KR20080073388A - Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily - Google Patents

Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily Download PDF

Info

Publication number
KR20080073388A
KR20080073388A KR1020070011914A KR20070011914A KR20080073388A KR 20080073388 A KR20080073388 A KR 20080073388A KR 1020070011914 A KR1020070011914 A KR 1020070011914A KR 20070011914 A KR20070011914 A KR 20070011914A KR 20080073388 A KR20080073388 A KR 20080073388A
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
medium
lily
mass production
culture medium
somatic
Prior art date
Application number
KR1020070011914A
Other languages
Korean (ko)
Inventor
김선기
안병준
Original Assignee
김선기
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 김선기 filed Critical 김선기
Priority to KR1020070011914A priority Critical patent/KR20080073388A/en
Publication of KR20080073388A publication Critical patent/KR20080073388A/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/04Plant cells or tissues
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/002Culture media for tissue culture
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H6/00Angiosperms, i.e. flowering plants, characterised by their botanic taxonomy
    • A01H6/56Liliaceae, e.g. Alstroemeria or Lilium
    • A01H6/568Lilium
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0018Culture media for cell or tissue culture
    • C12N5/0025Culture media for plant cell or plant tissue culture
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30Hormones

Abstract

A method for mass-producing bulblet of Lilium sp. industrially is provided to produce a massive amount of virus free bulblets economically within a short time through rapid proliferation of somatic embryogenic cells by applying a culturing technique of bulb scale segments of the Lilium sp. and a bioreactor culturing technique. A method for mass-producing bulblet of Lilium sp. using a bioreactor where an impeller is mounted and a plurality of air holes are formed at the bottom to inject sterile air comprises the steps of: (a) culturing bulb scale of the Lilium sp. in a solid culture medium where 0.1-10mg/liter of 4-amino-3,5,6-trichloropicolinic acid(PICLORAM) or 0.1-10mg/liter of 3,6-dichloro-O-anisic acid(DICAMBA) is added to Murashige Skoog(MS) culture medium under pH of 5.6-5.8 at a temperature of 25 deg.C in the dark state to induce somatic embryogenic cells therefrom and proliferate them; (b) culturing the proliferated somatic embryos in an MS culture medium excluding hormones at a temperature of 20-25 deg.C in the dark state to induce redifferentiation of bulblets; and (c) culturing the bulblets generated from the redifferentiation culture medium in a liquid MS culture medium at a temperature of 20-25 deg.C in the dark state to induce auxesis of the bulblets.

Description

체세포배 세포 급속증식을 이용한 나리류의 자구 대량 생산방법 {Mass Production of bulblet via Somatic Embryogenic Cell culture in Lily} Mass production of bulblet via Somatic Embryogenic Cell culture in Lily}

제 1도는 나리 체세포배 세포의 급속증식을 위한 조건1 shows the conditions for rapid proliferation of Lilium somatic embryonic cells.

제 2도는 본 발명에 의한 나리 체세포배 사진Figure 2 Lilium somatic embryo according to the present invention

제 3도는 본 발명에 의한 생물반응기를 이용한 나리 체세포배 급속증식 사진Figure 3 is a rapid somatic embryo growth photos using the bioreactor according to the present invention

제 4도는 본 발명에 의한 체세포배 유래 자구의 재분화된 사진4 is a redifferentiated photograph of somatic embryo derived stem cells according to the present invention

본 발명은 나리류의 종구를 산업적으로 대량 생산하는 방법에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 나리의 인편조직배양의 기법과 생물반응기(bioreactor) 배양기술을 응용하여 체세포배 세포를 급속 증식하여 단기간 동안 나리류의 종구를 대량 생산 하는 기법으로 경제성 있는 무병주 종구를 대량으로 생산할 수 있게 하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for industrially mass-producing a species of Lilium species, and more particularly, by applying the technique of human tissue culture and bioreactor culture technology of Lilium, somatic embryonic cells rapidly proliferate for a short time It is a method for mass production of economical disease-free species by mass production techniques.

