RU2458121C1 - METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l - Google Patents
METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l Download PDFInfo
- Publication number
- RU2458121C1 RU2458121C1 RU2011118921/10A RU2011118921A RU2458121C1 RU 2458121 C1 RU2458121 C1 RU 2458121C1 RU 2011118921/10 A RU2011118921/10 A RU 2011118921/10A RU 2011118921 A RU2011118921 A RU 2011118921A RU 2458121 C1 RU2458121 C1 RU 2458121C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- culture
- tylosis
- cultivation
- medium
- murashige
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к культивированию клеточных культур лекарственных растений. Область применения - медицинская промышленность, получение нового вида сырья биологически активных веществ растительного происхождения.The invention relates to the field of biotechnology, in particular to the cultivation of cell cultures of medicinal plants. The scope is the medical industry, obtaining a new type of raw material of biologically active substances of plant origin.
Известен способ выращивания каллусной культуры Cistanche deserticola (статья Jie Ouyang, Xiaodong Wang, Bing Zhao, Yuchun Wang. Light intensity and spectral quality influencing the callus growth of Cistanche deserticola and biosynthesis of phenylethanoid glycosides // Plant Science - 2003 - Vol.165, pp.657-661). Каллусную культуру Cistanche deserticola получали из интактных растений, выращенных из предварительно простерилизованных семян, на среде Мурасиге-Скуга, содержащей дополнительно 1 мг/л 2,4-Д, 0.5 мг/л кинетина и 1 мг/л гиббереллиновой кислоты. Полученные каллусы переносили на среду В5 в колбы Эрленмейера и выращивали в условиях освещения селективным светом интенсивностью 24 мкмоль/м2с. Установлено, что синий свет стимулировал накопление биомассы каллусной культуры и фенилэтаноидных гликозидов в ней по сравнению с культурой, выращиваемой на белом свету.A known method of growing callus culture Cistanche deserticola (article Jie Ouyang, Xiaodong Wang, Bing Zhao, Yuchun Wang. Light intensity and spectral quality influencing the callus growth of Cistanche deserticola and biosynthesis of phenylethanoid glycosides // Plant Science - 2003 - Vol. 165, pp. .657-661). Cistanche deserticola callus culture was obtained from intact plants grown from pre-sterilized seeds in Murashige-Skoog medium containing an additional 1 mg / l 2,4-D, 0.5 mg / l kinetin and 1 mg / l gibberellic acid. The resulting calli were transferred onto B5 medium in Erlenmeyer flasks and grown under conditions of illumination with selective light with an intensity of 24 μmol / m 2 s. It was established that blue light stimulated the accumulation of biomass of callus culture and phenylethanoid glycosides in it compared with a culture grown in white light.
Недостатком известного способа является то, что он был использован для культивирования только Cistanche deserticola, относящейся к семейству Orobanchaceae (Заразиховые), в то время как Centaurea scabiosa относится к семейству Asteraceae или Compositae (Астровые или Сложноцветные). Для выращивания каллусной культуры используется среда В5, имеющая измененный состав основных макро- и микросолей по сравнению с средой MS. Дополнительно в среду добавляют гидролизат казеина, что усложняет и увеличивает стоимость приготовления питательной среды, особенно в больших объемах.The disadvantage of this method is that it was used to cultivate only Cistanche deserticola, belonging to the family Orobanchaceae (Zarazikhovyh), while Centaurea scabiosa belongs to the family Asteraceae or Compositae (Astro or Compositae). For the cultivation of callus culture, B5 medium is used, which has an altered composition of the main macro and micro salts compared to the MS medium. Additionally, casein hydrolyzate is added to the medium, which complicates and increases the cost of preparing a nutrient medium, especially in large volumes.
