RU2487735C1 - Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity - Google Patents
Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity Download PDFInfo
- Publication number
- RU2487735C1 RU2487735C1 RU2012112772/14A RU2012112772A RU2487735C1 RU 2487735 C1 RU2487735 C1 RU 2487735C1 RU 2012112772/14 A RU2012112772/14 A RU 2012112772/14A RU 2012112772 A RU2012112772 A RU 2012112772A RU 2487735 C1 RU2487735 C1 RU 2487735C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- joint
- solutions
- mixture
- fusion
- glucose
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области экспериментальной медицины и может быть использовано для изучения репаративных процессов, протекающих в тканях поврежденного сустава.The invention relates to the field of experimental medicine and can be used to study reparative processes occurring in the tissues of a damaged joint.
Известен способ моделирования процесса репаративной регенерации тканей при повреждениях тазобедренного сустава, предусматривающий нарушение его целостности с последующей репозицией и фиксацией суставных компонентов с помощью аппарата внешней фиксации (Силантьева Т.А. Репаративное костеобразование при заживлении перелома тазовой кости в области суставной (вертлужной) впадины (экспериментально-морфологическое исследование): автореф. дис… канд. биол. наук. РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А.Илизарова. Саранск, 2005. 26 с.).A known method of modeling the process of reparative tissue regeneration in case of damage to the hip joint, providing for the violation of its integrity with subsequent reposition and fixation of the joint components using an external fixation device (Silantyeva T.A., Reparative bone formation during healing of a fracture of the pelvic bone in the joint (acetabulum) cavity (experimentally -morphological research): abstract of thesis ... Candidate of Biological Sciences. RRC "WTO" named after academician G.A. Ilizarov. Saransk, 2005. 26 p.).
Однако известный способ не предусматривает направленной регуляции реперативных процессов в тканях поврежденного сустава.However, the known method does not provide directional regulation of reparative processes in the tissues of the damaged joint.
Известен способ лечения патологии суставов у животных, предусматривающий иммобилизацию сустава с восстановлением анатомически правильных взаимоотношений его компонентов с помощью аппарата внешней фиксации и введение в суставную полость лекарственных препаратов (Патент РФ №2404726, опубл. 27.11.2010).A known method of treating joint pathology in animals, involving the immobilization of the joint with the restoration of the anatomically correct relationships of its components using an external fixation device and the introduction of drugs into the joint cavity (RF Patent No. 2404726, published on November 27, 2010).
Однако данный способ также не предусматривает направленной регуляции репаративных процессов в тканях поврежденного сустава.However, this method also does not provide for the directed regulation of reparative processes in the tissues of the damaged joint.
Известен способ лечения повреждений сустава, предусматривающий его стабилизацию с помощью аппарата внешней фиксации и введение в полость сустава смеси растворов глюкозы, аскорбиновой кислоты и аутологичной плазмы крови, которые являются дифференцировочными и питательными средами для клеток соединительной и опорных тканей в зоне регенерации (Силантьева Т.А., Краснов В.В., Кирсанова А.Ю. Экспериментальная апробация методики оптимизации репаративного процесса при лечении внутрисуставного перелома / Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2011. №4. Ч.1. С.278-283).A known method of treating joint damage, providing for its stabilization using an external fixation apparatus and introducing into the joint cavity a mixture of glucose, ascorbic acid and autologous blood plasma solutions, which are differentiating and nutrient media for connective and supporting tissue cells in the regeneration zone (T. Silantyeva ., Krasnov VV, Kirsanova A.Yu. Experimental approbation of the methodology for optimizing the reparative process in the treatment of intraarticular fracture / Bulletin of the All-Russian Scientific Center for Surgery of the Russian Academy of Medical Sciences. 2011. No. 4. Part 1. P.278-28 3).
Однако в известном способе введение указанной смеси в суставную полость производилось для активизации репаративного остеогенеза в зоне регенерации и не преследовало своей целью воздействия на другие ткани поврежденного сустава.However, in the known method, the introduction of this mixture into the joint cavity was carried out to activate reparative osteogenesis in the regeneration zone and did not pursue the goal of affecting other tissues of the damaged joint.
