RU2434018C2 - Method of obtaining and purifying human inhibin-a - Google Patents
Method of obtaining and purifying human inhibin-a Download PDFInfo
- Publication number
- RU2434018C2 RU2434018C2 RU2009149599/10A RU2009149599A RU2434018C2 RU 2434018 C2 RU2434018 C2 RU 2434018C2 RU 2009149599/10 A RU2009149599/10 A RU 2009149599/10A RU 2009149599 A RU2009149599 A RU 2009149599A RU 2434018 C2 RU2434018 C2 RU 2434018C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- inhibin
- solution
- tris
- refrigerator
- centrifuged
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно биохимии, и может быть использовано для получения и очистки ингибина-А.The invention relates to medicine, namely biochemistry, and can be used to obtain and purify inhibin-A.
Из практики медицины известен способ выделения и очистки белка («Способ получения антимикробного пептида ареницина», заявка №2006121111/13 от 16.06.2006; патент №2316595), заключающийся в культивировании рекомбинантного штамма-продуцента Escherichia coli BL21(DE3)/pE-His8-TrxL-Ar2 в питательной среде, разрушении полученных клеток, выделении телец включения, содержащих гибридный белок His8-TrxL-Ar2; очистке гибридного белка методом аффинной хроматографии, солюбилизации белка и расщеплении бромцианом в кислой среде, разделении полученных продуктов реакции, очистке целевого продукта методом обращенно-фазовой ВЭЖХ.From the practice of medicine, a method for isolating and purifying a protein is known (“A method for producing the antimicrobial peptide of arenicin”, application No. 2006121111/13 dated 06.16.2006; patent No. 2316595), which consists in cultivating a recombinant producer strain Escherichia coli BL21 (DE3) / pE-His8 -TrxL-Ar2 in a nutrient medium, destruction of the obtained cells, isolation of inclusion bodies containing the His8-TrxL-Ar2 fusion protein; purification of the hybrid protein by affinity chromatography, solubilization of the protein and cleavage with bromine cyan in an acidic medium, separation of the reaction products, purification of the target product by reverse phase HPLC.
Недостатком способа является низкий выход рекомбинантного пептида, составляющий 5 мг с 1 л клеточной культуры, двукратное использование хроматографии, что повышает стоимость способа.The disadvantage of this method is the low yield of the recombinant peptide of 5 mg per 1 liter of cell culture, the double use of chromatography, which increases the cost of the method.
Известен также способ получения концентрата фактора IX системы свертывания крови из патента «Концентрат фактора IX системы свертывания крови и способ его получения», заявка №2000117508/14 от 05.07.2000; патент №2163140; включающий: сорбцию фактора IX из продуктов донорской плазмы на анионообменнике ДЕАЕ - Toyopearl, промывание анионообменника, центрифугирование, фильтрацию, сорбцию на колонке с анионообменником, элюцию в ступенчатом градиенте ионной силы 200-360 ммоль Na+/л 0,01-0,02 М Трис-HCl буферным раствором с рН 7,0-7,5, содержащим 0,05-0,07 М глицин и 0,05-0,06 М трехзамещенный цитрат натрия, разведение стартовым буфером (рН 7,2-7,8) до концентрации белка 0,35-0,50%, стерилизующую фильтрацию.There is also known a method of obtaining a concentrate of factor IX of the blood coagulation system from the patent "Concentrate of factor IX of the blood coagulation system and method of obtaining it", application No. 20010117508/14 from 05.07.2000; Patent No. 2163140; including: sorption of factor IX from donor plasma products on the DEAE - Toyopearl anion exchanger, washing of the anion exchanger, centrifugation, filtration, sorption on a column with an anion exchanger, elution in a stepwise gradient of ionic strength 200-360 mmol Na + / l 0.01-0.02 M Tris-HCl buffer solution with a pH of 7.0-7.5 containing 0.05-0.07 M glycine and 0.05-0.06 M trisubstituted sodium citrate, dilution with start buffer (pH 7.2-7.8 ) to a protein concentration of 0.35-0.50%, sterilizing filtration.
Недостатком указанного способа является низкий выход целевого продукта и низкая воспроизводимость, что приводит к необходимости повышения затрат на получение целевого продукта.The disadvantage of this method is the low yield of the target product and low reproducibility, which leads to the need to increase the cost of obtaining the target product.
