RU2538243C1 - Method for simulating liver metastases experimentally - Google Patents

Method for simulating liver metastases experimentally Download PDF

Info

Publication number
RU2538243C1
RU2538243C1 RU2013138941/14A RU2013138941A RU2538243C1 RU 2538243 C1 RU2538243 C1 RU 2538243C1 RU 2013138941/14 A RU2013138941/14 A RU 2013138941/14A RU 2013138941 A RU2013138941 A RU 2013138941A RU 2538243 C1 RU2538243 C1 RU 2538243C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
liver
tumor
spleen
metastases
rats
Prior art date
Application number
RU2013138941/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Олег Иванович Кит
Елена Михайловна Франциянц
Ирина Викторовна Каплиева
Лидия Константиновна Трепитаки
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2013138941/14A priority Critical patent/RU2538243C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2538243C1 publication Critical patent/RU2538243C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method involves surgical subcutaneous separation of the spleen in white outbread rats. After the incision wound is healed, a tumour cell suspension of sarcoma 45 in normal saline is implanted into the spleen tissue in an amount of 0.1 ml at a dilution of 1×106. After 2.5-3 weeks, a morphological examination of the liver follows.
EFFECT: while avoiding the effect of stress factors of the metastasis process and approaching the natural process, the method enables following the growth rates of a primary tumour node and provides simulating the liver metastasising by the most prominent haematogenic spread.
5 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и может быть использовано при воспроизведении метастатического процесса в печени у крыс и в дальнейшем для разработки новых способов их экспериментальной терапии.The invention relates to medicine, namely to experimental oncology, and can be used to reproduce the metastatic process in the liver in rats and in the future to develop new methods for their experimental therapy.

Одной из самых важных задач при лечении злокачественных опухолей является борьба с метастазами. Осложняет ситуацию то, что первичная опухоль и метастазы могут иметь разную чувствительность к тем или иным препаратам, в результате чего лекарства, которые хорошо справляются с первичной опухолью, могут оказаться бессильны против метастазов. Метастазирование свойственно многим типам рака. Например, колоректальному раку, который наиболее часто метастазирует в печень. Поэтому разработка экспериментальных моделей метастатического поражения печени является актуальным вопросом.One of the most important tasks in the treatment of malignant tumors is the fight against metastases. Complicating the situation is that the primary tumor and metastases may have different sensitivity to certain drugs, as a result of which drugs that cope well with the primary tumor may be powerless against metastases. Metastasis is common to many types of cancer. For example, colorectal cancer, which most often metastases to the liver. Therefore, the development of experimental models of metastatic liver damage is an urgent issue.

Известны способы создания внутриорганной опухоли печени у крыс путем пункционного введения 0,1 мл 20% взвеси клеток перевитой подкожно гепатокарциномы (Г-27) и модели мультицентрического опухолевого поражения печени с использованием внутрипортального введения взвеси клеток перевитого подкожно альвеолярного слизистого рака (РС-1) (Каталитическая терапия экспериментальных опухолей печени. /Могирев С.В., 2005, Москва, автореф. дис. к.м.н., с.18).Known methods for creating an intraorgan liver tumor in rats by puncture injection of 0.1 ml of a 20% suspension of cells of a subcutaneously transplanted hepatocarcinoma (G-27) and a model of a multicentric tumor of a liver lesion using intraportal injection of a suspension of cells of a transcutaneous subcutaneous alveolar mucous cancer (RS-1) Catalytic therapy of experimental liver tumors. / Mogirev S.V., 2005, Moscow, abstract of dissertation, candidate of medical sciences, p. 18).

Недостатком этих способов является необходимость проведения оперативного вмешательства в момент введения опухолевой взвеси клеток либо в печень крыс, либо в портальную вену с одной стороны, с другой - образовавшийся опухолевый процесс в печени нельзя считать метастазом, поскольку отсутствует первичный очаг, дающий метастатические отсевы.The disadvantage of these methods is the need for surgical intervention at the time of introducing tumor suspension of cells either into the liver of rats or into the portal vein on the one hand, and on the other hand, the resulting tumor process in the liver cannot be considered metastasis, since there is no primary focus giving metastatic screenings.