Задачей изобретения является разработка способа, обеспечивающего изучение особенностей репаративной регенерации тканей при внутрисуставных повреждениях, в условиях стимуляции репаративного процесса веществами, являющимися дифференцировочными и питательными средами для клеток соединительной и опорных тканей.The objective of the invention is to develop a method for studying the features of reparative tissue regeneration during intraarticular injuries, under conditions of stimulation of the reparative process by substances that are differentiating and nutrient media for cells of connective and supporting tissues.
Указанная задача решается тем, что в способе моделирования процесса репаративной регенерации тканей при внутрисуставных повреждениях, включающем восстановление анатомических взаимоотношений в суставе, его стабилизацию с помощью аппарата внешней фиксации, а также введение круглосуточно, капельно в полость сустава раствора или смеси растворов, являющихся дифференцировочными и питательными средами для клеток соединительной и опорных тканей в зоне регенерации, для дифференцировки в остеобластическом направлении и формирования преимущественно костного сращения вводят смесь официнальных растворов глюкозы, аскорбиновой кислоты и аутологичной плазмой крови, взятых в соотношении 1:2:7, в фибробластическом направлении и формирования преимущественно соединительнотканного сращения - смесь растворов глюкозы и аскорбиновой кислоты, взятых в соотношении 1:1; а в хондробластическом направлении и формирования преимущественно хрящевого сращения - изотонический раствор хлорида натрия.This problem is solved by the fact that in the method of modeling the process of reparative tissue regeneration during intraarticular injuries, including the restoration of anatomical relationships in the joint, its stabilization using an external fixation apparatus, as well as the introduction of a solution or mixture of solutions that are differentiating and nourishing around the clock, drip into the joint cavity media for cells of connective and supporting tissues in the regeneration zone, for differentiation in the osteoblastic direction and the formation of predominant A mixture of official solutions of glucose, ascorbic acid and autologous blood plasma, taken in the ratio 1: 2: 7, in the fibroblastic direction and the formation of predominantly connective tissue fusion, a mixture of glucose and ascorbic acid solutions, taken in the ratio 1: 1, is injected substantially in bone fusion; and in the chondroblastic direction and the formation of predominantly cartilaginous fusion — an isotonic sodium chloride solution.
Выполнение способа поясняется описанием, примерами практического использования и иллюстративным материалом, на котором изображено:The implementation of the method is illustrated by the description, examples of practical use and illustrative material, which shows:
фиг.1 - микрофото зоны сращения отломков вертлужной впадины: костная ткань, прилежащая к раневой поверхности отломка при внутрисуставном введении смеси аскорбиновой кислоты, глюкозы, аутоплазмы крови. Срок эксперимента - 14 суток после операции. Парафиновый срез. Окраска гематоксилином и эозином. Об. 10, ок. 10;figure 1 is a microphoto of the fusion zone of fragments of the acetabulum: bone tissue adjacent to the wound surface of the fragment with intraarticular injection of a mixture of ascorbic acid, glucose, blood autoplasma. The duration of the experiment is 14 days after surgery. Paraffin slice. Hematoxylin and eosin stain. About. 10, approx. 10;
фиг.2 - микрофото зоны сращения отломков вертлужной впадины: соединительная ткань, прилежащая к раневой поверхности отломка при внутрисуставном введении смеси аскорбиновой кислоты и глюкозы. Срок эксперимента - 14 суток после операции. Парафиновый срез. Окраска гематоксилином и эозином. Об. 40, ок. 10;figure 2 is a microphoto of the fusion zone of the fragments of the acetabulum: connective tissue adjacent to the wound surface of the fragment with intraarticular injection of a mixture of ascorbic acid and glucose. The duration of the experiment is 14 days after surgery. Paraffin slice. Hematoxylin and eosin stain. About. 40, approx. 10;
фиг.3 - микрофото зоны сращения отломков вертлужной впадины: хрящевая ткань, прилежащая к раневой поверхности отломка при внутрисуставном введении физиологического раствора. Срок эксперимента - 14 суток после операции. Парафиновый срез. Окраска Шифф-йодной кислотой. Об. 40, ок. 10.figure 3 is a microphoto of the fusion zone of the fragments of the acetabulum: cartilage tissue adjacent to the wound surface of the fragment with intra-articular injection of saline. The duration of the experiment is 14 days after surgery. Paraffin slice. Stained with Schiff-iodic acid. About. 40, approx. 10.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
