RU2432392C1 - METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis - Google Patents
METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2432392C1 RU2432392C1 RU2010135488/10A RU2010135488A RU2432392C1 RU 2432392 C1 RU2432392 C1 RU 2432392C1 RU 2010135488/10 A RU2010135488/10 A RU 2010135488/10A RU 2010135488 A RU2010135488 A RU 2010135488A RU 2432392 C1 RU2432392 C1 RU 2432392C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bac
- licheniformis
- strains
- subtilis
- ton
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способам производства пробиотических препаратов на основе штаммов бактерий Bac.subtilis и Bac.licheniformis. Подобные препараты могут использоваться как кормовая добавка для составления кормовых рационов, предназначенная для повышения усвояемости кормов сельскохозяйственных животных и птицы.The invention relates to biotechnology, in particular to methods for the production of probiotic preparations based on the bacterial strains Bac.subtilis and Bac.licheniformis. Such preparations can be used as a feed additive for the preparation of feed rations, designed to increase the digestibility of feed of farm animals and poultry.
Известен способ получения сухого пробиотического препарата, включающий выращивание в жидкой питательной среде на основе ферментативного гидролизата казеина штаммов энтеробактерий, например Bifidobacterium globosum БФ-4 или Streptococcus falcium ВГНКИ-27 в течение 12-15 ч, затем нативную культуральную охлаждают до температуры 15-20°C и концентрируют в 10-15 раз, полученную концентрированную биомассу отмывают 2,5-3,5%-ным раствором сахарозы или лактозы и обезвоживают при температуре минус 25-35°C. При этом концентрирование нативной культуральной жидкости проводят методом ультрафильтрации на полых волокнах, или микрофильтрацией на плоских мембранах, или сепарированием в полупериодическом режиме работы (см. патент РФ №2065305, опубл. 08.20.1996).A known method of obtaining a dry probiotic preparation, including growing in a liquid nutrient medium based on enzymatic hydrolyzate of casein strains of enterobacteria, for example Bifidobacterium globosum BF-4 or Streptococcus falcium VGNKI-27 for 12-15 hours, then the native culture is cooled to a temperature of 15-20 ° C and concentrated 10-15 times, the resulting concentrated biomass is washed with 2.5-3.5% solution of sucrose or lactose and dehydrated at a temperature of minus 25-35 ° C. In this case, the concentration of the native culture fluid is carried out by ultrafiltration on hollow fibers, or by microfiltration on flat membranes, or by separation in a semi-periodic mode of operation (see RF patent No. 2065305, publ. 08.20.1996).
Однако данный способ имеет ряд существенных недостатков. Во-первых, необходимость использования гидролизата казеина значительно удорожает препарат. Во-вторых, использование в качестве метода концентрирования ультрафильтрации на полых волокнах или микрофильтрации на плоских мембранах делает данный метод дорогостоящим и требующим больших капиталовложений и высокой подготовки персонала. Также использование криогенной техники обезвоживания значительно усложняет технологический процесс. Кроме того, использование в качестве смешанной пробиотической культуры только двух видов бактерий делает эту смешанную популяцию неустойчивой, что снижает эффективность ее применения.However, this method has several significant disadvantages. Firstly, the need to use casein hydrolyzate significantly increases the cost of the drug. Secondly, the use of ultrafiltration on hollow fibers or microfiltration on flat membranes as a method of concentration makes this method expensive and requires a lot of investment and highly trained personnel. Also, the use of cryogenic dehydration technology significantly complicates the process. In addition, the use of only two types of bacteria as a mixed probiotic culture makes this mixed population unstable, which reduces the effectiveness of its use.
Известен способ получения сухого пробиотического препарата, который включает в себя раздельное выращивание в условиях глубинного культивирования микроорганизмов Lactobacillus acidophilus и Rhuminococcus albus до заданного достижения титра каждого микроорганизма, смешивание полученной маточной культуры с подсолнечниковым шротом в заданном соотношении, причем в качестве микроорганизмов дополнительно используют Bacillus subtilis ВКПМ В-8130, из Lactobacillus acidophilus используют Lactobacillus acidophilus Suav. ВКПМ B-4625, из Rhuminococcus albus - Rhuminococcus albus KR, при этом выращенные маточные культуры смешивают в соотношении 1:1, засеивают ею автоклавированный подсолнечниковый шрот при следующем соотношении компонентов, масс.%:A known method of obtaining a dry probiotic preparation, which includes separate cultivation under conditions of deep cultivation of microorganisms Lactobacillus acidophilus and Rhuminococcus albus to a predetermined achievement of the titer of each microorganism, mixing the obtained uterine culture with sunflower meal in a predetermined ratio, with Bacillus subtilis being additionally used as microorganisms B-8130, from Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus acidophilus Suav is used. VKPM B-4625, from Rhuminococcus albus - Rhuminococcus albus KR, while the grown uterine cultures are mixed in a 1: 1 ratio, autoclaved sunflower meal is seeded with it in the following ratio of components, wt.%:
маточная культура Lactobacillusuterine culture of Lactobacillus
ВКПМ 4625,VKPM 4625,
инкубируют полученную смесь при 30-45°C в течение 4-8 дней с получением в полувлажном препарате не менее 1×108 клеток/г препарата, причем смешивают полученный препарат с подсолнечниковым шротом в соотношении 1:10-1:12 с получением препарата с остаточной влажностью 8-10%.the mixture is incubated at 30-45 ° C for 4-8 days to obtain at least 1 × 10 8 cells / g of the preparation in a semi-moist preparation, and the resulting preparation is mixed with sunflower meal in a ratio of 1: 10-1: 12 to obtain the preparation with a residual moisture content of 8-10%.