Известен способ культивирования in vitro клеточной культуры трансгенного табака Nicotiana tabacum l., содержащего ген интерлейкина-18 человека (патент РФ №2354692, C12N 5/04, опубл. 10.05.2009 г.) Изобретение может быть использовано в фармакологии для выращивания биомассы клеточной культуры трансгенного табака Nicotiana tabacum L., содержащего ген интерлейкина-18 человека, а также в исследовательских целях. Семена трансгенных растений Nicotiana tabacum L. стерилизуют, переносят на безгормональную питательную среду и проращивают in vitro на свету в течение 28 суток. Полученные проростки рассекают на сегменты размером 0,2-0,3 см2, переносят на модифицированную питательную среду, включающую 2,4-дихлорфеноксиуксусную кислоту, индолилуксусную кислоту и кинетин. Для стерилизации семян используют раствор, состоящий из 96%-ного этанола, 37%-ной перекиси водорода и воды в объемном соотношении 7,5:1:1. Образовавшийся каллус, содержащий ген интерлейкина-18 человека, культивируют в темноте в течение 21-28 суток и размножают пассированием до требуемого количества.A known method of in vitro culturing a cell culture of transgenic tobacco Nicotiana tabacum l. Containing the human interleukin-18 gene (RF patent No. 2354692, C12N 5/04, publ. 05/10/2009) The invention can be used in pharmacology for growing cell culture biomass transgenic tobacco Nicotiana tabacum L., containing the human interleukin-18 gene, as well as for research purposes. The seeds of transgenic plants Nicotiana tabacum L. are sterilized, transferred to a hormone-free culture medium and germinated in vitro in the light for 28 days. The obtained seedlings are cut into segments 0.2-0.3 cm 2 in size, transferred to a modified nutrient medium, including 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, indolylacetic acid and kinetin. For seed sterilization, a solution is used consisting of 96% ethanol, 37% hydrogen peroxide and water in a volume ratio of 7.5: 1: 1. The resulting callus containing the human interleukin-18 gene is cultured in the dark for 21-28 days and propagated by passivation to the required amount.
Недостатком известного способа является то, что для культивирование используется клеточная культура трансгенного табака Nicotiana tabacum, что мешает применить полученные данные к клеточным культурам растений других родов и семейств. Также недостатком является то, что используется трансгенное растение, введение чужеродного гена может отрицательно сказаться на функционировании генома и привести в дальнейшем к генным и хромосомным нарушениям, что будет мешать стабильному выращиванию данной культуры. Получение трансгенных растений для культивирования связано с большим объемом предварительных работ по созданию генетической конструкции и внедрению ее в растительный геном.The disadvantage of this method is that the cultivation uses a cell culture of transgenic tobacco Nicotiana tabacum, which prevents the application of the data to cell cultures of plants of other genera and families. Also, the disadvantage is that a transgenic plant is used, the introduction of a foreign gene can adversely affect the functioning of the genome and subsequently lead to gene and chromosomal abnormalities, which will interfere with the stable cultivation of this culture. Obtaining transgenic plants for cultivation is associated with a large amount of preliminary work on the creation of a genetic construct and its introduction into the plant genome.
Известен способ культивирования Artemisia annua L. (статья Yuchun Wang, Haoxian Zhang, Bing Zhao, Xiaofan Yuan. Improved growth of Artemisia annua L hairy roots and artemisinin production under red light conditions // Biotechnology Letters - 2001 - Vol.23, pp.1971-1973). В настоящем изобретении культуру генетически-модифицированных корней (hairy-root) выращивают в жидкой питательной среде Мурасиге-Скуга, с добавлением сахарозы 30 г/л на орбитальном шейкере (120 об/мин) при 25±1ºС на свету с интенсивностью 25 мкмоль/м2 с и фотопериодом 16 часов. Для ускорения роста культуру освещали красным, синим, зеленым и желтым светом, интенсивностью 25 мкмол/м2с и фотопериодом 16 часов. Установлено, что красный свет стимулирует рост культуры hairy-root и накопление сесквитерпенового лактона артемизинина в отличие от других участков спектра.A known method of cultivating Artemisia annua L. (article Yuchun Wang, Haoxian Zhang, Bing Zhao, Xiaofan Yuan. Improved growth of Artemisia annua L hairy roots and artemisinin production under red light conditions // Biotechnology Letters - 2001 - Vol.23, pp. 1971 -1973). In the present invention, a culture of genetically modified roots (hairy-root) is grown in a liquid nutrient medium Murasige-Skoog, with the addition of sucrose 30 g / l on an orbital shaker (120 rpm) at 25 ± 1 ° C in the light with an intensity of 25 μmol / m 2 s and a photoperiod of 16 hours. To accelerate growth, the culture was illuminated with red, blue, green and yellow light, an intensity of 25 μmol / m 2 s and a photoperiod of 16 hours. It was found that red light stimulates the growth of hairy-root culture and the accumulation of sesquiterpene artemisinin lactone, in contrast to other parts of the spectrum.
