RU2718253C1 - Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions - Google Patents
Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions Download PDFInfo
- Publication number
- RU2718253C1 RU2718253C1 RU2019131258A RU2019131258A RU2718253C1 RU 2718253 C1 RU2718253 C1 RU 2718253C1 RU 2019131258 A RU2019131258 A RU 2019131258A RU 2019131258 A RU2019131258 A RU 2019131258A RU 2718253 C1 RU2718253 C1 RU 2718253C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dracocephalum
- palmatum
- steph
- water
- nutrient medium
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/04—Plant cells or tissues
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Botany (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии растений и может быть использовано в фармацевтической промышленности для получения сырья, содержащего ценные биологически активные соединения (флавоноиды, фенольные соединения), а также при введении в культуру in vitro других представителей лекарственных растений, получение которых затруднено из-за высокого содержания в своем составе летучих эфирных соединений. The invention relates to the field of plant biotechnology and can be used in the pharmaceutical industry for the production of raw materials containing valuable biologically active compounds (flavonoids, phenolic compounds), as well as the introduction of other representatives of medicinal plants into the culture in vitro, which are difficult to obtain due to the high content in its composition volatile ether compounds.
Змееголовник дланевидный Dracocephalum palmatum Steph.– растение семейства Lamiaceae, многолетнее вечнозеленое растение с ползучими побегами, образует очень плотную дернину. Листья и побеги опушены. Цветоносы приподнимаются над дерниной на 10-15 см. Цветки фиолетовые в мутовках. Семена созревают в июле. Зимует с зелеными листьями. Встречается в северо-восточных районах Якутии. Растет на сухих каменисто-щебнистых склонах, скалах, в каменистых тундрах, гонных степях (см. Данилова Н.С., Борисова С.З., Иванова Н.С. Декоративные растения Якутии: Атлас-определитель. – М.: ЗАО «Фитон+», 2012. – 248 с).Dahcoiformes serpent head Dracocephalum palmatum Steph.– a plant of the Lamiaceae family, a perennial evergreen plant with creeping shoots, forms a very dense turf. Leaves and shoots are downy. Peduncles rise 10-15 cm above the turf. The flowers are purple in whorls. Seeds ripen in July. Winters with green leaves. It is found in the north-eastern regions of Yakutia. Grows on dry stony-gravelly slopes, rocks, in stony tundra, racing steppes (see Danilova N.S., Borisova S.Z., Ivanova N.S. Ornamental plants in Yakutia: Atlas-determinant. - M .: ZAO “ Fiton + ", 2012. - 248 s).
Известно, что на основе химических и спектральных работ из частей змееголовника дланевидного было выделено 23 соединения (фенилпропаноиды, кумарины, флавоноиды и тритерпены), среди которых впервые в роду Dracocephalum было обнаружено восемь соединений: сальвианоловая кислота B, кафтаровая кислота, цихоровая кислота, умбеллиферон, эскулетин, апигенин-7-O-β-D-глюкуронопиранозид, изорхоифолин и лютеолин-4'-O-β-D-глюкопиранозид (см. Olennikov DN, Chirikova NK, Okhlopkova ZM, Zulfugarov IS. Chemical composition and antioxidant activity of Tánara Ótó (Dracocephalum palmatum Stephan), a medicinal plant used by the North-Yakutian nomads. Molecules.2013 Nov 14;18(11):14105-21.). It is known that, on the basis of chemical and spectral studies, 23 compounds (phenylpropanoids, coumarins, flavonoids and triterpenes) were isolated from parts of the dahnea head, among which for the first time in the genus Dracocephalum eight compounds were discovered: salvianolic acid B, caftaric acid, cichoric acid, umberbeli esculletin, apigenin-7-O-β-D-glucuronopyranoside, isorohoifolin and luteolin-4'-O-β-D-glucopyranoside (see Olennikov DN, Chirikova NK, Okhlopkova ZM, Zulfugarov IS. Chemical composition and antioxidant activity of Tánara Ótó (Dracocephalum palmatum Stephan), a medicinal plant used by the North-Yakutian nomads. Molecules. 2013 Nov 14; 18 (11): 14105-21.).
Змееголовник дланевидный используют в тибетской медицине, якутской народной медицине, настой из надземной части и цветков применяют при язвенной болезни желудка, а в Средней Азии - при сердечной недостаточности, астении, болезнях желудка и как потогонное средство.The dune-shaped snakehead is used in Tibetan medicine, Yakut folk medicine, the infusion of the aerial parts and flowers is used for peptic ulcer, and in Central Asia - for heart failure, asthenia, stomach diseases and as a diaphoretic.
