RU2527345C1 - Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках - Google Patents

Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках Download PDF

Info

Publication number
RU2527345C1
RU2527345C1 RU2013115081/15A RU2013115081A RU2527345C1 RU 2527345 C1 RU2527345 C1 RU 2527345C1 RU 2013115081/15 A RU2013115081/15 A RU 2013115081/15A RU 2013115081 A RU2013115081 A RU 2013115081A RU 2527345 C1 RU2527345 C1 RU 2527345C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
dna
cells
damaged
damage
ozone
Prior art date
Application number
RU2013115081/15A
Other languages
English (en)
Inventor
Татьяна Григорьевна Щербатюк
Ирина Андреевна Чернигина
Original Assignee
ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "НИЖЕГОРОДСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ" МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РФ (ГБОУ ВПО "НижГМА" МИНЗДРАВА РОССИИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "НИЖЕГОРОДСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ" МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РФ (ГБОУ ВПО "НижГМА" МИНЗДРАВА РОССИИ) filed Critical ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "НИЖЕГОРОДСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ" МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РФ (ГБОУ ВПО "НижГМА" МИНЗДРАВА РОССИИ)
Priority to RU2013115081/15A priority Critical patent/RU2527345C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2527345C1 publication Critical patent/RU2527345C1/ru

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине и предназначено для диагностики злокачественных новообразований. Из образца клеток крови готовят слайды из нескольких слоев агарозы, один из которых содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки. Осуществляют повреждения ДНК клеток фосфатно-солевым буфером с pH 7,4-7,5, через который предварительно пропускают озон -кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500-1000 мкг/л в течение 5 мин. Проводят разрушение клеток при pH=10, денатурацию ДНК, помещая слайды в щелочной раствор при pH>13, электрофорез поврежденных ДНК разрушенных клеток в растворе pH>13 при напряжении 27 В, силе тока 260-270 мА, напряженности поля 2,0 В/см. Окрашенные флуоресцентным красителем поврежденные ДНК регистрируют путем фотографирования, обрабатывают с помощью программного обеспечения, вычисляют величину отношения количества поврежденных ДНК к их общему количеству в процентах и при величине отношения более 10% делают заключение об индуцированных повреждениях ДНК. Способ позволяет диагностировать злокачественные новообразования, в т.ч. скрининг, осуществлять подбор лекарственных препаратов и геронтопротекторов при радио-, химио- и озонотерапии. 2 пр.