Наиболее близким способом производства пробиотической добавки является смешивание биомассы бактерий Bacillus subtilis В-2250 и/или Bacillus licheniformis В-2252 и вспомогательных веществ носителя-сорбента и влагоемкого наполнителя. В качестве носителя-сорбента она содержит аэросил гидрофильной марки A и гидрофобной марки AM, влагоемкого наполнителя - смолы-катиониты ионообменные марок КБ-4П-2 и КУ-2-8чс в заданном соотношении компонентов по массе сухого вещества. Сухую микрокапсулированную форму пробиотической добавки получают методом капиллярно-сорбционного высушивания смеси компонентов до содержания влаги в готовом продукте 8-25%. В результате получают микрокапсулированную форму пробиотической добавки, содержащую пробиотик, удобную в применении и употреблении, способную обеспечивать стабильностью свойств на всех этапах приготовления (RU 2252956 С2, 2005).The closest way to the production of a probiotic additive is to mix the biomass of bacteria Bacillus subtilis B-2250 and / or Bacillus licheniformis B-2252 and excipients of the sorbent carrier and a moisture-sensitive filler. As a sorbent carrier, it contains aerosil of hydrophilic grade A and hydrophobic grade AM, a moisture-intensive filler — ion-exchange cation exchange resins of the KB-4P-2 and KU-2-8chs grades in a given ratio of components by weight of dry matter. A dry microencapsulated form of a probiotic additive is obtained by the method of capillary-sorption drying of a mixture of components to a moisture content in the finished product of 8-25%. The result is a microencapsulated form of a probiotic supplement containing a probiotic, convenient to use and use, capable of providing stability of properties at all stages of preparation (RU 2252956 C2, 2005).
Однако полученный вышеуказанным способом пробиотический препарат хотя и обладает стабильными физико-химическими свойствами, недостаточно эффективен в связи с невысоким содержанием пробиотических микроорганизмов. Кроме того, его производство энергозатратно и сложно.However, the probiotic preparation obtained by the above method, although it has stable physicochemical properties, is not effective enough due to the low content of probiotic microorganisms. In addition, its production is energy intensive and difficult.
По этой причине сохраняется потребность в высокоэффективных пробиотических препаратах, используемых в качестве кормовых добавок для повышения привесов с/х животных и птицы.For this reason, there remains a need for highly effective probiotic preparations used as feed additives to increase the weight gain of agricultural animals and poultry.
Техническим результатом данного изобретения является повышение эффективности пробиотической составляющей получаемого продукта, что обеспечивает повышенную усвояемость кормов и увеличение привесов животных.The technical result of this invention is to increase the efficiency of the probiotic component of the resulting product, which provides increased digestibility of feed and increase the weight gain of animals.
Этот результат может быть реализован при использовании описываемого способа производства пробиотического препарата на основе спорообразующих штаммов Вас. subtilis и Вас. licheniformis, предназначенного для использования в качестве кормовой добавки к рационам с/х животных и птицы, направленной для повышения усвояемости кормов, включающий культивирование штаммов Вас. subtilis и Вас. licheniformis, смешивание биомасс клеток бактерий с протектором микробных клеток и последующее стерильное обезвоживание, причем используют штамм Bac. subtilis ВКПМ В-10172 и штамм Bac. licheniformis ВКПМ В-10135, биомассы штаммов смешивают в соотношении 1:1, в качестве протектора микробных клеток используют желатиносахарозную защитную среду в количестве, обеспечивающем титр клеток в готовом продукте после сушки не менее 2×1012 КОЕ/г.This result can be realized using the described method for the production of a probiotic preparation based on spore-forming strains of You. subtilis and you. licheniformis, intended for use as a feed additive to the diets of agricultural animals and poultry, aimed at increasing the digestibility of feed, including the cultivation of strains of you. subtilis and you. licheniformis, mixing the biomass of bacterial cells with the protector of microbial cells and subsequent sterile dehydration, using the Bac strain. subtilis VKPM B-10172 and strain Bac. licheniformis VKPM B-10135, the biomass of the strains is mixed in a 1: 1 ratio, gelatin-saccharose protective medium is used as a protector of microbial cells in an amount that ensures the cell titer in the finished product after drying at least 2 × 10 12 CFU / g.
