RU2451750C2 - Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide - Google Patents
Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide Download PDFInfo
- Publication number
- RU2451750C2 RU2451750C2 RU2007135323/10A RU2007135323A RU2451750C2 RU 2451750 C2 RU2451750 C2 RU 2451750C2 RU 2007135323/10 A RU2007135323/10 A RU 2007135323/10A RU 2007135323 A RU2007135323 A RU 2007135323A RU 2451750 C2 RU2451750 C2 RU 2451750C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- peptide
- hybrid protein
- purification
- protein
- buffer
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/575—Hormones
- C07K14/62—Insulins
Abstract
Description
Область техники, к которой относится изобретениеFIELD OF THE INVENTION
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генной и белковой инженерии, и может быть использовано для получения рекомбинантного с-пептида (соединительного пептида проинсулина) человека.The invention relates to biotechnology, in particular to genetic and protein engineering, and can be used to obtain a recombinant c-peptide (proinsulin connecting peptide) of a person.
Предшествующий уровень техникиState of the art
Различают несколько форм с-пептида длиной от 31 до 35 аминокислотных остатков. Формы различаются содержанием остатков аргинина и лизина на С- и N-концах полипептида. Эти аминокислоты не входят в состав молекулы зрелого инсулина человека и, по мнению некоторых исследователей, должны относиться к с-пептиду. Однако в кровеносное русло секретируется только зрелый с-пептид длиной 31 аминокислотный остаток, не содержащий основных аминокислот. Последовательность этой формы с-пептида приведена ниже.There are several forms of c-peptide with a length of 31 to 35 amino acid residues. The forms differ in the content of arginine and lysine residues at the C- and N-ends of the polypeptide. These amino acids are not part of the molecule of mature human insulin and, according to some researchers, should belong to the c-peptide. However, only the mature c-peptide with a length of 31 amino acid residues that do not contain basic amino acids is secreted into the bloodstream. The sequence of this form of c-peptide is given below.
Glu Ala Glu Asp Leu Gln Val Gly Gln Val Glu Leu Gly Gly GlyGlu Ala Glu Asp Leu Gln Val Gly Gln Val Glu Leu Gly Gly Gly
Pro Gly Ala Gly Ser Leu Gln Pro Leu Ala Leu Glu Gly Ser Leu GlnPro Gly Ala Gly Ser Leu Gln Pro Leu Ala Leu Glu Gly Ser Leu Gln
Предшественник с-пептида синтезируется в островках Лангерганса специализированными клетками поджелудочной железы в составе препрогормона (препроинсулина). Образование с-пептида происходит там же в результате посттрансляционных модификаций. На первом этапе от препроинсулина отщепляется сигнальная последовательность - N-концевой фрагмент, содержащий 23 аминокислотных остатка. Из образовавшегося проинсулина (86 аминокислотных остатков) в комплексе Гольджи, при участии специфических пептидаз, происходит образование зрелого с-пептида (31 аминокислотный остаток). Впоследствии он секретируется в кровеносное русло в эквимолярном соотношении с инсулином.The c-peptide precursor is synthesized in the islets of Langerhans by specialized pancreatic cells as part of preprohormone (preproinsulin). The formation of the c-peptide occurs in the same place as a result of post-translational modifications. At the first stage, the signal sequence is cleaved from preproinsulin - an N-terminal fragment containing 23 amino acid residues. From the resulting proinsulin (86 amino acid residues) in the Golgi complex, with the participation of specific peptidases, the formation of a mature c-peptide (31 amino acid residues) occurs. Subsequently, it is secreted into the bloodstream in an equimolar ratio with insulin.
c-Пептид проинсулина человека был описан в 60-х годах XX века. Первоначальные исследования не обнаружили существование у него специфической биологической функции. Долгое время считалось, что он необходим только для образования правильной конформации белковой молекулы инсулина. В начале 90-х годов XX века [Johansson et al., 1992] появилось много сведений о применении с-пептида для профилактики и лечения осложнений, связанных с диабетом. с-Пептид с успехом применялся для улучшения состояния пациентов, страдающих от ретинопатии, ангиопатии и нефропатии - основных факторов инвалидизации и смертности при диабете [Ido, Science, 1997, 277, 563-566; Forst, 1998, Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes, 106, 270-276 и др.]. Однако в настоящее время крупномасштабные исследования и применение в клиниках затруднены из-за недостатка с-пептида на рынке, его высокой стоимости и низкого качества. Так, например, известный поставщик реактивов - корпорация Sigma-Aldrich - предлагает с-пептид, имеющий чистоту 85% по цене 371,5 евро за 250 мкг препарата [Каталог Sigma 2006-2007, с.706]. Другая корпорация - Phoenix Pharmaceuticals, Inc. - предлагает 200 мкг препарата по цене 75,00 долларов.The human proinsulin c-peptide was described in the 60s of the XX century. Initial studies did not reveal the existence of a specific biological function. For a long time it was believed that it is necessary only for the formation of the correct conformation of the protein insulin molecule. In the early 90s of the XX century [Johansson et al., 1992] a lot of information appeared about the use of c-peptide for the prevention and treatment of complications associated with diabetes. c-Peptide has been successfully used to improve the condition of patients suffering from retinopathy, angiopathy and nephropathy - the main factors of disability and mortality in diabetes [Ido, Science, 1997, 277, 563-566; Forst, 1998, Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes, 106, 270-276 et al.]. However, currently large-scale research and use in clinics are difficult due to the lack of c-peptide in the market, its high cost and low quality. So, for example, the well-known supplier of reagents - the Sigma-Aldrich corporation - offers a c-peptide having a purity of 85% at a price of 371.5 euros per 250 μg of the drug [Sigma Catalog 2006-2007, p.706]. Another corporation is Phoenix Pharmaceuticals, Inc. - Offers 200 mcg of the drug for $ 75.00.
При этом компания не указывает никаких данных относительно качества продаваемого пептида.However, the company does not indicate any data regarding the quality of the sold peptide.
В организме здорового человека с-пептид секретируется в эквимолярном соотношении с инсулином. Точное количество, необходимое пациентам, страдающим диабетом, в настоящее время не определено. Если допустить, что больным необходимо эквимолярное введение препаратов инсулина и с-пептида, то при суточной дозе инсулина 3 мг потребуется введение приблизительно 1,5 мг с-пептида. Таким образом, при применении с-пептида, имеющегося на рынке, стоимость терапии одного пациента в течение месяца будет составлять более 15000 долларов. При этом его качество не удовлетворяет требованиям, предъявляемым к фармакологическим препаратам.In a healthy person, the c-peptide is secreted in an equimolar ratio with insulin. The exact amount needed by patients with diabetes is currently undetermined. If we assume that patients need equimolar administration of insulin and c-peptide preparations, then with a daily dose of 3 mg insulin, approximately 1.5 mg of c-peptide will be required. Thus, when using the c-peptide available on the market, the cost of treating one patient for a month will be more than $ 15,000. However, its quality does not meet the requirements for pharmacological preparations.