В условиях операционной после анестезии и обработки операционного поля осуществляют воспроизведение модели перелома вертлужной впадины, после чего проводят остеосинтез пораженного сустава аппаратом внешней фиксации. При его выполнении известными приемами фиксирующие элементы - спицы и/или стержни-шурупы, на нескольких уровнях чрескостно проводят (или консольно вводят) в прилежащие к пораженному суставу участки смежных костных сегментов. Свободные концы фиксаторов крепят на устанавливаемых на соответствующем уровне опорах аппарата, которые с помощью резьбовых стержней и шарнирных узлов соединяют между собой с возможностью дозированного разноплоскостного перемещения и разворота. При необходимости смещением опор аппарата и, соответственно, фиксируемых сегментов конечностей или их фрагментов восстанавливают анатомически правильные взаимоотношения компонентов сустава. Одновременно в суставную полость вводят катетер.In the operating room, after anesthesia and treatment of the surgical field, the model of acetabular fracture is reproduced, after which osteosynthesis of the affected joint is performed using an external fixation device. When it is carried out by known methods, the fixing elements - knitting needles and / or screw rods, at several levels transdermally (or cantileverly enter) into adjacent adjacent bone segments adjacent to the affected joint. The free ends of the clamps are mounted on the supports of the apparatus that are installed at the appropriate level, which are connected with each other with the help of threaded rods and hinged nodes with the possibility of dosed multi-plane movement and rotation. If necessary, by displacing the supports of the apparatus and, accordingly, the fixed segments of the limbs or their fragments, the anatomically correct relationships of the components of the joint are restored. At the same time, a catheter is inserted into the articular cavity.
В послеоперационном периоде, начиная со вторых суток, через установленный катетер в полость сустава осуществляют круглосуточное капельное введение раствора или смеси растворов, являющихся дифференцировочными и питательными средами для клеток соединительной и опорных тканей в зоне регенерации. При этом, исходя из целей эксперимента, для дифференцировки клеток в остеобластическом направлении вводят приготовленную ex temporae смесь 40% официнального раствора глюкозы, 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты и аутологичной плазмы крови, взятых в объемном соотношении 1:2:7; в фибробластическом направлении - приготовленную ех temporae смесь 5% официнального раствора глюкозы и 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты, взятых в соотношении 1:1; а в хондробластическом направлении - 0,9% официнальный раствор хлорида натрия.In the postoperative period, starting from the second day, through the installed catheter into the joint cavity, round-the-clock drip injection of a solution or mixture of solutions, which are differentiation and nutrient media for cells of connective and supporting tissues in the regeneration zone, is performed. Moreover, based on the objectives of the experiment, a mixture of 40% of the official solution of glucose, 5% of the official solution of ascorbic acid and autologous blood plasma, taken in a volume ratio of 1: 2: 7, is introduced to differentiate cells in the osteoblastic direction; in the fibroblastic direction - a mixture of 5% of the official solution of glucose and 5% of the official solution of ascorbic acid, taken in a 1: 1 ratio, prepared by ex temporae; and in the chondroblastic direction - 0.9% official solution of sodium chloride.
Указанные растворы вводят в течение 3-5 суток, после чего катетер в стерильных условиях извлекают. В дальнейшем в течение необходимого периода осуществляют стабильную фиксацию сустава, после чего его демонтируют. Животное выводят из опыта, полученный материал обрабатывают и анализируют.These solutions are administered within 3-5 days, after which the catheter is removed under sterile conditions. Subsequently, for the necessary period, the joint is stably fixed, after which it is dismantled. The animal is derived from experience, the resulting material is processed and analyzed.
Практическое использование способа иллюстрируют следующие наблюдения.The practical use of the method is illustrated by the following observations.