Известен также способ получения РНП (низкомолекулярных рибонуклеопептидов) из ядер клеток из патента «Средство, стимулирующее репарирование повреждений, обладающее ткане-, органо- и стадиеспецифичностью и противовирусной активностью», заявка №2003101855/13 от 24.01.2003, патент №2238756; включающий: отмывание тканей печени крупного рогатого скота от клеток крови в физиологическом растворе, гомогенизацию при низкой температуре в течение 5 минут в растворе, содержащем 0,01 М Трис-HCl буфер рН 8,5, 0,001 М хлористого кальция, 0,001 М ЭДТА и 0,6% Тритона Х-100, центрифугирование, выделение фракции цитоплазматической РНП, промывание, суспензирование в растворе ацетата натрия, содержащего 0,02 М Трис-HCl буфера рН 5,0, 0,001 М ЭДТА и 0,5% додецилсульфата натрия, приливание смеси фенол-хлороформ (1:1), прогревание в течение 10 минут на водяной бане при температуре 40°С, охлаждение, центрифугирование при 5000 об/мин в течение 20 минут, отбирание верхней фазы, приливание 350 мл смеси фенол-хлороформ (1:1), прогревание, центрифугирование, добавление равного объема ацетатного буфера и смеси фенол-хлороформ, прогревание при температуре 50°С, охлаждение, центрифугирование, последовательное повторение этой процедуры при 60, 70 и 80°С, депротеинизацию фаз центрифугатов, приливание 2,5 объема охлажденного этанола, отделение осадка, промывание этанолом, стерилизацию фильтрацией.There is also a method of producing RNP (low molecular weight ribonucleopeptides) from cell nuclei from the patent “Means that stimulates the repair of damage, possessing tissue, organo- and stage-specificity and antiviral activity”, application No. 2003101855/13 of 24.01.2003, patent No. 2238756; including: washing the liver tissue of cattle from blood cells in physiological saline, homogenizing at low temperature for 5 minutes in a solution containing 0.01 M Tris-HCl buffer pH 8.5, 0.001 M calcium chloride, 0.001 M EDTA and 0 , 6% Triton X-100, centrifugation, isolation of the cytoplasmic RNP fraction, washing, suspension in a solution of sodium acetate containing 0.02 M Tris-HCl buffer pH 5.0, 0.001 M EDTA and 0.5% sodium dodecyl sulfate, pouring the mixture phenol-chloroform (1: 1), heating for 10 minutes in a water bath at a temperature ature 40 ° С, cooling, centrifuging at 5000 rpm for 20 minutes, selecting the upper phase, pouring 350 ml of a phenol-chloroform mixture (1: 1), heating, centrifuging, adding an equal volume of acetate buffer and a phenol-chloroform mixture, heating at a temperature of 50 ° C, cooling, centrifugation, sequentially repeating this procedure at 60, 70 and 80 ° C, deproteinization of the phases of centrifugates, pouring 2.5 volumes of chilled ethanol, separating the precipitate, washing with ethanol, and sterilization by filtration.
Недостатком данного способа является многостадийность, низкая степень его воспроизводимости в связи с невозможностью автоматизации, что затрудняет технологический процесс и повышает стоимость целевого продукта.The disadvantage of this method is the multi-stage, low degree of reproducibility due to the impossibility of automation, which complicates the process and increases the cost of the target product.
Наиболее близким к заявляемому изобретению является способ «Очистки и частичной характеристики ингибина в свиной фолликулярной жидкости», описанный в журнале «Biochemical and biophysical research communications", Vol.133, №1, 1985, November 27, 1985, 120-127, заключающийся в приготовлении экстракта из биологических тканей, последовательном осаждении белка органическими растворителями и сульфатом аммония, проведением обращенно-фазовой ВЭЖХ и гель-проникающей ЖВХ.Closest to the claimed invention is a method of "Cleaning and partial characterization of inhibin in porcine follicular fluid" described in the journal "Biochemical and biophysical research communications", Vol.133, No. 1, 1985, November 27, 1985, 120-127, which consists in preparing an extract from biological tissues, sequential precipitation of the protein with organic solvents and ammonium sulfate, by reverse phase HPLC and gel-penetrating LC.