В отличие от инсулина аминокислотная последовательность с-пептида сильно отличается у разных видов млекопитающих, что делает невозможным получение его из животного сырья. Существующие способы получения с-пептида, можно разделить на три категории:Unlike insulin, the amino acid sequence of the c-peptide is very different in different species of mammals, which makes it impossible to obtain it from animal raw materials. Existing methods for producing a c-peptide can be divided into three categories:
1) Получение с-пептида химическим синтезом. Этим способом получено большинство препарата, представленного на рынке в настоящее время [Sigma-Aldrich, Phoenix Pharmaceuticals, Inc. и др.].1) Obtaining c-peptide by chemical synthesis. This method is used to obtain the majority of the drug currently on the market [Sigma-Aldrich, Phoenix Pharmaceuticals, Inc. and etc.].
2) Получение с-пептида биосинтетическими методами в составе слитых белков [Huang, Acta Biochim. Biophys. Sin. 2006, 38: 586-592; Jonasson, Journal of Biotechnology 76 (2000) 215-226]. Для получения с-пептида этим способом создается химерный белок, в котором за лидерным фрагментом следуют несколько последовательностей с-пептида, разделенных аминокислотами, обеспечивающих гидролиз специфическими протеазами. На первом этапе происходит культивирование микроорганизмов в ферментерах, затем в них индуцируется синтез рекомбинантного полипептида; клетки разрушаются, и рекомбинантный белок очищается и обрабатывается специфическими протеазами, приводящими к получению с-пептида. На заключительном этапе происходит очистка с-пептида от примесей. Данный способ может обеспечить большие объемы производства, но требует создания штаммов-продуцентов, отработки условий культивирования микроорганизмов, способов очистки рекомбинантного белка, а также создания и валидации методов контроля качества.2) Obtaining a c-peptide by biosynthetic methods as part of fusion proteins [Huang, Acta Biochim. Biophys. Sin. 2006, 38: 586-592; Jonasson, Journal of Biotechnology 76 (2000) 215-226]. To obtain a c-peptide by this method, a chimeric protein is created in which the leader fragment is followed by several c-peptide sequences separated by amino acids that provide hydrolysis with specific proteases. At the first stage, microorganisms are cultured in fermenters, then synthesis of a recombinant polypeptide is induced in them; the cells are destroyed, and the recombinant protein is purified and processed with specific proteases, resulting in a c-peptide. At the final stage, the c-peptide is purified from impurities. This method can provide large volumes of production, but it requires the creation of producer strains, development of the conditions for the cultivation of microorganisms, methods for purification of recombinant protein, as well as the creation and validation of quality control methods.
3) Получение с-пептида биосинтетическими методами совместно с инсулином. Этот способ производства заключается во введении некоторых модификаций в технологию получения рекомбинантного инсулина с целью оптимизации получения с-пептида, образующегося на определенных этапах производства, в основе которого лежит получение проинсулина, не подвергающегося модификациям. Данный способ имеет ряд преимуществ. Для получения с-пептида этим способом не требуется создания новых штаммов-продуцентов, отработки технологии очистки и сворачивания белка, создания новых инструментальных методов контроля производственного процесса.3) Obtaining the c-peptide by biosynthetic methods together with insulin. This production method consists in introducing some modifications into the technology for producing recombinant insulin in order to optimize the production of c-peptide formed at certain stages of production, which is based on the production of non-modifying proinsulin. This method has several advantages. To obtain a c-peptide in this way, it is not necessary to create new producer strains, to develop protein purification and folding technology, or to create new instrumental methods for controlling the production process.
Кроме того, сырьем для получения с-пептида, в данном случае, являются отходы, образующиеся при производстве рекомбинантного инсулина. Наиболее близким по технической сущности к заявляемому изобретению является способ получения с-пептида, предложенный J. Nilsson с соавторами (1). Способ заключается в культивировании штамма-продуцента Е.coli, продуцирующего проинсулин, содержащий два синтетических IgG связывающих домена стафилококкового белка А. Авторам удалось добиться высокой продуктивности штамма-продуцента за счет использования ими разработанной богатой питательной среды. Выход проинсулина составлял 3 г/л питательной среды. Схема выделения заключалась в разрушении бактериальных клеток, получении «телец включения», содержащих проинсулин, растворении «телец включения», окислительного сульфитолиза проинсулина, его ренатурации, очистке ренатурированного белка аффинной хроматографией на IgG-сефарозе, расщеплении проинсулина протеолитическими ферментами (трипсином и карбоксипептидазой В) и заключительной очистке инсулина и с-пептида высокоэффективной жидкостной хроматографией с обращенной фазой. Недостатками данного способа являются:In addition, the raw material for the production of the c-peptide, in this case, is the waste generated by the production of recombinant insulin. Closest to the technical nature of the claimed invention is a method for producing a c-peptide proposed by J. Nilsson et al. (1). The method consists in cultivating a producer strain of E. coli , producing proinsulin, containing two synthetic IgG binding domains of staphylococcal protein A. The authors were able to achieve high productivity of the producer strain by using their developed rich nutrient medium. The proinsulin yield was 3 g / l of culture medium. The isolation scheme consisted of destruction of bacterial cells, production of inclusion bodies containing proinsulin, dissolution of inclusion bodies, oxidative sulfitolysis of proinsulin, its renaturation, purification of the renatured protein by affinity chromatography on IgG-sepharose, cleavage of proinsulin with proteolytic enzymes (trypsin b carboxypeptide) and final purification of insulin and c-peptide by reverse phase high performance liquid chromatography. The disadvantages of this method are:
А) использование богатой питательной среды для выращивания микроорганизма, длительное время выращивания (около 34 час), высокая себестоимость целевого продукта, обусловленная использованием для очистки аффинного сорбента, дорогого в производстве и недолговечного при промышленном использовании. Недостатком также можно считать использование в технологии получения инсулина и с-пептида детергента Tween 20. Известно, что использование детергентов при выделении белков приводит к их сорбции на белок и присутствию детергента в конечном продукте. Также очистка с-пептида только методом хроматографии с обращенной фазой приводит к низкому выходу на данной стадии, которая составляет всего 44%.A) the use of a rich nutrient medium for growing a microorganism, a long growing time (about 34 hours), the high cost of the target product due to the use of an affinity sorbent for cleaning, which is expensive to manufacture and short-lived in industrial use. The disadvantage can also be considered the use of Tween 20 detergent in the technology of insulin and c-peptide production. It is known that the use of detergents in the isolation of proteins leads to their sorption on the protein and the presence of detergent in the final product. Also, purification of the c-peptide only by reverse phase chromatography leads to a low yield at this stage, which is only 44%.
