of pipettes and tips with aerosol filters.

- Образцы ДНК перед проведением ПЦР полностью размораживаются при комнатной температуре. После размораживания содержимое пробирок тщательно перемешивается и центрифугируется при 5000 об/мин.- DNA samples before PCR are completely thawed at room temperature. After thawing, the contents of the tubes are thoroughly mixed and centrifuged at 5000 rpm.

- Измеряется концентрация образцов ДНК на спектрофотометре.- The concentration of DNA samples on a spectrophotometer is measured.

- Образцы ДНК разводятся деионизованной водой до оптимальной концентрации, необходимой для проведения ПЦР в реальном времени (30 нг/мкл).- DNA samples are diluted with deionized water to the optimal concentration required for real-time PCR (30 ng / μl).

Основные компоненты реакции:The main components of the reaction:

1. Смесь для ПЦР (670 мМ Tris-HCl (pH 8,8); 0,1% Tween-20, 2 мМ dNTPs, 10 мМ специфичных праймеров).1. A mixture for PCR (670 mm Tris-HCl (pH 8.8); 0.1% Tween-20, 2 mm dNTPs, 10 mm specific primers).

2. Taq-полимераза2. Taq polymerase

3. Краситель EvaGreen® (водный раствор 20-кратный)3. EvaGreen® dye (20x aqueous solution)

- Для ПЦР-анализа одного образца в амплификационную пробирку вносятся следующие компоненты реакции (таблица 1):- For PCR analysis of one sample, the following reaction components are added to the amplification tube (table 1):

- Для ПЦР-анализа нескольких образцов следует подготовить реакционную смесь на необходимое количество проб. Для этого в отдельной стерильной пробирке смешать следующие компоненты ПЦР: деионизованную воду, краситель EvaGreen®, смесь для ПЦР и Taq-полимеразу.- For PCR analysis of several samples, prepare the reaction mixture for the required number of samples. To do this, mix the following PCR components in a separate sterile tube: deionized water, EvaGreen® dye, PCR mixture and Taq polymerase.

- Все компоненты перемешиваются на микроцентрифуге-вортексе, затем реакционную смесь разливают по амплификационным пробиркам или плашкам по 2 мкл в лунку или в пробирку.- All components are mixed in a microcentrifuge-vortex, then the reaction mixture is poured into amplification tubes or dies of 2 μl per well or in a test tube.

- Вносят ДНК (1,0 мкл) в лунки плашки или в пробирки с учетом отрицательных контролей.- Contribute DNA (1.0 μl) to the wells of the plate or to the tubes, taking into account the negative controls.

- Тщательно закрывают плашку или пробирки и ставят в реал-тайм ПЦР амплификатор- Carefully close the plate or tubes and put in real-time PCR amplifier

Специфические последовательности олигонуклеотидных праймеров для детекции мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC и их оптимальные концентрации в реакционной смеси, размер амплифицируемого фрагмента и температурный режим ПЦР указаны в таблице 2.The specific sequences of oligonucleotide primers for the detection of the p.Q368X mutation (s.1102C> T) in the MYOC gene and their optimal concentrations in the reaction mixture, the amplified fragment size, and PCR temperature are shown in Table 2.

Детекцию результатов проводят на амплификаторах с возможностью проведения анализа флуоресценции по конечной точке - «Rotor-Gene» 3000/6000 («Corbet Research)), Австралия); «iQCycler, «iQ5», «CFX96» («BioRad», США), ABI 7300/7500/7900 («Applied Biosystems)), США). Время исследования составляет 2 дня. После прохождения ПЦР следует провести анализ кривых флуоресценции по отдельным лункам в окне «Расчет» раздела «Анализ данных» и анализ кривых плавления образцов ДНК в окне «Нормализация кривых плавления» согласно протоколу используемого прибора. О наличии мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в исследуемом локусе следует судить по определенной форме кривых плавления по сравнению с нормой (фигура 1).Detection of the results is carried out on amplifiers with the possibility of analysis of fluorescence at the end point - "Rotor-Gene" 3000/6000 ("Corbet Research)), Australia); "IQCycler," iQ5 "," CFX96 "(" BioRad ", USA), ABI 7300/7500/7900 (" Applied Biosystems)), USA). The study time is 2 days. After PCR, analysis of the fluorescence curves for individual wells in the “Calculation” window of the “Data Analysis” section and analysis of the melting curves of DNA samples in the “Normalization of Melting Curves” window should be performed according to the protocol of the instrument used. The presence of a mutation p.Q368X (s.1102C> T) in the studied locus should be judged by a certain form of melting curves compared to the norm (figure 1).