Известно, что при метастазировании простым переносом и размножением клеток в местах новой дислокации процесс не ограничивается: клетки опухоли и метастазов продолжают активно изменяться. В частности, Wu et al. (2012) пришли к выводу, что образовывать метастазы способны лишь некоторые клетки опухоли на ранней стадии ее развития. Затем и в первичной опухоли и в метастазах накапливаются новые мутации. Мутации некоторых генов, идентифицированные авторами, могут нарушать пути метаболизма и передачи сигналов, и эти пути могут служить мишенями для эффективной терапии (Xiaochong Wu, Paul A. Northcott, Adrian Dubuc et al. Clonal selection drives genetic divergence of metastatic medulloblastoma // Nature. 2012 V.482, Р.5629-5630).It is known that during metastasis, the process is not limited to simple transfer and multiplication of cells in places of a new dislocation: tumor cells and metastases continue to actively change. In particular, Wu et al. (2012) concluded that only some tumor cells at the early stage of its development are capable of forming metastases. Then, in the primary tumor and in metastases, new mutations accumulate. Mutations of certain genes identified by the authors can disrupt metabolic and signaling pathways, and these pathways can serve as targets for effective therapy (Xiaochong Wu, Paul A. Northcott, Adrian Dubuc et al. Clonal selection drives genetic divergence of metastatic medulloblastoma // Nature. 2012 V.482, P.5629-5630).

Другая группа исследователей установила, что метастазы «ответвлялись» от первичной опухоли довольно рано, а затем и опухоли и метастазы эволюционировали независимо друг от друга, накапливая разные мутации. Только 30-37% мутации оказались общими для опухолевых клеток из первичной опухоли и ее метастазов (Marco Gerlinger, Andrew J. Rowan, Stuart Horswell et al. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing // The New England Journal of Medicine, 2012. V.366. Р.883-892).Another group of researchers found that metastases branched off from the primary tumor quite early, and then the tumors and metastases evolved independently of each other, accumulating different mutations. Only 30-37% of mutations were common for tumor cells from the primary tumor and its metastases (Marco Gerlinger, Andrew J. Rowan, Stuart Horswell et al. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing // The New England Journal of Medicine, 2012 . V.366. P.883-892).

Известно, что экспериментальная аденокарцинома толстого кишечника крыс, полученная путем внутрибрюшинного введения химического канцерогена 1,2-диметилгидразина, часто метастазирует в печень (Морфофункциональное состояние тимуса в условиях развития опухоли толстой кишки. / Стручко Г.Ю, Меркулова Л.М., Москичев Е.В. и др. // Здравоохранение Чувашии №3, 2009. С.47-52; Морфология рака толстой кишки после применения 1,2-диметилгидразин дегидрохлорида/ Москвичев Е.В., Стручко Г.Ю., Меркулова Л.М., Кострова О.Ю., Бюл. эксперим. биол. и мед., 2009, №1, с.76).It is known that experimental rat colon adenocarcinoma obtained by intraperitoneal injection of the chemical carcinogen 1,2-dimethylhydrazine often metastasizes to the liver (Morphofunctional state of the thymus under conditions of colon tumor development. / Struchko G.Yu., Merkulova L.M., Moskichev E .V. Et al. // Health of Chuvashia No. 3, 2009. P.47-52; Morphology of colon cancer after application of 1,2-dimethylhydrazine dehydrochloride / Moskvichev EV, Struchko G.Yu., Merkulova L.M ., Kostrova O.Yu., Bull. Experimental biol. And honey., 2009, No. 1, p.76).

Недостатком этого метода является то, что воспроизведение аденокарциномы составляет у крыс - 40-65%, а метастазы в печени регистрируются еще реже. Необходимо также отметить и токсическое воздействие канцерогена на организм животного, длительные сроки эксперимента - 150 суток.The disadvantage of this method is that reproduction of adenocarcinoma in rats is 40-65%, and liver metastases are recorded even less frequently. It is also necessary to note the toxic effect of carcinogen on the animal’s body, the long experiment time is 150 days.