Недостатками известного способа является то, что данный способ культивирования применим к определенному виду однолетнего растения - Artemisia annua L., в то время как авторами установлен оптимальный световой режим культивирования для многолетнего растения Centaurea scabiosa L. Кроме того, данный способ культивирования изучен только на культуре hairy-root Artemisia annua L., мало используемой в практической деятельности, не исследовано его применение для выращивания каллусных и суспензионных культур, которые составляют основу промышленной биотехнологии растений. Для получения культуры hairy-root используется генетическая модификация клеток Ti-плазмидой бактериальной культурой Agrobacterium rhizogenes, что может приводить к нарушениям работы генетического аппарата растительных клеток, снижению жизнеспособности, ростовых параметров и продуктивности первичного и вторичного метаболизма.The disadvantages of this method is that this method of cultivation is applicable to a certain type of annual plant - Artemisia annua L., while the authors established the optimal light mode of cultivation for a perennial plant Centaurea scabiosa L. In addition, this method of cultivation was studied only on a hairy culture -root Artemisia annua L., little used in practical activities, its use for growing callus and suspension cultures, which form the basis of industrial plant biotechnology, has not been studied. To obtain a hairy-root culture, genetic modification of cells with a Ti plasmid by the bacterial culture of Agrobacterium rhizogenes is used, which can lead to disruptions in the genetic apparatus of plant cells, reduced viability, growth parameters and productivity of primary and secondary metabolism.
Задачей настоящего изобретения является разработка способа культивирования каллусной ткани Centaurea scabiosa L., перспективной в качестве возможного источника сесквитерпеновых лактонов лекарственного действия, с целью ускорения ее роста и высокого выхода биомассы, посредством применения определенного режима освещения.The objective of the present invention is to develop a method for cultivating callus tissue Centaurea scabiosa L., promising as a possible source of sesquiterpene lactones of medicinal action, in order to accelerate its growth and high yield of biomass, by applying a certain lighting regime.
Поставленная задача решается тем, что культивирование каллусной ткани Centaurea scabiosa L. включает в себя получение каллусной культуры из эксплантов интактных растений путем выращивания эксплантов на питательной среде Мурасиге-Скуга с дальнейшем разливом среды и выращиванием каллусной культуры, но в отличие от прототипа каллусную культуру получают на среде Мурасиге-Скуга с добавлением 0,5-1 мг/л НУК (α-нафтилуксусной кислоты) и 0,2-0,5 мг/л БАП (6-бензиламинопурин). Полученную каллусную культуру затем пересаживают в пластиковые чашки Петри со средой Мурасиге-Скуга без изменения ее состава и в дальнейшем культивируют на синем свету (380-560 нм).The problem is solved in that the cultivation of callus tissue Centaurea scabiosa L. includes the production of callus culture from explants of intact plants by growing explants on nutrient medium Murashige-Skoog with further spilling of the medium and growing callus culture, but in contrast to the prototype callus culture is obtained on Murashige-Skoog medium with the addition of 0.5-1 mg / L NAA (α-naphthylacetic acid) and 0.2-0.5 mg / L BAP (6-benzylaminopurine). The resulting callus culture is then transplanted into plastic Petri dishes with Murashige-Skoog medium without changing its composition and further cultivated in blue light (380-560 nm).