В качестве конкретных примеров обследовано в целом 1045 пациентов (496 пациентов с ПОУГ и 589 индивидов из группы контроля) с ПОУГ, состоящих на учете в Государственном бюджетном учреждении «Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней» г.Уфы, членов их семей, а также здоровых доноров, проживающих в Волго-Уральском регионе.As specific examples, a total of 1045 patients (496 patients with POAG and 589 individuals from the control group) with POAG registered in the Ufa State Research Institute of Eye Diseases in Ufa, their families, and healthy donors living in the Volga-Ural region.

Критерием включения в исследование был диагноз «Первичная открытоугольная глаукома» (Н40.1 по МКБ-10), установленный на основании клинических, лабораторно-инструментальных и молекулярно-генетических методов исследований в соответствии с современными диагностическими критериями, предлагаемыми ФГБУ "Московский научно-исследовательский институт глазных болезней им. Гельмгольца" Минздравсоцразвития России. Диагноз глаукомы устанавливался на основании данных анамнеза, по результатам полного клинического обследования, включавшего: исследование центральной остроты зрения, исследование периферического поля зрения и статической периметрии на оборудовании SYNIMED (USA), бесконтактную тонометрию в динамике (ежедневно) на пневмотонометре REICHERT (USA), колорометрический анализ диска зрительного нерва на ретинофоте CARL ZEISS, биомикроскопию переднего отрезка глаза и глазного дна. В ходе исследования уточнялись данные об этнической принадлежности больных путем опроса и выяснения национальной принадлежности родителей до третьего поколения. Особое внимание уделялось установлению места рождения пробандов, их родителей и прародителей; выявлению кровнородственных браков в семьях обследованных пациентов. Таким образом, в исследование вошли 496 пациентов с ПОУГ и 589 здоровых индивидов из трех этнических групп (русские (223 человека), татары (124 человек) и другие национальности (242 человека)) из Волго-Уральского региона.The criterion for inclusion in the study was the diagnosis of “Primary open-angle glaucoma” (H40.1 according to ICD-10), established on the basis of clinical, laboratory, instrumental and molecular genetic methods of research in accordance with modern diagnostic criteria proposed by the Federal State Budgetary Institution Moscow Research Institute Helmholtz Eye Disease Ministry of Health and Social Development of Russia. The diagnosis of glaucoma was established on the basis of anamnesis data, according to the results of a complete clinical examination, including: a study of central visual acuity, a study of peripheral visual field and static perimetry on SYNIMED equipment (USA), non-contact tonometry in dynamics (daily) on a REICHERT (USA) pneumometer, colorimetric analysis of the optic nerve disc on a CARL ZEISS retinophot, biomicroscopy of the anterior segment of the eye and fundus. The study clarified data on the ethnicity of patients by interviewing and ascertaining the nationality of parents up to the third generation. Particular attention was paid to establishing the birthplace of probands, their parents and first parents; identification of consanguineous marriages in the families of the examined patients. Thus, the study included 496 patients with POAG and 589 healthy individuals from three ethnic groups (Russians (223 people), Tatars (124 people) and other nationalities (242 people)) from the Volga-Ural region.

Молекулярно-генетический анализ частоты мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC проводился у больных, страдающих первичной открытоугольной глаукомой, предположительно наследственной этиологии.Molecular genetic analysis of the frequency of the mutation p.Q368X (s.1102C> T) in the MYOC gene was carried out in patients suffering from primary open-angle glaucoma, presumably of hereditary etiology.