Недостатками прототипа являются маленькие объемы (в мкл и мкг), многостадийность, двукратное использование хроматографии, низкая степень воспроизводимости, что затрудняет технологический процесс и повышает стоимость способа.The disadvantages of the prototype are small volumes (in μl and μg), multi-stage, double use of chromatography, low reproducibility, which complicates the process and increases the cost of the method.
Задачей предлагаемого изобретения является упрощение технологического процесса получения и очистки ингибина-А.The task of the invention is to simplify the process of obtaining and purification of inhibin-A.
Поставленная задача решается тем, что кусочки плаценты измельчают и гомогенизируют, добавляют физиологический раствор в соотношении 1:2, к полученной массе добавляют бутиловый спирт в расчете 1:10 и оставляют на сутки в холодильнике при t +4°C, затем смесь центрифугируют с эфиром 1:3 в течение 10-12 минут при 5000 об/мин в рефрижераторной центрифуге двукратно, надосадочную жидкость, содержащую ингибин, помещают в колбе в холодильник при t +4°C на сутки, затем еще раз центрифугируют и определяют общий белок в надосадочной жидкости, полученный раствор смешивают с равным объемом насыщенного раствора сульфата аммония и центрифугируют в рефрижераторной центрифуге в течение 45-50 мин при 10000 об/мин, полученный осадок растворяют в ТРИС-HCl буфере с рН 7,8, наносят на колонку лектин-сефарозы, уравновешенную ТРИС-HCl буфером, пропускают весь объем растворенного осадка, полученного на предшествующей стадии, колонку промывают 1 М раствором хлорида натрия, забуференного ТРИС-HCl буфером, затем элюируют связанный на колонке ингибин-А 0,1 М раствором лактозы в боратном буфере рН 9,0, элюат диализуют и концентрируют.The problem is solved by the fact that pieces of the placenta are crushed and homogenized, physiological saline is added in a ratio of 1: 2, butyl alcohol is added to the resulting mass at a rate of 1:10 and left for a day in the refrigerator at t + 4 ° C, then the mixture is centrifuged with ether 1: 3 for 10-12 minutes at 5000 rpm in a refrigerator centrifuge twice, the supernatant containing inhibin is placed in a flask in a refrigerator at t + 4 ° C for a day, then centrifuged again and the total protein in the supernatant is determined the resulting solution with The solution is sedimented with an equal volume of a saturated solution of ammonium sulfate and centrifuged in a refrigerator centrifuge for 45-50 minutes at 10,000 rpm, the resulting precipitate is dissolved in TRIS-HCl buffer with a pH of 7.8, applied to a TRIS-HCl lectin-Sepharose column. with a buffer, the entire volume of the dissolved precipitate obtained in the previous step is passed through, the column is washed with a 1 M solution of sodium chloride buffered with TRIS-HCl buffer, then the inhibin-A bound with a 0.1 M solution of lactose in borate buffer, pH 9.0, is eluted dialyze and concentrate digging.
Предлагаемый способ получения и очистки ингибина-А человека успешно апробирован на 63 образцах плаценты человека в практической работе кафедры общей и биоорганической химии Астраханской государственной медицинской академии в течение 2009 года.The proposed method for the preparation and purification of human inhibin-A was successfully tested on 63 samples of human placenta in the practical work of the Department of General and Bioorganic Chemistry of the Astrakhan State Medical Academy during 2009.
Предлагаемый способ осуществляется следующим образом.The proposed method is as follows.
Первичный экстракт плацентыPrimary placenta extract
Для приготовления экстракта кусочки плаценты измельчали и гомогенизировали, добавляя физиологический раствор в соотношении 1:2. (Общий объем 1200 мл, общий белок 31640 мг, ингибина-А 164 мг, выход 100%, степень очистки 1.)To prepare the extract, pieces of the placenta were crushed and homogenized by adding saline in a ratio of 1: 2. (Total volume 1200 ml, total protein 31640 mg, inhibin-A 164 mg, 100% yield, purification 1.)