Известен способ получения каллусной культуры представителя семейства Lamiaceaе шлемника андрахновидного (Scutellaria andrachnoides) (см. ЕА №020503, кл. C12N 5/04, A01H 4/00, опубл. 28.11.2014), включающий получение штамма культуры корня растения шлемника андрахновидного (Scutellaria andrachnoides), интенсивно растущего в условиях in vitro на безгормональных питательных средах, сохраняющего способность к синтезу фенольных соединений, характерных для корней целого растения, и обладающего генетической и биохимической стабильностью. There is a method of obtaining a callus culture of a representative of the family Lamiaceae of the Scutellaria andrachnoides (Scutellaria andrachnoides) (see EA No. 020503, class C12N 5/04, A01H 4/00, publ. 11/28/2014), which includes obtaining a culture strain of the root of the plant of Scutellaria arachis (Scutellaria andrachnoides), intensively growing in vitro on hormone-free nutrient media, retaining the ability to synthesize phenolic compounds characteristic of the roots of the whole plant, and possessing genetic and biochemical stability.
Авторами в открытых источниках технические решения по получению каллусной культуры клеток змееголовника дланевидного не выявлено. The authors in open sources, technical solutions for obtaining callus culture of cells of the serpentine duniformis have not been identified.
Задачей настоящего изобретения является получение каллусной культуры клеток змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) в условиях in vitro.The objective of the present invention is to obtain a callus culture of cells of the serpentine snakehead (Dracocephalum palmatum Steph.) In vitro.
Для решения поставленной задачи способ получения каллусной культуры клеток дикорастущего растения змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) в условиях in vitro включает стерилизацию семян змееголовника раствором перекиси водорода (3% раствор) в течение 5 минут, этиловым спиртом (80% раствор) в течение 1 мин, трехкратное ополаскивание в стерильной дистиллированной воде, помещение стерильных семян на твердую питательную среду без гормонов следующего состава, в мг/л: NH4NO3 - 33000, KNO3 - 38000, CaCl2×2H2O - 8800, MgSO4×7H2O - 7400, KH2PO4 - 3400, KI - 166, Н3ВО3 - 1240, MnSO4×4H2O - 4460, ZnSO4×7H2O - 1720, Na2MoO4×2H2O - 50, CuSO4×5H2O - 5, CoCl2×6H2O - 5, FeSO4×7H2O - 5560, Na-ЭДТА - 7460, мезоинозит - 100, никотиновая кислота - 100, пиридоксин - 100, тиамин - 100, сахароза - 2500, вода - 1000 мл, агар - 7000. Далее, полученные из проростков листовые экспланты помещают в питательную среду следующего состава, в мг/л: NH4NO3 - 33000, KNO3 - 38000, CaCl2×2H2O - 8800, MgSO4×7H2O - 7400, KH2PO4 - 3400, KI - 166, Н3ВО3 - 1240, MnSO4×4H2O - 4460, ZnSO4×7H2O - 1720, Na2MoO4×2H2O - 50, CuSO4×5H2O - 5, CoCl2×6H2O - 5, FeSO4×7H2O - 5560, Na-ЭДТА - 7460, мезоинозит - 100, никотиновая кислота - 100, пиридоксин - 100, тиамин - 100, сахароза - 3000, гидролизат казеина - 500, кинетин - 1, 2,4-Дихлорфеноксиуксусная кислота - 1, вода - 1000 мл, агар - 12000. При этом культивирование растений проводят в темноте, при температуре 26±1°С, влажности помещения 70±5%, цикл субкультивирования составляет 4 недели.To solve this problem, a method for producing a callus culture of wild-growing plantarhead dahnea plant cells (Dracocephalum palmatum Steph.) In vitro involves sterilizing the anthropoid seeds with a solution of hydrogen peroxide (3% solution) for 5 minutes, ethanol (80% solution) for 1 min, rinsing three times in sterile distilled water, placing sterile seeds on a solid nutrient medium without hormones of the following composition, in mg / l: NH 4 NO 3 - 33000, KNO 3 - 38000, CaCl 2 × 2H 2 O - 8800, MgSO 4 × 7H 2 O - 7400, KH 2 PO 4 - 3400, KI - 166, H 3 BO 3 - 1240, MnSO 4 × 4H 2 O - 4460, ZnSO 4 × 7H 2 O - 1720, Na 2 MoO 4 × 2H 2 O - 50, CuSO 4 × 5H 2 O - 5, CoCl 2 × 6H 2 O - 5, FeSO 4 × 7H 2 O - 5560, Na-EDTA - 7460, mesoinositol - 100, nicotinic acid - 100, pyridoxine - 100, thiamine - 100, sucrose - 2500, water - 1000 ml, agar - 7000. Next, leaf explants obtained from seedlings are placed in a nutrient medium of the following composition, in mg / l: NH 4 NO 3 - 33000, KNO 3 - 38000, CaCl 2 × 2H 2 O - 8800, MgSO 4 × 7H 2 O - 7400, KH 2 PO 4 - 3400, KI - 166, Н 3 VO 3 - 1240, MnSO 4 × 4H 2 O - 4460, ZnSO 4 × 7H 2 O - 1720, Na 2 MoO 4 × 2H 2 O - 50, CuSO 4 × 5H 2 O - 5, CoCl 2 × 6H 2 O - 5, FeSO 4 × 7H 2 O - 5560, Na-EDTA - 7460, mezoinozit - 100, nicotinic acid - 100, pyridoxine - 100 thiamine - 100 sucrose - 3000, Kasei hydrolyzate a - 500, kinetin - 1, 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid - 1, water - 1000 ml, agar - 12000. In this case, the plants are cultivated in the dark, at a temperature of 26 ± 1 ° C, room humidity 70 ± 5%, cycle subculture is 4 weeks.
