RU2418062C1 - Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity - Google Patents

Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity Download PDF

Info

Publication number
RU2418062C1
RU2418062C1 RU2009148354/10A RU2009148354A RU2418062C1 RU 2418062 C1 RU2418062 C1 RU 2418062C1 RU 2009148354/10 A RU2009148354/10 A RU 2009148354/10A RU 2009148354 A RU2009148354 A RU 2009148354A RU 2418062 C1 RU2418062 C1 RU 2418062C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
mycelium
cultivation
basidiomycete
water
temperature
Prior art date
Application number
RU2009148354/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Лариса Михайловна Краснопольская (RU)
Лариса Михайловна Краснопольская
Анастасия Витальевна Автономова (RU)
Анастасия Витальевна Автономова
Владимир Михайлович Бухман (RU)
Владимир Михайлович Бухман
Мария Ильинична Леонтьева (RU)
Мария Ильинична Леонтьева
Наталия Юрьевна Соболева (RU)
Наталия Юрьевна Соболева
Original Assignee
Лариса Михайловна Краснопольская
Анастасия Витальевна Автономова
Владимир Михайлович Бухман
Мария Ильинична Леонтьева
Наталия Юрьевна Соболева
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Лариса Михайловна Краснопольская, Анастасия Витальевна Автономова, Владимир Михайлович Бухман, Мария Ильинична Леонтьева, Наталия Юрьевна Соболева filed Critical Лариса Михайловна Краснопольская
Priority to RU2009148354/10A priority Critical patent/RU2418062C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2418062C1 publication Critical patent/RU2418062C1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

FIELD: food industry.
SUBSTANCE: method involves preparation of inoculation mycelium of basidiomycetes, preparation of productive nutrient medium and inoculation of the productive nutrient medium, containing carbohydrate and nitrogen source and mineral salts, with the prepared inoculation mycelium. Basidiomycetes cultivation with subsequent production of an immersion culture. The inoculation mycelium preparation is performed in a sterile nutrient medium containing glucose, soya flour, potassium dihydrogen phosphate, magnesium sulphate and arachidonic acid. The inoculation mycelium growing is performed at a temperature of 22-29°C during 2-6 days under aeration conditions with its subsequent homogenisation.
EFFECT: antineoplastic remedy produced from the basidiomycetes immersion culture is effective and the cultivation process duration is reduced from 2-3 weeks to one week; mycelium yield increases.
23 cl, 6 tbl, 12 ex

Description

Группа изобретений относится к области биотехнологии и может быть использована для получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, путем культивирования базидиомицетов в погруженной культуре.The group of inventions relates to the field of biotechnology and can be used to obtain funds with antitumor activity by culturing basidiomycetes in an immersed culture.

Известно, что метаболиты многих видов базидиомицетов обладают лечебными свойствами, в частности противоопухолевым действием, включающим прямое ингибирующее действие на пролиферацию и рост клеток опухоли, повышение противоопухолевого иммунитета, антиканцерогенное действие, а также антиоксидантным, противовирусным, гепатопротекторным и иммуномоделирующим действием. В последние годы в России, США, Китае, Японии, Корее ведутся работы по получению лекарственных средств на основе базидиомицетов. Создание новых лекарственных препаратов сдерживается сложной дорогостоящей технологией выращивания базидиомицетов и выделения из них веществ, обладающих стабильными биологическими свойствами, в частности противоопухолевыми.The metabolites of many types of basidiomycetes are known to have healing properties, in particular, an antitumor effect, including a direct inhibitory effect on the proliferation and growth of tumor cells, an increase in antitumor immunity, anticarcinogenic effect, as well as antioxidant, antiviral, hepatoprotective and immunomodulating effects. In recent years, work has been ongoing in Russia, the United States, China, Japan, and Korea to obtain drugs based on basidiomycetes. The creation of new drugs is hampered by the complex and expensive technology for growing basidiomycetes and isolating from them substances with stable biological properties, in particular antitumor ones.

Образование базидиомицетами ценных для фармакологии веществ зависит как от используемых видов базидиомицетов, так и от технологии их культивирования (приготовление посевного материала, условия культивирования), а также процессов выделения метаболитов.The formation of substances valuable for pharmacology by basidiomycetes depends both on the types of basidiomycetes used and on the technology of their cultivation (preparation of seed, cultivation conditions), as well as metabolite isolation processes.