Бутанольная фракцияButanol fraction
К полученной массе добавляли бутиловый спирт в расчете 1:10 и оставляли на сутки в холодильнике (+4°С). Затем смесь центрифугировали с диэтиловым эфиром (1 часть эфира и 3 части гомогената) в течение 10 минут при 5000 об/мин в рефрижераторной центрифуге двукратно. Надосадочную жидкость (445 мл), содержащую ингибин, помещали в колбе в холодильник (+4°С) на сутки. Затем еще раз центрифугировали и определяли общий белок в надосадочной жидкости (7680 мг), количество ингибина-А 95 мг.To the resulting mass was added butyl alcohol in the calculation of 1:10 and left for a day in the refrigerator (+ 4 ° C). Then the mixture was centrifuged with diethyl ether (1 part ether and 3 parts homogenate) for 10 minutes at 5000 rpm in a refrigerator centrifuge twice. The supernatant (445 ml) containing inhibin was placed in a flask in a refrigerator (+ 4 ° C) for a day. Then centrifuged again and determined the total protein in the supernatant (7680 mg), the amount of inhibin-A 95 mg.
Выход 57,9%, степень очистки 2,3.Yield 57.9%, degree of purification 2.3.
Преципитация сульфатом аммонияAmmonium sulfate precipitation
Полученный раствор смешивали с равным объемом насыщенного раствора сульфата аммония и центрифугировали в рефрижераторной центрифуге в течение 45 мин при 10000 об/мин. Полученный осадок растворяли в ТРИС-HCl буфере с рН 7,8. (Общий объем 115 мл, общий белок 855 мг, количество ингибина-А 73 мг, выход 44,5%, степень очистки 16,5.)The resulting solution was mixed with an equal volume of a saturated solution of ammonium sulfate and centrifuged in a refrigerator centrifuge for 45 minutes at 10,000 rpm. The resulting precipitate was dissolved in TRIS-HCl buffer with a pH of 7.8. (Total volume 115 ml, total protein 855 mg, amount of inhibin-A 73 mg, yield 44.5%, purification 16.5.)
Аффинная хроматографияAffinity chromatography
Эта стадия очистки ингибина-А основана на обнаруженной нами способности лектина клещевины (рицина) преципитировать ингибин-А. Представляет собой аффинную хроматографию ингибина-А на иммобилизованном лектине клещевины. Через колонку (2×14 см) лектин-сефарозы, уравновешенную ТРИС-HCl буфером, пропускали весь объем растворенного осадка, полученного на предшествующей стадии. Далее колонку промывали 1 М раствором хлорида натрия, забуференного ТРИС-HCl буфером, а затем элюировали связанный на колонке ингибин-А 0,1 М раствором лактозы в боратном буфере рН 9,0. Полученный элюат диализовали и концентрировали до объема 13 мл (общий белок 32 мг, количество ингибина-А 27 мг, выход 16,3%, степень очистки 138,8).This stage of purification of inhibin-A is based on the ability of castor bean lectin (ricin) to precipitate inhibin-A that we discovered. Represents inhibin-A affinity chromatography on immobilized castor bean lectin. Through a column (2 × 14 cm) of lectin-sepharose balanced with TRIS-HCl buffer, the entire volume of the dissolved precipitate obtained in the previous step was passed. Next, the column was washed with a 1 M solution of sodium chloride, buffered with TRIS-HCl buffer, and then the column bound inhibin-A was eluted with a 0.1 M solution of lactose in borate buffer, pH 9.0. The resulting eluate was dialyzed and concentrated to a volume of 13 ml (total protein 32 mg, amount of inhibin-A 27 mg, yield 16.3%, purification 138.8).
Примеры с использованием разных эфировExamples using different esters
Пример 1Example 1
Первичный экстракт плацентыPrimary placenta extract
Для приготовления экстракта кусочки плаценты измельчали и гомогенизировали, добавляя физиологический раствор в соотношении 1:2. (Общий объем 1200 мл, общий белок 31640 мг, ингибина-А 164 мг, выход 100%, степень очистки 1.)To prepare the extract, pieces of the placenta were crushed and homogenized by adding saline in a ratio of 1: 2. (Total volume 1200 ml, total protein 31640 mg, inhibin-A 164 mg, 100% yield, purification 1.)