В способе производства используются новые штаммы бактерий Bac. subtilis и Bac. licheniformis. Штаммы депонированы к коллекции ГНИИГенетика под регистрационными номерами: Bac. subtilis ВКПМ В-10172 и Bac. licheniformis ВКПМ В-10135. Штаммы выделены из природного сообщества в Кировской области. Далее приведены свойства каждого штамма.The production method uses new strains of Bac bacteria. subtilis and Bac. licheniformis. The strains are deposited with the GNI Genetics collection under registration numbers: Bac. subtilis VKPM B-10172 and Bac. licheniformis VKPM B-10135. Strains isolated from the natural community in the Kirov region. The following are the properties of each strain.
Bac. subtilis ВКПМ В-10172Bac. subtilis VKPM B-10172
Культурально-морфологические признакиCultural and morphological features
Клетки прямые, палочковидные, длиной 2-3 мкм, подвижные. Образуют анаэробно споры овальной формы, которые располагаются в клетки центрально. Окраска по Граму - грамположительны. Штамм хорошо растет на мясо-пептонном агаре (МПА), сусло-агаре, среде Громыко, картофельном агаре, а также на этих средах с добавлением 10 мг/мл канамицина, образуя блестящие складчатые колонии кремоватого цвете с неровными краями. На мясо-пептонном бульоне (МПБ) культура образует равномерную муть.The cells are straight, rod-shaped, 2-3 microns long, motile. Anaerobically form spores of an oval shape, which are located centrally in the cells. Gram stain - gram-positive. The strain grows well on meat-peptone agar (MPA), wort agar, Gromyko medium, potato agar, as well as on these media with the addition of 10 mg / ml kanamycin, forming shiny creased, creamy-colored colonies with uneven edges. On meat-peptone broth (BCH), the culture forms a uniform turbidity.
Физиолого-биохимические признакиPhysiological and biochemical characteristics
Ферментирует лактозу, глюкозу, арабинозу, ксилозу с образованием кислоты без газа. Редуцирует нитраты, обеспечивает метиленовую синь. Коагулазной, гиалуронидазной, лецитазной активностью не обладает. Обладает липазной активностью.It ferments lactose, glucose, arabinose, xylose with the formation of acid without gas. Reduces nitrates, provides methylene blue. Coagulase, hyaluronidase, lecitase activity does not possess. It has lipase activity.
Культуру поддерживают на МПА и картофельном агаре с добавлением канамицина (50 мкг/мл) с пересевом не реже 1 раза в месяц, хранят на МПА и картофельном агаре с добавлением 50 мкг/мл канамицина.The culture is maintained on MPA and potato agar with the addition of kanamycin (50 μg / ml) with reseeding at least 1 time per month, stored on MPA and potato agar with the addition of 50 μg / ml kanamycin.
Оптимальная температура роста - 37°C, pH - 7,0. Состав среды: пептон 5 г/л, дрожжевой экстракт 3 г/л, NaCl 5 г/л, вода водопроводная - до 1 л.The optimum growth temperature is 37 ° C, pH is 7.0. The composition of the medium: peptone 5 g / l, yeast extract 3 g / l, NaCl 5 g / l, tap water - up to 1 l.
Оптимальная температура роста - 37°C, pH - 7,0. Состав среды: K2HPO4×3H2O - 18,3 г/л; KH2PO4 - 6,0 г/л; (NH4)2SO4 - 2,0 г/л; NA3C6H5O7×5,5H2O - 1,2 г/л.The optimum growth temperature is 37 ° C, pH is 7.0. The composition of the medium: K 2 HPO 4 × 3H 2 O - 18.3 g / l; KH 2 PO 4 - 6.0 g / l; (NH 4 ) 2 SO 4 - 2.0 g / l; NA 3 C 6 H 5 O 7 × 5.5H 2 O - 1.2 g / L.
Bac. licheniformis ВКПМ В-10135Bac. licheniformis VKPM B-10135
Культурально-морфологические признакиCultural and morphological features
Клетки прямые, палочковидные, длиной 2-3 мкм, подвижные. Образуют анаэробно споры овальной формы, которые располагаются в клетки центрально. Окраска по Граму - грамположительны. Штамм хорошо растет на мясо-пептонном агаре (МПА), сусло-агаре, среде Громыко, картофельном агаре, а также на этих средах с добавлением 10 мг/мл канамицина, образуя блестящие складчатые колонии кремоватого цвета с неровными краями. На мясо-пептонном бульоне (МПБ) культура образует равномерную муть.The cells are straight, rod-shaped, 2-3 microns long, motile. Anaerobically form spores of an oval shape, which are located centrally in the cells. Gram stain - gram-positive. The strain grows well on meat-peptone agar (MPA), wort agar, Gromyko medium, potato agar, as well as on these media with the addition of 10 mg / ml kanamycin, forming shiny cremated colonies of a creamy color with uneven edges. On meat-peptone broth (BCH), the culture forms a uniform turbidity.