Пример 1.Example 1
Собака, кобель, возраст 3 года. После воспроизведения модели центрального поперечного перелома вертлужной впадины производили остеосинтез спице-стержневым аппаратом внешней фиксации. Перемещением опор аппарата восстановили анатомически правильные взаимоотношения компонентов тазобедренного сустава и в суставную щель чрескожно ввели мягкий катетер. Для пролонгированного управляемого введения дозированных объемов раствора в полость сустава использовали автоматизированный дозатор лекарственных веществ, который закрепляли на опоре аппарата внешней фиксации.Dog, male, age 3 years. After reproducing the model of the central transverse fracture of the acetabulum, osteosynthesis was performed using a spoke-rod apparatus of external fixation. By moving the apparatus supports, the anatomically correct relationships between the components of the hip joint were restored and a soft catheter was percutaneously inserted into the joint space. For a prolonged controlled introduction of dosed volumes of solution into the joint cavity, an automated drug dispenser was used, which was fixed on the support of the external fixation apparatus.
В послеоперационном периоде животному со 2-х по 5-е сутки для моделирования репаративного процесса с преобладанием остеогенеза осуществляли капельное введение приготовленной ex temporae смеси 40% официнального раствора глюкозы, 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты и аутологичной плазмы крови, взятых в объемном соотношении 1:2:7.In the postoperative period, an animal from the 2nd to the 5th day to simulate the reparative process with a predominance of osteogenesis was administered dropwise a mixture of 40% of the official glucose solution, 5% of the official ascorbic acid solution and autologous blood plasma, taken in a volume ratio of 1: 2: 7.
Через 14 суток после травмы животное вывели из опыта. Проведенное гистологическое исследование зоны повреждения выявляло полное костное сращение отломков, образованное мелкопетлистым губчатым костным веществом (фиг.1). Клеточные элементы в ее составе имели, в зависимости от локализации, фенотип остеобластов либо остеоцитов - базофильную, более или менее развитую отростчатую цитоплазму и эухроматиновое, эксцентрично расположенное ядро с двумя либо одним крупным ядрышком. Рыхлая волокнистая соединительная ткань узких межтрабекулярных пространств отличалась высокой клеточной и сосудистой плотностью. Гемокапилляры, врастающие из губчатой кости отломков, были окружены малодифференцированными фибробластоподобными клетками с крупным, светлым ядром и узкой базофильной цитоплазмой. Вблизи капилляров располагались центры интрамембранозного окостенения.14 days after the injury, the animal was withdrawn from the experiment. A histological examination of the lesion zone revealed complete bone fusion of fragments formed by a finely looped spongy bone substance (Fig. 1). The cellular elements in its composition had, depending on the localization, the phenotype of osteoblasts or osteocytes - a basophilic, more or less developed process cytoplasm and an euchromatin, eccentrically located nucleus with two or one large nucleolus. The loose fibrous connective tissue of narrow intertrabular spaces was characterized by high cellular and vascular density. Hemocapillaries growing from the cancellous bone of the fragments were surrounded by poorly differentiated fibroblast-like cells with a large, bright nucleus and a narrow basophilic cytoplasm. Near the capillaries, centers of intramembranous ossification were located.
Соотношение площадей костной ткани трабекул и соединительной ткани межтрабекулярных промежутков в составе губчатого костного вещества зоны сращения отломков составляло 60% и 40% соответственно. Численность костных и фибробластоподобных клеток находилась в соотношении 52% и 48%.The ratio of the areas of the bone tissue of the trabeculae and the connective tissue of the intertrabular spaces in the composition of the spongy bone substance of the fusion zone of the fragments was 60% and 40%, respectively. The number of bone and fibroblast-like cells was in the ratio of 52% and 48%.
Изложенное позволило констатировать, что введение в полость сустава смеси 40% официнального раствора глюкозы, 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты и аутологичной плазмы крови, взятых в объемном соотношении 1:2:7, обеспечивает дифференцировку клеток преимущественно в остеобластическом направлении, что обеспечивает формирование первичного костного сращения отломков и позволяет рассматривать его в качестве средства, стимулирующего репаративный остеогенез.The foregoing made it possible to conclude that the introduction into the joint cavity of a mixture of 40% of the official glucose solution, 5% of the official solution of ascorbic acid and autologous blood plasma taken in a volume ratio of 1: 2: 7 ensures the differentiation of cells mainly in the osteoblastic direction, which ensures the formation of primary bone fusion of fragments and allows us to consider it as a means of stimulating reparative osteogenesis.