Для лечения онкологических заболеваний используют химические вещества, такие как цитостатики, проявляющие высокую токсичность, что ограничивает их применение.For the treatment of cancer, chemicals are used, such as cytostatics, which exhibit high toxicity, which limits their use.

Токсичность противоопухолевых средств, полученных из съедобных или несъедобных (неядовитых) базидиомицетов, по литературным данным или отсутствует, или очень низкая (Chang & But, 1986, Su et al., 1987).The toxicity of antitumor agents obtained from edible or inedible (non-toxic) basidiomycetes, according to published data, is either absent or very low (Chang & But, 1986, Su et al., 1987).

В настоящее время большое внимание уделяется разработке технологии культивирования базидиомицетов с целью получения максимального количества мицелия при культивировании в возможно короткий срок и методам выделения противоопухолевых средств.Currently, much attention is paid to the development of technology for the cultivation of basidiomycetes in order to obtain the maximum amount of mycelium during cultivation as soon as possible and methods for the isolation of antitumor agents.

Известен способ получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, из мицелия гриба Ganoderma lucidum. Мицелий получают путем культивирования Ganoderma lucidum в погруженной культуре на питательной среде, содержащей 50 г глюкозы, 20 г пептона, 0,87 г дигидрофосфата калия, 0,5 г сульфата магния, 10 г хлорида железа (II), 7 г хлорида марганца, 10 г сульфата цинка, 4 мг хлорида цинка на 1 л воды, рН среды 5,5.A known method of obtaining funds with antitumor activity from the mycelium of the fungus Ganoderma lucidum. Mycelium is obtained by culturing Ganoderma lucidum in a submerged culture on a nutrient medium containing 50 g of glucose, 20 g of peptone, 0.87 g of potassium dihydrogen phosphate, 0.5 g of magnesium sulfate, 10 g of iron (II) chloride, 7 g of manganese chloride, 10 g of zinc sulfate, 4 mg of zinc chloride per 1 liter of water, pH 5.5.

Предварительно готовят посевной мицелий. Для этого указанный гриб культивируют при 180 об/мин, 25°С в течение 10 суток. Полученную культуру пересевают в свежую питательную среду в количестве 5% и вновь культивируют в течение 10 суток. Мицелий отделяют от культуральной жидкости и из него выделяют протеогликан G009 - средство, обладающее противоопухолевой активностью, очищают его и определяют противоопухолевую активность в отношении саркомы 180, привитой самцам мышей (RU 2082755 С1, 19.08.1997).Pre-prepared inoculum mycelium. To do this, the specified fungus is cultivated at 180 rpm, 25 ° C for 10 days. The resulting culture is reseeded in fresh nutrient medium in an amount of 5% and re-cultured for 10 days. The mycelium is separated from the culture fluid and G009 proteoglycan is isolated from it - an agent with antitumor activity, it is purified and antitumor activity is determined against sarcoma 180 vaccinated in male mice (RU 2082755 C1, 08.19.1997).

Недостатком описанного способа является длительный процесс приготовления посевного мицелия (до 20 суток), продолжительный процесс культивирования гриба (7 суток) и сложный процесс выделения средства, обладающего противоопухолевой активностью.The disadvantage of the described method is the long process of preparing seed mycelium (up to 20 days), the long process of cultivating the fungus (7 days) and the complex process of isolating an agent with antitumor activity.