Физиолого-биохимические признакиPhysiological and biochemical characteristics
Ферментирует лактозу, глюкозу, арабинозу, ксилозу с образованием кислоты без газа. Редуцирует нитраты, обеспечивает метиленовую синь. Коагулазной, гиалуронидазной, лецитазной активностью не обладает. Обладает липазной активностью.It ferments lactose, glucose, arabinose, xylose with the formation of acid without gas. Reduces nitrates, provides methylene blue. Coagulase, hyaluronidase, lecitase activity does not possess. It has lipase activity.
Культуру поддерживают на МПА и картофельном агаре с добавлением канамицина (50 мкг/мл) с пересевом не реже 1 раза в месяц, хранят на МПА и картофельном агаре с добавлением 50 мкг/мл канамицина.The culture is maintained on MPA and potato agar with the addition of kanamycin (50 μg / ml) with reseeding at least 1 time per month, stored on MPA and potato agar with the addition of 50 μg / ml kanamycin.
Оптимальная температура роста - 37°C, pH - 7,0. Состав среды: пептон 5 г/л, дрожжевой экстракт 3 г/л, NaCl 5 г/л, вода водопроводная - до 1 л.The optimum growth temperature is 37 ° C, pH is 7.0. The composition of the medium: peptone 5 g / l, yeast extract 3 g / l, NaCl 5 g / l, tap water - up to 1 l.
Оптимальная температура роста - 37°C, pH - 7,0. Состав среды: K2HPO4×3H2O - 18,3 г/л; KH2PO4 - 6,0 г/л; (NH4)2SO4 - 2,0 г/л; NA3C6H5O7×5,5H2O - 1,2 г/л.The optimum growth temperature is 37 ° C, pH is 7.0. The composition of the medium: K 2 HPO 4 × 3H 2 O - 18.3 g / l; KH 2 PO 4 - 6.0 g / l; (NH 4 ) 2 SO 4 - 2.0 g / l; NA 3 C 6 H 5 O 7 × 5.5H 2 O - 1.2 g / L.
Способ осуществляют следующим образом. Биомассу B.subtilis и B.licheniformis получают выращиванием в стерильных условиях, отделяют биомассу на центрифуге, пасту смешивают с защитной средой (желатинно-сахарозной), разливают и сушат в лиофильной сушилке. Биомассу B.subtilis и B.licheniformis получают путем культивирования в качалочных колбах объемом 750 мл или в ферментационных аппаратах вместимостью от 500 л до 63 м3 на среде с глюкозой, пептоном, кукурузным экстрактом. Полученную в процессе ферментации культуральную жидкость центрифугируют. Биомассу бактерий и спор (в виде концентрированной суспензии) смешивают с защитной средой, содержащей сахарозу и желатин, разливают в пенициллиновые флаконы по 3 мл и сушат в лиофильной сушилке.The method is as follows. The biomass of B.subtilis and B.licheniformis is obtained by growing under sterile conditions, the biomass is separated in a centrifuge, the paste is mixed with a protective medium (gelatin-sucrose), poured and dried in a freeze dryer. The biomass of B.subtilis and B.licheniformis is obtained by cultivation in rocking flasks with a volume of 750 ml or in fermentation apparatus with a capacity of 500 l to 63 m 3 in a medium with glucose, peptone, corn extract. The culture fluid obtained in the fermentation process is centrifuged. Bacterial biomass and spores (in the form of a concentrated suspension) are mixed with a protective medium containing sucrose and gelatin, poured into penicillin vials of 3 ml and dried in a freeze dryer.
ПримерExample
Получение инокулята Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis.Obtaining an inoculum of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis.
Культуру бактерий B.subtilis и B.licheniformis хранят на скошенной плотной среде МПА или ГРМ №1 в пробирках, закрытых ватными пробками. Оптимальная температура хранения 4-6°C. Для поддержания культуры в жизнеспособном состоянии один раз в 3 месяца производят пересев на свежую питательную среду МПА или ГРМ и выращивают при t=37°C до спорообразования 16-24 час.The bacterial culture of B.subtilis and B.licheniformis is stored in a slanted solid medium of MPA or timing No. 1 in test tubes closed with cotton plugs. The optimum storage temperature is 4-6 ° C. To maintain the culture in a viable state, once every 3 months, reseed on fresh nutrient medium MPA or timing is performed and grown at t = 37 ° C until spore formation 16-24 hours.