Пример 2.Example 2
Собака, кобель, возраст 2 года. Моделирование центрального поперечного перелома вертлужной впадины, остеосинтез спице-стержневым аппаратом внешней фиксации, установка катетера для внутрисуставного введения растворов.Dog, male, age 2 years. Modeling of the central transverse fracture of the acetabulum, osteosynthesis with an external fixation-spoke apparatus, installation of a catheter for intraarticular injection of solutions.
В послеоперационном периоде животному со 2-х по 5-е сутки для моделирования репаративного процесса с преобладанием фибробластогенеза осуществляли интраартикулярное капельное введение приготовленной ex temporae смеси равных объемов 5% официнального раствора глюкозы и 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты.In the postoperative period, an animal from 2 to 5 days to simulate the reparative process with a predominance of fibroblastogenesis was administered intraarticular dropwise administration of a mixture of equal volumes of 5% officinal glucose solution and 5% officinal ascorbic acid solution prepared ex temporae.
Через 14 суток после операции сращение отломков вертлужной впадины формировала рыхлая соединительная ткань (фиг.2). Клеточный компонент соединительной ткани зоны сращения был представлен преимущественно фибробластоподобными клетками вытянутой формы с развитой базофильной цитоплазмой, крупным эухроматиновым ядром с 1-2 ядрышками. Кровоснабжение зоны сращения осуществляли узкие полнокровные микрососуды капиллярного типа. Очаги костеобразования не были выявлены ни на поверхности травмированных костных трабекул, ни в толще соединительной ткани.14 days after the operation, fusion of the fragments of the acetabulum formed a loose connective tissue (figure 2). The cellular component of the connective tissue of the fusion zone was predominantly fibroblast-like cells of an elongated shape with developed basophilic cytoplasm, a large euchromatin nucleus with 1-2 nucleoli. Blood supply to the fusion zone was carried out by narrow, full-blooded microvasculature of capillary type. Foci of bone formation were not detected either on the surface of the injured bone trabeculae or in the thickness of the connective tissue.
Соединительная ткань занимала 100% площади зоны сращения отломков, соответственно доля фибробластоподобных клеток (по отношению к костным и хрящевым) также составляла 100%.Connective tissue occupied 100% of the area of the area of adhesion of fragments, respectively, the proportion of fibroblast-like cells (with respect to bone and cartilage) was also 100%.
Изложенное позволило констатировать, что введение в полость сустава смеси равных объемов 5% официнального раствора глюкозы и 5% официнального раствора аскорбиновой кислоты обеспечивает дифференцировку клеток преимущественно в фибробластическом направлении и способствует формированию соединительнотканного сращения отломков кости, что позволяет рассматривать его в качестве средства стимулирующего репаративный фиброгенез.The foregoing made it possible to state that the introduction of a mixture of equal volumes of 5% of the official glucose solution and 5% of the official ascorbic acid solution into the joint cavity ensures the differentiation of cells mainly in the fibroblast direction and promotes the formation of connective tissue fusion of bone fragments, which allows it to be considered as a means of stimulating reparative fibrogenesis.
Пример 3.Example 3
Собака, кобель, возраст 2 года. Моделирование перелома вертлужной впадины, остеосинтез костей таза и внутрисуставное введение растворов производили аналогично примеру 1.Dog, male, age 2 years. Simulation of an acetabular fracture, osteosynthesis of the pelvic bones and intra-articular injection of solutions was carried out analogously to example 1.
В послеоперационном периоде животному со 2-х по 5-е сутки для моделирования репаративного процесса с преобладанием хондрогенеза осуществляли интраартикулярное капельное введение 0,9% официнального раствора хлорида натрия.In the postoperative period, an animal from 2 to 5 days to simulate the reparative process with the predominance of chondrogenesis was administered intraarticular dropwise administration of 0.9% of the official solution of sodium chloride.
Через 14 суток после выполнения оперативного вмешательства на гистологических препаратах определялось сращение отломков вертлужной впадины с преобладанием хрящевой ткани. Остеогенез наблюдался локально на поверхности поврежденных костных трабекул отломков (фиг.3).14 days after the surgical intervention was performed on histological preparations, the fusion of acetabulum fragments with a predominance of cartilage tissue was determined. Osteogenesis was observed locally on the surface of the damaged bone trabeculae of fragments (figure 3).