Известен способ получения препарата, влияющего на тканевый обмен, в том числе обладающего противоопухолевой активностью, предусматривающий глубинное культивирование гриба Pleurotus ostreatus 1137 (ВКПМ-F 819) в колбах на среде, содержащей пивное сусло 0,65° Б, при 26-28°С на роторной качалке с 200 об/мин, длительность процесса до 24 суток, с последующим отделением мицелия от нативного раствора центрифугированием и выделением биологически активных веществ из мицелия экстракцией этанолом при нейтральном или кислом значениях рН. Экстракты упаривают в вакууме до сухого остатка. Сухой остаток растворяют в водном растворе этанола. Полученные фракции используют для биологических испытаний. Противоопухолевую активность полученного средства исследуют на мышах с трансплантированным асцитным раком молочной железы при однократном введении химических противоопухолевых средств - цитостатиков. Препарат, полученный вышеописанным способом, вводят в дозе 100 мг/кг через 2 часа после трансплантации опухоли, а затем в той же дозе в течение 9 суток ежедневно. Средняя продолжительность жизни животных составила 30,8±0,8 суток, а в контроле - 18,0±0,8 суток, т.е. на 71% больше, чем в контроле (RU 2192873 С1, 20.11.2002).A known method of obtaining a drug that affects tissue metabolism, including having antitumor activity, involving the deep cultivation of the fungus Pleurotus ostreatus 1137 (VKPM-F 819) in flasks on a medium containing beer wort 0.65 ° B, at 26-28 ° C on a rotary shaker at 200 rpm, the duration of the process is up to 24 days, followed by separation of the mycelium from the native solution by centrifugation and isolation of biologically active substances from the mycelium by extraction with ethanol at neutral or acidic pH values. The extracts are evaporated in vacuo to a dry residue. The dry residue is dissolved in an aqueous solution of ethanol. The obtained fractions are used for biological tests. The antitumor activity of the obtained agent is investigated in mice with transplanted ascites breast cancer with a single administration of chemical antitumor agents - cytostatics. The drug obtained by the above method is administered at a dose of 100 mg / kg 2 hours after tumor transplantation, and then at the same dose for 9 days daily. The average life expectancy of animals was 30.8 ± 0.8 days, and in the control, 18.0 ± 0.8 days, i.e. 71% more than in control (RU 2192873 C1, 11/20/2002).

Недостатком описанного способа является длительность процесса культивирования гриба, а также проведение исследования противоопухолевой активности на фоне цитостатиков - токсичных веществ, в связи с чем невозможно судить о самостоятельной противоопухолевой эффективности полученных средств.The disadvantage of the described method is the duration of the process of cultivation of the fungus, as well as the study of antitumor activity against the background of cytostatics - toxic substances, and therefore it is impossible to judge the independent antitumor effectiveness of the funds obtained.

Известен способ получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, из мицелия базидиомицетов, выбранных из группы Ganoderma lucidum, Hypsizygus ulmarius, Kuhneromyces mutabilis, Omphalotus olearis, Panus conchatus, Piptoporus betulinus, Pleurotus eryngii, Trametes zonata.A known method of obtaining funds with antitumor activity from the mycelium of basidiomycetes selected from the group of Ganoderma lucidum, Hypsizygus ulmarius, Kuhneromyces mutabilis, Omphalotus olearis, Panus conchatus, Piptoporus betulinus, Pleurotus eryngii, Trametes z.

Базидиомицеты вначале выращивают на агаровой среде при 27°С, а затем пересевают на жидкую среду и культивируют в погруженной культуре при 27°С, 180 об/мин в течение 2-3 недель. Среда содержит 2% глюкозы, 0,1% пептона, 0,1% дрожжевого экстракта, 0,1% дигидрофосфата калия, 0,1% сульфата магния и микроэлементы (сульфат железа (II), сульфат марганца, сульфат цинка, сульфат меди). Из погруженной культуры выделяют мицелий, высушивают и из сухого мицелия экстрагируют средство, обладающее противоопухолевой активностью. В качестве экстрагента используют метанол, этанол, ацетонитрил, этилацетат, хлороформ, дихлорметан или их смеси (US 20060057157, 16.03.2006).Basidiomycetes are first grown on agar medium at 27 ° C, and then subcultured on liquid medium and cultured in an immersed culture at 27 ° C, 180 rpm for 2-3 weeks. The medium contains 2% glucose, 0.1% peptone, 0.1% yeast extract, 0.1% potassium dihydrogen phosphate, 0.1% magnesium sulfate and trace elements (iron (II) sulfate, manganese sulfate, zinc sulfate, copper sulfate) . Mycelium is isolated from a submerged culture, dried, and an agent having antitumor activity is extracted from dry mycelium. The extractant used is methanol, ethanol, acetonitrile, ethyl acetate, chloroform, dichloromethane or mixtures thereof (US 20060057157, March 16, 2006).

Недостатком описанного способа получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, является длительное культивирование базидиомицетов (2-3 недели), использование для получения противоопухолевого средства только отделенного от культуральной жидкости и высушенного мицелия и низкая эффективность полученного средства в системе in vitro. В системе in vivo полученное средство испытано не было.A disadvantage of the described method for producing an agent having antitumor activity is the long-term cultivation of basidiomycetes (2-3 weeks), the use of an antitumor agent only separated from the culture fluid and dried mycelium and the low efficiency of the obtained agent in the in vitro system. In an in vivo system, the resulting preparation has not been tested.