Для получения посевного материала для засева 100 колб с ферментационной питательной средой готовят от 1 до 5 колб инокулята. Для получения инокулята используют 2 варианта:To obtain inoculum for sowing 100 flasks with a fermentation nutrient medium, from 1 to 5 flasks of the inoculum are prepared. To obtain the inoculum, 2 options are used:
- в качалочную колбу объемом 750 мл с жидкой питательной средой объемом 100 мл вносят кусочек размером 1×1 см2 исходной культуры со скошенного плотного агара МПА;- in a rocking flask with a volume of 750 ml with a liquid nutrient medium with a volume of 100 ml add a piece of 1 × 1 cm 2 of the original culture from the beveled solid MPA agar;
- в качалочную колбу объемом 750 мл с жидкой питательной средой объемом 100 мл вносят 0,5-1 мл споровой взвеси, смытой с двух биологических пробирок с исходной культурой 20 мл физиологического раствора.- 0.5-1 ml of spore suspension, washed from two biological tubes with the original culture of 20 ml of physiological saline, is introduced into a 750 ml rocking flask with a 100 ml liquid nutrient medium.
Выращивание проводят в термостатируемой качалке при N=180-200 об/мин или в ферментационных аппаратах вместимостью от 500 л до 63 м3, при t=37°C в течение 16-24 часов для культуры Bacillus subtilis и в течение 40-48 часов для Bacillus licheniformis. Чистоту культуры проверяют путем высева на чашки Петри с агаризованной средой МПА с последующим термостатированием при t=37°C. Отсутствие роста посторонней микрофлоры определяют визуально по виду колоний. Кроме этого, чистоту культуры определяют микроскопически. При отсутствии посторонней микрофлоры инокулят используют для засева колб с ферментационной средой.Cultivation is carried out in a thermostatic shaker at N = 180-200 rpm or in fermentation apparatus with a capacity of 500 l to 63 m 3 , at t = 37 ° C for 16-24 hours for a Bacillus subtilis culture and for 40-48 hours for Bacillus licheniformis. The purity of the culture is checked by plating on Petri dishes with agarized MPA medium, followed by temperature control at t = 37 ° C. The absence of growth of extraneous microflora is determined visually by the type of colonies. In addition, the purity of the culture is determined microscopically. In the absence of extraneous microflora, the inoculum is used for inoculation of flasks with a fermentation medium.
Приготовление сред.Cooking environments
Приготовление жидкой питательной среды для инокулята.Preparation of a liquid nutrient medium for the inoculum.
Состав питательной среды:The composition of the nutrient medium:
Пептон - 10 г/лPeptone - 10 g / l
Глюкоза - 20 г/лGlucose - 20 g / l
NaCl - 1 г/лNaCl - 1 g / l
CaCl2 - 0,05 г/лCaCl 2 - 0.05 g / l
MgSO4 - 0,25 г/лMgSO 4 - 0.25 g / l
MnSO4 - 0,3 г/лMnSO 4 - 0.3 g / l
FeSO4 - 0,01 г/лFeSO 4 - 0.01 g / l
Кукурузный экстракт - 30 г/лCorn extract - 30 g / l
pH среды 7,5±0,1 доводят 20% раствором NaOH.The pH of the medium is 7.5 ± 0.1, adjusted with a 20% NaOH solution.
Разливают в качалочные колбы с отбойниками по 100-150 мл.Poured into rocking flasks with chippers of 100-150 ml.
Стерилизуют в паровом стерилизаторе ВК-75 при t=121±1°C в течение 25 мин.Sterilized in a steam sterilizer VK-75 at t = 121 ± 1 ° C for 25 minutes.
ТП-2-2 Приготовление жидкой питательной среды для ферментации.TP-2-2 Preparation of a liquid nutrient medium for fermentation.
Состав питательной среды:The composition of the nutrient medium:
Пептон - 10 г/лPeptone - 10 g / l
Глюкоза - 20 г/лGlucose - 20 g / l
NaCl - 1 г/лNaCl - 1 g / l
CaCl2 - 0,05 г/лCaCl 2 - 0.05 g / l
MgSO4 - 0,25 г/лMgSO 4 - 0.25 g / l
MnSO4 - 0,3 г/лMnSO 4 - 0.3 g / l
FeSO4 - 0,01 г/лFeSO 4 - 0.01 g / l
Кукурузный экстракт - 30 г/лCorn extract - 30 g / l
pH среды 7,5±0,1 доводят 20% раствором NaOH.The pH of the medium is 7.5 ± 0.1, adjusted with a 20% NaOH solution.
Разливают в качалочные колбы с отбойниками по 100-150 мл.Poured into rocking flasks with chippers of 100-150 ml.
Стерилизуют в паровом стерилизаторе ВК-75 при t=121±1°C в течение 25 мин.Sterilized in a steam sterilizer VK-75 at t = 121 ± 1 ° C for 25 minutes.