나리류(Lilium sp.)는 인편을 통한 영양번식을 하는 식물로서, 구근은 전분 및 다른 여러 양분의 저장기관 역할을 하며 줄기가 생기는 생장점을 포함하고 있다. 한편, 구근은 식물병원균에 의해 발생되는 바이러스병에 쉽게 감염되어 수량 및 품질이 저하되므로 구근을 여러해 계속해서 사용할 수 없기 때문에 재배농가에서는 매년 새로운 구근을 구입하여 재배하고 있는 실정이다.Lilium sp. Is a vegetative propagation of human scales. The bulb acts as a reservoir for starch and other nutrients, and contains stem growth. On the other hand, bulbs are easily infected by viral diseases caused by phytopathogens, so the quantity and quality of the bulbs can not be used continuously for many years, so growers buy new bulbs every year.

전세계 백합종구의 주 생산지인 네덜란드에서는 바이러스 검정을 거친 모구의 인편을 조직배양의 방법으로 무균상태에서 대량 증식하여 토양에서 장기간의 순화와 양성구 과정을 거쳐 종구를 생산하여 전세계로 판매하고 있다. 우리나라에서도 몇 개의 연구기관에서 조직배양방법을 이용한 백합종구의 대량생산법을 연구하고는 있지만, 세균배양용 페트리 접시(petridish)나 병(bottle)을 이용하는 조직배양방법에 의존하고 있어, 산업적 생산을 위한 대량생산 시 종구생산단가에 인건비가 차지하는 비율이 높아 경제적인 종구 생산이 현실적으로 어려워 국가 보조 사업으로 일부 연구기관에서 시행중이나 농가의 수요량에 턱없이 부족한 상황이며 대부분의 농가에서는 수입에 의존하고 있다. 그리고, 현재 백합 절화생산 경비 중에서 종구비의 점유율이 68%에 이르며 수출용 백합 생산을 하는 농가에서는 품질저하 문제 때문에 대부분 수입 종구를 사용하고 있으며, 이로 인해 종구비 부담액이 증가하여 채산성이 날로 약화되고 있는 실정이다. In the Netherlands, the world's major producer of lily species, the scales of virus-tested hairballs are grown in a sterile state by tissue culture, followed by prolonged purifying and benign processes in the soil, producing and selling them to the world. Although several research institutes in Korea are studying mass production methods of lily seedlings using tissue culture methods, they rely on tissue culture methods using petri dishes or bottles for bacterial culture. As the ratio of labor costs to the production cost of large-scale production is high, the economic production of economic species is difficult. As a subsidiary project, some research institutes are conducting it, but the demand for farms is insufficient. Most farms depend on imports. In addition, the share of the seed cost of the cut flower production costs reaches 68%, and farmers producing lily for export use mostly imported seed ball due to the quality deterioration problem. It is true.

이에, 본 발명자들은 나리류의 종구를 산업적으로 대량 생산하는 방법을 제공하고 자 예의 연구하였으며, 그 결과 기존의 인편배양을 이용한 조직배양으로의 종구생산에 한계가 있는 바 체세포배 세포 배양 기술을 이용하여 생물반응기(bioreactor) 배양에 적용하는 경우, 연속배양이 가능할 뿐만 아니라, 체세포배 세포를 배양 시 성장속도가 훨씬 빠르고, 단 기간동안 대량 증식할 수 있으며 소규모의 반응기를 이용하여 적은 시설 투자비로써 다품종 대량생산이 가능하며, 수확한 체세포배 세포는 장기간(5개월) 저장이 가능하여 생산량을 임의로 조절할 수 있으며, 체세포배 세포를 재분화 유도 시 소량의 체세포배 세포를 소수 인원의 작업으로 대량 생산이 가능하고 배양 용기 당 종구 분화수가 많아 균일한 종구 대량 생산이 가능함을 발견하고 하여 본 발명을 완성하게 되었다.Therefore, the present inventors have provided a method of industrially mass-producing a species of Lilium species, as a result of the study, and as a result, using a somatic embryo cell culture technology that has a limitation on the production of species into tissue culture using conventional scalp culture When applied to bioreactor cultivation, not only continuous culture is possible, but also the growth rate is much faster when cultured somatic embryo cells, can be grown in a short period of time, and can be multi-varied with small facility investment by using small reactors. Mass production is possible, so harvested somatic embryonic cells can be stored for a long time (5 months) to control the production amount arbitrarily, and when somatic embryonic cells are re-differentiated, a small amount of somatic embryonic cells can be mass produced. And found that there is a large number of differentiated spouts per culture vessel, so that uniform mass production is possible. The invention was completed.