Задачей, на решение которой направлена группа изобретений, является сокращение длительности процесса культивирования базидиомицетов, повышение выхода мицелия и получение более эффективного противоопухолевого средства.The task to which the group of inventions is directed is to reduce the duration of the process of culturing basidiomycetes, increase the yield of mycelium and obtain a more effective antitumor agent.

Поставленная задача решается за счет того, что в способе получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, включающем приготовление посевного мицелия базидиомицета, приготовление стерильной производственной питательной среды, засев производственной питательной среды, содержащей источники углерода, азота, минеральные соли, приготовленным посевным мицелием, культивирование базидиомицета с последующим получением погруженной культуры, согласно изобретению, приготовление посевного мицелия осуществляют на стерильной жидкой питательной среде, содержащей (г/л воды): глюкозу - 18,0-22,0, соевую муку - 8,0-12,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,4 и арахидоновую кислоту - 1,0-5,0×10-5, выращивание посевного материала проводят при температуре 22-29° С в течение 2-6 суток при аэрации, при этом готовый посевной мицелий гомогенизируют.The problem is solved due to the fact that in the method of obtaining funds with antitumor activity, including the preparation of seed mycelium of basidiomycete, preparation of a sterile production nutrient medium, inoculation of a production nutrient medium containing sources of carbon, nitrogen, mineral salts, prepared inoculum mycelium, cultivation of basidiomycete with the subsequent receipt of an immersed culture, according to the invention, the preparation of seed mycelium is carried out on a sterile liquid nutrient medium containing (g / l of water): glucose - 18.0-22.0, soy flour - 8.0-12.0, potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.0, magnesium sulfate - 0.2 -0.4 and arachidonic acid - 1.0-5.0 × 10 -5 , seed cultivation is carried out at a temperature of 22-29 ° C for 2-6 days during aeration, while the finished seed mycelium is homogenized.

Соевая мука может быть использована как генетически модифицированных, так и не модифицированных сортов сои.Soy flour can be used both genetically modified and unmodified soybean varieties.

Гомогенизацию готового посевного материала можно осуществлять как перед засевом производственной питательной среды в гомогенизаторе в течение 2-5 минут, так и в процессе засева непосредственно в биореакторе при включенной мешалке на 300-500 об/мин в течение 0,5-6 минут.Homogenization of the finished seed can be carried out both before sowing the production nutrient medium in the homogenizer for 2-5 minutes, and in the process of sowing directly in the bioreactor with the stirrer turned on at 300-500 rpm for 0.5-6 minutes.

Для культивирования следует использовать базидиомицет, выбранный из группы Armillaria mellea (Fr.) Karst., Flammulina velutipes (Curt.:Fr.) Singer, Hericium erinaceus (Bull.:Fr.) Pers., Hypsizygus marmareus (Peck) H.E.Bigelow, Hypsizygus tessulatus (Bulliard:Fr.) Singer, Lentinus edodes (Berk.) Singer, Lyophyllum shimeji (Kawam.) Hongo, Pleurotus djamor (Rumphius ex Fries) Boedjin, Pleurotus ostreatus (Jacg.:Fr.) Kumm.For cultivation, a basidiomycete selected from the group Armillaria mellea (Fr.) Karst., Flammulina velutipes (Curt.:Fr.) Singer, Hericium erinaceus (Bull.:Fr.) Pers., Hypsizygus marmareus (Peck) HEBigelow, Hypsizygus should be used tessulatus (Bulliard: Fr.) Singer, Lentinus edodes (Berk.) Singer, Lyophyllum shimeji (Kawam.) Hongo, Pleurotus djamor (Rumphius ex Fries) Boedjin, Pleurotus ostreatus (Jacg.:Fr.) Kumm.

При культивировании базидиомицета Armillaria mellea в производственную питательную среду следует вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 15,0-18,0, соевую муку - 18,0-20,0, дигидрофосфат калия - 0.5-2,5, сульфат магния - 0,05-0,26, культивирование осуществлять при температуре 24-28° С в течение 4,5-5,5 суток.When cultivating Armillaria mellea basidiomycete into the production medium, it is necessary to introduce (g / l of water): vegetable oil in the amount of 15.0-18.0, soy flour - 18.0-20.0, potassium dihydrogen phosphate - 0.5-2.5, magnesium sulfate - 0.05-0.26, cultivation is carried out at a temperature of 24-28 ° C for 4.5-5.5 days.