Description

Изобретение относится к биологии и медицине, а именно к молекулярной биологии и экспериментальной медицине, и может быть использовано для диагностики злокачественных новообразований, индивидуального подбора лекарственных препаратов и геронтопротекторов, при тактике радио-, химио- и озонотерапии, также для выявления групп риска различных заболеваний у населения (скрининг).
Преамбула: повреждение ДНК необходимо для индивидуальной оценки репарационной системы клетки.
В настоящее время известен способ для создания индуцированных повреждений дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Данный способ является наиболее близким по совокупности существенных признаков и достигаемому техническому результату к предлагаемому способу и выбран авторами в качестве прототипа (1).
Данный способ включает: приготовление слайдов, состоящих из 3-х слоев агарозы, средний из которых содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, повреждение ДНК иммобилизованных в агарозу клеток рентгеновским излучением в дозе 3 Гр со средней мощностью 1 Гр/мин, разрушение (лизис) клеток при pH=10 с целью удаления мембран клеток и большинства белков, денатурацию (расплетение=раскручивание=выпрямление) ДНК путем помещения слайдов в щелочной раствор (pH>13) для формирования однонитевых участков в молекулах ДНК, соединенных с ядерным матриксом, которые участвуют в образовании хвоста «кометы», проведение электрофореза поврежденных ДНК в щелочном растворе (pH>13) при напряжении 27 В, силе тока 260-270 мА, напряженности поля 2,0 В/см, за счет подвижности в постоянном электрическом поле поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток, заключенных в агарозу, при этом поврежденные ДНК мигрируют к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий хвост кометы, параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК, затем осуществляют окрашивание ДНК флуоресцентным красителем для их визуализации, далее изображения ДНК («комет») фотографируют с помощью фотоаппарата, соединенного с флуоресцентным микроскопом, главным образом, в центральной части слайдов, где «кометы» располагаются примерно в одной плоскости, после чего полученные изображения обрабатывают с помощью специализированного программного обеспечения, разработанного для регистрации и специализированного программного обеспечения, разработанного для регистрации и анализа отображений, реализующего алгоритмы расчета 13-ти стандартных параметров «комет» (2), при этом программное обеспечение позволяет определить общее количество ДНК и количество поврежденных ДНК и вычислить отношение количества поврежденных ДНК к общему количеству ДНК в процентах и на основании полученных данных делают заключение об индуцированных повреждениях ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Данный способ эффективен и информативен при малом количестве требуемого экспериментального материала.
Однако данный способ является затратным за счет использования дорогостоящей рентгеновской установки для создания индуцированных повреждений ДНК в клетке и работы на ней специально обученного персонала, а также специальной защиты для обслуживающего персонала и требования к помещению из-за рентгеновского излучения. Задачей предлагаемого изобретения является разработка эффективного способа создания индуцированных повреждений ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках, безопасного при реализации и не требующего дорогостоящего стационарного оборудования, специально обученного персонала и специально оборудованного помещения.
Поставленная задача решается предлагаемым способом создания индуцированных повреждений ДНК индивидуальных неделимых ядросодержащих клеток, включающий подготовку слайдов, состоящих из нескольких слоев агарозы, один из которых содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, повреждение ДНК клеток, разрушение (лизис) клеток при pH=10, денатурацию поврежденных ДНК в разрушенных клетках щелочным раствором при pH>13, проведение электрофореза ДНК клеток в щелочных растворах при pH>13, последующее окрашивание флуоресцентным красителем поврежденных ДНК, регистрацию интенсивности флуоресценции изображения ДНК «комет» и обработку полученного изображения ДНК с помощью программного обеспечения, позволяющую определить величину отношения интенсивности флуоресценции поврежденных ДНК к интенсивности флуоресценции общего количества ДНК в клетке в процентах, и по полученной величине отношения делают заключение, согласно изобретения, повреждение ДНК клеток осуществляют обработкой слайда фосфатно-солевым буфером с pH 7,4-7,5, через который предварительно пропускают озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500-1000 мкг/л в течение 5 мин, и при величине отношения более 10% делают заключение о создании индуцированных повреждений ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Техническим результатом предлагаемого способа является безопасность и снижение материальных затрат на его реализацию, так как осуществление предлагаемого способа не требует стационарного дорогостоящего оборудования, специально обученного персонала и специально оборудованного помещения.
Данный технический результат обусловлен тем, что для создания индуцированных повреждений ДНК индивидуальных неделимых ядросодержащих клеток в качестве предлагаемого средства берут озон - кислородную смесь, для этого обрабатывают слайд, один из слоев которого содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, фосфатно-солевым буфером с pH 7,4-7,5, через который предварительно пропускают озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500-1000 мкг/л в течение 5 мин, и при величине отношения более 10% делают заключение о создании индуцированных повреждений ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Предлагаемый способ осуществляют следующим образом
Предварительно готовят слайды, состоящие из нескольких слоев агарозы, в частности из 2-х слоев, один из которых содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, затем создают повреждения ДНК клеток, находящихся в одном из слоев слайда, фосфатно-солевым буфером с pH 7,4-7,5, через который предварительно пропускают озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500-1000 мкг/л в течение 5 мин, в качестве образца индивидуальных неделимых ядросодержащих клеток может быть взят образец крови, после чего проводят разрушение (лизис) клеток при pH=10 с целью удаления мембран клеток и большинства белков, денатурацию (расплетение=раскручивание=выпрямление) ДНК, помещая слайды в щелочной раствор при pH>13, для формирования однонитевых участков в молекулах ДНК, соединенных с ядерным матриксом, которые участвуют в образовании хвоста «кометы», и проведение электрофореза поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток в щелочном растворе pH>13 при напряжении 27 В, силе тока 260-270 мА, напряженности поля 2,0 В/см, за счет подвижности в постоянном электрическом поле поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток, заключенных в агарозу, при этом