Бутанольная фракцияButanol fraction
К полученной массе добавляли бутиловый спирт в расчете 1:10 и оставляли на сутки в холодильнике (+4°С). Затем смесь центрифугировали с дипропиловым эфиром (1 часть эфира и 3 части гомогената) в течение 10 минут при 5000 об/мин в рефрижераторной центрифуге двукратно. Надосадочную жидкость (445 мл), содержащую ингибин, помещали в колбе в холодильник (+4°С) на сутки. Затем еще раз центрифугировали и определяли общий белок в надосадочной жидкости (7680 мг), количество ингибина-А 95 мг.To the resulting mass was added butyl alcohol in the calculation of 1:10 and left for a day in the refrigerator (+ 4 ° C). The mixture was then centrifuged with dipropyl ether (1 part ether and 3 parts homogenate) for 10 minutes at 5000 rpm in a refrigerator centrifuge twice. The supernatant (445 ml) containing inhibin was placed in a flask in a refrigerator (+ 4 ° C) for a day. Then centrifuged again and determined the total protein in the supernatant (7680 mg), the amount of inhibin-A 95 mg.
Выход 57,9%, степень очистки 2,3.Yield 57.9%, degree of purification 2.3.
Преципитация сульфатом аммонияAmmonium sulfate precipitation
Полученный раствор смешивали с равным объемом насыщенного раствора сульфата аммония и центрифугировали в рефрижераторной центрифуге в течение 45 мин при 10000 об/мин. Полученный осадок растворяли в ТРИС-HCl буфере с рН 7,8. (Общий объем 115 мл, общий белок 855 мг, количество ингибина-А 73 мг, выход 44,5%, степень очистки 16,5.)The resulting solution was mixed with an equal volume of a saturated solution of ammonium sulfate and centrifuged in a refrigerator centrifuge for 45 minutes at 10,000 rpm. The resulting precipitate was dissolved in TRIS-HCl buffer with a pH of 7.8. (Total volume 115 ml, total protein 855 mg, amount of inhibin-A 73 mg, yield 44.5%, purification 16.5.)
Аффинная хроматографияAffinity chromatography
Эта стадия очистки ингибина-А основана на обнаруженной нами способности лектина клещевины (рицина) преципитировать ингибин-А. Представляет собой аффинную хроматографию ингибина-А на иммобилизованном лектине клещевины. Через колонку (2×14 см) лектин-сефарозы, уравновешенную ТРИС-HCl буфером, пропускали весь объем растворенного осадка, полученного на предшествующей стадии. Далее колонку промывали 1 М раствором хлорида натрия, забуференного ТРИС-HCl буфером, а затем элюировали связанный на колонке ингибин-А 0,1 М раствором лактозы в боратном буфере рН 9,0. Полученный элюат диализовали и концентрировали до объема 13 мл (общий белок 32 мг, количество ингибина-А 27 мг, выход 16,3%, степень очистки 138,8).This stage of purification of inhibin-A is based on the ability of castor bean lectin (ricin) to precipitate inhibin-A that we discovered. Represents inhibin-A affinity chromatography on immobilized castor bean lectin. Through a column (2 × 14 cm) of lectin-sepharose balanced with TRIS-HCl buffer, the entire volume of the dissolved precipitate obtained in the previous step was passed. Next, the column was washed with a 1 M solution of sodium chloride, buffered with TRIS-HCl buffer, and then the column bound inhibin-A was eluted with a 0.1 M solution of lactose in borate buffer, pH 9.0. The resulting eluate was dialyzed and concentrated to a volume of 13 ml (total protein 32 mg, amount of inhibin-A 27 mg, yield 16.3%, purification 138.8).
Пример 2Example 2
Первичный экстракт плацентыPrimary placenta extract
Для приготовления экстракта кусочки плаценты измельчали и гомогенизировали, добавляя физиологический раствор в соотношении 1:2. (Общий объем 1200 мл, общий белок 31640 мг, ингибина-А 164 мг, выход 100%, степень очистки 1.)To prepare the extract, pieces of the placenta were crushed and homogenized by adding saline in a ratio of 1: 2. (Total volume 1200 ml, total protein 31640 mg, inhibin-A 164 mg, 100% yield, purification 1.)