При культивировании базидиомицета Flammulina velutipes в производственную питательную среду следует вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 19.0-27,0, соевую муку в количестве 19,0-27,0, дигидрофосфат калия - 1,4-3,0, сульфат магния - 0,14-0,30, культивирование осуществлять при температуре 20-28° С в течение 5,5-6,5 суток.When cultivating the basidiomycete Flammulina velutipes into the production medium, it is necessary to introduce (g / l water): vegetable oil in an amount of 19.0-27.0, soy flour in an amount of 19.0-27.0, potassium dihydrogen phosphate - 1.4-3.0 , magnesium sulfate - 0.14-0.30, cultivation is carried out at a temperature of 20-28 ° C for 5.5-6.5 days.

При культивировании базидиомицета Hericium erinaceus в производственную питательную среду рекомендуется вводить (г/л воды): растительное масло и соевую муку в количествах, соответственно равных 10.0-27,0 и 20,0-25,0, дигидрофосфат калия вводить в количестве 2.0-3,3, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-32° С в течение 5,5-6,5 суток. В указанную производственную среду для культивирования Hericium erinaceus можно дополнительно вводить мелассу в количестве 1-40 г/л среды.When cultivating Hericium erinaceus basidiomycete, it is recommended to introduce (g / l water) into the production nutrient medium: vegetable oil and soy flour in amounts of 10.0-27.0 and 20.0-25.0, respectively, to introduce potassium dihydrogen phosphate in an amount of 2.0-3 , 3, magnesium sulfate - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-32 ° C for 5.5-6.5 days. Molasses in the amount of 1-40 g / l of medium can be added to the indicated production medium for cultivation of Hericium erinaceus.

При культивировании базидиомицета Hypsizygus marmareus в производственную питательную среду целесообразно вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 20,0-24,0, соевую муку в количестве 16,0-22,0, дигидрофосфат калия - 1,5-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-31°С в течение 5,5-6,5 суток.When cultivating the basidiomycete Hypsizygus marmareus, it is advisable to introduce (g / l water) into the production medium: vegetable oil in an amount of 20.0-24.0, soy flour in an amount of 16.0-22.0, potassium dihydrogen phosphate - 1.5-3 , 0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-31 ° C for 5.5-6.5 days.

При культивировании базидиомицета Hypsizygus tessulatus в производственную среду следует вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 18.0-25,0, соевую муку - 20,0-28,0, дигидрофосфат калия - 1,6-2,6, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-33° С в течение 6,5-7,5 суток.When cultivating the basidiomycete Hypsizygus tessulatus, it is necessary to introduce (g / l water) into the production medium: vegetable oil in the amount of 18.0-25.0, soy flour - 20.0-28.0, potassium dihydrogen phosphate - 1.6-2.6, sulfate magnesium - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-33 ° C for 6.5-7.5 days.

При культивировании базидиомицета Lentinus edodes в производственную питательную среду целесообразно вводить (г/л воды): растительное масло и соевую муку в количествах, соответственно равных 12,0-16,0 и 18,0-24,0, дополнительно вводить источник углерода в виде глюкозы в количестве 8-12, вводить дигидрофосфат калия в количестве 1,3-2,6, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-30°С в течение 5,5-6,5 суток.When cultivating Lentinus edodes basidiomycete, it is advisable to introduce (g / l water) into the production medium: vegetable oil and soy flour in amounts equal to 12.0-16.0 and 18.0-24.0, respectively, and additionally introduce a carbon source in the form glucose in an amount of 8-12, inject potassium dihydrogen phosphate in an amount of 1.3-2.6, magnesium sulfate - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-30 ° C for 5.5-6.5 days .

При культивировании базидиомицета Lyophyllum shimeji в производственную питательную среду следует вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 16,0-22,0, соевую муку - 18,0-25,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-34°С в течение 3,5-4,5 суток.When cultivating the basidiomycete Lyophyllum shimeji into the production medium, it is necessary to introduce (g / l of water): vegetable oil in the amount of 16.0-22.0, soy flour - 18.0-25.0, potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3, 0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-34 ° C for 3.5-4.5 days.

При культивировании базидиомицета Pleurotus djamor в производственную среду следует вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 15,0-20,0, соевую муку - 15,0-21,0, дигидрофосфат калия - 2.0-3,3, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 26-35°С в течение 2,5-3,5 суток.When cultivating Pleurotus djamor basidiomycete into the production environment, it is necessary to introduce (g / l water): vegetable oil in an amount of 15.0-20.0, soy flour - 15.0-21.0, potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.3, sulfate magnesium - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 26-35 ° C for 2.5-3.5 days.