Приготовление желатино-сахарозной защитной среды для лиофилизации продукта.Preparation of a gelatin-sucrose protective medium for lyophilization of the product.
Состав питательной среды:The composition of the nutrient medium:
Желатин - 10 г/лGelatin - 10 g / l
Сахар - 100 г/лSugar - 100 g / l
Среду тщательно перемешивают, разливают во флаконы по 100-150 мл и стерилизуют в паровом стерилизаторе ВК-75 при t=121±1°C в течение 25 мин.The medium is thoroughly mixed, poured into 100-150 ml vials and sterilized in a VK-75 steam sterilizer at t = 121 ± 1 ° C for 25 minutes.
Культивирование Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis.Cultivation of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis.
В качалочные колбы с отбойниками объемом 750 мл с жидкой питательной средой объемом 100-150 мл засевают инокулят в количестве 0,5-1 мл. Выращивание проводят в термостатируемой качалке N=200-220 об/мин или в ферментационных аппаратах вместимостью от 500 л до 63 м3 при N=250-270 об/мин с расходом воздуха 1:1, при t=37°C в течение 16-24 часов для культуры Bacillus subtilis и в течение 40-48 часов для Bacillus licheniformis.In a rocking flask with chippers with a volume of 750 ml with a liquid nutrient medium with a volume of 100-150 ml, the inoculum is inoculated in an amount of 0.5-1 ml. Cultivation is carried out in a thermostatic rocking chair N = 200-220 rpm or in fermentation apparatus with a capacity of 500 l to 63 m 3 at N = 250-270 rpm with an air flow of 1: 1, at t = 37 ° C for 16 -24 hours for a culture of Bacillus subtilis and within 40-48 hours for a Bacillus licheniformis.
Окончание культивирования определяют по достижению pH 7,2-7,6 для Bacillus subtilis и pH 8,0-8,5 для Bacillus licheniformis по полному потреблению глюкозы и обильному спорообразованию. Количество бактерий определяют методом десятикратных разведений с высевом на чашки Петри. В 1 см3 культуральной жидкости должно быть не менее 1010 клеток.The end of the cultivation is determined by reaching a pH of 7.2-7.6 for Bacillus subtilis and a pH of 8.0-8.5 for Bacillus licheniformis by total glucose consumption and copious spore formation. The number of bacteria is determined by ten-fold dilutions with plating on Petri dishes. In 1 cm 3 of culture fluid should be at least 1010 cells.
Обработка полученной культуральной суспензии.Processing the resulting culture suspension.
Полученные культуральные жидкости B.subtilis и B.licheniformis смешивают по титру в соотношении 1:1. С целью концентрирования культуральной жидкости проводят центрифугирование. Центрифугирование проводят на центрифуге при N=6000-8000 об/мин в течение 25 мин. Надосадочную жидкость собирают в реактор-нейтрализатор, обеззараживают при температуре 100°C в течение двух часов, после чего сливают в канализацию. Центрифугу после сбора пасты обрабатывают 4% раствором хлорамина, затем промывают водой.The obtained culture liquids B.subtilis and B.licheniformis are mixed by titer in a ratio of 1: 1. In order to concentrate the culture fluid, centrifugation is carried out. Centrifugation is carried out in a centrifuge at N = 6000-8000 rpm for 25 minutes The supernatant is collected in a neutralizer, disinfected at a temperature of 100 ° C for two hours, and then drained into the sewer. After collecting the paste, the centrifuge is treated with a 4% solution of chloramine, then washed with water.
Полученную биомассу клеток B.subtilis и B.licheniformis с влажностью 60-80% (паста бактерий) (≈2 г со 100 мл культуральной жидкости) выгружают в эмалированные или пластиковые емкости, смешивают с протектором (желатино-сахарозной смесью) таким образом, чтобы титр сухого продукта после сушки составил КОЕ/г 2×1012. Перемешивание до полной гомогенизации проводят на мешалке при N=1000 об/мин, в течение 20-25 мин. Перед розливом суспензию фильтруют через 4 слоя стерильной марли и разливают по 3 мл во флакон.The obtained biomass of B.subtilis and B.licheniformis cells with a moisture content of 60-80% (bacterial paste) (≈2 g with 100 ml of culture liquid) is discharged into enameled or plastic containers, mixed with a protector (gelatin-sucrose mixture) so that the dry product titer after drying was CFU / g 2 × 10 12 . Stirring until complete homogenization is carried out on a mixer at N = 1000 rpm, for 20-25 minutes Before bottling, the suspension is filtered through 4 layers of sterile gauze and poured into 3 ml vials.
СушкаDrying
Флаконы устанавливают на полки сублимационной сушилки.Vials are placed on shelves of a freeze dryer.