Анализ признаков заявленного решения свидетельствует о соответствии заявленного решения критерию «новизна», каллусная культура змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) впервые получена в условиях in vitro.An analysis of the features of the claimed solution demonstrates the conformity of the claimed solution to the “novelty” criterion, the callus culture of the serpentine duniform (Dracocephalum palmatum Steph.) Was first obtained in vitro.
Совокупность существенных признаков обеспечивает решение заявленной технической задачи, а именно, получение каллусной культуры змееголовника дланевидного(Dracocephalum palmatum Steph.).The set of essential features provides a solution to the stated technical problem, namely, the preparation of a callus culture of a dahl-like dragonhead (Dracocephalum palmatum Steph.).
Предлагаемое решение состоит в том, что за основу взяты стерильные свежие проростки, культивируемые в контролируемых условиях климатической камеры из семян интактного растения, фитомасса которого собрана во время стационарно-маршрутных работ на территории Оймяконского нагорья в Республике Саха (Якутия), известного как «Полюс холода – Оймякон», в фенофазах «конец цветения, начало плодоношения». The proposed solution is based on sterile fresh seedlings cultivated under controlled conditions of a climatic chamber from seeds of an intact plant, the phytomass of which was collected during stationary route work in the Oymyakon Highlands in the Republic of Sakha (Yakutia), known as the “Pole of Cold” - Oymyakon ", in phenophases" the end of flowering, the beginning of fruiting. "
При этом отобранные семена стерилизовали раствором 3 % перекиси водорода в течение 5 минут, после чего, вторично 80 % спиртом в течение 1 мин. После стерилизации материал трехкратно ополаскивали стерильной дистиллированной водой. Стерилизованные семена помещали на твердую питательную среду без гормонов. Культивирование проростков проводили до третьего-пятого настоящих листьев в течение трех недель. In this case, the selected seeds were sterilized with a solution of 3% hydrogen peroxide for 5 minutes, after which, again, with 80% alcohol for 1 minute. After sterilization, the material was rinsed three times with sterile distilled water. Sterilized seeds were placed on a solid hormone-free culture medium. The seedlings were cultured up to the third to fifth true leaves for three weeks.
Питательная среда Мурасиге-Скуга для культивирования свежих проростков растения содержит компоненты в количественном соотношении, представленном в таблице 1.Nutrient medium Murashige-Skoog for the cultivation of fresh plant seedlings contains components in the quantitative ratio shown in table 1.
Из полученного проростка получали листовые экспланты, которые помещали в питательную среду с дополнительным добавлением гидролизата казеина, кинетина, 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты. При этом выявлено, что наиболее интенсивное каллусообразование получается при концентрации фитогормонов кинетин 1 мг/л, 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты 1 мг/л. Leaf explants were obtained from the obtained seedling, which were placed in a nutrient medium with the addition of casein hydrolyzate, kinetin, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid. It was found that the most intense callus formation occurs when the concentration of phytohormones kinetin 1 mg / l, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid 1 mg / l.
После образования каллусной ткани проводили его отделение и рассадку в культуральные сосуды (чашки Петри, конически колбы на 100 и 250 мл) со свежей питательной средой, того же состава.After the formation of callus tissue, it was separated and transplanted into culture vessels (Petri dishes, 100 and 250 ml conical flasks) with fresh nutrient medium of the same composition.