На первом этапе исследований был проведен скрининг мутации p.Q368X (С.1102C>Т) в гене MYOC у 496 неродственных пациентов из Республики Башкортостан. У 8 неродственных пациентов данная мутация была выявлена в гетерозиготном состоянии, что составляет 1,6% всех обследованных семей с ПОУГ. По этнической принадлежности пациенты с мутацией p.Q368X (с.1102C>Т) распределились следующим образом: 6 - русских, 1 татарин и 1 метис (русский/татарин). У всех пациентов был отягощен анамнез по ПОУГ. Таким образом, учитывая относительное преобладание мутации p.Q368X (с.1102C>Т) в гене MYOC у пациентов из европейских популяций, достаточно легко объяснить сегрегацию мутантных аллелей в гене MYOC и среди больных ПОУГ из Республики Башкортостан. На основании этого анализа больным с мутацией p.Q368X (с.1102C>Т) в гене MYOC был выставлен диагноз - аутосомно-доминантная форма первичной открытоугольной глаукомы. Следовательно, общий вклад идентифицированной у пациентов с ПОУГ мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC составил 0,8%. Далее были проанализированы здоровые доноры из популяционных выборок русских, татар, башкир и метисов - наиболее многочисленных этносов, живущих в Волго-Уральском регионе. Мутация p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC была идентифицирована в гетерозиготном состоянии у 1 русского пациента (0,17%). Носители мутации p.Q368X в гене MYOC в течение жизни имеют риск развития заболевания, варьирующий от 60 до 100%.At the first stage of the studies, the mutation p.Q368X (С.1102C> Т) was screened in the MYOC gene in 496 unrelated patients from the Republic of Bashkortostan. In 8 unrelated patients, this mutation was detected in a heterozygous state, which accounts for 1.6% of all examined families with POAG. By ethnicity, patients with the p.Q368X mutation (p. 1102C> T) were distributed as follows: 6 - Russians, 1 Tatar and 1 Mestizo (Russian / Tatar). All patients had a history of POAG. Thus, taking into account the relative prevalence of the p.Q368X mutation (s.1102C> T) in the MYOC gene in patients from European populations, it is easy to explain the segregation of mutant alleles in the MYOC gene and among POAG patients from the Republic of Bashkortostan. Based on this analysis, patients with the p.Q368X mutation (s.1102C> T) in the MYOC gene were diagnosed with an autosomal dominant form of primary open-angle glaucoma. Therefore, the total contribution of the p.Q368X mutation identified in patients with POAG (p. 1102C> T) in the MYOC gene was 0.8%. Next, healthy donors from population samples of Russians, Tatars, Bashkirs and Métis, the most numerous ethnic groups living in the Volga-Ural region, were analyzed. The mutation p.Q368X (s.1102C> T) in the MYOC gene was identified in a heterozygous state in 1 Russian patient (0.17%). Carriers of the p.Q368X mutation in the MYOC gene have a risk of developing a disease ranging from 60 to 100% throughout life.

Относительное преобладание мутации p.Q368X в гене MYOC у больных с первичной открытоугольной глаукомой обуславливает целесообразность ее первоочередного тестирования при проведении генетического анализа. Также при наличии у пациента мутации p.Q368X в гене MYOC из схем лечения необходимо исключить применение глюкокортикоидных препаратов, таких как дексаметазон, преднизолон и др. В литературе имеются данные о том, что у носителей p.Q368X (c.1102C>Т) в гене MYOC под действием дексаметазона клетки трабекулярной сети радужки становятся более чувствительными к различным факторам и воздействиям (механическое растяжение, оксидативный стресс, изменение гормональной регуляции) и подвергаются апоптозу, что может быть связано либо с индукцией экспрессии миоцилина в клетках, либо с ассоциацией дефектного миоцилина в них с митохондриями, играющими ключевую роль в запрограммированной клеточной смерти [Rozsa et al., 2006; Yuan He et al., 2009; Colak et al., 2012].The relative predominance of the p.Q368X mutation in the MYOC gene in patients with primary open-angle glaucoma makes it expedient to test it first during genetic analysis. Also, if a patient has a p.Q368X mutation in the MYOC gene from treatment regimens, it is necessary to exclude the use of glucocorticoid drugs, such as dexamethasone, prednisolone, etc. In the literature, there is evidence that carriers of p.Q368X (c. 1102C> T) in the MYOC gene under the action of dexamethasone, the cells of the iris trabecular network become more sensitive to various factors and effects (mechanical stretching, oxidative stress, changes in hormonal regulation) and undergo apoptosis, which may be associated either with the induction of expression of myocilin and in cells, or with the association of defective myocilin in them with mitochondria, which play a key role in programmed cell death [Rozsa et al., 2006; Yuan He et al., 2009; Colak et al., 2012].