Б) Выделение и очистка проинсулина как промежуточного продукта усложняет процесс и снижает выход целевых продуктов.B) Isolation and purification of proinsulin as an intermediate product complicates the process and reduces the yield of target products.
Настоящее изобретение устраняет имеющиеся недостатки способов получения с-пептида.The present invention eliminates the disadvantages of the methods for producing the c-peptide.
Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION
В данном изобретении описывается способ получения рекомбинантного с-пептида, который полностью совместим с существующей технологией получения рекомбинантного инсулина человека, раскрытый в патенте Российской Федерации RU2144957, дата публикации 27 января 2000 г.The present invention describes a method for producing a recombinant c-peptide, which is fully compatible with the existing technology for the production of recombinant human insulin, disclosed in the patent of the Russian Federation RU2144957, publication date January 27, 2000
Сущность изобретения состоит в способе получения рекомбинантного с-пептида человека, включающем культивирование штамма-продуцента Escherichia coli, разрушение бактериальных клеток дезинтеграцией, отделение «телец включения», содержащих гибридный белок, их растворение в буфере, содержащем мочевину и дитиотреитол, ренатурацию и очистку ренатурированного гибридного белка, его расщепление трипсином и карбоксипептидазой В с последующей очисткой и получением целевого продукта. В качестве штамма-продуцента используют штамм Escherichia coli JM109/pPINS07, очистку ренатурированного гибридного белка осуществляют путем осаждения примесных соединений подкислением до рН 4,0-6,0 с последующей хроматографией надосадочной жидкости на КМ-сефарозе, расщепление гибридного белка трипсином и карбоксипептидазой В осуществляют одновременно, при этом продукты трипсинолиза разделяют хроматографией на SP-сефарозе, уравновешенной 0,03-0,1 М аммоний-ацетатным буфером, рН 5,0-6,0, содержащим 3 М мочевины, с элюцией линейным градиентом хлористого калия от 0 до 0,5 М в стартовом буфере. Белковый материал, не сорбирующийся при данных условиях и содержащий с-пептид, собирают и затем проводят очистку с-пептида на анионообменных сорбентах и методами обращенно-фазовой высокоэффективной хроматографии.The essence of the invention consists in a method for producing a recombinant human c-peptide, comprising cultivating a producer strain of Escherichia coli , destroying bacterial cells by disintegration, separating “inclusion bodies” containing the hybrid protein, dissolving them in a buffer containing urea and dithiothreitol, renaturation and purification of the renatured hybrid protein, its splitting with trypsin and carboxypeptidase B followed by purification and obtaining the target product. As the producer strain, the strain Escherichia coli JM109 / pPINS07 is used, the renatured hybrid protein is purified by precipitation of impurity compounds by acidification to pH 4.0-6.0, followed by chromatography of the supernatant on KM-sepharose, cleavage of the hybrid protein by trypsin and carboxypeptidase B is carried out at the same time, trypsinolysis products are separated by chromatography on SP-Sepharose, equilibrated with 0.03-0.1 M ammonium acetate buffer, pH 5.0-6.0, containing 3 M urea, eluting with a linear gradient of potassium chloride from 0 to 0.5 M in the start buffer. Protein material that is not sorbed under these conditions and contains a c-peptide is collected and then the c-peptide is purified on anion-exchange sorbents and by reverse phase high-performance chromatography.
Основное отличие данного способа получения с-пептида заключается в том, что для его производства не требуется расходов на культивирование микроорганизма, выделение и очистку гибридного белка, а также на ферментную обработку, так как при выбранных условиях гидролиза гибридного белка с-пептид не разрушается и сохраняет свою структуру.The main difference of this method for producing the c-peptide is that its production does not require expenses for cultivating the microorganism, isolation and purification of the hybrid protein, as well as for enzyme treatment, since under the selected conditions for the hydrolysis of the hybrid protein, the c-peptide does not break down and retains its structure.
К числу непосредственных затрат на производство с-пептида относятся затраты, связанные с двумя стадиями хроматографической очистки и лиофилизацией. Причем за счет применения анионообменной хроматографии низкого давления удается существенно продлить ресурс сорбентов, применяемых для высокоэффективной хроматографии, и повысить выход с-пептида на стадии очистки.Among the direct costs for the production of c-peptide are those associated with two stages of chromatographic purification and lyophilization. Moreover, due to the use of low pressure anion exchange chromatography, it is possible to significantly extend the resource of sorbents used for high-performance chromatography and increase the yield of c-peptide at the purification stage.
Наилучший вариант осуществления настоящего изобретенияBEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
Для получения рекомбинантного с-пептида человека используют рекомбинантный штамм бактерии Escherichia coli JM109/рPINS07-продуцент гибридного полипептида, содержащего проинсулин человека. Штамм депонирован в Центральной коллекции микроорганизмов Российского акционерного общества «БИОПРЕПАРАТ» ЦКМК «Б» под № ЦКМ В-66ИН.To obtain a recombinant human c-peptide, a recombinant strain of the bacterium Escherichia coli JM109 / pPINS07-producer of a hybrid polypeptide containing human proinsulin is used. The strain is deposited in the Central collection of microorganisms of the Russian joint-stock company "BIOPREPARAT" CCMK "B" under the number CCM V-66IN.
Выращивание посевной и основной культуры рекомбинантного штамма проводят на питательной среде, содержащей в г/л: гидролизат казеина солянокислый - 20, экстракт пекарских дрожжей - 14, двузамещенный фосфат калия трехводный - 6, однозамещенный фосфат калия - 3, сульфат магния - 0,5, натрий хлористый - 5, глюкозу - 10, ампициллина натриевую соль - 0,05, воду очищенную - остальное. Посевной материал используют для засева ферментера общей емкостью 200-1500 л. Для индукции синтеза гибридного белка в середине логарифмической фазы роста вносят 1-изопропил-Р-В-1-тиогалактопиранозид. В процессе выращивания концентрацию растворенного кислорода поддерживают на уровне 40±15%, количество вводимой глюкозы регулируют по уровню растворенного кислорода и рН. После окончания выращивания культуру концентрируют на сепараторе и разрушают на гомогенизаторе Гаулина в 0,1 М Трис-буфере, содержащем 1,5 М мочевины и 1 мМ ЭДТА. «Тельца включения» отделяют центрифугированием.The cultivation of the seed and main culture of the recombinant strain is carried out on a nutrient medium containing in g / l: hydrochloric acid casein hydrolyzate - 20, baker's yeast extract - 14, disubstituted potassium phosphate three-water - 6, monosubstituted potassium phosphate - 3, magnesium sulfate - 0.5, sodium chloride - 5, glucose - 10, ampicillin sodium salt - 0.05, purified water - the rest. The seed is used for sowing a fermenter with a total capacity of 200-1500 liters. To induce the synthesis of a hybrid protein in the middle of the logarithmic growth phase, 1-isopropyl-P-B-1-thiogalactopyranoside is introduced. During the growing process, the concentration of dissolved oxygen is maintained at 40 ± 15%, the amount of glucose introduced is regulated by the level of dissolved oxygen and pH. After growing, the culture is concentrated on a separator and destroyed on a Gaulin homogenizer in 0.1 M Tris buffer containing 1.5 M urea and 1 mM EDTA. “Inclusion bodies” are separated by centrifugation.