따라서, 본 발명은 나리류의 종구생산 시 경제성 있는 대량 생산하는 방법을 제공함으로써 산업적인 종구생산을 통해 수출용 나리류의 종구 국내 자급화를 목적으로 하는 것이다.Accordingly, the present invention is to provide a method for economically mass production in the production of the species of Lilium by the purpose of domestic self-sufficiency of the species for export through the industrial species production.

상기한 목적을 달성하기 위하여, 본 발명자들은 체세포배 유도를 위한 배양조건을 찾기 위하여 다양한 조건에서 조직배양을 실시하였으며, 생물반응기 배양 시 급속 증식에 적합한 배양조건을 찾기 위하여 다양한 조건에서 조직배양을 실시하였으며, 체세포배 세포의 재분화 유도조건 및 비대배양을 실시하였다. 조직배양에서와 동일 조건으로 생물반응기 배양을 실시하여 생산된 종구들이 일반 토양에 이식하여 그의 순화정도를 확인한 결과 조직배양에서와 유사한 정도의 생존율을 보 임을 확인하였다.In order to achieve the above object, the present inventors carried out tissue culture under various conditions in order to find a culture condition for somatic embryo induction, and carried out tissue culture under various conditions to find a culture condition suitable for rapid proliferation in bioreactor culture. The conditions for inducing regeneration of somatic embryonic cells and hypertrophy were performed. Species produced by culturing the bioreactor under the same conditions as in the tissue culture were transplanted into the general soil, and their purity was confirmed, and the survival rate was similar to that of the tissue culture.

즉, 상기한 목적을 달성하기 위하여, 본 발명에 따른 백합 나리류의 종구를 대량으로 생산하는 방법은, 인편으로부터 체세포배 세포를 유도하고 체세포 배 세포를 반응기에 멸균공기를 주입하고 반응기 바닥에 많은 공기구멍이 형성되어 있는 생물반응기를 이용하여 급속 증식하고 체세포배를 재분화 배지에 치상하여 재분화를 유도하고 비대용 배지를 넣어줌으로써 단기간에 무병 종구를 대량 생산하는 것을 특징으로 하며, (1) 무라시게-스툭배지(Murashige Skoog 배지, 이하 MS배지라 한다)에 4-아미노-3,5,6-트리클로로피콜리닉산(4-Amino-3,5,6-Trichloropicolinic acid, 이하 PICLORAM이라 한다.) 또는 3,6-디클로로-오-아니식산(3,6-Dichloro-O-Anisic acid, 이하 DICAMBA라 한다.)를 첨가한 고체배지에서, pH 5.6~5.8, 온도 25℃, 암상태의 조건에서 배양하여 인편에서 체세포배 세포를 유도하는 단계;That is, in order to achieve the above object, the method for producing a large number of lily lily species according to the present invention, inducing somatic embryonic cells from the scales and injecting the somatic embryonic cells into the reactor sterile air and many Rapidly proliferate using a bioreactor with air holes and induce somatic embryos into regeneration mediums to induce regeneration and add hypertrophy medium to mass-produce disease-free species in a short period of time. -4-amino-3,5,6-trichloropicolinic acid (hereinafter referred to as PICLORAM) in stuk medium (Murashige Skoog medium, hereinafter referred to as MS medium). Or in a solid medium to which 3,6-dichloro-O-Anisic acid (hereinafter referred to as DICAMBA) is added, at a pH of 5.6 to 5.8, at a temperature of 25 ° C. and in a dark condition. Cultured somatic embryonic cells Doha steps;