Режим сушки состоит из трех сегментов.Drying mode consists of three segments.
1 сегмент: замораживание от комнатной температуры до t=-40°C со скоростью 0,3, выдержка в течение 4-5 часов при этой температуре.1 segment: freezing from room temperature to t = -40 ° C at a speed of 0.3, holding for 4-5 hours at this temperature.
2 сегмент: сушка под вакуумом при температуре от t=-40°C до t=-20°C. Выдержка при t=-20°C в течение 4-5 часов.2 segment: drying under vacuum at a temperature from t = -40 ° C to t = -20 ° C. Exposure at t = -20 ° C for 4-5 hours.
3 сегмент: сушка под вакуумом при температуре от t=-20°C до t=+30°C. Выдержка при t=+30°C в течение 0,5 часа.3 segment: drying under vacuum at a temperature from t = -20 ° C to t = + 30 ° C. Exposure at t = + 30 ° C for 0.5 hours.
После окончания 3 сегмента сбрасывают вакуум, достают флаконы и передают в бокс для укупорки.After the end of 3 segments, the vacuum is released, the bottles are taken out and transferred to the box for capping.
Остаточная влажность таблетки препарата не более 4%.The residual moisture of the drug tablet is not more than 4%.
Упаковка готового продукта.Packaging of the finished product.
Флаконы с лиофильно высушенным продуктом укупоривают резиновыми пробками и фиксируют алюминиевыми колпачками. На флаконы с препаратом наклеивают этикетки, укладывают в картонные коробки. Картонные коробки укладывают в ящики из гофрированного картона. Этикетку с названием препарата и датой изготовления вкладывают в коробку.Vials with freeze-dried product are sealed with rubber stoppers and fixed with aluminum caps. Labels are glued on the vials with the drug, placed in cardboard boxes. Cardboard boxes are stacked in corrugated cardboard boxes. A label with the name of the drug and the date of manufacture is put in the box.
Сухая биомасса B.subtilis и B.licheniformis применяется для приготовления кормовой добавки, которая используется для повышения усвояемости кормов вследствие улучшения пищеварения сельскохозяйственных животных, птиц и рыб в условиях их промышленного воспроизводства.Dry biomass of B.subtilis and B.licheniformis is used to prepare a feed additive, which is used to increase the digestibility of feed due to improved digestion of farm animals, birds and fish in conditions of their industrial reproduction.
Примеры.Examples.
- выпаивание (0,5×1012 КОЕ/фл)- evaporation (0.5 × 10 12 CFU / fl)
- добавка в премикс (3,3×1011 КОЕ/г)- additive in premix (3.3 × 10 11 CFU / g)
- добавка в комбикорм (3,3×109 КОЕ/г)- additive in compound feed (3.3 × 10 9 CFU / g)
Споры пробиотика вместе с кормом попадают в пищевод, затем преодолевают жизнеспособными кислую среду желудка и, попадая в щелочную среду тонкого кишечника, прорастают в вегетативные клетки, выделяя при этом большое количество пищеварительных ферментов, чем способствуют более полному расщеплению и перевариванию корма.The spores of the probiotic together with the feed enter the esophagus, then overcome the viable acidic environment of the stomach and, entering the alkaline environment of the small intestine, grow into vegetative cells, secreting a large number of digestive enzymes, which contribute to a more complete digestion and digestion of the feed.
Одновременно проросшие споры вступают в конкуренцию за питательные субстраты с патогенной микрофлорой и вытесняют ее из кишечника, повышая тем самым иммунный статус животного и его защитный барьер от инфекций. В прямой кишке не завершившие метаболизм вегетативные клетки спорулируют и выходят с калом с последующим санирующим эффектом навоза.At the same time, spores that have sprouted compete for nutrient substrates with pathogenic microflora and displace it from the intestine, thereby increasing the animal’s immune status and its protective barrier against infections. In the rectum, vegetative cells that have not completed metabolism sporulate and exit with feces, followed by a sanitizing effect of manure.
Эффективность пробиотика усиливается тем, что в составе добавки присутствуют аэробная В.subtilis и анаэробная В.licheniformis бактерии, при этом на поверхности корма или слизистой в присутствии кислорода работает аэробная бактерия, по объему корма и внутри слизистой без доступа кислорода - анаэробная. Однако, в отличие от похожих по составу добавок, эти бактерии находятся в составе препарата в реальном соотношении 1:1, что как раз и гарантирует заявленый мощный синергический эффект.The effectiveness of the probiotic is enhanced by the fact that the additive contains aerobic B. subtilis and anaerobic B. licheniformis bacteria, while an aerobic bacterium works on the surface of the feed or mucous membrane in the presence of oxygen, anaerobic in volume of feed and inside the mucosa. However, unlike additives similar in composition, these bacteria are in the composition of the drug in a real ratio of 1: 1, which just guarantees the claimed powerful synergistic effect.