Питательная среда Мурасиге-Скуга для получения каллусной ткани содержит компоненты в количественном соотношении, представленном в таблице 2.Nutrient medium Murashige-Skoog for receiving callus tissue contains components in the quantitative ratio shown in table 2.
Культивирование проводили в темноте, при 26±1°С, влажности помещения 70±5%, в чашках Петри с диаметром 90 мм. При этом цикл субкультивирования составлял 4 недели. При пересеве использовали ¼ каллусной культуры.Cultivation was carried out in the dark, at 26 ± 1 ° C, room humidity 70 ± 5%, in Petri dishes with a diameter of 90 mm. The subculture cycle was 4 weeks. When reseeding, ¼ callus culture was used.
Пересадку проводили каждые 30 дней, таким образом, сохраняя полученную каллусную культуру. В процессе культивирования определяли морфологические, цитологические характеристики, также отбирали для молекулярных исследований и химических анализов. The transplant was performed every 30 days, thus preserving the obtained callus culture. During the cultivation, morphological and cytological characteristics were determined, and also selected for molecular studies and chemical analyzes.
Описание способа получения каллусной культуры Dracocephalum palmatum Steph. в настоящее время нигде не зарегистрировано.Description of the method for producing callus culture of Dracocephalum palmatum Steph. currently not registered anywhere.
Полученная каллусная культура характеризуется следующими признаками. Received callus culture is characterized by the following features.
Культуральные признаки: каллусные культуры рыхлые и зернистые, имеют желтовато-серую окраску.Cultural signs: callus cultures are loose and granular, have a yellowish-gray color.
Индекс роста (кратность прироста биомассы за одно субкультивирование) определяют по сырому и сухому весу биомассы. Для определения веса сырой биомассы каллусных культур отделяют от среды культивирования на бумажных фильтрах и взвешивают. Сухую биомассу каллусных культур получают после лиофильной сушки.The growth index (the rate of biomass growth per subculture) is determined by the wet and dry weight of the biomass. To determine the weight of the raw biomass, callus cultures are separated from the culture medium on paper filters and weighed. Dry callus biomass is obtained after freeze drying.
При анализе представленных кривых роста следует отметить замедление роста на 20 сутки культивирования, что позволяет использовать 4-недельный цикл выращивания. Ростовые параметры (кроме индекса роста) рассчитывали по сырому весу биомассы. Результаты представлены в таблице 3 и свидетельствуют о наличии стабильных ростовых характеристик.In the analysis of the growth curves presented, it should be noted that growth is slowed down on the 20th day of cultivation, which allows the use of a 4-week growth cycle. Growth parameters (except for the growth index) were calculated by the wet weight of biomass. The results are presented in table 3 and indicate the presence of stable growth characteristics.
Таким образом, выявлен способ получения каллусных культур змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) из эксплантов проростков, полученных в лабораторных условиях. Thus, a method for producing callus cultures of a dahl-like snakehead (Dracocephalum palmatum Steph.) From explants of seedlings obtained in laboratory conditions was revealed.
Таблица 1Table 1
Состав питательной среды Мурасиге-Скуга для культивирования проростков к получению стерильных эксплантов, в мг/лThe composition of the nutrient medium Murashige-Skoog for the cultivation of seedlings to obtain sterile explants, in mg / l
Таблица 2table 2
Состав питательной среды Мурасиге-Скуга для получения каллусной культуры клетокThe composition of the nutrient medium Murashige-Skoog for receiving callus cell culture
Таблица 3Table 3
Ростовые параметры каллусных культур змееголовника дланевидногоGrowth parameters of callus cultures of the serpentine duniform
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019131258A RU2718253C1 (en) | 2019-10-04 | 2019-10-04 | Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019131258A RU2718253C1 (en) | 2019-10-04 | 2019-10-04 | Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2718253C1 true RU2718253C1 (en) | 2020-03-31 |
Family
ID=70156368
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2019131258A RU2718253C1 (en) | 2019-10-04 | 2019-10-04 | Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2718253C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2759637C1 (en) * | 2021-05-06 | 2021-11-16 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова" | Strain of a callus cell culture of the dragonhead plant (dracocephalum palmatum steph. ex willd.) designated nefu dpalm-1 in vitro for producing a cell biomass |