Наиболее близкими по технической сущности к предлагаемому являются способы моделирования метастазов в печени путем инъекции в селезенку под общей анестезией: у мышей - взвеси видоспецифических опухолевых клеток: асцитной опухоли Эрлиха (Способ моделирования метастазов в печень. /Удинцев С.Н., Фомина Т.И., Разина Т.Г./ патент №4906903, 1995 г.) или аденокарциномы толстого кишечника (АКАТОЛ) (Исследование эффективности гепатопротектора Лохеина в комплексной терапии экспериментальных злокачественных опухолей./ Малиновская Е.А., Сибирский онкологический журнал, 2003, №4, с.17-21), у крыс линии BDJX - взвеси опухолевых клеток без указания типа опухоли (Средство для местного применения и способ лечения и профилактики опухолевого поражения печени и брюшины с его использованием./ Александров В.Б., Разбирин В.Н., Царанов К,Н., патент №223365, 2004 г.).The closest in technical essence to the proposed are methods for modeling liver metastases by injection into the spleen under general anesthesia: in mice - suspensions of species-specific tumor cells: Ehrlich ascites tumor (Method for modeling liver metastases. / Udintsev S.N., Fomina T.I. ., Razina TG / patent No. 4906903, 1995) or colon adenocarcinoma (AKATOL) (Study of the effectiveness of the heheoprotector Lohein in the complex treatment of experimental malignant tumors. / Malinovskaya EA, Siberian oncologists eskij zhurnal, 2003, No. 4, pp. 17-21), in rats of the BDJX strain, suspensions of tumor cells without indicating the type of tumor (Means for local use and a method for the treatment and prevention of tumor damage to the liver and peritoneum with its use. / Alexandrov V. B., Razbirin V.N., Tsaranov K, N., patent No. 223365, 2004).

Эти способы также имеют ряд существенных недостатков:These methods also have a number of significant disadvantages:

- АКАТОЛ и асцитная опухоль Эрлиха являются видоспецифическими для мышей;- ACATOL and Ehrlich ascites tumor are species-specific for mice;

- для воссоздания процесса метастазирования у крыс необходимо использовать линейных животных;- to recreate the process of metastasis in rats, it is necessary to use linear animals;

- не указан % воспроизведения метастатического поражения печени у мышей и крыс;- not specified% reproduction of metastatic liver damage in mice and rats;

- введение взвеси опухолевых клеток в селезенку осуществляется во время оперативного вмешательства, под наркозом, которые сами по себе являются стрессирующими факторами, влияющими на процесс метастазирования опухолей;- the introduction of a suspension of tumor cells into the spleen is carried out during surgery, under anesthesia, which in themselves are stressful factors that affect the process of tumor metastasis;

- нельзя контролировать динамику роста первичного опухолевого узла.- it is impossible to control the growth dynamics of the primary tumor node.

В совокупности указанные недостатки не позволяют стандартизировать модель, что необходимо для оценки новых способов лечения.Together, these shortcomings do not allow standardizing the model, which is necessary for evaluating new methods of treatment.

Целью настоящего изобретения является разработка способа получения метастатического поражения печени у белых беспородных крыс с визуальным контролем динамики роста первичного опухолевого узла и большим процентом выхода метастазов в течение небольшого промежутка времени (от момента перевивки саркомы 45 в селезенку до появления опухолевого процесса в печени).The aim of the present invention is to develop a method for metastatic liver damage in white outbred rats with visual control of the growth dynamics of the primary tumor node and a large percentage of metastases in a short period of time (from the moment of transplantation of sarcoma 45 into the spleen to the appearance of a tumor process in the liver).

Поставленная цель достигается тем, что предварительно на беспородных крысах проводится операция по выведению селезенки под кожу. Через 2 недели, после заживления операционной раны крысам интралиенально вводится по 0,1 мл взвеси опухолевых клеток саркомы 45 в физиологическом растворе в разведении 1*106. Метастатическое поражение печени регистрируется через 17-21 дней.This goal is achieved by the fact that previously on outbred rats an operation is carried out to remove the spleen under the skin. After 2 weeks, after healing of the surgical wound, 0.1 ml of suspension of sarcoma tumor cells 45 in physiological saline in a dilution of 1 * 10 6 is administered to rats intralienally. Metastatic liver damage is recorded after 17-21 days.

Изобретение «Способ получения метастазов печени в эксперименте» является новым, так как оно неизвестно в области экспериментальных исследований в онкологии о воспроизведении метастатического процесса в печени у крыс.The invention "A method for producing liver metastases in an experiment" is new, since it is not known in the field of experimental studies in oncology about the reproduction of a metastatic process in the liver in rats.