Выделение гибридного белка из гранул проводят по следующей схеме.The selection of the hybrid protein from the granules is carried out according to the following scheme.
«Тельца включения» растворяют в буфере, содержащем 0,1 М Трис, 8 М мочевину, после чего добавляют 5-10 мМ дитиотреитола.“Inclusion bodies” are dissolved in a buffer containing 0.1 M Tris, 8 M urea, after which 5-10 mM dithiothreitol is added.
Гибридный белок ренатурируют путем инкубации в 5-10-кратном объеме 0,1 М глицин-NaOH буфера, рН 9-11 при t = 10-14°С.The hybrid protein is renatured by incubation in a 5-10-fold volume of 0.1 M glycine-NaOH buffer, pH 9-11 at t = 10-14 ° C.
Кислотное осаждение проводят доведением рН до 4,0-6,0 раствором НСl. Образовавшийся осадок отделяют микрофильтрацией.Acid precipitation is carried out by adjusting the pH to 4.0-6.0 with a HCl solution. The precipitate formed is separated by microfiltration.
Очистку гибридного белка проводят хроматографией на КМ-сефарозе, уравновешенной 0,05 трис-HCl буфером, рН 7,0-7,5. Белок элюируют уравновешивающим буфером, содержащим 0,25 М NaCl и 1,5 М мочевины.Purification of the hybrid protein is carried out by chromatography on KM-Sepharose, balanced with 0.05 Tris-HCl buffer, pH 7.0-7.5. The protein is eluted with a balancing buffer containing 0.25 M NaCl and 1.5 M urea.
Ферментативное расщепление гибридного белка трипсином и карбоксипептидазой В проводят при соотношении карбоксипептидаза:гибридный белок - 0,3:1000. Соотношение трипсин:карбоксипептидазы В составляет 0,75:1. Реакцию начинают при температуре 8,5-9,5°С, затем реакционную смесь постепенно нагревают до 17-20°С. После завершения процесса реакцию останавливают подкислением трифторуксусной кислотой до рН 3,3.Enzymatic cleavage of the fusion protein with trypsin and carboxypeptidase B is carried out at a ratio of carboxypeptidase: fusion protein of 0.3: 1000. The ratio of trypsin: carboxypeptidase B is 0.75: 1. The reaction is started at a temperature of 8.5-9.5 ° C, then the reaction mixture is gradually heated to 17-20 ° C. After completion of the process, the reaction is stopped by acidification with trifluoroacetic acid to a pH of 3.3.
Продукты трипсинолиза хроматографируют на SP-сефарозе, уравновешенной 0,03 М аммоний-ацетатным буфером, рН 3,6, содержащим 3 М мочевину. На этой стадии инсулин сорбируется на носитель, а с-пептид элюируется во фракциях проскока.Trypsinolysis products were chromatographed on SP-Sepharose, equilibrated with 0.03 M ammonium acetate buffer, pH 3.6, containing 3 M urea. At this stage, insulin is adsorbed onto the carrier, and the c-peptide elutes in the breakthrough fractions.
Фракции проскока разводят в соотношении вода:материал - 3:1 и доводят рН до величины 4,0-6,0. Затем этот материал подвергается хроматографии на анионообменном сорбенте. Элюция осуществляется в трис-ацетатном буфере рН 5,0 повышением градиента хлористого калия до 0,5 М.The breakthrough fractions are diluted in the ratio water: material - 3: 1 and the pH is adjusted to a value of 4.0-6.0. Then this material is subjected to chromatography on an anion-exchange sorbent. Elution is carried out in Tris-acetate buffer pH 5.0 by increasing the gradient of potassium chloride to 0.5 M.
Фракции, содержащие чистый материал, подвергают очистке на стандартном оборудовании для препаративной обращенно-фазной хроматографии.Fractions containing pure material are purified using standard preparative reverse phase chromatography equipment.
Чистый материал подвергается лиофильной сушке и хранится в таком виде до использования.Pure material is freeze dried and stored as such until used.
Пример получения с-пептида на опытно-промышленном оборудованииAn example of obtaining c-peptide in experimental industrial equipment
1. Выращивание биомассы продуцента, содержащей гибридный белок1. Growing biomass producer containing a hybrid protein
Рабочую культуру клеток рекомбинантного штамма Escherichia coli JМ109/рРINS07-продуцента гибридного полипептида (белка), содержащего проинсулин человека, хранят в водно-глицериновом растворе в стеклянных или полимерных ампулах при температуре минус 40°С.The working cell culture of the recombinant strain of Escherichia coli JM109 / pINS07 producer of the hybrid polypeptide (protein) containing human proinsulin is stored in a water-glycerin solution in glass or polymer ampoules at a temperature of minus 40 ° C.
На всех стадиях размножения микробных культур используют питательную среду следующего состава (г/л): At all stages of reproduction of microbial cultures, a nutrient medium of the following composition is used (g / l):
Опытно-промышленная линия для выращивания биомассы продуцента состоит из качалки-инкубатора на 12 качалочных колб и ферментеров вместимостью 15, 150 и 1500 л. Посевные культуры готовят в количестве 1/10 от объема засеваемой питательной среды. На первом этапе размножения 2 колбы с питательной средой засевают содержимым одной ампулы с рабочей культурой и инкубируют в качалке при 37°С в течение 18 час. Выращенной культурой засевают 10-12 колб, содержащих по 100 мл питательной среды, и выращивают до оптической плотности (ОП) 4-6 ед. (длина волны - 540 нм, длина оптического пути - 10 мм).A pilot industrial line for growing producer biomass consists of a rocking incubator for 12 rocking flasks and fermenters with a capacity of 15, 150 and 1500 liters. Sowing crops are prepared in the amount of 1/10 of the volume of sown nutrient medium. At the first stage of propagation, 2 flasks with a nutrient medium are inoculated with the contents of one ampoule with a working culture and incubated in a shaker at 37 ° C for 18 hours. A grown culture is seeded with 10-12 flasks containing 100 ml of culture medium and grown to an optical density (OD) of 4-6 units. (wavelength - 540 nm, optical path length - 10 mm).