(2) 상기 동일한 액체 배지에서 생물반응기를 이용한 체세포배 세포를 급속 증식하는 단계; (2) rapidly proliferating somatic embryonic cells using a bioreactor in the same liquid medium;

(3) 체세포배 세포를 호르몬이 배제된 MS고체 배지로 전량 교체하여, pH 5.6~5.8, 온도 20~25℃, 빛을 차단한 암상태의 조건에서 배양하여 자구의 재분화 유도하는 단계; (3) replacing somatic embryonic cells with a total amount of MS solid medium excluding hormones, incubating in a condition of pH 5.6 to 5.8, temperature 20 to 25 ° C., and blocking light to induce regeneration of magnetic domains;

(4) 자구의 비대를 위하여 MS 배지의 염농도를 반으로 줄인 액체 배지를 첨가하여 자구의 비대를 유도하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 한다. (4) adding the liquid medium in which the salt concentration of the MS medium is reduced in half for the enlargement of the magnetic domains, thereby inducing the hypertrophy of the magnetic domains.

[실시예 1] 호르몬의 종류 및 농도가 나리의 체세포배 형성에 미치는 영향Example 1 Effect of Hormone Type and Concentration on Somatic Embryogenesis of Lilium

당 3%를 첨가한 MS배지를 기본으로 다양한 생장호르몬과 농도를 처리하여 나리의 인편을 썰어 접종한 다음 체세포배 유도를 조사하여 그 결과를 표 1에 나타 내었다. MS medium added with 3% sugar was treated with various growth hormones and concentrations, and then inoculated by cutting slices of Lilium, and the results of somatic embryos were investigated.

표 1 Table 1

품종kind 마르코폴로Marco Polo 2,4-D2,4-D 1One 0    0 33 0    0 66 0    0 99 0    0 DicambaDicamba 1One 0    0 33 13   13 66 0    0 99 0    0 PicloramPicloram 1One 30   30 33 56   56 66 13   13 99 6    6 카사블랑카Casablanca 2,4-D2,4-D 1One 0    0 33 0    0 66 10   10 99 10   10 DicambaDicamba 1One 0    0 33 6    6 66 0    0 99 0    0 PicloramPicloram 1One 90   90 33 100  100 66 80   80 99 5    5 소르본느Sorbonne 2,4-D2,4-D 1One 0    0 33 0    0 66 0    0 99 0    0 DicambaDicamba 1One 0    0 33 0    0 66 0    0 99 0    0 PicloramPicloram 1One 52   52 33 89   89 66 97   97 99 92   92

호르몬종류 및 농도가 나리의 체세포 형성에 미치는 영향 본 실험 결과 인편에서 재분화가 잘되는 체세포배 세포를 유도하기 위해서는 배지에 생장조절 호르몬인 오옥신계의 PICLORAM 또는 DICAMBA를 첨가한 배지에서 배양한다. 호르몬의 첨가량은 PICLORAM 1.0~9.0㎎/ℓ 및 DIACMBA 1.0~6.0㎎/ℓ의 범위로 하는 것이 적당하며, 바람직하게는 PICLORAM 3.0㎎/ℓ 및 DICAMBA 3.0㎎/ℓ을 첨가하는 것이 바람직한것으로판단 되었다.      Effect of Hormone Types and Concentrations on Somatic Cell Formation in Lilium To induce somatic embryonic cells that are well re-differentiated in humans, the cultures were cultured in medium containing PICLORAM or DICAMBA, a growth regulator hormone. The amount of the hormone added is preferably in the range of 1.0 to 9.0 mg / l for PICLORAM and 1.0 to 6.0 mg / l for DIACMBA. Preferably, it is determined that it is desirable to add 3.0 mg / l for PICLORAM and 3.0 mg / l for DICAMBA.