RU2787746C1 (en) * | 2022-08-03 | 2023-01-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук" (Томский НИМЦ) | Method for obtaining callus culture hedysarum alpinum l. |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA020503B1 (en) * | 2012-04-25 | 2014-11-28 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Физиологии Растений Им. К.А. Тимирязева Российской Академии Наук | Culture strain of andrachnoid scullcap root (scutellaria andrachnoides vved.) - scut. andr. (hrc) - producer of vogonoside and acteoside |
-
2019
- 2019-10-04 RU RU2019131258A patent/RU2718253C1/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA020503B1 (en) * | 2012-04-25 | 2014-11-28 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Физиологии Растений Им. К.А. Тимирязева Российской Академии Наук | Culture strain of andrachnoid scullcap root (scutellaria andrachnoides vved.) - scut. andr. (hrc) - producer of vogonoside and acteoside |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
DANIIL N. OLENNIKOV et al. Chemical composition and Antioxidant activity of Tanara Oto (Dracocephalum palmatum Stephan), a medicinal plant used by the North-Yakutian Nomads, Molecules, 2013, 18, p.14105-14121; * |
DANIIL N. OLENNIKOV et al. Chemical composition and Antioxidant activity of Tanara Oto (Dracocephalum palmatum Stephan), a medicinal plant used by the North-Yakutian Nomads, Molecules, 2013, 18, p.14105-14121; doi: 10.3390/molecules181114105. * |
КУЧАРОВА Е.В. Получение первичных каллусов Dracocephalum palmatum Steph., Вестник СВФУ, N2 (64), 2018, с.46-54. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2759637C1 (en) * | 2021-05-06 | 2021-11-16 | Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова" | Strain of a callus cell culture of the dragonhead plant (dracocephalum palmatum steph. ex willd.) designated nefu dpalm-1 in vitro for producing a cell biomass |
RU2787746C1 (en) * | 2022-08-03 | 2023-01-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук" (Томский НИМЦ) | Method for obtaining callus culture hedysarum alpinum l. |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2398874C2 (en) | Cell clones of cambium, method of recovery and preservation | |
Winton | Shoot and tree production from aspen tissue cultures | |
US8329471B2 (en) | Isolated population of plant single cells and method of preparing same | |
Nishiyama et al. | The effects of kinetin and indoleacetic acid on callus growth and organ formation in two species of Nicotiana | |
RU2718253C1 (en) | Method for making callus culture of dracocephalum palmatum steph. in vitro conditions | |
Wang et al. | Plant regeneration via somatic embryogenesis from leaf explants of Muscari armeniacum | |
RU2757318C1 (en) | Method for obtaining microplants of medicinal plant stephania glabra (roxb.) miers | |
CN110214694B (en) | Tissue culture rapid propagation method of male and female plants of hemsleya amabilis | |
CN111269841B (en) | New endophytic fungus TK815 and application thereof | |
CN107549018A (en) | Chinese mugwort tissue culture method | |
RU2666920C1 (en) | Method for obtaining adventitious roots of phlojodicarpus sibiricus (steph.) k.-pol. under in vitro conditions | |
RU2458121C1 (en) | METHOD FOR CULTIVATION OF TYLOSIS TISSUE Centaurea scabiosa l | |
CN104604683A (en) | Rapid propagation method for ottelia acuminata seedlings by tissue culture | |
CN101843219B (en) | Use of young scape as explant for quick propagation and transgenosis of Chinese sacred lily | |
RU2377296C1 (en) | CULTURED CELL STRAIN OF PLANT Stephania glabra (Roxb) Miers IGF Sg 113-PRODUCER OF STEPHARINE AND METHOD OF CULTIVATION THEREOF IN BIOREACTOR | |
RU2718254C1 (en) | Method for cultivation of callus culture of common wormwood (artemisia vulgaris l.) | |
RU2759637C1 (en) | Strain of a callus cell culture of the dragonhead plant (dracocephalum palmatum steph. ex willd.) designated nefu dpalm-1 in vitro for producing a cell biomass | |
CN101578961A (en) | Petunia somatocyte cell natural mutation individual tissue culture expanding propagation method | |
JP4563493B2 (en) | Efficient production of naphthoquinone anticancer active ingredients | |
KR101386261B1 (en) | Methods for mass production both of cultured cells and stem of Loranthus yadoriki by tissue culture | |
GB2099851A (en) | Propagating foxglove from sterile seeds or shoot apices | |
KR101899140B1 (en) | Method of plant culture for mass propagation of Aralia elata Seem | |
RU2783530C1 (en) | Strain of suspension cell culture of wormwood (artemisia vulgaris l.) under the designation nefu-avul-1 under in vitro conditions - to obtain cell biomass | |
KR101664031B1 (en) | Method for tissue culture of Aster scaber | |
EA041652B1 (en) | METHOD FOR OBTAINING CALLUS CULTURE OF ARTEMISIA VULGARIS L. CELLS. |