Новизна изобретения заключается в том, что предварительно до интралиенального введения взвеси опухолевых клеток селезенка выводится под кожу, что приводит к возможности визуально контролировать рост первичной опухоли, исключает влияние стрессорных факторов (оперативное вмешательство, наркоз) в момент перевивки опухоли, что приближает процесс экспериментального метастазирования к естественному. Также данный метод предполагает использование нелинейных животных, поскольку перевитая в селезенку опухоль приводит к постепенному разрушению органа, а следовательно, и к нарушению иммунной противоопухолевой защиты. Кроме того, саркома 45 является перевивной неагрессивной опухолью, которая при стандартной подкожной перевивке не дает метастазов, поэтому полученные метастазы в печени при интралиенальном введении опухолевой взвеси являются истинно гематогенными метастазами (занос опухолевых клеток через нижнюю полую вену - наиболее значимый путь метастазирования), в отличие, например, от аденокарциномы, при которой возможно и гематогенное и лимфогенное метастазирование.The novelty of the invention lies in the fact that, prior to the intraliennal administration, a suspension of tumor cells of the spleen is excreted under the skin, which makes it possible to visually control the growth of the primary tumor, eliminates the influence of stress factors (surgery, anesthesia) at the time of tumor inoculation, which brings the experimental metastasis closer to natural. Also, this method involves the use of nonlinear animals, since a tumor transplanted into the spleen leads to a gradual destruction of the organ, and therefore to a violation of the immune antitumor defense. In addition, sarcoma 45 is a transplantable non-invasive tumor, which does not metastasize with standard subcutaneous transplantation; therefore, received liver metastases during intralienal administration of tumor suspensions are truly hematogenous metastases (tumor cells entering through the inferior vena cava is the most significant metastasis pathway), in contrast , for example, from adenocarcinoma, in which both hematogenous and lymphogenous metastasis are possible.

Изобретение «Способ получения метастазов печени в эксперименте» является промышленно применимым, так как может быть использовано в научно-исследовательских учреждениях онкологического профиля для воспроизведения экспериментальной модели метастазирования в печень злокачественной опухоли с целью разработки методов экспериментальной терапии этой патологии.The invention "A method for producing liver metastases in an experiment" is industrially applicable, since it can be used in cancer research institutions to reproduce an experimental model of liver metastasis of a malignant tumor in order to develop experimental methods for the treatment of this pathology.

Для пояснения предлагаемого изобретения предложены рисунки.To explain the invention, drawings are provided.

На рисунке 1 изображено расширение сосудов микроциркуляторного русла печени, гемо- и плазмостаз, нарушение балочно-радиарного строения печеночных долек. Окраска гематоксилин-эозином. Ув. 100.Figure 1 shows the expansion of blood vessels in the microvasculature of the liver, hemo- and plasmastasis, and a violation of the beam-radar structure of the liver lobules. Hematoxylin-eosin stain. SW one hundred.

На рисунке 2 изображены многочисленные митозы опухолевых клеток, в том числе - атипичные (стрелки). Окраска гематоксилин-эозином. Ув. 1000.Figure 2 shows numerous mitoses of tumor cells, including atypical ones (arrows). Hematoxylin-eosin stain. SW 1000.

На рисунке 3 изображена опухоль, прорастающая в ткань печени (стрелки), разрушая ее и нарушая ее структуру. Окраска гематоксилин-эозином. Ув. 400.Figure 3 shows a tumor growing in the liver tissue (arrows), destroying it and disrupting its structure. Hematoxylin-eosin stain. SW 400.

На рисунке 4 изображена гематогенная диссеминация опухоли. Окраска гематоксилин-эозином. Ув. 400.Figure 4 shows the hematogenous dissemination of the tumor. Hematoxylin-eosin stain. SW 400.

На рисунке 5 изображен микропрепарат измененной ткани печени. Визуализируются кровеносные сосуды с плазмостазом и желчный проток - спавшийся, неправильной формы, с многослойным измененным эндотелием (стрелки). Окраска гематоксилин-эозином. Ув. 400.Figure 5 shows a micropreparation of altered liver tissue. Blood vessels with plasmastasis and the bile duct are visualized - collapsed, irregular in shape, with a multilayer altered endothelium (arrows). Hematoxylin-eosin stain. SW 400.