2단계 배양은 1단계에서 유도 된 체세포배 세포를 동일한 배양기내에서 균일한 상태의 세포를 단기간에 대량 급속 증식하여, 재분화시 유도 시 균일한 상태의 소자구를 생산하기 위한 것으로 호르몬의 량을 절반이하로 첨가된 MS배지만으로 배양을 실시한다.   In the second stage culture, the somatic embryo cells derived in the first stage are rapidly grown in a short period of time in the same incubator in a large amount in a short period of time to produce a uniform device in induction during regeneration. Incubate with only MS medium added below.

[실시예2] 체세포배 급속증식 조건 Example 2 Somatic Embryonic Rapid Proliferation Condition

체세포배의 급속 증식을 위해 오리엔탈 나리 ‘마르코폴로’ 체세포배를 이용하여 250ml 삼각플라스크에 MS 액체 배지(5% sucrose)를 50㎖ 넣고 125rpm속도로 회전 진탕배양 하였다. MS 액체 배지(5% sucrose)는 picloram과 zeatin을 0, 0.3, 1, 3mg/L의 다양한 농도로 처리하였으며, 배양 기간에 따라 각 처리에 따른 체세포배 생체 중 변화결과를 조사하였으며 결과는 도 1에 나타내었다. 체세포배 급속증식을 위한 생물반응기 배양은 PICLORAM 1.0㎎/ℓ 을 첨가한 배지에서 1주 간격으로 계대배양하는 것이 체세포배 세포의 급속 증식에 가장 양호한 결과를 얻을 수 있으며, 이는 도1과 같다.For rapid proliferation of somatic embryos, 50 ml of MS liquid medium (5% sucrose) was placed in a 250 ml Erlenmeyer flask using Oriental Nari “Marcopolo” somatic embryos and cultured by rotating shaking at 125 rpm. MS liquid medium (5% sucrose) was treated with various concentrations of picloram and zeatin at 0, 0.3, 1, 3mg / L, and examined the results of in vivo changes in somatic embryos depending on the treatment period. Shown in In the bioreactor culture for rapid somatic embryo proliferation, subcultured at intervals of 1 week in medium containing PICLORAM 1.0 mg / l may obtain the best results for rapid proliferation of somatic embryonic cells, as shown in FIG. 1.

3단계 배양은 2단계에서 급속 증식된 체세포배 세포를 잘게 썰어 생장호르몬이 배제되고 6%의 설탕과 0.5%의 배지고형제(GELITE, Duchefa Co.)를 첨가한 MS고체배지에 치상하여 자구 재분화를 유도하는 것이다.  In step 3 culture, chopped somatic embryo cells rapidly expanded in step 2, excluding growth hormones, and submerged on MS solid medium containing 6% sugar and 0.5% medium solids (GELITE, Duchefa Co.). To induce.

4단계 배양은 3단계에서 재분화 된 소자구를 비대 배양하는 것으로써 기존 재분화 배지에서 자구 비대용 배지로 추가적인 계대배양을 하지 않고 배양용기의 환기구멍을 통해 자구 비대용 배지를 첨가함으로써 자구 비대용 배지로의 계대배양에 따른 비 효율적인 배양시간을 단축함으로써 작업 효율을 높일 수 있다. Stage 4 culture is to enlarge the microspheres re-differentiated in step 3 and to increase the size of the autogenous medium by adding the autogenous hypertrophy medium through the ventilation hole of the culture vessel without additional subculture from the existing regeneration medium to the autogenous hypertrophy medium. The work efficiency can be increased by shortening the inefficient incubation time according to passage of the furnace.

