RU2508547C2 - Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction - Google Patents
Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction Download PDFInfo
- Publication number
- RU2508547C2 RU2508547C2 RU2012108029/15A RU2012108029A RU2508547C2 RU 2508547 C2 RU2508547 C2 RU 2508547C2 RU 2012108029/15 A RU2012108029/15 A RU 2012108029/15A RU 2012108029 A RU2012108029 A RU 2012108029A RU 2508547 C2 RU2508547 C2 RU 2508547C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- necrosis virus
- salmon
- primers
- infectious
- pcr
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к области биотехнологии, молекулярно-генетической диагностики вирусных болезней животных, научных исследований в ветеринарии и молекулярной биологии.The present invention relates to the field of biotechnology, molecular genetic diagnosis of animal viral diseases, scientific research in veterinary medicine and molecular biology.
Инфекционный некроз поджелудочной железы (Infectious pancreatic necrosis virus, IPNV) - высококонтагиозная вирусная болезнь, поражающая молодь культивируемых лососевых и некоторых видов рыб других семейств, обитающих как в пресной, так и в морской воде. Вирус инфекционного некроза поджелудочной железы наносит существенный экономический ущерб рыбоводческим хозяйствам РФ.Infectious pancreatic necrosis (Infectious pancreatic necrosis virus, IPNV) is a highly contagious viral disease that affects juveniles of cultivated salmon and some fish species of other families living in fresh and in sea water. The pancreatic infectious necrosis virus causes significant economic damage to fish farms of the Russian Federation.
В комплексе мероприятий по оздоровлению хозяйств от вируса инфекционного некроза поджелудочной железы ведущее место принадлежит диагностике. Отсутствие коммерчески доступных диагностикумов на отечественном рынке вызвало необходимость создания тест - системы для идентификации IPNV методом полимеразной цепной реакции.In the complex of measures for the rehabilitation of farms from the virus of infectious pancreatic necrosis, the leading place belongs to diagnostics. The lack of commercially available diagnostic kits in the domestic market necessitated the creation of a test system for the identification of IPNV by polymerase chain reaction.
В настоящее время совершенствование методов диагностики IPNV крайне необходимо поскольку традиционные методы выделения вируса в культурах клеток не всегда позволяют идентифицировать вирус и занимают длительное время.Currently, the improvement of IPNV diagnostic methods is urgently needed because traditional methods of virus isolation in cell cultures do not always allow the virus to be identified and take a long time.
Принцип ПЦР заключается в многократном увеличении (амплификации) определенного участка ДНК выявляемого объекта путем его копирования с помощью фермента ДНК-полимеразы и специфических праймеров. Поскольку геном IPNV представлен двухцепочечной молекулой РНК в виде двух сегментов А и В, предварительно - перед постановкой ПЦР-РНК переводят в кДНК благодаря ферменту обратной транскриптазе. Специфические праймеры (прямой и обратный) ограничивают определенный фрагмент нуклеотидной последовательности таким образом, что элонгация новой цепи кДНК при обратной транскрипции и последующей амплификации в ПЦР происходит только между ними. Основными параметрами эффективного прохождения реакции амплификации, обеспечивающими специфичность и чувствительность, являются правильный выбор области генома идентифицируемого агента, структура и температурный режим отжига олигонуклеотидных праймеров.The principle of PCR is to multiply (amplify) a certain portion of the DNA of a detected object by copying it using the DNA polymerase enzyme and specific primers. Since the IPNV genome is represented by a double-stranded RNA molecule in the form of two segments A and B, preliminary - before staging, PCR-RNA is converted to cDNA due to the reverse transcriptase enzyme. Specific primers (forward and reverse) restrict a specific fragment of the nucleotide sequence so that the elongation of a new cDNA strand during reverse transcription and subsequent amplification in PCR occurs only between them. The main parameters for the efficient passage of the amplification reaction, which provide specificity and sensitivity, are the correct choice of the genome region of the identified agent, the structure and temperature regime of annealing of oligonucleotide primers.
Известны способы выявления фрагмента генома вируса инфекционного некроза поджелудочной железы лососевых методом ПЦР с использованием праймеров к сегменту А [1].Known methods for detecting a fragment of the genome of the virus of infectious pancreatic necrosis of salmon by PCR using primers to segment A [1].