Цепь ферментеров, изготовленная по индивидуальному заказу, имеет согласованные геометрические, физические и масс-обменные характеристики. Управление процессами подготовки питательных сред и проведения культивирования осуществляется по программам, заложенным в компьютеры.A custom-made fermenter chain has a consistent geometric, physical and mass transfer characteristics. Management of the preparation of culture media and cultivation is carried out according to the programs embedded in computers.
Основные условия выращивания посевных культурThe main conditions for growing crops
Для всех посевных культур проводят структурно-морфологический анализ, при котором оценивается не только «чистота» культур, но и морфологическая структура клеток микроорганизма. По результатам анализа принимается решение о возможности дальнейшего использования посевного материала.Structural morphological analysis is carried out for all inoculum crops, in which not only the “purity” of the crops is evaluated, but also the morphological structure of the microorganism cells. Based on the results of the analysis, a decision is made on the possibility of further use of seed.
Выращивание основной культуры продуцента проводят в ферментере общей емкостью 1500 л. Состав питательной среды и основные условия культивирования такие же, как и для посевных культур, однако для индуцирования биосинтеза гибридного белка на определенной стадии развития культуры в нее вносится индуктор 1-изопропил-р-0-1-тиогалактопиранозид. Максимальное накопление гибридного белка происходит в том случае, когда индукцию гибридного белка провоцируют в середине логарифмической фазы роста. Для выбранных нами условий выращивания это соответствует накоплению биомассы 7-10 ед. ОП. После добавления индуктора выращивание продолжают до образования внутриклеточных включений гибридного белка «телец включения» у 90-95% клеток. Экспресс-контроль процесса накопления «телец включения» (ТВ) осуществляют с помощью фазово-контрастной микроскопии препаратов «раздавленная капля».The cultivation of the main culture of the producer is carried out in a fermenter with a total capacity of 1500 liters. The composition of the nutrient medium and the basic cultivation conditions are the same as for inoculum crops, however, to induce the biosynthesis of the hybrid protein at a certain stage of culture development, the inducer 1-isopropyl-p-0-1-thiogalactopyranoside is introduced into it. The maximum accumulation of the hybrid protein occurs when the induction of the hybrid protein is provoked in the middle of the logarithmic growth phase. For our growing conditions, this corresponds to an accumulation of biomass of 7-10 units. OP. After the addition of the inducer, growth is continued until the formation of intracellular inclusions of the fusion protein “inclusion bodies” in 90-95% of cells. Express control of the accumulation of "inclusion bodies" (TV) is carried out using phase-contrast microscopy of drugs "crushed drop".
Основные параметры процесса приведены в таблице.The main process parameters are given in the table.
После образования ТВ у 90-95% клеток дальнейшее культивирование может привести к частичному лизису клеток и потере накопленного гибридного белка.After the formation of TB in 90-95% of cells, further cultivation can lead to partial cell lysis and loss of accumulated hybrid protein.
Согласно результатам ретроспективного анализа в культурах накапливается до 3 г/л гибридного белка.According to the results of a retrospective analysis, up to 3 g / l of the hybrid protein is accumulated in the cultures.
2. Выделение «телец включения»2. Isolation of “inclusion bodies”
Рост культуры в ферментере останавливают путем резкого сокращения интенсивности перемешивания, включая аэрацию, и охлаждение до 10-14°С. Охлажденную культуру концентрируют на сепараторе в 8-10 раз. Получают 100-125 л суспензии, в которую вводят концентрат буфера (на 50 л воды очищенной - 15 кг мочевины, 1,4 кг натриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты и 0,9 кг Трис-буфера).The growth of the culture in the fermenter is stopped by a sharp reduction in the intensity of mixing, including aeration, and cooling to 10-14 ° C. The cooled culture is concentrated on a separator 8-10 times. Get 100-125 l of suspension, into which a buffer concentrate is introduced (for 50 l of purified water - 15 kg of urea, 1.4 kg of sodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid and 0.9 kg of Tris buffer).
Забуференную суспензию дважды пропускают через гомогенизатор Гаулина при давлении 700-800 атм. Температура суспензии не должна быть выше 15-20°С, что достигается охлаждением питателя и приемника гомогенизатора.The buffered suspension is passed twice through a Gaulin homogenizer at a pressure of 700-800 atm. The temperature of the suspension should not be higher than 15-20 ° C, which is achieved by cooling the feeder and receiver of the homogenizer.
Гомогенат клеток пропускают через проточную центрифугу (g = 18000). Основная масса «телец включения» (не менее 90%) осаждается в роторе центрифуги, а растворимые белки и остатки клеточных стенок сбрасываются из центрифуги в сборник для инактивации. Влажный осадок «телец включения», 8-10 кг, выгружают из ротора центрифуги, фасуют в полиэтиленовую тару, замораживают и хранят в морозильнике при температуре минус 40°С. Срок хранения - до 6 месяцев. Потери гибридного белка при выделении «телец включения» не превышают 15%.Cell homogenate is passed through a flow centrifuge (g = 18000). The bulk of the “inclusion bodies” (at least 90%) is deposited in the centrifuge rotor, and soluble proteins and cell wall residues are discharged from the centrifuge into the collection tank for inactivation. Wet sediment “inclusion bodies”, 8-10 kg, is discharged from the centrifuge rotor, packed in a plastic container, frozen and stored in a freezer at a temperature of minus 40 ° С. Shelf life - up to 6 months. Losses of the hybrid protein during the isolation of “inclusion bodies” do not exceed 15%.
3. Выделение гибридного белка3. Isolation of the hybrid protein
В реактор объемом 250 л заливают 100 л буферного раствора, содержащего 8 М мочевины, загружают 10-12 кг пасты «телец включения» и включают перемешивающее устройство. После растворения «телец включения» добавляют в реактор 0,150 кг дитиотреитола и продолжают перемешивать в течение 10-12 час.100 l of a buffer solution containing 8 M urea is poured into a 250-liter reactor, 10-12 kg of inclusion Taurus paste is loaded and a mixing device is turned on. After dissolution of the inclusion body, 0.150 kg of dithiothreitol is added to the reactor and stirring is continued for 10-12 hours.