Способ получения метастазов печени в эксперименте выполняется следующим образом.The method of obtaining liver metastases in the experiment is as follows.

Все манипуляции с животными производятся в боксе. Инструменты, посуду, руки дезинфицируют общепринятым способом. Ассистент фиксирует крысу в положении на спине, удаляет шерсть с передней поверхности тела, смазывает кожу живота 70% спиртом и дает эфирный наркоз. Затем экспериментатор в стерильных условиях проводит верхнюю срединную лапаротомию, аккуратно отсепарорывает кожу от мышц, формируя «карман», и делает небольшой вертикальный разрез в мышечном слое передней брюшной стенки под левой реберной дугой, достаточный, чтобы через него «прошла» селезенка без повреждений.All manipulations with animals are made in boxing. Tools, dishes, hands are sanitized in the usual way. The assistant fixes the rat in a supine position, removes hair from the front surface of the body, lubricates the skin of the abdomen with 70% alcohol and gives ether anesthesia. Then the experimenter under sterile conditions performs the upper median laparotomy, gently separates the skin from the muscles, forming a “pocket”, and makes a small vertical incision in the muscle layer of the anterior abdominal wall under the left costal arch, sufficient to allow the spleen to pass through it without damage.

После того как экспериментатор извлек селезенку из отверстия в мышцах, он ушивает этот разрез, чтобы селезенка фиксировалась под кожей в кармане. Далее ассистент ушивает операционную рану и обрабатывает шов 5% спиртовым раствором йода.After the experimenter has removed the spleen from the hole in the muscles, he sutures this incision so that the spleen is fixed under the skin in his pocket. Next, the assistant sutures the surgical wound and processes the suture with a 5% alcohol solution of iodine.

Ориентировочно через 2 недели (возможно и в более поздние сроки) после заживления операционной раны и восстановления животного интралиенально вводят 0,1 мл взвеси опухолевых клеток саркомы 45 в физиологическом растворе в разведении 1*106. Для этого, соблюдая все условия асептики, описанные выше, ассистент фиксирует крысу на спине. Селезенка визуализируется в виде бугорка на животе крысы. Над местом возвышения ассистент сбривает шерсть, обрабатывает кожу 5% спиртовым раствором йода. Экспериментатор рукой в стерильной перчатке захватывает кожную складку с выступающей селезенкой и в месте максимального ее возвышения, что приблизительно соответствует центру органа, иглой 5 см3 шприца прокалывает кожу и селезенку неглубоко, примерно до середины органа, и вводит опухолевую взвесь. Затем извлекает иглу, и место введения плотно, сильно не надавливая, прижимает ватным тампоном, смоченным в 70% спирте с небольшим добавлением йода, на 1 минуту, чтобы исключить вытекание вводимой взвеси.Approximately 2 weeks later (possibly at a later date) after healing of the surgical wound and restoration of the animal, 0.1 ml of suspension of tumor cells of sarcoma 45 in physiological saline is diluted 1 × 10 6 . To do this, observing all the aseptic conditions described above, the assistant fixes the rat on his back. The spleen is visualized as a tubercle on the rat’s stomach. Above the place of elevation, the assistant shaves off the hair, treats the skin with a 5% alcohol solution of iodine. The experimenter with his hand in a sterile glove captures the skin fold with a protruding spleen and at the place of its maximum elevation, which approximately corresponds to the center of the organ, with a 5 cm 3 syringe needle pierces the skin and spleen superficially, approximately to the middle of the organ, and introduces the tumor suspension. Then it removes the needle, and the injection site is tightly, without pressing much, pressed with a cotton swab dipped in 70% alcohol with a small addition of iodine for 1 minute to prevent leakage of the introduced suspension.

Через 2,5-3 недели после интралиенального введения взвеси С-45 начал регистрироваться рост опухоли в селезенке. Через 45 дней после внутриселезеночной перевивки С-45 у некоторых животных появилось желтушное окрашивание кожных покровов и слизистых оболочек, повысился билирубин в крови.2.5-3 weeks after intralienal administration of C-45 suspension, tumor growth in the spleen began to be recorded. 45 days after the intra-splenic inoculation of C-45, some animals showed icteric staining of the skin and mucous membranes, and bilirubin in the blood increased.

Процедура была проведена 40 животным. Метастазы в печени появились у 95% крыс.The procedure was performed on 40 animals. Liver metastases appeared in 95% of rats.