поврежденные ДНК мигрируют к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий хвост «кометы», параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК, для визуализации поврежденных ДНК осуществляют их окрашивание флуоресцентным красителем, изображения окрашенных флуоресцентным красителем поврежденных ДНК («комет») регистрируют путем фотографирования с помощью фотоаппарата, соединенного с флуоресцентным микроскопом, главным образом, в центральной части слайдов, где «кометы» располагаются примерно в одной плоскости, и полученные изображения обрабатывают с помощью специализированного программного обеспечения, разработанного для регистрации и анализа отображений, реализующего алгоритмы расчета 4-х стандартных параметра «комет», при этом программное обеспечение позволяет определить как общее количество ДНК, так и количество поврежденных ДНК, и вычисляют величину отношения количества поврежденных ДНК и общему количеству ДНК в процентах и на основании полученной величины отношения более 10% делают заключение об индуцированных повреждениях ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Примеры конкретного использования предлагаемого способа
Пример 1.
Предварительно подготовили 2-слойный слайд путем нанесения на стекло первого слоя из раствора агарозы, после высушивания первого слоя на него нанесли из раствора агарозы второй слой, который содержал индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, для этого в 1% раствор легкоплавкой агарозы ввели кровь самца белых беспородных интактных крыс весом 180 г, возрастом 5-ти месяцев, разведенную в фосфатном буфере, далее осуществили создание повреждений ДНК клеток, находящихся во втором слое слайда, фосфатно-солевым буфером с pH 7,4, через который предварительно пропустили озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500 мкг/л в течение 5 мин, затем провели разрушение (лизис) клеток при pH=10 с целью удаления мембран клеток и большинства белков и денатурацию (расплетение=раскручивание=выпрямление) ДНК, помещая слайды в щелочной раствор при pH=13,2 для формирования однонитевых участков в молекулах ДНК, соединенных с ядерным матриксом, которые участвуют в образовании хвоста «кометы», после чего провели электрофорез поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток в щелочном растворе pH=13,2 при напряжении 27 В, силе тока 260 мА, напряженности поля 2,0 В/см, за счет подвижности в постоянном электрическом поле поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток, заключенных в агарозу, при этом поврежденные ДНК мигрируют к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий хвост «кометы», параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК, для визуализации поврежденных ДНК осуществили их окрашивание флуоресцентным красителем, полученные изображения окрашенных флуоресцентным красителем поврежденных ДНК («комет») зарегистрировали путем фотографирования с помощью фотоаппарата, соединенного с флуоресцентным микроскопом, главным образом, в центральной части слайдов, где «кометы» располагаются примерно в одной плоскости, и зарегистрированные изображения обработали с помощью специализированного программного обеспечения, разработанного для регистрации и анализа отображений (4), реализующего алгоритмы расчета 4-х стандартных параметров «комет», при этом программное обеспечение позволило определить как общее количество ДНК, так и количество поврежденных ДНК, и вычислить величину отношения количества поврежденных ДНК и общему количеству ДНК в процентах, которая составила 10,87%, и на основании полученной величины отношения сделали заключение о создании индуцированных повреждениях ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Пример 2.
Предварительно подготовили 2-слойный слайд путем нанесения на стекло первого слоя из раствора агарозы, после высушивания первого слоя на него наносили из раствора агарозы второй слой, который содержал индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, для этого в 1% раствор легкоплавкой агарозы ввели кровь самца белых беспородных интактных крыс весом 198 г, возрастом 5-ти месяцев, разведенную в фосфатном буфере, осуществили повреждение ДНК клеток, находящихся во втором слое слайда, фосфатно-солевым буфером с pH 7,5, через который предварительно пропустили озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 1000 мкг/л в течение 5 мин, затем провели разрушение (лизис) клеток при pH=10 с целью удаления мембран клеток и большинства белков и денатурацию (расплетение=раскручивание=выпрямление) ДНК, помещая слайды в щелочной раствор при pH=13,5 для формирования однонитевых участков в молекулах ДНК, соединенных с ядерным матриксом, которые участвуют в образовании хвоста «кометы», после чего провели электрофорез поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток в щелочном растворе pH=13,5 при напряжении 27 В, силе тока 270 мА, напряженности поля 2,0 В/см, за счет подвижности в постоянном электрическом поле поврежденных ДНК разрушенных (лизированных) клеток, заключенных в агарозу, при этом поврежденные ДНК мигрируют к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий хвост «кометы», параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК, для визуализации поврежденных ДНК осуществили их окрашивание флуоресцентным красителем, полученные изображения окрашенных флуоресцентным красителем поврежденных ДНК («комет») зарегистрировали путем фотографирования с помощью фотоаппарата, соединенного с флуоресцентным микроскопом, главным образом, в центральной части слайдов, где «кометы» располагаются примерно в одной плоскости, и зарегистрированные изображения обработали с помощью специализированного программного обеспечения, разработанного для регистрации и анализа отображений (3), реализующего алгоритмы расчета 4-х стандартных параметров «комет», при этом программное обеспечение позволило определить как общее количество ДНК, так и количество поврежденных ДНК, и вычислить величину отношения количества поврежденных ДНК и общему количеству ДНК в процентах, которая составила 11,00%, и на основании полученной величины отношения сделали заключение об индуцированных повреждениях ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
Как видно из полученных результатов, предлагаемый способ является эффективным и безопасным, не требующим значительных материальных затрат на оборудование, подготовку специалистов для работы на нем и подготовку специально оборудованного помещения.
Источники информации
1. Прототип. Сирота Н.П., Кузнецова Е.А. Применение метода «комета-тест» в радиобиологических исследованиях. Радиационная биология. Радиоэкология, 2010, т.50, №3, с.329.
2. Chemeris N.К., Gapeyev А.В., Sirota N.P. et al. DNA damage in frog erythrocytes after in vitro exposure to a high peak-power pulsed electromagnetic field. Mutat Res. 2004, V.558, №1, 2, p.27.
3. Степанов B.H. Методы и программные средства автоматизации анализа изображений медико-биологических микрообъектов. Автореферат диссертации кандидата технических наук. М., 2005, с.23.