4단계 배양에서 자구 비대용 배지를 넣어 줄 수 있는 구멍을 뚫고 재분화된 자구의 호흡을 위해 통기성 있는 테이프로 밀봉한 용기를 이용함으로써 기내 자구의 원활한 발달을 돕는 역할을 하며, 한번 재분화 된 자구는 계대배양을 통하지 않고 동일한 배양용기에서 자구 비대배양을 동시에 수행함으로써 계대배양에 따른 번거로운 작업을 피할 수 있게 한다. In stage 4 culture, it helps to develop the in-flight magnetic domains by using a container sealed with a breathable tape for the respiration of the re-differentiated magnetic domains. Simultaneous autogenous hypertrophy in the same culture vessel, rather than through culture, avoids the cumbersome work of subculture.

이러한 4단계의 체세포배 세포를 이용한 자구의 급속 대량 생산 배양을 통해 소수의 인원으로 많은 양의 종구를 생산할 수 있는 생산체계가 완성됨으로써 기존의 대량생산시스템에 비하여 시설비투자에 부담을 줄이고 효율적인 배양 시스템을 구축함으로써 경제적으로 균일한 품질의 종구를 산업적으로 대량 공급할 수 있으며, 생성된 종구는 토양에서의 정밀 양구를 통하여 농가의 수요에 맞춘 다품종 대량생산에 적합하다고 할 수 있다. Through the rapid mass production culture of magnetic domains using these four-stage somatic embryo cells, a production system capable of producing large numbers of species with a small number of people is completed, thus reducing the burden on facility investment compared to the existing mass production system and effectively cultivating the system. It is possible to industrially supply large quantities of economically uniform quality seeds by constructing them, and the produced species are suitable for mass production of various varieties that meet the needs of farmers through precise cultivation in soil.

이하, 여러 실시예를 통하여 체세포배 세포 급속 증식을 이용한 나리류 자구 대량 생산은 체세포배 세포 유도배양에 적합한 배양조건을 찾기 위하여 다양한 조건에서의 조직배양, 이를 이용한 생물반응기 배양 시 급속 증식조건, 재분화 조건 및 효율적인 기내 자구의 비대 배양 시스템을 찾기 위한 다양한 조건에서의 조직배양에 대하여 구체적으로 설명한다. 그러나 본 발명이 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the mass production of Lilium porcelain using rapid proliferation of somatic embryo cells through various embodiments is carried out in order to find suitable culture conditions for somatic embryo cell induction culture, tissue culture under various conditions, rapid proliferation conditions in bioreactor culture using the same, and differentiation. The culture of tissues under various conditions to find conditions and efficient culture system of in-flight magnetic domains will be described in detail. However, the present invention is not limited to these examples.

본 발명에 따른 이러한 생물반응기 배양을 통하여 체세포배 발생 세포의 성장속도가 훨씬 빠르고, 급속 증식된 많은 체세포 배발생 세포는 자구 형성용 재분화 배지에 치상함으로써 균일한 우량종구를 대량생산하여 단기간에 자구를 대량으로 공급할 수 있으므로, 신품종 나리의 조기 대량공급을 실시에 적용할 수 있다. The growth rate of somatic embryogenic cells is much faster through the bioreactor culture according to the present invention. Since it can be supplied in large quantities, early bulk supply of new varieties can be applied to implementation.

Claims (4)