Также описан способ выявления РНК вируса инфекционного некроза поджелудочной железы методом «гнездовой» ПЦР (nested-PCR) с праймерами к сегменту А, которые имеют следующую структуру:Also described is a method for detecting RNA of the virus of infectious pancreatic necrosis by the method of "nested" PCR (nested-PCR) with primers for segment A, which have the following structure:
1 5'-CCAAACCAACAGGTCCTATCCTAC-3' (внешний прямой)1 5'-CCAAACCAACAGGTCCTATCCTAC-3 '(external direct)
2 5'-TGATGCCGTTGTTCTCATCAGCTG-3' (внешний обратный)2 5'-TGATGCCGTTGTTCTCATCAGCTG-3 '(external reverse)
3 5'-GAAGGAGATGACATGTGCTACACC-3' (внутренний прямой праймер с биотинилированной меткой на 5'-конце)3 5'-GAAGGAGATGACATGTGCTACACC-3 '(internal direct primer with biotinylated label at the 5'-end)
4 5'-GAGAGATGTGTTTGCCACCATCTC-3' (внутренний обратный)4 5'-GAGAGATGTGTTTGCCACCATCTC-3 '(internal reverse)
Фрагмент, полученный в первом раунде ПЦР, служит матрицей во втором раунде ПЦР. Во втором раунде используется два меченых праймера: один имеет биотинилированную метку на 5'-конце, другой содержит радиоактивную метку 32P. Разделение ампликонов проходит с использованием магнитных частиц с последующей детекцией уровня радиоактивного излучения [2].The fragment obtained in the first round of PCR serves as a matrix in the second round of PCR. In the second round, two labeled primers are used: one has a biotinylated tag at the 5'-end, the other contains a 32 P.
Известные способы выявления фрагментов генома вируса инфекционного некроза поджелудочной железы не лишены недостатков: использование радиоактивной метки требует соблюдения специальных мер безопасности и лицензирования лаборатории, в способе, предложенном K. Williams et al., амплифицируется фрагмент гена VP2, характерный для всех бирнавирусов, что не исключает возможность ложноположительных результатов. Описанные в литературе праймеры подобраны к генам сегмента А. В то же время установлено, что изоляты IPNV, выделенные из разных географических мест, отличаются высоким генетическим разнообразием, главным образом, обусловленным вариабельностью генов, кодируемых именно сегментом А. В этой связи высока вероятность того, что праймеры к сегменту А могут не подойти к вновь изолированным вирусам с измененным генотипом. В первую очередь это касается изолятов из водоемов тех регионов, где исследование на присутствие IPNV ранее не проводилось.Known methods for detecting fragments of the pancreatic necrosis virus viral genome are not without drawbacks: the use of a radioactive label requires special safety measures and laboratory licensing; in the method proposed by K. Williams et al., A VP2 gene fragment characteristic of all birnaviruses is amplified, which does not exclude the possibility of false positive results. The primers described in the literature were selected for the genes of segment A. At the same time, it was found that IPNV isolates isolated from different geographical places are characterized by high genetic diversity, mainly due to the variability of the genes encoded by segment A. In this regard, it is highly likely that segment A primers may not be suitable for newly isolated viruses with a modified genotype. This primarily concerns isolates from bodies of water in regions where research on the presence of IPNV has not previously been conducted.
Для идентификации возбудителя методом ПЦР целесообразно использовать праймеры к наиболее консервативной области генома. В случае IPNV это может быть сегмент В, кодирующий ключевой фермент репликации вирусного генома РНК-зависимую РНК-полимеразу.To identify the pathogen by PCR, it is advisable to use primers for the most conservative region of the genome. In the case of IPNV, this may be segment B encoding a key enzyme for the replication of the viral genome of an RNA-dependent RNA polymerase.
В задачу исследований входило - разработка эффективного способа обнаружения фрагменов генома вируса инфекционного некроза поджелудочной железы лососевых методом гнездовой ПЦР с использованием 4 специфических олигонуклеотидных праймеров.The research task included the development of an effective method for detecting fragments of the genome of the virus of infectious pancreatic necrosis of the salmon by nested PCR using 4 specific oligonucleotide primers.
Первоочередной задачей было конструирование четырех специфических праймеров к IPNV, которые являются главным компонентом ПЦР и обеспечивают ее специфичность и чувствительность.The first priority was the design of four specific primers for IPNV, which are the main component of PCR and ensure its specificity and sensitivity.