При культивировании базидиомицета Pleurotus ostreatus в производственную питательную среду целесообразно вводить (г/л воды): растительное масло в количестве 14,0-20,0, соевую муку - 11,0-19,0, дигидрофосфат калия - 2.0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, культивирование осуществлять при температуре 24-28°С в течение 2,5-3,5 суток.When cultivating Pleurotus ostreatus basidiomycete, it is advisable to introduce (g / l water) into the production nutrient medium: vegetable oil in an amount of 14.0-20.0, soy flour - 11.0-19.0, potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, cultivation is carried out at a temperature of 24-28 ° C for 2.5-3.5 days.

В качестве растительного масла в производственных питательных средах для культивирования Armillaria mellea, Flammulina velutipes, Hericium erinaceus, Hypsizygus marmareus, Hypsizygus tessulatus, Lentinus edodes, Lyophyllum shimeji, Pleurotus djamor, Pleurotus ostreatus могут быть использованы подсолнечное, оливковое, соевое, льняное, арахисовое масла или их смеси.As a vegetable oil in the production culture media for cultivation of Armillaria mellea, Flammulina velutipes, Hericium erinaceus, Hypsizygus marmareus, Hypsizygus tessulatus, Lentinus edodes, Lyophyllum shimeji, Pleurotus djamor, olive oil, sunflower oil, sunflower oil, sunflower, sunflower, mixtures thereof.

Введение в состав производственных питательных сред растительного масла в заявленном количестве способствует не только сокращению длительности процесса культивирования и повышению выхода мицелия, но и снижает процесс пенообразования в процессе культивирования.The introduction of vegetable oil into the composition of the production nutrient media in the declared amount helps not only to reduce the duration of the cultivation process and increase the yield of mycelium, but also reduces the foaming process in the cultivation process.

После культивирования базидиомицета полученную погруженную культуру следует подвергать сублимационной сушке, затем сухой мицелий измельчать и использовать в качестве противоопухолевого средства.After basidiomycete cultivation, the resulting submerged culture should be freeze-dried, then chopped dry mycelium and used as an antitumor agent.

После культивирования базидиомицета полученную погруженную культуру можно автоклавировать при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-3 часов, отделять жидкую фазу фильтрованием и использовать в качестве противоопухолевого средства.After basidiomycete cultivation, the resulting submerged culture can be autoclaved at 1.2-1.5 atm for 1.5-3 hours, the liquid phase can be separated by filtration and used as an antitumor agent.

Для получения противоопухолевого средства после культивирования базидиомицета можно отделять мицелий из погруженной культуры фильтрованием, экстрагировать его дистиллированной водой в соотношении 90-360 г/л воды в процессе автоклавирования при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 часов, отделенный водный экстракт использовать в качестве целевого средства.To obtain an antitumor agent after cultivation of basidiomycete, mycelium can be separated from the submerged culture by filtration, extracted with distilled water in the ratio of 90-360 g / l of water during autoclaving at 1.2-1.5 atm for 1.5-2.5 hours The separated aqueous extract is used as a target.

После культивирования из погруженной культуры целесообразно отделять мицелий базидиомицета и проводить экстракцию этанолом в соотношении 90-360 г/100 мл экстрагента в течение 0,5-1,5 часов при перемешивании, полученный этанольный экстракт отделять от остатков мицелия, упаривать до сухого остатка на испарителе, а остаток мицелия заливать дистиллированной водой в соотношении 90-360 г/л, автоклавировать при 1, 2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 часов, полученный водный экстракт отделять и объединять с сухим остатком этанольного экстракта и полученную смесь использовать в качестве противоопухолевого средства.After cultivation, it is advisable to separate the mycelium of basidiomycete from the submerged culture and carry out extraction with ethanol in a ratio of 90-360 g / 100 ml of extractant for 0.5-1.5 hours with stirring, separate the resulting ethanol extract from the mycelium residues, evaporate to a dry residue on an evaporator and fill the remainder of mycelium with distilled water in a ratio of 90-360 g / l, autoclave at 1, 2-1.5 atm for 1.5-2.5 hours, separate the resulting aqueous extract and combine with the dry residue of the ethanol extract and the resulting mixture isp use as an antitumor agent.