백합 나리류의 종구의 대량 생산방법에 있어서, 반응기 중간에 교반기(impeller)가 장착되어 있으며, 멸균공기를 주입할 수 있도록 반응기 바닥에 많은 공기구멍이 형성되어 있는 생물반응기를 이용하며, In the mass production method of lily lily species, an agitator (impeller) is installed in the middle of the reactor, and a bioreactor having many air holes formed in the bottom of the reactor to inject sterilized air, (1) 무라시게-스툭배지(Murashige Skoog 배지, 이하 MS배지라 한다)에 4-아미노-3,5,6-트리클로로피콜리닉산(4-Amino-3,5,6-Trichloropicolinic acid, 이하 PICLORAM이라 한다.) 또는 3,6-디클로로-오-아니식산(3,6-Dichloro-O-Anisic acid, 이하 DICAMBA라 한다.)를 첨가한 고체배지에서, pH 5.6~5.8, 온도 25℃, 암상태의 조건에서 배양하여 인편에서 체세포배 세포를 유도, 증식 하는 단계 ; 및 (1) 4-Amino-3,5,6-trichloropicolinic acid (Murashige Skoog medium, hereinafter referred to as MS medium) (4-Amino-3,5,6-Trichloropicolinic acid, hereinafter) PICLORAM) or 3,6-dichloro-O-anisic acid (hereinafter referred to as DICAMBA) in a solid medium, pH 5.6 ~ 5.8, temperature 25 ℃, Inducing and proliferating somatic embryonic cells in human cells by culturing in a cancerous condition; And (2) 증식된 체세포배는 배지를 호르몬이 배제된 MS배지로 전량 교체하여, 온도 20~25℃, 빛을 차단한 암상태의 조건에서 배양하여 자구의 재분화를 유도하는 단계 (2) Proliferating somatic embryos are to replace the whole medium with a hormone-free MS medium, incubated in the temperature of 20 ~ 25 ℃, light-blocking cancer conditions to induce regeneration of the magnetic domains (3) 재분화 배지에서 형성된 자구는 비대용 액체 MS배지를 넣어, 온도 20~25℃, 빛을 차단한 암상태의 조건에서 배양하여 자구의 비대를 유도하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 백합 나리류의 종구의 대량 생산방법. (3) The lily bulbs formed in the regeneration medium are put in a liquid MS medium for hypertrophy, incubated in a dark condition of the temperature of 20 ~ 25 ℃, light-blocked lily lilies comprising the step of inducing hypertrophy of the bulblets Method of mass production of species of species 제 1항에 있어서, 1단계 배양 배지에서, 체세포배의 유도 및 증식은 PICLORAM은 0.1~10㎎/ℓ의 양으로, DICAMBA는 0.1~10㎎/ℓ의 양으로 첨가되는 것을 특징으로 하는 백합 나리류의 체세포배 세포 대량 생산방법.The method of claim 1, wherein in the first stage culture medium, the somatic embryo induction and proliferation of the lily lilies, characterized in that the PICLORAM is added in an amount of 0.1 ~ 10mg / l, DICAMBA is added in an amount of 0.1 ~ 10mg / l Method for mass production of somatic embryonic cells of a kind. 제 1항에 있어서, 2단계 배양 배지에서, 설탕 5-10%와 GELITE 0.5-0.7%의 양으로 첨가되는 것을 특징으로 하는 백합 나리류의 종구의 대량 생산방법.The method for mass production of lily lilies spp. According to claim 1, wherein in a two-stage culture medium, 5-10% sugar and 0.5-0.7% GELITE are added. 제 1항에 있어서, 3단계 배양 배지는 호르몬이 배제되고 염농도를 1/2로 줄이고 설탕이 9%첨가된 액체배지로 배지는 4주간격으로 첨가해 주는 것을 특징으로 하는 것을 특징으로 하는 마다 백합 나리류의 종구의 대량 생산방법.The method of claim 1, wherein the three-stage culture medium is a liquid medium in which hormones are excluded, salt concentration is reduced to 1/2, and sugar is added to 9%, and the medium is added every four weeks. Method of mass production of Lilium species.
KR1020070011914A 2007-02-06 2007-02-06 Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily KR20080073388A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020070011914A KR20080073388A (en) 2007-02-06 2007-02-06 Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020070011914A KR20080073388A (en) 2007-02-06 2007-02-06 Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily

Publications (1)

Publication Number Publication Date
KR20080073388A true KR20080073388A (en) 2008-08-11