Для выбора праймеров был использован сегмент В - в то время как в публикациях преимущественно описаны праймеры к сегменту А. При конструировании праймеров и оценке их специфичности использовали нуклеотидные последовательности и программу BLAST, доступные в Интернете на сайте NCBI Предложенный способ заключается в следующем: с помощью компьютерной программы DNASTAR (Lasergene Co., США) на основании программы, предоставленной в базах данных Интернет ресурсов GenBank(CLUA), по генотипам вируса инфекционного некроза поджелудочной железы выбирают рефернс - последовательность NC_001916 штамма Jasper. Праймеры проверяют на отсутствие гомологии с последовательностями других вирусов и генома человека программой BLAST с помощью веб-ресурса Национального центра биотехнологической информации (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/). На основании проведенного компьютерного анализа была подобрано 2 пары праймеров: внешние B37 и B853r и внутренние B123 и B320r.Segment B was used to select primers, while the publications mainly described primers for segment A. When designing primers and evaluating their specificity, we used nucleotide sequences and the BLAST program available on the Internet at the NCBI website. The proposed method is as follows: using computer DNASTAR programs (Lasergene Co., USA), based on the program provided in the GenBank Internet resource databases (CLUA), select references according to the genotypes of the pancreatic infectious necrosis virus edovatelnost NC_001916 strain Jasper. Primers are checked for lack of homology with sequences of other viruses and the human genome by the BLAST program using the web resource of the National Center for Biotechnological Information (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/). Based on the computer analysis, 2 pairs of primers were selected: external B37 and B853r and internal B123 and B320r.
Синтез разработанных олигонуклеотидных праймеров заказывается в коммерческом сервисном центре.The synthesis of the developed oligonucleotide primers is ordered at a commercial service center.
Четыре праймера к сегменту В были подобраны таким образом, что позволяют применить технику гнездовой и полугнездовой ПЦР, а также могут быть использованы для секвенирования.Four primers for segment B were selected in such a way that they allow the use of nested and semi-nested PCR techniques, and can also be used for sequencing.
Праймеры имеют следующую характеристику: комлементарность выбранной области гена сегмента В, отсутствие самокомлементарных участков внутри каждого праймера и между прямым и обратным, фланкируют область фрагментов гена В размером 860 пн и ≈240 пн, соответственно. Синтез разработанных олигонуклеотидных праймеров заказывается в коммерческом сервисном центре.Primers have the following characteristics: complementarity of the selected region of the gene of segment B, the absence of self-complementary regions within each primer and between the direct and reverse, flank the region of fragments of gene B of
Пример 1Example 1
Амплификация специфических фрагментов кДНК вируса инфекционного некроза поджелудочной железы лососевых с помощью разработанных праймеров для диагностики болезни.Amplification of specific fragments of salmon salmon pancreatic necrosis virus cDNA using developed primers to diagnose the disease.
В процессе проведения практических экспериментов подбирают оптимальные условия прохождения полимеразной цепной реакции с разработанными праймерами.In the process of conducting practical experiments, the optimal conditions for the passage of the polymerase chain reaction with the developed primers are selected.
Предварительно проводят реакцию обратной транскрипции с парой внешних праймеров. Реакция обратной транскрипции проходит при 42° в течение 45 минут, затем полученную кДНК прогревают при 95° в течение 3 минут и используют для постановки ПЦР. Состав реакционной смеси указан в таблице 1. В качестве положительного контроля на стадии обратной транскрипции и ПЦР используют эталонные штаммы IPN (предоставлен доктором E. Neuvonen, Ветеринарный институт, Хельсинки, Финляндия. Предварительно штамм был испытан методом ИФА), в качестве отрицательного - воду или среду для культур клеток (например, Игла MEM).The reverse transcription reaction is preliminarily carried out with a pair of external primers. The reverse transcription reaction takes place at 42 ° C for 45 minutes, then the resulting cDNA is heated at 95 ° C for 3 minutes and used for PCR. The composition of the reaction mixture is shown in Table 1. IPN reference strains (provided by Dr. E. Neuvonen, Veterinary Institute, Helsinki, Finland. The strain was previously tested by ELISA) as a positive control at the stage of reverse transcription and PCR, and water or cell culture medium (e.g., MEM Needle).