Бутанольная фракцияButanol fraction
К полученной массе добавляли бутиловый спирт в расчете 1:10 и оставляли на сутки в холодильнике (+4°С). Затем смесь центрифугировали с этилпропиловым эфиром (1 часть эфира и 3 части гомогената) в течение 12 минут при 5000 об/мин в рефрижераторной центрифуге двукратно. Надосадочную жидкость (445 мл), содержащую ингибин, помещали в колбе в холодильник (+4°С) на сутки. Затем еще раз центрифугировали и определяли общий белок в надосадочной жидкости (7680 мг), количество ингибина-А 95 мг.To the resulting mass was added butyl alcohol in the calculation of 1:10 and left for a day in the refrigerator (+ 4 ° C). The mixture was then centrifuged with ethyl propyl ether (1 part ether and 3 parts homogenate) for 12 minutes at 5000 rpm in a refrigerator centrifuge twice. The supernatant (445 ml) containing inhibin was placed in a flask in a refrigerator (+ 4 ° C) for a day. Then centrifuged again and determined the total protein in the supernatant (7680 mg), the amount of inhibin-A 95 mg.
Выход 57,9%, степень очистки 2,3.Yield 57.9%, degree of purification 2.3.
Преципитация сульфатом аммонияAmmonium sulfate precipitation
Полученный раствор смешивали с равным объемом насыщенного раствора сульфата аммония и центрифугировали в рефрижераторной центрифуге в течение 50 мин при 10000 об/мин. Полученный осадок растворяли в ТРИС-HCl буфере с рН 7,8. (Общий объем 115 мл, общий белок 855 мг, количество ингибина-А 73 мг, выход 44,5%, степень очистки 16,5.)The resulting solution was mixed with an equal volume of a saturated solution of ammonium sulfate and centrifuged in a refrigerator centrifuge for 50 minutes at 10,000 rpm. The resulting precipitate was dissolved in TRIS-HCl buffer with a pH of 7.8. (Total volume 115 ml, total protein 855 mg, amount of inhibin-A 73 mg, yield 44.5%, purification 16.5.)
Аффинная хроматографияAffinity chromatography
Эта стадия очистки ингибина-А основана на обнаруженной нами способности лектина клещевины (рицина) преципитировать ингибин-А. Представляет собой аффинную хроматографию ингибина-А на иммобилизованном лектине клещевины. Через колонку (2×14 см) лектин-сефарозы, уравновешенную ТРИС-HCl буфером, пропускали весь объем растворенного осадка, полученного на предшествующей стадии.This stage of purification of inhibin-A is based on the ability of castor bean lectin (ricin) to precipitate inhibin-A that we discovered. Represents inhibin-A affinity chromatography on immobilized castor bean lectin. Through a column (2 × 14 cm) of lectin-sepharose balanced with TRIS-HCl buffer, the entire volume of the dissolved precipitate obtained in the previous step was passed.
Далее колонку промывали 1 М раствором хлорида натрия, забуференного ТРИС-HCl буфером, а затем элюировали связанный на колонке ингибин-А 0,1 М раствором лактозы в боратном буфере рН 9,0. Полученный элюат диализовали и концентрировали до объема 13 мл (общий белок 32 мг, количество ингибина-А 27 мг, выход 16,3%, степень очистки 138,8).Next, the column was washed with a 1 M solution of sodium chloride, buffered with TRIS-HCl buffer, and then the column bound inhibin-A was eluted with a 0.1 M solution of lactose in borate buffer, pH 9.0. The resulting eluate was dialyzed and concentrated to a volume of 13 ml (total protein 32 mg, amount of inhibin-A 27 mg, yield 16.3%, purification 138.8).
Пример 3Example 3
Первичный экстракт плацентыPrimary placenta extract
Для приготовления экстракта кусочки плаценты измельчали и гомогенизировали, добавляя физиологический раствор в соотношении 1:2. (Общий объем 1200 мл, общий белок 31640 мг, ингибина-А 164 мг, выход 100%, степень очистки 1.)To prepare the extract, pieces of the placenta were crushed and homogenized by adding saline in a ratio of 1: 2. (Total volume 1200 ml, total protein 31640 mg, inhibin-A 164 mg, 100% yield, purification 1.)