Таким образом, учитывая существование выражения межпопуляционных различий в частоте мутации p.Q368X (с.1102C>Т) в гене MYOC, анализ генетической гетерогенности при первичной открытоугольной глаукоме в отдельных регионах и этнических группах является актуальной проблемой медицинской генетики, необходимым условием при разработке оптимальных для данного региона подходов ДНК-диагностики наследственных форм ПОУГ.Thus, given the existence of an expression of interpopulation differences in the mutation frequency p.Q368X (s.1102C> T) in the MYOC gene, the analysis of genetic heterogeneity in primary open-angle glaucoma in certain regions and ethnic groups is an urgent problem of medical genetics, a necessary condition for the development of optimal of this region of DNA diagnostic approaches for hereditary forms of POAG.

Пример 1. Больной Л.Н., 1956 год рождения, город Уфа, Республика Башкортостан. Диагноз первичной открытоугольной глаукомы установлен в 2012 году. В настоящее время пациент проперирован. Со стороны родителей и ближайших родственников - наследственность отягощена. Первичная открытоугольная глаукома была выявлена у матери пациента. При молекулярно-генетическом тестировании у больного было взято по 8 мл венозной крови с последующим выделением ДНК и проведена реал-тайм ПЦР с флуоресцентной детекцией мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC в реакционной смеси, содержащей 1,0 мкг геномной ДНК, соответствующее кол-во буфера, содержащего смесь для ПЦР (670 мМ Tris-HCl (pH 8,8); 0,1% Tween-20, 2 мМ dNTPs, 10 мМ специфичных праймеров, краситель EvaGreen® - 0,3 мкл, и Taq-полимеразу. Затем провели провели амплификацию ДНК в амплификаторе «CFX96» («BioRad», США) с возможностью проведения анализа флуоресценции по конечной точке согласно программе: начальная денатурация: 94°C - 2:00, 40 циклов амплификации: денатурация 95°C - 0:10, отжиг 56/60°C - 1:00. Исследование ДНК больного выявило гетерозиготное носительство p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC. Время исследования составило 2 дня.Example 1. Patient L.N., born in 1956, the city of Ufa, the Republic of Bashkortostan. The diagnosis of primary open-angle glaucoma was established in 2012. The patient is currently being operated on. On the part of parents and immediate relatives - heredity is burdened. Primary open-angle glaucoma was detected in the patient’s mother. During molecular genetic testing, 8 ml of venous blood was taken from the patient with subsequent DNA isolation and real-time PCR was performed with fluorescence detection of the p.Q368X mutation (s.1102C> T) in the MYOC gene in a reaction mixture containing 1.0 μg genomic DNA corresponding to the amount of buffer containing the PCR mixture (670 mM Tris-HCl (pH 8.8); 0.1% Tween-20, 2 mM dNTPs, 10 mM specific primers, EvaGreen® dye - 0.3 μl and Taq polymerase, DNA was then amplified in a CFX96 amplifier (BioRad, USA) with the possibility of performing a fluorescence analysis at the final according to the program: initial denaturation: 94 ° C - 2:00, 40 amplification cycles: denaturation 95 ° C - 0:10, annealing 56/60 ° C - 1:00. Investigation of the patient's DNA revealed heterozygous carriage p.Q368X (with .1102C> T) in the MYOC gene.The study time was 2 days.

Пример 2. Пациент А.К., 1958 год рождения, город Уфа, Республика Башкортостан. Диагноз первичной открытоугольной глаукомы установлен в 2012 году. Со стороны матери пациента наследственность отягощена по первичной открытоугольной глаукоме. У пациента взяли 8 мл венозной крови с последующим выделением ДНК и постановкой реакции реал-тайм ПЦР с флуоресцентной детекцией мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC. Амплификацию ДНК проводили в амплификаторе «CFX96» («BioRad», США) с возможностью проведения анализа флуоресценции по конечной точке согласно программе: начальная денатурация: 94°C - 2:00, 40 циклов амплификации: денатурация 95°C - 0:10, отжиг 56/60°C - 1:00. Исследование ДНК больного выявило гетерозиготное носительство мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC. Диагноз наследственной формы первичной открытоугольной глаукомы был подтвержден.Example 2. Patient AK, born in 1958, the city of Ufa, the Republic of Bashkortostan. The diagnosis of primary open-angle glaucoma was established in 2012. On the part of the patient’s mother, heredity is burdened by primary open-angle glaucoma. 8 ml of venous blood was taken from the patient, followed by DNA extraction and setting up a real-time PCR reaction with fluorescence detection of the p.Q368X mutation (p.1102C> T) in the MYOC gene. DNA amplification was performed in a CFX96 thermocycler (BioRad, USA) with the possibility of performing end-point fluorescence analysis according to the program: initial denaturation: 94 ° C - 2:00, 40 amplification cycles: denaturation 95 ° C - 0:10, annealing 56/60 ° C - 1:00. A study of the patient’s DNA revealed heterozygous carriage of the p.Q368X mutation (p. 1102C> T) in the MYOC gene. The diagnosis of the hereditary form of primary open-angle glaucoma has been confirmed.