Модифицированная питательная среда Мурасиге-Скуга содержит компоненты в следующем количественном соотношении, мг/л:The modified nutrient medium Murashige-Skoog contains components in the following quantitative ratio, mg / l:
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей, при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей, Fe-хелата, витаминов. Макро- и микросоли, Fe-хелат, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (6-бензиламинопурин), НУК (α-нафтилуксусная кислота), сахарозу и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л. В колбы на 250 мл насыпают по 1,35 г агара, разливают среду по 150 мл, закрывают фольгой и стерилизуют в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Простерилизованную питательную среду в асептических условиях разливают в стерильные пластиковые чашки Петри диаметром 90 мм по 15-20 мл на каждую чашку. Ткань высаживают в возрасте 25-30 суток, инокулюм 200-300 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1ºС в условиях освещения синим светом интенсивностью 160 мкМ м2/с люминесцентными лампами Philips TL-D 36W/18. Световой поток выровнен по падающим квантам.To prepare a nutrient medium, a macro-salt concentrate is prepared, with each of the macro-salts being sequentially dissolved in a small amount of water, and then the volume is brought up to 1 liter. Concentrates of micro salts, Fe-chelate, and vitamins are prepared in a similar way. Macro and micro salts, Fe-chelate, vitamins in the form of concentrates are mixed in a small amount of water. Then, 6-BAP (6-benzylaminopurine), NAA (α-naphthylacetic acid), sucrose are added to the resulting mixture and everything is thoroughly mixed. The solution was adjusted with distilled water to 1 liter. 1.35 g of agar is poured into 250 ml flasks, 150 ml medium is poured, covered with foil and sterilized in an autoclave for 20 minutes at 1.2-1.4 atm. Sterilized culture medium under aseptic conditions is poured into sterile plastic Petri dishes with a diameter of 90 mm, 15-20 ml per cup. The tissue is planted at the age of 25-30 days, inoculum 200-300 mg. The cultivation of callus tissue is carried out at 26 ± 1ºС under blue light conditions with an intensity of 160 μM m 2 / with Philips TL-D 36W / 18 fluorescent lamps. The luminous flux is aligned with the incident quanta.
Примеры осуществления изобретения приведены ниже.Examples of the invention are given below.
Пример 1Example 1
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей (KNО3 1900 мг/л, NH4NO3 1650 мг/л, MgSO47H2O 370 мг/л, KH2PO4 170 мг/л), при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей (Н3ВО3 6,2 мг/л, MnSO45H2O 24,1 мг/л, ZnSO47H2O 8,6 мг/л, Na2MoO42Н2О 0,25 мг/л, KI 0,83 мг/л, CuSO45H2O 0,025 мг/л, СоСl26Н2O 0,025 мг/л), Fe-хелата (FeSO47H2O 27,85 мг/л, Nа2ЭДТА 37,25 мг/л), CaCl2 (CaCl26H2O 332 мг/л), витаминов (Пиридоксин 1,0 мг/л, Тиамин хлорид 1,0 мг/л, Никотинамид 1,0 мг/л). Макро- и микросоли, Fe-хелат, СаСl2, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (0,5 мг/л), НУК (0,2 мг/л), сахарозу (30000 мг/л) и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л. В колбы на 250 мл насыпают по 1,35 г агара, разливают среду по 150 мл, закрывают фольгой и стерилизуют в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Затем в ламинаре простерилизованную питательную среду разливают в стерильные пластиковые чашки Петри диаметром 90 мм по 15-20 мл на каждую чашку. Ткань высаживают в возрасте 25-30 суток, инокулюм 200-300 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1ºС в условиях освещения синим светом интенсивностью 