Полимеразную цепную реакцию проводят в объеме реакционной смеси 25 мкл на 1 пробу ДНК.The polymerase chain reaction is carried out in the volume of the reaction mixture of 25 μl per 1 DNA sample.
Состав реакционной смеси представлен в таблице 2. Температурно-временной режим проведения реакции для амплификатора «Терцик» («ДНК-технология», Россия) представлен в таблице 3. Условия амплификации и реакционной смеси для первого и второго раунда одинаковые.The composition of the reaction mixture is presented in table 2. The temperature-time mode of the reaction for the Tertsik amplifier (DNA technology, Russia) is presented in table 3. The amplification conditions and the reaction mixture are the same for the first and second rounds.
После проведения реакции амплификации продукты ПЦР анализируют методом электрофоретического разделения в 2% агарозном геле с добавлением бромистого этидия.After the amplification reaction, the PCR products are analyzed by electrophoretic separation in a 2% agarose gel with the addition of ethidium bromide.
В процессе ПЦР были получены продукты амплификации кДНК вируса инфекционного некроза поджелудочной железы размером около 860 пн в первом раунде ПЦР и 240 пн во втором раунде ПЦР, что подтверждалось во всех экспериментах. Электрофореграмма результатов ПЦР представлена на рис.1. При учете результатов ПЦР в первую очередь оценивали контрольные образцы. В электрофоретической дорожке с положительным контрольным образцом (K+) присутствовала светящаяся полоса на уровне соответствующем фрагменту длиной 860 или 240 пн (в первом и втором раунде, соответственно; оценивали по маркеру М).During PCR, amplification products of cDNA of the pancreatic necrosis virus of about 860 bp in the first round of PCR and 240 bp in the second round of PCR were obtained, which was confirmed in all experiments. The electrophoregram of the PCR results is shown in Fig. 1. When taking PCR results into account, control samples were primarily evaluated. In the electrophoretic track with a positive control sample (K +), a luminous band was present at the level of the corresponding fragment of 860 or 240 bp in length (in the first and second round, respectively; evaluated by marker M).
Опытные пробы оценивали по наличию в соответствующей дорожке специфической полосы, которая в положительных образцах располагалась на том же уровне, что и полоса в положительной контрольной пробе. В отрицательных пробах полоса отсутствовала (рис.2).Experimental samples were evaluated by the presence in the corresponding lane of a specific band, which in positive samples was located at the same level as the band in the positive control sample. The band was absent in negative samples (Fig. 2).
Пример 2Example 2
Определение чувствительности реакции амплификации с использованием разработанных специфических олигонуклеотидных праймеров.Determination of the sensitivity of the amplification reaction using developed specific oligonucleotide primers.
Анализировали десятикратные разведения инфицированной IPNV суспензии клеток с исходным титром 7,5 lg ТЦД50/мл. (107,5 ТЦД50/мл).Tenfold dilutions of an IPNV-infected cell suspension with an initial titer of 7.5 lg TCD 50 / ml were analyzed. (10 7.5 TCD 50 / ml).
При проведении «гнездовой» ПЦР последним разведением, в котором обнаруживалась специфическая полоса, было разведение 10-7, что соответствует 0,5 lg ТЦД50/мл или ~3 ТЦД50/мл. Электрофореграмма результатов ПЦР представлена на Рисунке 2.When conducting "nested" PCR, the last dilution in which a specific band was detected was a 10 -7 dilution, which corresponds to 0.5 lg TCD 50 / ml or ~ 3 TCD 50 / ml. The electrophoregram of the PCR results is shown in Figure 2.
Пример 3Example 3
Определение специфичности реакции амплификации с использованием разработанных специфических олигонуклеотидных праймеров.Determination of the specificity of the amplification reaction using the developed specific oligonucleotide primers.
Специфичность праймеров проверяли на образцах вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани, вируса инфекционного некроза поджелудочной железы и вируса геморрагической септицемии лососевых. Специфическая полоса была выявлена только в случае наличия в пробе вируса инфекционного некроза поджелудочной железы.The specificity of the primers was tested on samples of hematopoietic tissue infectious necrosis virus, pancreatic infectious necrosis virus and salmon hemorrhagic septicemia virus. A specific band was detected only if there was an infectious pancreatic necrosis in the virus sample.