Доля тканевых компонентов в зоне сращения отломков вертлужной впадины составляла 10% - для костной, 56% - для хрящевой и 34% - для соединительной ткани. Соотношение долей костных, хрящевых и фибробластоподобных клеток в зоне сращения составляло 8%, 47% и 45% соответственно. Кровоснабжение зоны сращения осуществляли немногочисленные полнокровные микрососуды капиллярного типа, расположенные в тяжах соединительной ткани, разделяющих поля новообразованного хряща.The proportion of tissue components in the fusion zone of acetabular fragments was 10% for bone, 56% for cartilage and 34% for connective tissue. The ratio of the shares of bone, cartilage, and fibroblast-like cells in the fusion zone was 8%, 47%, and 45%, respectively. Blood supply to the fusion zone was carried out by a few full-blooded microvessels of the capillary type located in strands of connective tissue that separate the fields of the newly formed cartilage.
Изложенное позволило констатировать, что введение в полость сустава 0,9% официнального раствора хлорида натрия обеспечивает дифференцировку клеток преимущественно в хондробластическом направлении и формирование преимущественно хрящевого сращения отломков кости, что позволяет рассматривать его в качестве средства, стимулирующего репаративный хондрогенез.The foregoing made it possible to conclude that the introduction of a 0.9% officinal sodium chloride solution into the joint cavity ensures the differentiation of cells mainly in the chondroblastic direction and the formation of predominantly cartilaginous fusion of bone fragments, which makes it possible to consider it as a means of stimulating reparative chondrogenesis.
Использование способа показало, что его применение для моделирования процессов репаративной регенерации тканей при внутрисуставных повреждениях, обеспечивает изучение особенностей их репарации в условиях воздействия веществами, являющимися дифференцировочными и питательными средами для клеток соединительной и опорных тканей в зоне регенерации.Using the method showed that its use for modeling the processes of reparative tissue regeneration during intraarticular injuries provides a study of the features of their repair under the influence of substances that are differentiating and nutrient media for cells of connective and supporting tissues in the regeneration zone.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012112772/14A RU2487735C1 (en) | 2012-04-02 | 2012-04-02 | Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012112772/14A RU2487735C1 (en) | 2012-04-02 | 2012-04-02 | Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2487735C1 true RU2487735C1 (en) | 2013-07-20 |
Family
ID=48791116
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2012112772/14A RU2487735C1 (en) | 2012-04-02 | 2012-04-02 | Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2487735C1 (en) |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2147236C1 (en) * | 1997-12-15 | 2000-04-10 | Толстых Александр Львович | Method for stimulating reparative osteogenesis |
| US6369029B1 (en) * | 1992-11-04 | 2002-04-09 | Chiron Corporation | Method of stimulating osteogenesis using a c-terminally truncated insulin-like growth factor binding protein-5 (IGFBP-5) |
| RU2315580C2 (en) * | 2006-01-27 | 2008-01-27 | Олег Викторович Бейдик | Method for optimizing reparative osteogenesis |
| RU2364361C1 (en) * | 2008-03-25 | 2009-08-20 | Равиль Шамилевич Мирхайдаров | Method of repair osteogenesis stimulation in treatment of fractures |
| JP2009227616A (en) * | 2008-03-24 | 2009-10-08 | Toin Gakuen | Osteogenesis promoter containing oleuropein and/or hydroxytyrosol as active ingredient |
-
2012
- 2012-04-02 RU RU2012112772/14A patent/RU2487735C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6369029B1 (en) * | 1992-11-04 | 2002-04-09 | Chiron Corporation | Method of stimulating osteogenesis using a c-terminally truncated insulin-like growth factor binding protein-5 (IGFBP-5) |
| RU2147236C1 (en) * | 1997-12-15 | 2000-04-10 | Толстых Александр Львович | Method for stimulating reparative osteogenesis |
| RU2315580C2 (en) * | 2006-01-27 | 2008-01-27 | Олег Викторович Бейдик | Method for optimizing reparative osteogenesis |