160 мкМ м2/с люминесцентными лампами Philips TL-D 36W/18. Световой поток выровнен по падающим квантам.To prepare the nutrient medium, a macro-salt concentrate is prepared (KNO 3 1900 mg / L, NH 4 NO 3 1650 mg / L, MgSO 4 7H 2 O 370 mg / L, KH 2 PO 4 170 mg / L), with each of the macro salts dissolving sequentially in a small amount of water, and then the volume is brought up to 1 liter. Concentrates of microsalts are prepared in the same way (H 3 BO 3 6.2 mg / L, MnSO 4 5H 2 O 24.1 mg / L, ZnSO 4 7H 2 O 8.6 mg / L, Na 2 MoO 4 2H 2 O 0.25 mg / L, KI 0.83 mg / L, CuSO 4 5H 2 O 0.025 mg / L, CoCl 2 6H 2 O 0.025 mg / L), Fe chelate (FeSO 4 7H 2 O 27.85 mg / L, Na 2 EDTA 37.25 mg / l), CaCl 2 (CaCl 2 6H 2 O 332 mg / l), vitamins (Pyridoxine 1.0 mg / l, Thiamine chloride 1.0 mg / l, Nicotinamide 1.0 mg / l ) Macro and micro salts, Fe-chelate, CaCl 2 , vitamins in the form of concentrates are mixed in a small amount of water. Then, 6-BAP (0.5 mg / L), NAA (0.2 mg / L), sucrose (30,000 mg / L) are added to the resulting mixture and everything is thoroughly mixed. The solution was adjusted with distilled water to 1 liter. 1.35 g of agar is poured into 250 ml flasks, 150 ml of medium is poured, covered with foil and sterilized in an autoclave for 20 minutes at 1.2-1.4 atm. Then, in a laminar, the sterilized growth medium is poured into sterile plastic Petri dishes with a diameter of 90 mm, 15-20 ml per cup. The tissue is planted at the age of 25-30 days, inoculum 200-300 mg. The cultivation of callus tissue is carried out at 26 ± 1ºС under blue light conditions with an intensity of 160 μM m 2 / with Philips TL-D 36W / 18 fluorescent lamps. The luminous flux is aligned with the incident quanta.
Пример 2Example 2
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей (KNO3 - 1900 мг/л, NH4NO3 - 1650 мг/л, MgSO47H2O - 370 мг/л, КH2PO4 - 170 мг/л), при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей (Н3ВО3 - 6,2 мг/л, MnSO45H2O - 24,1 мг/л, ZnSO47H2O - 8,6 мг/л, Na2MoO4 2H2O - 0,25 мг/л, KI - 0,83 мг/л, СuSO45Н2O - 0,025 мг/л, СоСl26Н2O - 0,025 мг/л), Fe-хелата (FeSO47H2O - 27,85 мг/л, Nа2ЭДТА - 37,25 мг/л), CaCl2 (CaCl26H2O - 332 мг/л), витаминов (Пиридоксин - 1,0 мг/л, Тиамин хлорид - 1,0 мг/л, Никотинамид - 1,0 мг/л). Макро- и микросоли, Fе-хелат, СаСl2, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (1 мг/л), НУК (0,5 мг/л), сахарозу (30000 мг/л) и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л. В колбы на 250 мл насыпают по 1,35 г агара, разливают среду по 150 мл, закрывают фольгой и стерилизуют в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Затем в ламинаре простерилизованную питательную среду разливают в стерильные пластиковые чашки Петри диаметром 90 мм по 15-20 мл на каждую чашку. Ткань высаживают в возрасте 25-30 суток, инокулюм 200-300 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1ºС в условиях освещения синим светом интенсивностью 160 мкМ м2/с люминесцентными лампами Philips TL-D 36W/18. Световой поток выровнен по падающим квантам. В Таблице 1 приведен ростовой индекс каллусной культуры Centaurea scabiosa L., выращенной на свету разного спектрального состава.To prepare the nutrient medium, a macro-salt concentrate is prepared (KNO 3 - 1900 mg / l, NH 4 NO 3 - 1650 mg / l, MgSO 4 7H 2 O - 370 mg / l, KH 2 PO 4 - 170 mg / l), while each of the macrosalts is dissolved sequentially in a small amount of water, and then the volume is brought up to 1 liter. Concentrates of microsalts are prepared in the same way (H 3 BO 3 - 6.2 mg / L, MnSO 4 5H 2 O - 24.1 mg / L, ZnSO 4 7H 2 O - 8.6 mg / L, Na 