После культивирования можно отделять из погруженной культуры мицелий базидиомицета, высушивать его при температуре 35-80°С, измельчать и использовать в качестве противоопухолевого средства.After cultivation, the basidiomycete mycelium can be separated from the submerged culture, dried at a temperature of 35-80 ° C, ground and used as an antitumor agent.

Сухой измельченный мицелий базидиомицета следует подвергать экстрагированию кипящей дистиллированной водой в соотношении 18-72 г/л при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 часов, затем водный экстракт отделять от остатков мицелия и использовать в качестве противоопухолевого средства.Dry crushed mycelium of basidiomycete should be extracted with boiling distilled water in a ratio of 18-72 g / l at 1.2-1.5 atm for 1.5-2.5 hours, then the aqueous extract should be separated from the remains of the mycelium and used as an antitumor facilities.

Для увеличения срока хранения без снижения биологической активности водный экстракт мицелия базидиомицета может быть заморожен при температуре -18-70° С. Перед использованием в качестве противоопухолевого средства водный экстракт следует разморозить.To increase the shelf life without decreasing biological activity, the aqueous extract of basidiomycete mycelium can be frozen at a temperature of -18-70 ° C. Before use as an antitumor agent, the aqueous extract should be thawed.

С той же целью водный экстракт мицелия базидиомицета может быть высушен на распылительной сушилке. Возможно использование как непосредственно сухого экстракта, так и его раствора в дистиллированной воде.For the same purpose, the aqueous extract of basidiomycete mycelium can be dried on a spray dryer. It is possible to use both the dry extract itself and its solution in distilled water.

В водный экстракт мицелия базидиомицета можно добавлять 2-6 объемов этанола, выпавший осадок отделять, высушивать и использовать в качестве противоопухолевого средства.2-6 volumes of ethanol can be added to the aqueous extract of mycelium of basidiomycete, the precipitate should be separated, dried and used as an antitumor agent.

Как следует из вышесказанного, противоопухолевое средство может быть использовано как в сухом порошкообразном виде, так и в жидком. К полученному противоопухолевому средству могут быть добавлены различные фармацевтические добавки, такие как витамины, микроэлементы, антиоксиданты, совместимые противоопухолевые средства.As follows from the foregoing, the antitumor agent can be used both in dry powder form and in liquid. Various pharmaceutical additives, such as vitamins, trace elements, antioxidants, compatible antitumor agents, can be added to the resulting antitumor agent.

Противоопухолевое средство может быть изготовлено в виде таблеток, капсул, напитка и может быть использовано как перорально, так и в виде микроклизм.The antitumor agent can be made in the form of tablets, capsules, a drink and can be used both orally and in the form of microclysters.

Дозировка противоопухолевого средства зависит от заболевания, возраста пациента, его веса, состава средства. В пересчете на содержание полисахаридов предпочтительная дозировка для лабораторных животных может быть 1-3 мг полисахаридов на кг массы, для человека - 0,08-0,25 мг/кг.The dosage of the antitumor agent depends on the disease, the age of the patient, his weight, and the composition of the agent. In terms of the content of polysaccharides, the preferred dosage for laboratory animals can be 1-3 mg of polysaccharides per kg of weight, for humans - 0.08-0.25 mg / kg.

Технический результат заявленной группы изобретений заключается в увеличении выхода мицелия за счет разработки состава производственной среды, условий культивирования, подбора состава среды для получения посевного материала, в сокращении длительности процесса культивирования базидиомицета с 2-3 недель до 7,5 суток. Включение в состав производственной среды растительного масла не только повышает выход биомассы базидиомицета, но и препятствует пенообразованию среды в процессе культивирования базидиомицета. В совокупности разработанные способ культивирования базидиомицета и способ выделения противоопухолевого средства позволили получить эффективное средство, тормозящее рост опухоли в опытах in vivo до 94%.The technical result of the claimed group of inventions is to increase the yield of mycelium due to the development of the composition of the production environment, cultivation conditions, the selection of the composition of the medium to obtain seed, to reduce the duration of the cultivation of basidiomycetes from 2-3 weeks to 7.5 days. The inclusion of vegetable oil in the production environment not only increases the yield of basidiomycete biomass, but also prevents foaming of the medium during the cultivation of basidiomycete. Together, the developed method for cultivating basidiomycete and the method for isolating an antitumor agent made it possible to obtain an effective agent inhibiting tumor growth in experiments in vivo to 94%.