В реактор с рубашкой объемом 1200 л заливают 900 л глицин-NaOH буфера, рН 9-11 и охлаждают его до температуры 10-14°С, подавая в рубашку охлажденную воду. После того как буфер охладится, начинают насосом подавать в реактор раствор гибридного белка с восстановленными дисульфидными связями. В течение 20-24 час инкубируют раствор гибридного белка, перемешивая и поддерживая температуру в реакторе 10-14°С.900 l of glycine-NaOH buffer, pH 9-11, is poured into a reactor with a 1200-liter jacket; it is cooled to a temperature of 10-14 ° C, feeding chilled water to the jacket. After the buffer has cooled, a hybrid protein solution with reduced disulfide bonds is pumped into the reactor. The hybrid protein solution is incubated for 20-24 hours, mixing and maintaining the temperature in the reactor 10-14 ° C.
После того как 75-80% гибридного белка (ГБ) ренатурирует с образованием правильно замкнутых S-S связей (контроль методом ОФ ВЭЖХ), проводят подкисление реакционной среды в реакторе до рН 4,0-5,5 раствором соляной кислоты. Останавливают перемешивание и через 4-5 час отделяют сформировавшийся осадок на микрофильтрационной установке. Правильно свернутый гибридный белок сорбируют из фильтрата на ионообменную колонку объемом 20 л, заполненную КМ-сефарозой, предварительно уравновешенной 0,05 М трис-HCl буфером, рН 7,0-7,5.After 75-80% of the hybrid protein (GB) is renatured with the formation of correctly closed S-S bonds (control by RP-HPLC), the reaction medium is acidified in the reactor to a pH of 4.0-5.5 with a hydrochloric acid solution. Stirring is stopped and after 4-5 hours the precipitate formed is separated on a microfiltration unit. A correctly folded hybrid protein is sorbed from the filtrate onto a 20 L ion-exchange column filled with KM-Sepharose, previously equilibrated with 0.05 M Tris-HCl buffer, pH 7.0-7.5.
Сорбированный белок элюируют с колонки, пропуская через нее уравновешивающий буфер с добавлением 0,25 М NaCl и 1,5 М мочевины.Sorbed protein is eluted from the column by passing a equilibration buffer with 0.25 M NaCl and 1.5 M urea through it.
Фракции, содержащие гибридный белок с чистотой не менее 95% (ОФ ВЭЖХ), объединяют и используют для дальнейшей работы.Fractions containing a hybrid protein with a purity of at least 95% (RP HPLC) are combined and used for further work.
4. Ферментативный гидролиз гибридного белка4. Enzymatic hydrolysis of a hybrid protein
Расщепление ГБ трипсином и карбоксипептидазой В ведут в реакторе из нержавеющей стали, снабженном перемешивающим устройством и рубашкой.Cleavage of HB with trypsin and carboxypeptidase B is carried out in a stainless steel reactor equipped with a stirrer and a jacket.
Раствор ГБ в количестве 100-150 л (содержание белка 1-1,2 кг) вносят в реактор, включают перемешивающее устройство и подают в рубашку охлажденную воду с температурой 8-9°С. Через 30-40 мин после того как раствор ГБ охладится до температуры 10-12°С, измеряют показатель рН раствора ГБ и с помощью 1 М раствора трис-(оксиметил)аминометана доводят его значение до рН 7,0-7,5. Затем в реактор вносят раствор карбоксипептидазы В и трипсина из расчета, что массовое соотношение внесенной в реактор карбоксипептидазы В и гибридного белка равно 0,3:1000, а массовое соотношение трипсина и карбоксипептидазы В составляет 0,75:1. Через 1000-1200 мин реакцию расщепления ГБ трипсином останавливают, подкисляя содержимое реактора трифторуксусной кислотой до рН 3,3.The GB solution in an amount of 100-150 l (protein content 1-1.2 kg) is introduced into the reactor, a stirring device is turned on and chilled water is supplied to the jacket at a temperature of 8-9 ° C. 30-40 minutes after the GB solution is cooled to a temperature of 10-12 ° C, the pH of the GB solution is measured and, using a 1 M solution of tris- (oxymethyl) aminomethane, its value is adjusted to a pH of 7.0-7.5. Then, a solution of carboxypeptidase B and trypsin is introduced into the reactor on the basis that the mass ratio of carboxypeptidase B and fusion protein introduced into the reactor is 0.3: 1000, and the mass ratio of trypsin and carboxypeptidase B is 0.75: 1. After 1000-1200 min, the reaction of cleavage of GB with trypsin was stopped by acidifying the contents of the reactor with trifluoroacetic acid to a pH of 3.3.
Полученный раствор наносят на хроматографическую колонку объемом 20 л, заполненную SP-сефарозой, предварительно уравновешенной 0,03 М аммоний-ацетатным буфером, рН 3,6 с добавкой 3 М мочевины и собирают фракции, содержащие с-пептид. На данной стадии на SP-сефарозу сорбируется инсулин, а с-пептид не взаимодействует с сорбентом и выходит во фракциях проскока.The resulting solution was applied to a 20 L chromatographic column filled with SP-Sepharose, previously equilibrated with 0.03 M ammonium acetate buffer, pH 3.6 with 3 M urea, and fractions containing c-peptide were collected. At this stage, insulin is adsorbed on SP-Sepharose, and the c-peptide does not interact with the sorbent and leaves in the breakthrough fractions.
Фракции, содержащие с-пептид, объединяют, разводят водой в объемном соотношении материал:вода 3:1 и после подведения рН до 4-6 наносят на колонку. Затем колонку промывают 20 мМ трис-ацетатным буфером, рН 5,0 до достижения базовой линии контрольного проточного денситометра. Сорбированный с-пептид элюируют линейным градиентом хлористого калия от 0 до 0,5 М в том же буфере.The fractions containing c-peptide are combined, diluted with water in a volume ratio of material: water of 3: 1, and after adjusting the pH to 4-6, apply to the column. The column is then washed with 20 mM Tris-Acetate buffer, pH 5.0, until the baseline of the control flow densitometer is reached. The sorbed c-peptide is eluted with a linear gradient of potassium chloride from 0 to 0.5 M in the same buffer.
Объединяют фракции, содержащие с-пептид с чистотой не менее 90% (контроль осуществляется методом аналитической обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии - ОФ ВЭЖХ), и передают на стадию препаративной ОФ ВЭЖХ. Затем доводят рН раствора до значения 6,3-6,5 10% раствором аммиака. Средний выход на данной стадии очистки превышает 85%.The fractions containing the c-peptide with a purity of at least 90% are combined (control is carried out by analytical reverse phase high performance liquid chromatography — RP-HPLC) and transferred to the preparative RP-HPLC step. Then the pH of the solution is adjusted to a value of 6.3-6.5 with 10% ammonia solution. The average yield at this stage of purification exceeds 85%.