2 MoO 4 2H 2 O - 0.25 mg / l, KI - 0.83 mg / l, CuSO 4 5H 2 O - 0.025 mg / l, CoCl 2 6H 2 O - 0.025 mg / l), Fe-chelate (FeSO 4 7H 2 O - 27.85 mg / l, Na 2 EDTA - 37.25 mg / l), CaCl 2 (CaCl 2 6H 2 O - 332 mg / l), vitamins (Pyridoxine - 1.0 mg / l, Thiamine chloride - 1, 0 mg / l, Nicotinamide - 1.0 mg / l). Macro and micro salts, Fe-chelate, CaCl 2 , vitamins in the form of concentrates are mixed in a small amount of water. Then, 6-BAP (1 mg / L), NAA (0.5 mg / L), sucrose (30,000 mg / L) are added to the resulting mixture and everything is thoroughly mixed. The solution was adjusted with distilled water to 1 liter. 1.35 g of agar is poured into 250 ml flasks, 150 ml of medium is poured, covered with foil and sterilized in an autoclave for 20 minutes at 1.2-1.4 atm. Then, in a laminar, the sterilized growth medium is poured into sterile plastic Petri dishes with a diameter of 90 mm, 15-20 ml per cup. The tissue is planted at the age of 25-30 days, inoculum 200-300 mg. The cultivation of callus tissue is carried out at 26 ± 1ºС under blue light conditions with an intensity of 160 μM m 2 / with Philips TL-D 36W / 18 fluorescent lamps. The luminous flux is aligned with the incident quanta. Table 1 shows the growth index of the callus culture Centaurea scabiosa L. grown in the light of different spectral composition.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011118921/10A RU2458121C1 (en) | 2011-05-11 | 2011-05-11 | METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011118921/10A RU2458121C1 (en) | 2011-05-11 | 2011-05-11 | METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2458121C1 true RU2458121C1 (en) | 2012-08-10 |
Family
ID=46849600
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011118921/10A RU2458121C1 (en) | 2011-05-11 | 2011-05-11 | METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2458121C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2590586C1 (en) * | 2015-03-18 | 2016-07-10 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | METHOD OF PRODUCING TYLOSIS CULTURE OF POISON PARSLEY (Conium maculatum L) |
RU2596402C1 (en) * | 2015-03-12 | 2016-09-10 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | NUTRIENT MEDIUM FOR CULTIVATION OF CALLUS CULTURE OF SPOTTED HEMLOCK (Conium maculatum L) |
RU2631927C1 (en) * | 2016-10-24 | 2017-09-28 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | METHOD FOR OBTAINING OF CALLUS CULTURE OF ACONITUM BARBATUM PATR. ex PERS. |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2010857C1 (en) * | 1991-05-20 | 1994-04-15 | Биолого-почвенный институт Дальневосточного отделения РАН | Method of ginseng callus tissue cultivation |
CN101283673A (en) * | 2008-05-12 | 2008-10-15 | 浙江大学 | Heat-proof lucerne breeding process |
CN101531991A (en) * | 2009-04-17 | 2009-09-16 | 北京林业大学 | Rhodida plant callus and suspension cell granule culture method |
-
2011
- 2011-05-11 RU RU2011118921/10A patent/RU2458121C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2010857C1 (en) * | 1991-05-20 | 1994-04-15 | Биолого-почвенный институт Дальневосточного отделения РАН | Method of ginseng callus tissue cultivation |
CN101283673A (en) * | 2008-05-12 | 2008-10-15 | 浙江大学 | Heat-proof lucerne breeding process |
CN101531991A (en) * | 2009-04-17 | 2009-09-16 | 北京林业大学 | Rhodida plant callus and suspension cell granule culture method |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