Бутанольная фракцияButanol fraction
К полученной массе добавляли бутиловый спирт в расчете 1:10 и оставляли на сутки в холодильнике (+4°С). Затем смесь центрифугировали с уксусноэтиловым эфиром (1 часть эфира и 3 части гомогената) в течение 11 минут при 5000 об/мин в рефрижераторной центрифуге двукратно. Надосадочную жидкость (445 мл), содержащую ингибин, помещали в колбе в холодильник (+4°С) на сутки. Затем еще раз центрифугировали и определяли общий белок в надосадочной жидкости (7680 мг), количество ингибина-А 95 мг.To the resulting mass was added butyl alcohol in the calculation of 1:10 and left for a day in the refrigerator (+ 4 ° C). The mixture was then centrifuged with ethyl acetate (1 part ether and 3 parts homogenate) for 11 minutes at 5000 rpm in a refrigerator centrifuge twice. The supernatant (445 ml) containing inhibin was placed in a flask in a refrigerator (+ 4 ° C) for a day. Then centrifuged again and determined the total protein in the supernatant (7680 mg), the amount of inhibin-A 95 mg.
Выход 57,9%, степень очистки 2,3.Yield 57.9%, degree of purification 2.3.
Преципитация сульфатом аммонияAmmonium sulfate precipitation
Полученный раствор смешивали с равным объемом насыщенного раствора сульфата аммония и центрифугировали в рефрижераторной центрифуге в течение 50 мин при 10000 об/мин. Полученный осадок растворяли в ТРИС-HCl буфере с рН 7,8 (общий объем 115 мл, общий белок 855 мг, количество ингибина-А 73 мг, выход 44,5%, степень очистки 16,5).The resulting solution was mixed with an equal volume of a saturated solution of ammonium sulfate and centrifuged in a refrigerator centrifuge for 50 minutes at 10,000 rpm. The resulting precipitate was dissolved in TRIS-HCl buffer with a pH of 7.8 (total volume 115 ml, total protein 855 mg, amount of inhibin-A 73 mg, yield 44.5%, purification 16.5).
Аффинная хроматографияAffinity chromatography
Эта стадия очистки ингибина-А основана на обнаруженной нами способности лектина клещевины (рицина) преципитировать ингибин-А. Представляет собой аффинную хроматографию ингибина-А на иммобилизованном лектине клещевины. Через колонку (2×14 см) лектин-сефарозы, уравновешенную ТРИС-HCl буфером, пропускали весь объем растворенного осадка, полученного на предшествующей стадии. Далее колонку промывали 1 М раствором хлорида натрия, забуференного ТРИС-HCl буфером, а затем элюировали связанный на колонке ингибин-А 0,1 М раствором лактозы в боратном буфере рН 9,0. Полученный элюат диализовали и концентрировали до объема 13 мл (общий белок 32 мг, количество ингибина-А 27 мг, выход 16,3%, степень очистки 138,8).This stage of purification of inhibin-A is based on the ability of castor bean lectin (ricin) to precipitate inhibin-A that we discovered. Represents inhibin-A affinity chromatography on immobilized castor bean lectin. Through a column (2 × 14 cm) of lectin-sepharose balanced with TRIS-HCl buffer, the entire volume of the dissolved precipitate obtained in the previous step was passed. Next, the column was washed with a 1 M solution of sodium chloride, buffered with TRIS-HCl buffer, and then the column bound inhibin-A was eluted with a 0.1 M solution of lactose in borate buffer, pH 9.0. The resulting eluate was dialyzed and concentrated to a volume of 13 ml (total protein 32 mg, amount of inhibin-A 27 mg, yield 16.3%, purification 138.8).
Из приведенных примеров видно, что выход и степень очистки от применения разных эфиров не изменяются. Использование разных эфиров не влияет на конечный продукт, так как эфир используется для удаления липидных фракций и повышает выход белковых компонентов. В своих исследованиях мы использовали диэтиловый эфир как наиболее дешевый и доступный.From the above examples it is seen that the yield and degree of purification from the use of different esters do not change. The use of different esters does not affect the final product, since the ester is used to remove lipid fractions and increases the yield of protein components. In our research, we used diethyl ether as the cheapest and most affordable.