5. Очистка с-пептида методом препаративной обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографией (ОФ ВЭЖХ)5. Purification of the c-peptide by preparative reverse phase high performance liquid chromatography (RP HPLC)
Очистку с-пептида методом ОФ ВЭЖХ проводят на стандартном оборудовании Kiloprep 250 фирмы Waters, США или аналогичном оборудовании других фирм. Установка включает в свой состав следующие элементы:Purification of the c-peptide by RP HPLC was carried out using standard equipment Kiloprep 250 from Waters, USA, or similar equipment from other companies. The installation includes the following elements:
блок управления,Control block,
двуголовочный мембранный насос высокого давления,double-head high pressure diaphragm pump,
насос высокого давления для закачки пробы на разделение,high pressure pump for injection of separation sample,
ультрафиолетовый детектор с переменной длиной волны,variable wavelength ultraviolet detector,
препаративная колонка с устройством для радиального сжатия,preparative column with a device for radial compression,
пневморегулируемые клапаны потока на выходе,pneumatically controlled outlet flow valves,
компьютер для управления и обработки данных.computer for managing and processing data.
Подготовку хроматографической установки к работе проводят согласно инструкции фирмы-изготовителя для отдельных блоков и установки в целом.The preparation of the chromatographic installation for work is carried out according to the manufacturer's instructions for individual units and the installation as a whole.
Для проведения работ устанавливают картридж, заполненный силикагелем с привитой фазой C18 фирмы "Videk", США, в колонку и создают в рубашке колонки давление согласно прилагаемому к картриджу паспорту. Подключают колонку гибкими армированными шлангами к хроматографу. Промывают колонку последовательно раствором 0,1% ТФУ в количестве 2-3 объема колонки, затем 1-2 объемами ацетонитрила (В) и 1-2 объемами воды. Подготовленная таким образом колонка используется на стадии очистки.For work, install a cartridge filled with C 18 grafted silica gel from Videk, USA, into the column and create pressure in the column jacket according to the passport attached to the cartridge. Connect the column with flexible reinforced hoses to the chromatograph. The column is washed sequentially with a solution of 0.1% TFA in an amount of 2-3 column volumes, then with 1-2 volumes of acetonitrile (B) and 1-2 volumes of water. The column thus prepared is used in the purification step.
В подготовленную колонку при помощи насоса для подачи пробы из емкости подают раствор с-пептида с предыдущей стадии в количестве 35-40 г белка. Включают программирующее устройство и ведут разделение по следующей программе: A solution of c-peptide from the previous step in the amount of 35-40 g of protein is supplied to the prepared column using a pump for supplying a sample from the container. They turn on the programming device and carry out the division according to the following program:
Регистрацию процесса разделения ведут при 220 нм на проточном спектрофотометре при чувствительности прибора 2,0. Сбор фракций белка ведут при помощи коллектора хроматографа или вручную. Собранные фракции основного пика с-пептида анализируются на содержание примесей методом аналитической обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Выход с-пептида на данной стадии превышает 80%. Таким образом, суммарный выход по двум стадиям хроматографической очистки составляет более 70%, что более чем в 1,5 раза превышает полученный Nilsson еt al.The separation process is recorded at 220 nm on a flow spectrophotometer with a sensitivity of 2.0. Protein fractions are collected using a chromatograph collector or manually. The collected fractions of the main peak of the c-peptide are analyzed for impurities by analytical reverse phase high performance liquid chromatography. The yield of c-peptide at this stage exceeds 80%. Thus, the total yield of the two stages of chromatographic purification is more than 70%, which is more than 1.5 times higher than that obtained by Nilsson et al.
6. Финишная очистка и лиофилизация с-пептида6. Finishing and lyophilization of c-peptide
Фракции, содержащие не менее 95% с-пептида, объединяют в стеклянном реакторе, снабженном рубашкой, датчиками температуры и рН. Затем доводят рН раствора до значения 6,3-6,5 10% раствором аммиака. Материал подвергается стерилизующей фильтрации и в стерильных условиях разливается по флаконам. Затем осуществляется лиофильное высушивание препарата и укупорка флаконов в стерильных условиях. Таким образом, применение данного способа позволяет с высоким выходом получать с-пептид проинсулина человека с чистотой не менее 95% из отходов, образующихся в процессе получения рекомбинантного инсулина человека.Fractions containing at least 95% c-peptide are combined in a jacketed glass reactor with temperature and pH sensors. Then the pH of the solution is adjusted to a value of 6.3-6.5 with 10% ammonia solution. The material undergoes sterilizing filtration and is poured into vials under sterile conditions. Then freeze-drying of the preparation and capping of the bottles under sterile conditions are carried out. Thus, the use of this method allows to obtain in high yield a human pro-insulin c-peptide with a purity of at least 95% from waste generated in the process of producing recombinant human insulin.
Список литературыBibliography
1. Nilson J., Jonasson P., Samuelsson E., Stahl S., Uhlen M. Integrated production of human insulin and its C-peptide. 1996, Journal of biotechnology, v. 48, p. 241-250.1. Nilson J., Jonasson P., Samuelsson E., Stahl S., Uhlen M. Integrated production of human insulin and its C-peptide. 1996, Journal of biotechnology, v. 48, p. 241-250.
2. Патент RU 2144957, 27.01.2000.2. Patent RU 2144957, 01.27.2000.
3. Johansson et al., 1992.3. Johansson et al., 1992.
4. Ido, Science, 1997, 277, 563-566.4. Ido, Science, 1997, 277, 563-566.
5. Forst, 1998, Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes, 106, 270-276.5. Forst, 1998, Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes, 106, 270-276.