Claims (1)

  1. Способ создания индуцированных повреждений ДНК индивидуальных неделимых ядросодержащих клеток, включающий подготовку слайдов, состоящих из нескольких слоев агарозы, один из которых содержит индивидуальные неделимые ядросодержащие клетки, повреждение ДНК клеток, разрушение (лизис) клеток при pH=10, денатурацию поврежденных ДНК в разрушенных клетках щелочным раствором при pH>13, проведение электрофореза ДНК клеток в щелочных растворах при pH>13, последующее окрашивание флуоресцентным красителем поврежденных ДНК, регистрацию интенсивности флуоресценции изображения ДНК «комет» и обработку полученного изображения ДНК с помощью программного обеспечения, позволяющую определить величину отношения интенсивности флуоресценции поврежденных ДНК к интенсивности флуоресценции общего количества ДНК в клетке в процентах, и по полученной величине отношения делают заключение, характеризующийся тем, что повреждение ДНК клеток осуществляют обработкой слайда фосфатно-солевым буфером с pH 7,4-7,5, через который предварительно пропускают озон - кислородную смесь при концентрации озона в смеси 500-1000 мкг/л в течение 5 мин, и при величине отношения более 10% делают заключение об индуцированных повреждениях ДНК в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках.
RU2013115081/15A 2013-04-05 2013-04-05 Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках RU2527345C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013115081/15A RU2527345C1 (ru) 2013-04-05 2013-04-05 Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013115081/15A RU2527345C1 (ru) 2013-04-05 2013-04-05 Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2527345C1 true RU2527345C1 (ru) 2014-08-27

Family

ID=51456466

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013115081/15A RU2527345C1 (ru) 2013-04-05 2013-04-05 Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2527345C1 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2617374C1 (ru) * 2016-04-28 2017-04-24 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина) Способ направленного акустического воздействия на функциональное состояние клеток-мишеней тканей представителей семейства кошачьих
RU2680220C1 (ru) * 2017-12-04 2019-02-18 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ фотодинамической терапии злокачественных новообразований в эксперименте
RU2799055C1 (ru) * 2022-07-05 2023-07-03 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран) Способ детектирования сшивок ДНК с использованием метода ДНК-комет

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2178699C1 (ru) * 2001-04-04 2002-01-27 Змызгова Анна Васильевна Способ лечения герпесовирусных инфекций, включающий озонотерапию
RU2223503C2 (ru) * 2001-01-17 2004-02-10 НИИ онкологии им. проф. Н.Н. Петрова Способ определения днк-повреждающей способности эстрогенов