Предложенный вариант апробирован с положительным результатом и регулярной воспроизводимостью в 2010-2011 годах на 500 пробах, полученных из гомогената внутренних органов рыб, поступивших из хозяйств Московской, Рязанской областей и республики Карелия, а также инфицированных клеточных культур.The proposed option was tested with a positive result and regular reproducibility in 2010-2011 on 500 samples obtained from a homogenate of the internal organs of fish from farms of the Moscow, Ryazan regions and the Republic of Karelia, as well as infected cell cultures.
Предлагаемое изобретение найдет применение в диагностических исследованиях в научно- исследовательских институтах, ветеринарных лабораториях, рыбоводческих хозяйствах.The present invention will find application in diagnostic studies in research institutes, veterinary laboratories, fish farms.
ЛитератураLiterature
1. Wiliams K., Blake S., Sweeney A., Singer J.T., Nicholson B.L. // Multiplex Reverse transcriptase PCR assay for simultaneous detection of three fish viruses // J of clinical microbiology. - 1999. - V.37 (№12). - Р.4139-4141.1. Wiliams K., Blake S., Sweeney A., Singer J.T., Nicholson B.L. // Multiplex Reverse transcriptase PCR assay for simultaneous detection of three fish viruses // J of clinical microbiology. - 1999. - V.37 (No. 12). - R. 4139-4141.
2. Rimstad E., Homes E., Olsvik O., Hyllseth B. // Identification of a double-stranded RNA virus by using polymerase chain reaction and magnetic separation of the synthesized DNA segments // J of clinical microbiology - 1990 -. V.28 (№10). - Р.2275-2278.2. Rimstad E., Homes E., Olsvik O., Hyllseth B. // Identification of a double-stranded RNA virus by using polymerase chain reaction and magnetic separation of the synthesized DNA segments // J of clinical microbiology - 1990 -. V.28 (No. 10). - R. 2275-2278.
Сущность изобретения поясняется таблицами и рисунками, в которых отображается следующая информация:The invention is illustrated by tables and figures, which display the following information:
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012108029/15A RU2508547C2 (en) | 2012-03-05 | 2012-03-05 | Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012108029/15A RU2508547C2 (en) | 2012-03-05 | 2012-03-05 | Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2012108029A RU2012108029A (en) | 2013-09-10 |
RU2508547C2 true RU2508547C2 (en) | 2014-02-27 |
Family
ID=49164594
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012108029/15A RU2508547C2 (en) | 2012-03-05 | 2012-03-05 | Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2508547C2 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20090181363A1 (en) * | 2005-12-21 | 2009-07-16 | Dhar Arun K | Non-invasive detection of fish viruses by real-time pcr |
-
2012
- 2012-03-05 RU RU2012108029/15A patent/RU2508547C2/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20090181363A1 (en) * | 2005-12-21 | 2009-07-16 | Dhar Arun K | Non-invasive detection of fish viruses by real-time pcr |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
RIMSTAD E. et al. Identification of a double-stranded RNA virus by using polymerase chain reaction and magnetic separation of the synthesized DNA segments. J Clin Microbiol. 1990 Oct: 28(10):2275-2278 [Найдено 18.07.2013] [он-лайн], Найдено из Интернет: <URL:http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC268161/pdf/jcm00058-0127.pdf>. СНRTEST IPNV CARD. One Step IPNV Card lest /Prueba de un solo paso para virus IPNV en cassette. CerTest BIOTEC S.L. 2009 Mar [Найдено 18.07.2013] [он-лайн]. Найдено из Интернет: <URL: http://www.certest.es/instruccionesvet/IPNV/IUV-IP8%20rev%2000%20folleto.pdf>. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ по идентификации вирусов и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Министерство сельского хозяйства и продовольствия Российской Федерации (Минсельхозпрод России). Приказ №13-4-2/1054 от 10.10.97 г. [Найдено 18.07.2013] [он-лайн]. Найдено из Интернет: <URL:http://bmvl.bryansktel.ru/vetzak/document/203.html>. * |
RIMSTAD E. et al. Identification of a double-stranded RNA virus by using polymerase chain reaction and magnetic separation of the synthesized DNA segments. J Clin Microbiol. 1990 Oct: 28(10):2275-2278 [Найдено 18.07.2013] [он-лайн], Найдено из Интернет:<URL:http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC268161/pdf/jcm00058-0127.pdf>. * |