Шесть качеств спорогенного пробиотика, делающих его пробиотическим стимулятором роста:Six qualities of sporogenous probiotic making it a probiotic growth promoter:
- Продуцент пищеварительных ферментов (амилаз, липаз, протеаз).- Producer of digestive enzymes (amylases, lipases, proteases).
- Антагонист патогенов (конкуренция за питательные субстраты).- Antagonist of pathogens (competition for nutrient substrates).
- Сапротроф (антитоксическое действие, лизис продуктов гниения).- Saprotroph (antitoxic effect, lysis of decay products).
- Иммуномодулятор (активация макрофагов, индукция эндогенного интерферона).- Immunomodulator (macrophage activation, induction of endogenous interferon).
- Толерантность (дополняет и/или заменяет кормовые антибиотики, нейтрален в кормовых смесях и премиксах).- Tolerance (supplements and / or replaces feed antibiotics, neutral in feed mixes and premixes).
- Стабильность (выдерживает высокие температуры и давления гранулирования на комбикормовых заводах, неприхотлив в хранении.- Stability (withstands high temperatures and granulation pressures in feed mills, unpretentious in storage.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010135488/10A RU2432392C1 (en) | 2010-08-26 | 2010-08-26 | METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010135488/10A RU2432392C1 (en) | 2010-08-26 | 2010-08-26 | METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2432392C1 true RU2432392C1 (en) | 2011-10-27 |
Family
ID=44998099
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2010135488/10A RU2432392C1 (en) | 2010-08-26 | 2010-08-26 | METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2432392C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2605626C2 (en) * | 2015-04-28 | 2016-12-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кемеровский технологический институт пищевой промышленности (университет)" | Method of producing bacterial preparation with probiotic activity |
RU2774843C1 (en) * | 2021-08-23 | 2022-06-23 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining a feed additive for growing broiler chickens |
-
2010
- 2010-08-26 RU RU2010135488/10A patent/RU2432392C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2605626C2 (en) * | 2015-04-28 | 2016-12-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кемеровский технологический институт пищевой промышленности (университет)" | Method of producing bacterial preparation with probiotic activity |
RU2774843C1 (en) * | 2021-08-23 | 2022-06-23 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining a feed additive for growing broiler chickens |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN108541805B (en) | Recycling method of clostridium butyricum fermentation wastewater, fermentation product and application thereof | |
CN102304483A (en) | Enterococcus faecium for feeding and applications thereof | |
CN107047934A (en) | Using bacillus subtilis strain to strengthen the method for animal health | |
CN102226162A (en) | Preparation method and application of composite microbial feed additive | |
CN101209088A (en) | Microorganism polyzyme additive agent for improving pigling growth and development | |
CN101974463B (en) | Lactobacillus reuteri and composite viable bacteria preparation thereof | |
CN110982753B (en) | Bacillus coagulans MES847, microbial inoculum, chicken feed, preparation method and application | |
CN103875893A (en) | Multi-strain composite microorganism feed additive and preparation method thereof | |
CN102559560B (en) | Bacillus licheniformis for producing lactic acid at high yield after fermentation, and preparation and application of Bacillus licheniformis | |
CN102919543B (en) | Method for preparing multifunctional ready-to-use fermented feed for animals by composite fermentation bacteria wet process | |
CN102517227B (en) | Enterococcus faecalis and applications and feed additive and leavening agent thereof | |
CN104031960A (en) | Extracting method and application of extracellular antimicrobial lipopeptides of bacillus amyloliquefaciens | |
CN110495611A (en) | A kind of technique improving sea cucumber nutritional health effect | |
CN111826323A (en) | Bacillus subtilis, preparation and application thereof | |
CN107043722A (en) | One plant of pig source lactobacillus reuteri and its solid-state probiotics of preparation | |
WO2004089109A1 (en) | Feed composition | |
CN113615766A (en) | Preparation and application of composite plant extract and probiotic biological fermentation feed | |
CN112741210A (en) | Biological preparation for improving animal organism immunity function and preparation method thereof | |
KR20000073915A (en) | Probiotics For Feed Additives | |
RU2432392C1 (en) | METHOD TO PRODUCE PROBIOTIC PREPARATION BASED ON SPOROGENOUS STRAINS Bac subtillis AND Bac licheniformis | |
RU2346463C2 (en) | Method for production of dietary supplement | |
RU2471864C1 (en) | Probiotic preparation for viral and bacterial infections toxisporin, method for preparing it, bacillus licheniformis bacterial strain used as ingredient of probiotic preparation | |
RU2378000C2 (en) | Method for production of therapeutic additive | |
RU2475535C1 (en) | Method to produce probiotic preparation lacto-amylovorin | |
CN101597586A (en) | A kind of product enzyme probiotic bacterium and production method thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120827 |