После вскрытия крыс обнаруживался первичный опухолевый узел в селезенке размером от 9,75 см3 до 16,2 см3. Селезенка утрачивала строение органа, ее ткань была представлена лишь единичными небольшими островками на поверхности опухолевого узла. В печени визуализировался, как правило, 1-2 фокусный рост опухоли размером 18,71-34,56 см3. На поверхности измененной ткани органа находились единичные кисты, заполненные желчью.After opening the rats, a primary tumor node was found in the spleen from 9.75 cm 3 to 16.2 cm 3 in size. The spleen lost the structure of the organ, its tissue was represented only by single small islands on the surface of the tumor node. As a rule, 1-2 focal tumor growths of 18.71-34.56 cm 3 in size were visualized in the liver. On the surface of the changed organ tissue were single cysts filled with bile.

Морфологически первичный опухолевый узел в селезенке состоял из плотно расположенных полиморфных веретенообразных клеток с умеренным количеством митозов, без признаков повреждения, окруженных рыхлой соединительно-тканной капсулой, за исключением немногочисленных дегенеративно-измененных элементов и мелких участков некроза; а также небольших единичных островков ткани селезенки.Morphologically, the primary tumor node in the spleen consisted of densely spaced polymorphic spindle-shaped cells with a moderate number of mitoses, without signs of damage, surrounded by a loose connective tissue capsule, with the exception of a few degeneratively altered elements and small areas of necrosis; as well as small single islets of spleen tissue.

При микроскопическом исследовании печени наблюдалось значительное кровенаполнение органа с очагами кровоизлияний. Сосуды микроциркуляторного русла были расширены и полнокровны, отмечались гемо- и плазмостаз (рис.1).Microscopic examination of the liver showed significant blood supply to the organ with foci of hemorrhage. The vessels of the microvasculature were dilated and full-blooded, hemo- and plasmostasis were noted (Fig. 1).

Балочно-радиарное строение печеночных долек на крупных участках срезов нарушено (Рис.1). В части клеток паренхимы - дистрофичекие изменения: вакуолизация цитоплазмы и ядер, некоторые ядра в состоянии пикноза, в других - лизис хроматина. Лишь небольшое количество гепатоцитов с признаками их регенерации в виде деления ядер и самих клеток. Регистрировались малочисленные лейкоцитарные инфильтраты.The beam-radar structure of the hepatic lobules in large sections of the sections is broken (Fig. 1). In part of the parenchyma cells, there are dystrophic changes: vacuolization of the cytoplasm and nuclei, some nuclei are in a state of pycnosis, in others - chromatin lysis. Only a small number of hepatocytes with signs of their regeneration in the form of fission of nuclei and the cells themselves. Small leukocyte infiltrates were recorded.

Картина деструктивных изменений в печени дополнялась обилием однородных клеток, имеющих чаще всего округлую форму с гиперхромными большими ядрами, с многочисленными фигурами митоза (10 и более в поле зрения), в том числе - атипичными (Рис.2).The picture of destructive changes in the liver was supplemented by an abundance of homogeneous cells, most often rounded with hyperchromic large nuclei, with numerous figures of mitosis (10 or more in sight), including atypical ones (Fig. 2).

Такого рода недифференцированные клетки могут быть отнесены к незрелой форме саркомы, а именно круглоклеточной саркоме. Стромы в такой опухоли было мало. Опухоль прорастала в ткань печени, разрушая ее и нарушая ее структуру (Рис.3).This kind of undifferentiated cells can be attributed to the immature form of sarcoma, namely squamous cell sarcoma. There was little stroma in such a tumor. The tumor grew into the liver tissue, destroying it and disrupting its structure (Fig. 3).

На некоторых микропрепаратах видны сосуды с распространением опухолевых клеток по ходу их стенок и с наличием опухолевых конгломератов в просветах (гематогенная диссеминация опухоли) (Рис.4).On some micropreparations, vessels are visible with the spread of tumor cells along their walls and with the presence of tumor conglomerates in the lumens (hematogenous dissemination of the tumor) (Fig. 4).