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2223503C2 (ru) * 2001-01-17 2004-02-10 НИИ онкологии им. проф. Н.Н. Петрова Способ определения днк-повреждающей способности эстрогенов
RU2178699C1 (ru) * 2001-04-04 2002-01-27 Змызгова Анна Васильевна Способ лечения герпесовирусных инфекций, включающий озонотерапию

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
В.В.РОЩИНА, Озон и живая клетка, Учебное пособие, Пущино, 2009г., глава 2, онлайн [найдено 23.12.2013], найдено из Интернет http://window.edu.ru/resource/294/62294. RODRIGUEZ H et al, Mapping of copper/hydrogen peroxide-induced DNA damage at nucleotide resolution in human genomic DNA by ligation-mediated polymerase chain reaction. J Biol Chem. 1995 Jul 21;270(29):17633-40. онлайн [найдено 23.12.2013], найдено из Интернет http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7615572. ANDERSSON M. et al, Interindividual differences in initial DNA repair capacity when evaluating H2O2-induced DNA damage in extended-term cultures of human lymphocytes using the comet assay. Cell Biol Toxicol. 2007 Nov; N 23(6), с 401-11. Epub 2007 Apr 11, онлайн [найдено 23.12.2013], найдено из Интернет http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17429744. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2617374C1 (ru) * 2016-04-28 2017-04-24 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина) Способ направленного акустического воздействия на функциональное состояние клеток-мишеней тканей представителей семейства кошачьих
RU2680220C1 (ru) * 2017-12-04 2019-02-18 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ фотодинамической терапии злокачественных новообразований в эксперименте
RU2799055C1 (ru) * 2022-07-05 2023-07-03 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран) Способ детектирования сшивок ДНК с использованием метода ДНК-комет

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Garcia-Junco-Clemente et al. An inhibitory pull–push circuit in frontal cortex
Romanenko et al. The interaction between electromagnetic fields at megahertz, gigahertz and terahertz frequencies with cells, tissues and organisms: risks and potential
Cruz-Martín et al. A dedicated circuit links direction-selective retinal ganglion cells to the primary visual cortex
Zhu et al. Single-neuron identification of chemical constituents, physiological changes, and metabolism using mass spectrometry
Paine et al. Nucleocytoplasmic exchange of macromolecules
Chapman et al. A method for the rapid isolation of mitochondrial DNA from fishes
Olive et al. Detection of etoposide resistance by measuring DNA damage in individual Chinese hamster cells
Newmeyer et al. Assembly in vitro of nuclei active in nuclear protein transport: ATP is required for nucleoplasmin accumulation.
Singh Microgel electrophoresis of DNA from individual cells: principles and methodology
Heck et al. A new automated 3D detection of synaptic contacts reveals the formation of cortico-striatal synapses upon cocaine treatment in vivo
Iwabuchi et al. Examination of synaptic vesicle recycling using FM dyes during evoked, spontaneous, and miniature synaptic activities
RU2527345C1 (ru) Cпособ индуцированных повреждений днк в индивидуальных неделимых ядросодержащих клетках
Sadri et al. Static magnetic field effect on cell alignment, growth, and differentiation in human cord-derived mesenchymal stem cells
Gignac et al. Multiscale imaging of the rat brain using an integrated diceCT and histology workflow
Fujioka et al. Division of mitochondria in cultured human fibroblasts
Fiorelli et al. Enhanced tissue penetration of antibodies through pressurized immunohistochemistry
Tan et al. Skin‐ny deeping: Uncovering immune cell behavior and function through imaging techniques
ES2964636T3 (es) Electroporación específica y lisis de células eucariotas
CN111579769B (zh) 一种对组织样本进行免疫标记的方法
Chen et al. Charged microbeads are not transported across the human stratum corneum in vitro by short high-voltage pulses
Hoshino et al. Pinpoint Delivery of Molecules by Using Electron Beam Addressing Virtual Cathode Display
Rogers et al. Profiling of the secretome of human cancer cells: Preparation of supernatant for proteomic analysis
Greulich Photons bring light into DNA repair: the comet assay and laser microbeams for studying photogenotoxicity of drugs and ageing
Wright et al. Cytometric methods to analyze ionizing-radiation effects
US11863041B2 (en) Devices and methods for clearing and molecular labeling of intact tissues

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20150406

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20170714

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190406