6. Huang, Acta Biochim. Biophys. Sin. 2006, 38: 586-592.6. Huang, Acta Biochim. Biophys. Sin. 2006, 38: 586-592.
7. Jonasson, Journal of Biotechnology 76 (2000) 215-226.7. Jonasson, Journal of Biotechnology 76 (2000) 215-226.
Claims (2)
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007135323/10A RU2451750C2 (en) | 2007-09-24 | 2007-09-24 | Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide |
PCT/RU2008/000615 WO2009041858A1 (en) | 2007-09-24 | 2008-09-23 | METHOD FOR PRODUCING HUMAN PROINSULIN RECOMBINANT c-PEPTIDE |
EA201070372A EA201070372A1 (en) | 2007-09-24 | 2008-09-23 | METHOD OF OBTAINING RECOMBINANT c-PEPTIDE PROINSULIN |
UAA201004806A UA99481C2 (en) | 2007-09-24 | 2008-09-23 | Process for production of recombinant human proinsulin c-peptide |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007135323/10A RU2451750C2 (en) | 2007-09-24 | 2007-09-24 | Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2007135323A RU2007135323A (en) | 2009-03-27 |
RU2451750C2 true RU2451750C2 (en) | 2012-05-27 |
Family
ID=40511663
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007135323/10A RU2451750C2 (en) | 2007-09-24 | 2007-09-24 | Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
EA (1) | EA201070372A1 (en) |
RU (1) | RU2451750C2 (en) |
UA (1) | UA99481C2 (en) |
WO (1) | WO2009041858A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2590781C1 (en) * | 2015-03-04 | 2016-07-10 | Открытое акционерное общество "Уралэлектромедь" | Method of extracting antimony and lead |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU2013234860B2 (en) * | 2012-03-19 | 2016-01-21 | Madeleine Pharmaceuticals Pty Ltd | Method of producing a recombinant peptide |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2141531C1 (en) * | 1999-05-26 | 1999-11-20 | Российское акционерное общество открытого типа "Биопрепарат" | Method of recombinant human insulin preparing |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE19735711C2 (en) * | 1997-08-18 | 2001-04-26 | Aventis Pharma Gmbh | Process for the preparation of a precursor to insulin or insulin derivatives with correctly linked cystine bridges |
RU2144082C1 (en) * | 1998-07-23 | 2000-01-10 | Навашин Петр Сергеевич | Recombinant plasmid encoding fused protein-precursor of human insulin (variants), strain of bacterium escherichia coli - producer of fused protein-precursor of human insulin (variants), method of human insulin preparing |
RU2144957C1 (en) * | 1999-02-26 | 2000-01-27 | Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН | Recombinant plasmid dna ppins07 encoding fused polypeptide containing human proinsulin and strain of bacterium escherichia coli - producer of fused polypeptide containing human proinsulin |
RU2208637C1 (en) * | 2002-04-16 | 2003-07-20 | Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН | Method for preparing gene-engineering human insulin |
RU2232813C1 (en) * | 2003-02-18 | 2004-07-20 | Открытое акционерное общество "Национальные биотехнологии" | Method for industrial preparing human recombinant insulin |
-
2007
- 2007-09-24 RU RU2007135323/10A patent/RU2451750C2/en active
-
2008
- 2008-09-23 EA EA201070372A patent/EA201070372A1/en unknown
- 2008-09-23 WO PCT/RU2008/000615 patent/WO2009041858A1/en active Application Filing
- 2008-09-23 UA UAA201004806A patent/UA99481C2/en unknown
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2141531C1 (en) * | 1999-05-26 | 1999-11-20 | Российское акционерное общество открытого типа "Биопрепарат" | Method of recombinant human insulin preparing |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
JOAKIM NILSSON et al., Integrated production of human insulin and its C-peptide, Journal of Biotechnology, 1996, Vol.48, p.p.241-250. JIN-QIU CHEN et al., Production of Human Insulin in an E.coli System with Met-Lys-Human Proinsulin as the Expressed Precursor, Applied Biochemistry and Biotechnology, 1995, Vol.55, p.p.5-15. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2590781C1 (en) * | 2015-03-04 | 2016-07-10 | Открытое акционерное общество "Уралэлектромедь" | Method of extracting antimony and lead |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EA201070372A1 (en) | 2010-10-29 |
WO2009041858A1 (en) | 2009-04-02 |
UA99481C2 (en) | 2012-08-27 |
RU2007135323A (en) | 2009-03-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Moks et al. | Large–Scale Affinity Purification of Human Insulin–Like Growth Factor I from Culture Medium of Escherichia Coli | |
CN102482332B (en) | For obtaining the method and system of botulic neurotoxin | |
CN109879970A (en) | A kind of fusion protein and its method for preparing Liraglutide intermediate polypeptide | |
JPH11504217A (en) | Method for producing anti-obesity protein | |
CN100579986C (en) | Production method of insulinotropic secretion peptide GLP-1(7-36) and GLP-1 analog | |
CN113121705B (en) | Fusion protein for preparing short peptide mixture, target polypeptide, preparation method and application of short peptide mixture | |
CN113105536B (en) | New proinsulin glargine and method for preparing insulin glargine by using same | |
CN110128521A (en) | For producing auxilin, encoding gene, recombination fusion protein, recombinant expression carrier and the preparation method of recombination fusion protein | |
CN109486800A (en) | A kind of novel lysyl endopeptidase and preparation method thereof | |
WO2010062279A1 (en) | Method for producing human recombinant insulin | |
RU2354702C2 (en) | RECOMBINANT PLASMID DNA pHINS11 CODING HYBRID PROTEIN-HUMAN INSULIN PRECURSOR, Escherichia coli CELL, TRANSFORMED WITH RECOMBINANT PLASMID DNA pHINS11, Escherichia coli BACTERIA STRAIN JM109/pHINS11 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN-HUMAN INSULIN PRECURSOR, AND METHOD OF OBTAINING HUMAN INSULIN | |
RU2451750C2 (en) | Method of producing recombinant human proinsulin c-peptide | |
RU2141531C1 (en) | Method of recombinant human insulin preparing | |
CN111363048B (en) | Soluble recombinant tartary buckwheat metallothionein FtMT with membrane penetrating activity and preparation method thereof | |
RU2447149C1 (en) | RECOMBINANT PLASMID DNA pMSIN4, CODING HYBRIDE POLYPEPTIDE - HUMAN INSULIN PRECURSOR, BL21(DE3)VpMSIN4-PRODUCER STRAIN OF RECOMBINANT HUMAN INSULIN, METHOD FOR PRODUCING RECOMBINANT HUMAN INSULIN | |
JP3005335B2 (en) | Method for enzymatic conversion of preproinsulin to insulin | |
RU2208637C1 (en) | Method for preparing gene-engineering human insulin | |
CN102732549B (en) | Preparation method of recombinant insulin-like growth factor-I (IGF-I) | |
EA022946B1 (en) | Process for obtaining aspart insulin using a pichia pastoris yeast strain | |
RU2232813C1 (en) | Method for industrial preparing human recombinant insulin | |
RU2322504C1 (en) | Method for preparing genetic-engineering human insulin | |
CN103981242A (en) | Preparation method of insulin | |
RU2714114C1 (en) | Method of producing a peptide which modulates purinergic receptor activity | |
RU2376368C2 (en) | STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli JM109/pHINS21 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN AND METHOD FOR PRODUCTION OF HUMAN PROINSULIN | |
CN100591774C (en) | Process for manufacture of nematode-extracted anticoagulant protein (NAP) |