Кроме того, анализируя микрокартину желчных протоков и прилегающей к ним ткани печени, мы пришли к выводу о морфологических признаках холестаза (наблюдалось набухание выстилки синусоидов, их дистрофические изменения, наличие вакуолей).In addition, analyzing the micrograph of the bile ducts and adjacent liver tissue, we came to the conclusion about the morphological signs of cholestasis (swelling of the sinusoid lining, their degenerative changes, and the presence of vacuoles were observed).

Описанные изменения возникали, по всей видимости, из-за нарушения оттока желчи вследствие прорастания опухолевыми клетками, не только кровеносных сосудов, но и желчных протоков.The described changes appeared, most likely, due to a violation of the outflow of bile due to the germination of tumor cells, not only blood vessels, but also bile ducts.

Некоторые желчные протоки не имели четкого просвета, были образованы несколькими рядами овальных крупных клеток с большим вытянутым ядром и базофильной цитоплазмой (Рис.5), что указывало на их пролиферацию, по всей видимости имело приспособительно-компенсаторное значение и было направлено на коррекцию желчевыделения.Some bile ducts did not have a clear lumen, they were formed by several rows of oval large cells with a large elongated nucleus and basophilic cytoplasm (Fig. 5), which indicated their proliferation, apparently had an adaptive-compensatory value and was aimed at correcting bile secretion.

Таким образом, метастазы в печени, на наш взгляд, обладали гистологическими признаками большей «опухолевой агрессии», чем первичная опухоль.Thus, liver metastases, in our opinion, had histological signs of greater “tumor aggression” than the primary tumor.

Технико-экономическая эффективность «Способа получения метастазов печени в эксперименте» заключается в том, что полученные метастазы злокачественной опухоли печени являются морфологически подтвержденной круглоклеточной саркомой, воспроизводятся в 95% случаев, растут и приводят к гибели животных. Способ осуществляется на белых беспородных крысах, исключает влияние оперативного вмешательства и общего наркоза на воссоздание процесса метастазирования, позволяет визуально контролировать рост первичного опухолевого узла, предполагает распространение метастазов в печень только наиболее значимым - гематогенным путем. Способ экономичен, доступен, обеспечивает воспроизведение опухолей в прогнозируемом количестве.The technical and economic efficiency of the “Method for obtaining liver metastases in the experiment” lies in the fact that the received metastases of a malignant tumor of the liver are morphologically confirmed squamous cell sarcoma, reproduce in 95% of cases, grow and lead to the death of animals. The method is carried out on white outbred rats, eliminates the influence of surgical intervention and general anesthesia on the reconstruction of the metastasis process, allows you to visually control the growth of the primary tumor node, suggests the spread of metastases to the liver only in the most significant way - the hematogenous route. The method is economical, affordable, provides the reproduction of tumors in a predicted amount.

Claims (1)

Способ воспроизведения метастатического процесса в печени у крыс, включающий внутриселезеночное введение опухолевых клеток, отличающийся тем, что белым беспородным крысам предварительно под кожу выводят селезенку, после заживления операционной раны в ткань селезенки имплантируют суспензию опухолевых клеток саркомы 45 в физиологическом растворе в объеме 0,1 мл в разведении 1×106 и через 2,5-3 недели проводят морфологическое исследование печени. A method of reproducing the metastatic process in the liver of rats, including the intra-splenic injection of tumor cells, characterized in that the white outbred rats first expose the spleen under the skin, after healing of the surgical wound, a suspension of sarcoma 45 tumor cells in physiological solution in a volume of 0.1 ml is implanted in a dilution of 1 × 10 6 and after 2.5-3 weeks, a morphological study of the liver is performed.
RU2013138941/14A 2013-08-20 2013-08-20 Method for simulating liver metastases experimentally RU2538243C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013138941/14A RU2538243C1 (en) 2013-08-20 2013-08-20 Method for simulating liver metastases experimentally

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013138941/14A RU2538243C1 (en) 2013-08-20 2013-08-20 Method for simulating liver metastases experimentally

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2538243C1 true RU2538243C1 (en) 2015-01-10

Family

ID=53288024

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013138941/14A RU2538243C1 (en) 2013-08-20 2013-08-20 Method for simulating liver metastases experimentally

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2538243C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2743960C1 (en) * 2020-07-02 2021-03-01 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of modifying the development of adenocarcinoma experimentally