Family

ID=39883161

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020070011914A KR20080073388A (en) 2007-02-06 2007-02-06 Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR20080073388A (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104126505A (en) * 2014-07-07 2014-11-05 沈阳农业大学 Somatic embryo in-vitro regeneration method applied to genetic transformation and seed ball rapid propagation of Lilium pumilumDC. Fisch
CN104186319A (en) * 2014-08-19 2014-12-10 上海市农业科学院 Lily root tip detoxification and rapid propagation method for lily
CN108464242A (en) * 2018-06-19 2018-08-31 沈阳农业大学 A kind of notable direct method for generation of Lilium tenuifolium somatic embryo for shortening induction time
CN115500263A (en) * 2022-10-11 2022-12-23 北京市农林科学院 Method for rapidly inducing lily bulbus and expanding test tube bulblet

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104126505A (en) * 2014-07-07 2014-11-05 沈阳农业大学 Somatic embryo in-vitro regeneration method applied to genetic transformation and seed ball rapid propagation of Lilium pumilumDC. Fisch
CN104186319A (en) * 2014-08-19 2014-12-10 上海市农业科学院 Lily root tip detoxification and rapid propagation method for lily
CN108464242A (en) * 2018-06-19 2018-08-31 沈阳农业大学 A kind of notable direct method for generation of Lilium tenuifolium somatic embryo for shortening induction time
CN108464242B (en) * 2018-06-19 2021-07-13 沈阳农业大学 Lily tenuifolius somatic embryo direct generation method capable of remarkably shortening induction time
CN115500263A (en) * 2022-10-11 2022-12-23 北京市农林科学院 Method for rapidly inducing lily bulbus and expanding test tube bulblet

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102150624B (en) Tissue culture and rapid propagation method for pinellia tuber plant
CN102577976B (en) Simple tissue culture method for broussonetia papyrifera
CN102119655B (en) Natural light rapid breeding method for dendrobium officinale
CN105075863B (en) A kind of Paeonia papaveracea rapid propagation method
CN101965797A (en) Quick propagation seedling-breeding method for reducing vitrifaction in multiple times of subculture of rosaceous plant
CN101574055A (en) Lonicera edulis tissue culturing method
KR20190046554A (en) Methods for the rapid production of lily flowering bulbs through direct cultivation of somatic embryo-derived bulblets without the procedures of bulb scale vegetative propagation
CN110506635B (en) Marigold pollen induction culture medium and induction culture method
CN106538387B (en) A kind of method for tissue culture of Ku Zhi
CN101810144B (en) Rapid breeding method of senecio cruentus
CN103461132A (en) Method for cultivating cucumber breeding material by utilizing macrospore culture technique
CN103070078A (en) Rapid propagation method for performing tissue culture by using taro stem tip
CN105519442B (en) A kind of inoculation method of Europe Lee callus regeneration system
KR20100052026A (en) Method for mass production of micro potato by bioreactor culture
CN105475129A (en) Tissue-culture rapid propagation method for arundina graminifolia
Takayama et al. Practical aspects of bioreactor application in mass propagation of plants
KR20080073388A (en) Mass production of bulblet via somatic embryogenic cell culture in lily
Seko et al. Effect of CO 2 and light on survival and growth of rice regenerants grown in vitro on sugar-free medium
CN106258960A (en) A kind of orchid seed germination quick-breeding method
CN104604678A (en) Sugar-free open tissue culture rapid seedling raising method of wild panax japonicas
CN102067818B (en) Inducing technology of test tube lotus root
CN101904302B (en) Method for somatic cell embryogeny and plant regeneration of medicinal plant schisandga chinensis baill
CN103548695A (en) Tissue culture and rapid propagation method for corydalis saxicola bunting
CN102577979A (en) Method for inducing and culturing brown cotton embryo callus
CN102823504A (en) Eucalypt tissue culture medium

Legal Events

Date Code Title Description
WITN Application deemed withdrawn, e.g. because no request for examination was filed or no examination fee was paid