Достигнут положительный эффект: разработан способ, характеризующийся упрощением технологического процесса, повышением выхода целевого продукта, увеличением объемов, уменьшением количества стадий и снижением стоимости целевого продукта, а также получен ингибин-А с высокой степенью очистки (138,8), повышенной удельной активностью и характеристиками (см. таблицу).A positive effect was achieved: a method was developed that was characterized by a simplification of the technological process, an increase in the yield of the target product, an increase in volumes, a decrease in the number of stages and a decrease in the cost of the target product, and inhibin-A was obtained with a high degree of purification (138.8), increased specific activity and characteristics (see table).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009149599/10A RU2434018C2 (en) | 2009-12-30 | 2009-12-30 | Method of obtaining and purifying human inhibin-a |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009149599/10A RU2434018C2 (en) | 2009-12-30 | 2009-12-30 | Method of obtaining and purifying human inhibin-a |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2009149599A RU2009149599A (en) | 2011-07-10 |
RU2434018C2 true RU2434018C2 (en) | 2011-11-20 |
Family
ID=44740059
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009149599/10A RU2434018C2 (en) | 2009-12-30 | 2009-12-30 | Method of obtaining and purifying human inhibin-a |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2434018C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA033760B1 (en) * | 2014-03-03 | 2019-11-22 | Closed Joint Stock Company Sky Ltd | Method of producing follicular protein preparation and preparation produced by said method |
-
2009
- 2009-12-30 RU RU2009149599/10A patent/RU2434018C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
RIVIER J. ET AL. Purification and partial characterization of inhibin from porcine follicular fluid // Biochemical and biophysical research communications, v.133, №1, 27.11.1985, pp.120-127. * |
ДИКСОН М., УЭББ Э. Ферменты // Пер. с анг. - М.: Мир, 1982, с.52-55, 65, 66, 72-75. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA033760B1 (en) * | 2014-03-03 | 2019-11-22 | Closed Joint Stock Company Sky Ltd | Method of producing follicular protein preparation and preparation produced by said method |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2009149599A (en) | 2011-07-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7125552B2 (en) | Method for high yield purification of immune globulins from blood plasma and blood plasma intermediates | |
CN107857811A (en) | A kind of preparation technology of human serum albumin | |
JP4660048B2 (en) | Separation of fibrinogen from plasma protease | |
US6001974A (en) | Method of separating albumin from serum by ion-exchange chromatography with membrane adsorbers | |
JPS59222420A (en) | Manufacture of viii factor containing medicine | |
RU2434018C2 (en) | Method of obtaining and purifying human inhibin-a | |
CN106928344A (en) | Method for being reduced from the solution containing clotting factor and/or remove FXI and FXIa | |
TWI758285B (en) | A method for renaturation and purification of recombinant human granulocyte colony stimulating factor | |
CN101367865A (en) | Production process for high purity porcine blood albumin and uses thereof | |
CN106222221A (en) | Prepare the purification process of recombined human granulocyte stimulating factors stock solution | |
RU2643365C2 (en) | Method for purifying darbepoetin alpha | |
CN110468172A (en) | A kind of method and kit isolating and purifying recombination LEA protein | |
Wagner et al. | [14] Purification of kinesin from bovine brain and assay of microtubule-stimulated ATPase activity | |
JPH02115196A (en) | Purification of erythropoetin | |
CN107033236A (en) | A kind of Mixed-Modechromatography method that human serum albumin is separated from yeast fermentation broth | |
CN1699562A (en) | Process for separation and purification of gene recombinant protein heme oxygenase | |
CN114133444A (en) | Preparation method of human BMP2 and analogues thereof | |
WO2020210965A1 (en) | Method for extraction and purification of hirudin mutant and use thereof | |
JP5086093B2 (en) | Purification of recombinant human factor XIII | |
RU2763552C1 (en) | Method for isolation of camel lactoferrin | |
RU2308286C1 (en) | Method for production of alpha-fetoprotein | |
AU2021104426A4 (en) | Method for successively extracting multiple proteins from egg white | |
RU2123009C1 (en) | Method of alpha-fetoprotein preparation preparing | |
RU2109748C1 (en) | Method of angiogenine isolation | |
RU2492868C2 (en) | Method for preparing and cleaning placental alkaline phosphatase |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20111231 |