АСТАШКИНА М.П. Введение в суспензионную культуру CENTAUREA SCABIOSA L. Современные фундаментальные проблемы физиологии и биотехнологии растений и микроорганизмов, молодежная Всероссийская школа - семинар, Томск, 3-5 декабря 2008 года. Сборник тезисов, с.4,5. ПЕСЯК С.В. Действие селективного света на рост клеточных культур растения Artemisia annua L. Вестник Томского государственного университета. Биология, №2 (10), 2010 с.30, 36. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2596402C1 (en) * | 2015-03-12 | 2016-09-10 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | NUTRIENT MEDIUM FOR CULTIVATION OF CALLUS CULTURE OF SPOTTED HEMLOCK (Conium maculatum L) |
RU2590586C1 (en) * | 2015-03-18 | 2016-07-10 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | METHOD OF PRODUCING TYLOSIS CULTURE OF POISON PARSLEY (Conium maculatum L) |
RU2631927C1 (en) * | 2016-10-24 | 2017-09-28 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Томский государственный университет" (ТГУ, НИ ТГУ) | METHOD FOR OBTAINING OF CALLUS CULTURE OF ACONITUM BARBATUM PATR. ex PERS. |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2398874C2 (en) | Cell clones of cambium, method of recovery and preservation | |
CN102150624B (en) | Tissue culture and rapid propagation method of pinellia genus plant | |
Gupta et al. | Callusing in Stevia rebaudiana (natural sweetener) for steviol glycoside production | |
CN107094625B (en) | Tissue culture seedling breeding method for taxus mairei | |
CN101731144B (en) | Method for culturing tomato tissues in test tube | |
CN110506635B (en) | Marigold pollen induction culture medium and induction culture method | |
RU2458121C1 (en) | METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l | |
CN106106178B (en) | A kind of method for tissue culture of candy iris | |
Wang et al. | Plant regeneration via somatic embryogenesis from leaf explants of Muscari armeniacum | |
KR100736150B1 (en) | A method for normal embryo production through microspore culture in capsicum annuum l | |
CN101548646A (en) | Method for rapidly propagating aralia elata through somatic embryo and secondary somatic embryogenesis | |
CN113016622B (en) | Rapid propagation method for high-quality seedlings of canna indica tissue culture | |
KR20080073388A (en) | Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily | |
RU2718253C1 (en) | Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions | |
CN103651131B (en) | A kind of method being applicable to the efficient evoking adventive bud of Damask Rose suspension cultivation | |
CN1491535A (en) | Root inductive method for microbody reproduction of Japan dahurian larch | |
CN108353789B (en) | A kind of abductive approach and its culture medium of grape fruit callus | |
KR20070072448A (en) | High frequency plant regeneration via somatic embryogenesis in podophyllum peltatum an important medicinal plants for source of anticancer drug | |
KR101934775B1 (en) | Multiple propagation methods of Moringa Oleifera in vitro plantlets using callus culture | |
KR100294656B1 (en) | METHOD FOR MICROPROPAGATION OFEleutherococcus senticosusMaxim. via DIRECT SOMATIC EMBRYOGENESIS | |
CN109479727A (en) | A method of inducing cells,primordial using Afriocan agapanthus blade as explant | |
CN1325636C (en) | In vitro rapid propagating method of Eusteralis stellata and its culture medium | |
KR20050078372A (en) | Method for production of plantlets and adventitious roots from embryogenic callus of mountain ginseng | |
CN107114245A (en) | One grows flax tissue culture method | |
Kumari et al. | Cumulative effect of thidiazuron and 1-naphthylacetic acid in massive root proliferation of micropropagated sugarcane plantlet |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190512 |