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ по идентификации вирусов и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Министерство сельского хозяйства и продовольствия Российской Федерации (Минсельхозпрод России). Приказ 13-4-2/1054 от 10.10.97 г. [Найдено 18.07.2013] [он-лайн]. Найдено из Интернет: <URL:http://bmvl.bryansktel.ru/vetzak/document/203.html>. * |
СНRTEST IPNV CARD. One Step IPNV Card lest /Prueba de un solo paso para virus IPNV en cassette. CerTest BIOTEC S.L. 2009 Mar [Найдено 18.07.2013] [он-лайн]. Найдено из Интернет: <URL: http://www.certest.es/instruccionesvet/IPNV/IUV-IP8%20rev%2000%20folleto.pdf>. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2012108029A (en) | 2013-09-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN106947838B (en) | African swine fever virus non-structural gene real-time fluorescence LAMP (loop-mediated isothermal amplification) detection primer group, kit and detection method | |
Belák | Molecular diagnosis of viral diseases, present trends and future aspects: A view from the OIE Collaborating Centre for the Application of Polymerase Chain Reaction Methods for Diagnosis of Viral Diseases in Veterinary Medicine | |
CN108796131B (en) | Double-fluorescence RT-LAMP detection group for visually identifying foot-and-mouth disease viruses and bluetongue viruses, kit and application thereof | |
Elhaig et al. | Prevalence and molecular characterization of peste des petits ruminants virus from Ismailia and Suez, Northeastern Egypt, 2014–2016 | |
CN107988325A (en) | Shrimp liver sausage born of the same parents worm(EHP)RAA constant temperature fluorescence detection method and reagent | |
CN110699489B (en) | Real-time fluorescence PCR detection primer probe set, kit and method for African swine fever virus CD2V gene | |
JP2022547023A (en) | Systems, methods, and compositions for rapid early detection of host RNA biomarkers of infection and early identification of COVID-19 coronavirus infection in humans. | |
Karakuş et al. | Evaluation of conjunctival swab sampling in the diagnosis of canine leishmaniasis: A two-year follow-up study in Çukurova Plain, Turkey | |
CN105950759A (en) | Kit for simultaneously detecting four pathogenic bacteria and non-diagnostic detection method thereof | |
Zhang et al. | An isothermal molecular point of care testing for African swine fever virus using recombinase-aided amplification and lateral flow assay without the need to extract nucleic acids in blood | |
Xin et al. | Rapid detection and differentiating of the predominant Salmonella serovars in chicken farm by TaqMan multiplex real-time PCR assay | |
Seerintra et al. | Molecular identification and characterization of Lumpy skin disease virus emergence from cattle in the northeastern part of Thailand | |
RU2615465C2 (en) | Diagnostic system for detection of cattle leukemia and immune deficiency provirus dna by multiplex polymerase chain reaction | |
RU2508547C2 (en) | Diagnostic technique for pactreatic infectious necrosis virus in salmon by polymerase chain reaction | |
CN108588274A (en) | Prawn steals dead nodavirus(CMNV)RAA constant temperature fluorescence detection method and reagent | |
CN110257560B (en) | Reagent for bluetongue virus type 8 detection, detection method and application | |
Gnezdilova et al. | DIAGNOSIS AND PREVENTION OF INFECTIOUS ANIMAL DISEASES BASED ON MONITORING, MOLECULAR DIAGNOSTICS, AND GENOMICS. | |
US11739388B2 (en) | Phage-based detection of borreliosis and means therefor | |
RU2644233C2 (en) | Method for leukosis diagnosis in cattle | |
CN110592270A (en) | RAA constant-temperature fluorescence detection method and reagent for Koi Herpesvirus (KHV) | |
RU2756924C2 (en) | Method for early pcr diagnostics of the aleutian mink disease virus carnivore amdoparvovirus | |
Prasad et al. | Biotechnological tools for diagnosis of equine infectious diseases | |
RU2799410C1 (en) | Synthetic oligonucleotide primers and a method of highly sensitive detection of african swine fever virus dna by loop isothermal amplification in the presence of internal control sample dna | |
EP1612283B1 (en) | Genotype specific detection of chlamydophila psittaci | |
RU2738358C1 (en) | Set of oligonucleotide primers and fluorescent-labelled probes and method for detecting dna of agents of glanders and melioidosis by pcr method with product detection in real time |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PD4A | Correction of name of patent owner |