В заключение необходимо отметить, что в связи с интенсивным накоплением знаний об основных этиологических, патогенетических механизмах на молекулярно-генетическом уровне существенно расширяются возможности проведения дополнительных методов исследования, среди которых особенно актуальными становятся методы ДНК-диагностики. Поскольку они позволяют выяснить первопричину болезни, открытие патогенетических механизмов, которые в дальнейшем значительно облегчают терапию заболевания. Полученные в ходе данного исследования результаты позволяют оценивать вероятность развития первичной открытоугольной глаукомы у пациентов из семей с отягощенной наследственностью. Установление с помощью молекулярно-генетических методов наследственных форм первичной открытоугольной глаукомы позволяет правильно организовывать процесс лечения и реабилитации пациента, оптимизировать лекарственную терапию заболевания и значительно снизить экономические затраты на проведение повторных дорогостоящих диагностических процедур.In conclusion, it should be noted that in connection with the intensive accumulation of knowledge about the main etiological, pathogenetic mechanisms at the molecular genetic level, the possibilities for additional research methods are expanding significantly, among which DNA diagnostic methods are becoming especially relevant. Since they make it possible to find out the root cause of the disease, the discovery of pathogenetic mechanisms that subsequently greatly facilitate the treatment of the disease. The results obtained in this study allow us to assess the likelihood of developing primary open-angle glaucoma in patients from families with burdened heredity. The establishment of hereditary forms of primary open-angle glaucoma using molecular genetic methods allows the patient to properly organize the treatment and rehabilitation process, optimize the drug therapy of the disease, and significantly reduce the economic costs of repeated expensive diagnostic procedures.

Таблица 1Table 1 Компоненты реакционной смесиThe components of the reaction mixture Деионизованная водаDeionized water 6,4 мкл6.4 μl Смесь для ПЦРMix for PCR 2,0 мкл2.0 μl Taq-полимеразаTaq polymerase 0,2 мкл0.2 μl Краситель EvaGreen®EvaGreen® Dye 0,4 мкл0.4 μl Исследуемый образец (30 нг ДНК/мкл)Test sample (30 ng DNA / μl) 1,0 мкл1.0 μl Суммарный объемTotal volume 10 мкл10 μl

Figure 00000001
Figure 00000001

Claims (1)

Способ выявления мутации p.Q368X (с.1102С>Т) в гене MYOC, сопровождающейся развитием наследственной формы первичной открытоугольной глаукомы, включающий выделение ДНК из лимфоцитов периферической крови методом фенольно-хлороформной экстракции, проведение полимеразной цепной реакции с возможностью проведения анализа флуоресценции по конечной точке, отличающийся тем, что амплифицируют участок гена MYOC в присутствии двух последовательностей олигонуклеотидов с красителем EvaGreen®:
Q368X - F, GTCCAGAACTGTCATAAGATA,
Q368X - R, CCAAGAATACGGGAACTG,
фланкирующих область с возможным содержанием мутации p.Q368X (c.1102С>Т) в гене MYOC.
A method for detecting the p.Q368X mutation (s.1102C> T) in the MYOC gene, accompanied by the development of a hereditary form of primary open-angle glaucoma, including the extraction of DNA from peripheral blood lymphocytes by phenol-chloroform extraction, polymerase chain reaction with the possibility of fluorescence analysis at the end point characterized in that the MYOC gene region is amplified in the presence of two sequences of oligonucleotides with EvaGreen® dye:
Q368X - F, GTCCAGAACTGTCATAAGATA,
Q368X - R, CCAAGAATACGGGAACTG,
flanking region with a possible content of mutation p.Q368X (c. 1102C> T) in the MYOC gene.
RU2014107633/15A 2014-02-27 2014-02-27 METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA RU2582956C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014107633/15A RU2582956C2 (en) 2014-02-27 2014-02-27 METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014107633/15A RU2582956C2 (en) 2014-02-27 2014-02-27 METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2014107633A RU2014107633A (en) 2015-09-10
RU2582956C2 true RU2582956C2 (en) 2016-04-27