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2233655C1 (en) * 2003-07-03 2004-08-10 Царанов Константин Николаевич Agent for topical application and method for treatment and prophylaxis of tumor damage of liver and peritoneum using thereof
RU2261733C2 (en) * 2003-07-15 2005-10-10 Ростовский научно-исследовательский онкологический институт МЗ РФ Method for treating malignant neoplasms under experimental conditions
RU2361590C2 (en) * 2007-05-24 2009-07-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Нижегородская государственная медицинская академия Росздрава" (ГОУ ВПО "НИЖГМА РОСЗДРАВА") Method of increase of antitumoral effect of chemotherapy

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2233655C1 (en) * 2003-07-03 2004-08-10 Царанов Константин Николаевич Agent for topical application and method for treatment and prophylaxis of tumor damage of liver and peritoneum using thereof
RU2261733C2 (en) * 2003-07-15 2005-10-10 Ростовский научно-исследовательский онкологический институт МЗ РФ Method for treating malignant neoplasms under experimental conditions
RU2361590C2 (en) * 2007-05-24 2009-07-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Нижегородская государственная медицинская академия Росздрава" (ГОУ ВПО "НИЖГМА РОСЗДРАВА") Method of increase of antitumoral effect of chemotherapy

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Экспериментальное изучение опухолей. 2001-2013, http://anfiz.ru/books/item/f00/s00/z0000016/st107.shtml. УДИНЦЕВ С. Н., Повышение эффективности адриамицина с помощью гепатопротекторов растительного происхождения при метастазах аденокарциномы Эрлиха в печень у мышей. Вопр. онкологии. 1992, Т.38, N10, C. 1217-1222. REMEDI MM, et al. Polymorphonuclear cells stimulate the migration and metastatic potential of rat sarcoma cells. Int J Exp Pathol. 2009 Feb;90(1):44-51, реф. FLOWERDEW AD et al.Temporary blood flow stasis with degradable starch microspheres (DSM) for liver metastases in a rat model. Gut. 1987 Oct;28(10):1201-7, реф *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2743960C1 (en) * 2020-07-02 2021-03-01 федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of modifying the development of adenocarcinoma experimentally

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hellman et al. Advancing current treatments for cancer
Powell Sir Victor Horsley at the birth of neurosurgery
US20220226538A1 (en) Composition for transplantation of organoid
RU2538243C1 (en) Method for simulating liver metastases experimentally
RU2615908C1 (en) Method for murine melanoma lymphatic and hematogenous metastasis b16 simulation for nonlinear white rats
El-Fol et al. Laparoscopic versus open complete mesocolic excision with central vascular ligation in right colon cancer
RU2597320C1 (en) Method of treating postradiation rectovaginal fistulas
Talović et al. Review of the supernumerary renal arteries by dissection method
Lucca et al. Histological modification in TRAM flap in rats treated with pentoxifylline
RU2457546C1 (en) Method for simulating human colon adenocarcinoma
Zhang et al. A tunnel approach in laparoscopically assisted radical right hemicolectomy–a video vignette.
Vidová Uğurbaş et al. Stimulation of the liver regeneration with bone marrow mesenchymal stem cells
RU2750127C1 (en) A method for modeling the primary multiple growth of malignant tumors with the suppression of one tumor by another in the conditions of primary immunodeficiency
Nacif et al. Which is the best route of administration for cell therapy in experimental model of small-for size syndrome in rats?
RU2725273C1 (en) Method of human pancreatic neuroendocrine tumor fragment transplantation into immunodeficiency mice pancreatic gland
JP3964278B2 (en) Cirrhosis model animal and its production method
Hu et al. Surgical approach for complete resection of giant retroperitoneal liposarcoma with diaphragmatic hernia via ninth rib thoracotomy
Chowdhury Stem cell in cancer disease cure vs cause
CN103040823A (en) Application of vinpocetine in preparation of anti-angiogenic medicament
RU2738308C1 (en) Method for creating xenograft of cancer of esophagus of intrathoracic localization on immune deficient mice
WO2009075556A1 (en) Method for sensitising cells and the use of same for treating tumours
RU2663800C2 (en) Method for treating metastases of colorectal cancer in the liver
Guzmán Do cannabinoids cure cancer
US20180326096A1 (en) Mode of inducing renal transplant rejection on animals and its manufacturing approach
CN103110614B (en) Application of suloctidil to prepare anti-angiogenesis medicine

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20150821