| JP2009227616A (en) * | 2008-03-24 | 2009-10-08 | Toin Gakuen | Osteogenesis promoter containing oleuropein and/or hydroxytyrosol as active ingredient |
| RU2364361C1 (en) * | 2008-03-25 | 2009-08-20 | Равиль Шамилевич Мирхайдаров | Method of repair osteogenesis stimulation in treatment of fractures |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| SUN Y, The regenerative effect of platelet-rich plasma on healing in large osteochondral defectsint Orthop. 2010 Apr; 34(4):589-97. * |
| БОРИСОВ И.В. Лечение поперечных переломов вертлужной впадины у собак методом чрезкостного остеосинтеза: клинико-экспериментальное обоснование, Курган, 2004, Научная библиотека диссертаций и авторефератов disserCat http://www.dissercat.com/content/lechenie-poperechnykh-perelomov-vertluzhnoi-vpadiny-u-sobak-metodom-chreskostnogo-osteosinte#ixzz29kVIvbU1. СИЛАНТЬЕВА Т.А. и др. Экспериментальная апробация методики оптимизации репаративного процесса при лече&#x * |
| БОРИСОВ И.В. Лечение поперечных переломов вертлужной впадины у собак методом чрезкостного остеосинтеза: клинико-экспериментальное обоснование, Курган, 2004, Научная библиотека диссертаций и авторефератов disserCat http://www.dissercat.com/content/lechenie-poperechnykh-perelomov-vertluzhnoi-vpadiny-u-sobak-metodom-chreskostnogo-osteosinte#ixzz29kVIvbU1. СИЛАНТЬЕВА Т.А. и др. Экспериментальная апробация методики оптимизации репаративного процесса при лечении внутрисуставного перелома. - Бюллетень ВСНЦ, 2011, №4 (80), ч.1, 278-273. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Oishi et al. | Electrical bone graft stimulation for spinal fusion: a review | |
| CN101945994A (en) | Compositions and methods to promote implantation and engrafment of stem cells | |
| Azarpira et al. | Tissue engineering strategy using mesenchymal stem cell-based chitosan scafolds in growth plate surgery: A preliminary study in rabbits | |
| Hu et al. | Combined magnetic fields accelerate bone‐tendon junction injury healing through osteogenesis | |
| Latham et al. | Bone stimulation: a review of its use as an adjunct | |
| RU2487735C1 (en) | Method for differentiated stimulation of tissue repair and regeneration accompanying intra-articular fractures of cotyloid cavity | |
| Costa et al. | Tissue engineering in orthopaedic sports medicine: current concepts | |
| Zhang et al. | Tuina Intervention in Rabbit Model of Knee Osteoarthritis | |
| RU2631744C1 (en) | Method for nasal arch plasty | |
| RU2618928C1 (en) | Method for treatment of degenerative-dystrophic diseases and locomotor system injuries consequences | |
| RU2375981C1 (en) | Method of treating slowly healing fractures by transplantation of autologic mesenchymal stem cells | |
| RU2354322C1 (en) | Method of mechanical stimulation of retarded osteogenesis in case of bone fractures | |
| Zandi et al. | Histological assessment of the effects of teriparatide therapy on mandibular fracture healing: a preclinical study | |
| RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
| RU2433794C2 (en) | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells | |
| RU2277842C1 (en) | Method for subchondral implantation of medicinal preparations into caput femoris at applying arthroscopic technique | |
| RU2452998C1 (en) | Method of simulating posterior spine fusion | |
| RU2470378C1 (en) | Method of modelling intra-articular injury in small laboratory animals | |
| RU2816808C1 (en) | Method for optimizing reparative osteogenesis of long bones in animals | |
| Kusuyama et al. | I–2 Low Intensity Pulsed Ultrasound (LIPUS) Helps to Maintain the Undifferentiated Status of Mesenchymal Stem Cells | |
| Zhang et al. | Author Spotlight: Using a Rabbit Model to Explore the Efficacy of Tuina in Treating Knee Osteoarthritis | |
| Zheng et al. | Therapeutic effects of revascularisation on the healing of free bone grafts in dogs | |
| Matsubara et al. | II–1 Compliance of Low-Intensity Pulsed Ultrasound (LIPUS) for Fresh Fractures | |
| RU2371189C1 (en) | Method of changing osseous tissue structure in experimental steroid osteoporosis simulation | |
| RU2463986C2 (en) | Method of stimulating reparative processes in treatment of intraarticular fractures |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20150403 |