Family

ID=54073166

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014107633/15A RU2582956C2 (en) 2014-02-27 2014-02-27 METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2582956C2 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999051779A2 (en) * 1998-04-07 1999-10-14 The University Of Iowa Research Foundation Glaucoma therapeutics and diagnostics

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999051779A2 (en) * 1998-04-07 1999-10-14 The University Of Iowa Research Foundation Glaucoma therapeutics and diagnostics

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BHATTACHARJEE A. et al. Myocilin variants in Indian patients with open-angle glaucoma. Arch Ophthalmol. 2007 Jun; 125(6): 823-829 [Найдено 19.11.2015] [он-лайн], Найдено из Интернет: URL: http://archopht.jamanetwork.com/article.aspx?articleid=419460. ENNIS S. et al. Prevalence of myocilin gene mutations in a novel UK cohort of POAG patients. Eye (Lond). 2010 Feb; 24(2): 328-333. Epub 2009 May 1 [Найдено 19.11.2015] [он-лайн], Найдено из Интернет: URL: http://www.nature.com/eye/journal/v24/n2/full/eye200973a.html. *
LI Y.D. et al. A cost-effective high-resolution melting approach using the EvaGreen dye for DNA polymorphism detection and genotyping in plants. J Integr Plant Biol. 2010 Dec; 52(12): 1036-1042. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2014107633A (en) 2015-09-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Saee-Rad et al. Mutation analysis of VSX1 and SOD1 in Iranian patients with keratoconus
Piotrowska-Nowak et al. Investigation of whole mitochondrial genome variation in normal tension glaucoma
Zhu et al. Diagnosis for choroideremia in a large Chinese pedigree by next‑generation sequencing (NGS) and non‑invasive prenatal testing (NIPT)
CN115141884B (en) Novel ATP7B mutant gene and diagnostic reagent thereof
Nejabat et al. VSX1 and SOD1 Mutation Screening in Patients with Keratoconus in the South of Iran
CN116287213A (en) Pathogenic gene causing MRD7 type mental disorder, detection and application
CN111560428A (en) Application of substance for detecting single nucleotide polymorphism of mitochondrial DNA rs3937033
CN111676283A (en) Application of mitochondrial DNA single nucleotide polymorphism related to occurrence of high altitude pulmonary edema
CN114703278A (en) Amyotrophic lateral sclerosis pathogenic gene, detection kit and primer group
CN107312859B (en) Application of AQP5 gene in preparation of products for detecting congenital cataract
RU2582956C2 (en) METHOD FOR DETECTING p.Q368X MYOCILIN (MYOC) GENE MUTATION CAUSING PRIMARY OPEN-ANGLE GLAUCOMA
Lin et al. Two novel mutations in the bestrophin-1 gene and associated clinical observations in patients with best vitelliform macular dystrophy
RU2317547C1 (en) Method for detection of mutations ingjb2 gene accompanying with development of nonsyndromal autosomal-recessive deafness
CN114317727A (en) Fluorescent quantitative detection reagent for SMN gene copy number analysis and application
Ameh et al. The search for mitochondrial tRNALeu (UUR) A3243G mutation among type 2 diabetes mellitus patients in the Nigerian population
CN113201588A (en) SNP (single nucleotide polymorphism) locus for detecting congenital irideless glaucoma disease, application and product
RU2335541C1 (en) Method defining mutations of gene mtrnr1 at acute perceptive hearing loss caused by usage of antibiotics from group of aminoglycosides
RU2775431C1 (en) Method for predicting the risk of developing primary open-angle glaucoma in women
CN115851918B (en) Application and detection reagent of pathogenic gene CFAP410 mutation site causing retinal dystrophy
RU2490638C1 (en) Method for prediction of developing b cell and t cell non-hodgkin lymphomas
Nakamura et al. Association of toll-like receptor 2 gene polymorphisms with normal tension glaucoma
CN103266181B (en) Kit for detecting transthyretin (TTR) gene mutant G307C
CN105765077B (en) Detection method for determining risk of anti-thyroid drug-induced agranulocytosis and kit for determination
RU2771137C1 (en) Method for predicting the risk of developing primary open-angle glaucoma using data on cdkn2b-as1 gene polymorphism
RU2798695C1 (en) Method of diagnosing mucopolysaccharidosis-plus syndrome

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180228