Изобретение иллюстрируется нижеприведенными примерами, которые не охватывают весь объем притязаний, но и не ограничивают его.The invention is illustrated by the following examples, which do not cover the entire scope of the claims, but do not limit it.

Пример 1. Приготовление посевного мицелия базидиомицетов.Example 1. Preparation of seed mycelium of basidiomycetes.

Готовили стерильные жидкие питательные среды, состав которых представлен в таблице 1, и засевали мицелием базидиомицетов, выращенных на агаровой питательной среде.Sterile liquid culture media were prepared, the composition of which is shown in Table 1, and sowed with mycelium of basidiomycetes grown on an agar culture medium.

Выращивание посевного мицелия осуществляли на ротационной качалке при температуре 22-29°С, скорости вращения качалки 180-220 об/мин в течение 2-6 суток. Условия культивирования базидиомицетов приведены в таблице 2.The cultivation of seed mycelium was carried out on a rotary shaker at a temperature of 22-29 ° C, the rotation speed of the shaker 180-220 rpm for 2-6 days. The cultivation conditions of basidiomycetes are shown in table 2.

Приготовленный посевной мицелий Hericium erinaceus штамм He-4, Lentinus edodes штамм Le-14, Pleurotus ostreatus штамм 447 гомогенизировали в процессе засева производственной среды в биореакторе при включенной мешалке на 500 об/мин в течение 0,5 минут.The prepared seed mycelium of Hericium erinaceus strain He-4, Lentinus edodes strain Le-14, Pleurotus ostreatus strain 447 was homogenized during inoculation of the production medium in the bioreactor with the stirrer at 500 rpm for 0.5 minutes.

Таблица 1.Table 1. Составы сред для получения посевного мицелия базидиомицетов.Compositions of media for obtaining seed mycelium of basidiomycetes. Вид базидиомицетаType of basidiomycete Источники питания, г/л водыPower sources, g / l of water ГлюкозаGlucose Соевая мукаSoya flour КН2РO4 KN 2 PO 4 MgSO4 MgSO 4 Арахидоновая кислотаArachidonic acid A.melleaA.mellea 18eighteen 1212 2,42,4 0,200.20 1,0×10-5 1.0 × 10 -5 F.velutipesF.velutipes 2222 88 2,52.5 0,240.24 3,0×10-5 3.0 × 10 -5 Н.erinaceusH. erinaceus 1919 1010 3,03.0 0,40.4 5,0×10-5 5.0 × 10 -5 Н.marmareusH. marmareus 2121 99 2,42,4 0,250.25 2,0×10-5 2.0 × 10 -5 Н.tessulatusH. tessulatus 2222 8,58.5 2,02.0 0,40.4 4,5×10-5 4,5 × 10 -5 L.edodesL.edodes 20twenty 99 3,03.0 0,30.3 4,0×10-5 4.0 × 10 -5 L.shimejiL.shimeji 2121 9,59.5 2,52.5 0,240.24 3,5×10-5 3,5 × 10 -5 P.djamorP.djamor 1919 1010 2,02.0 0,30.3 2,0×10-5 2.0 × 10 -5 P.ostreatusP.ostreatus 2222 99 2,52.5 0,40.4 1,0×10-5 1.0 × 10 -5

Таблица 2.Table 2. Условия выращивания посевного мицелия базидиомицетов.The growing conditions of the seed mycelium of basidiomycetes. Вид базидиомицетаType of basidiomycete Параметры культивированияCultivation parameters Скорость вращения мешалки, об/минMixer rotation speed, rpm Температура, °СTemperature ° C Длительность процесса, сутThe duration of the process, days A.melleaA.mellea 220220 2525 4four F.velutipesF.velutipes 180180 2222 66 H.erinaceusH.erinaceus 200200 2828 66 Н.marmareusH. marmareus 220220 2525 33 Н.tessulatusH. tessulatus 220220 2525 33 L.edodesL.edodes 220220 2525 66 L.shimejiL.shimeji 200200 2828 33 P.djamorP.djamor 200200 2929th 22 P.ostreatusP.ostreatus 220220 2525 22

Пример 2. Погруженное культивирование базидиомицетов.Example 2. Submerged cultivation of basidiomycetes.

Для погруженного культивирования базидиомицетов готовили производственные среды, состав которых представлен в таблице 3. Производственные среды стерилизовали при 1,2 атм в течение 30 мин, охлаждали и засевали посевным мицелием базидиомицетов, полученным по примеру 1.For submerged cultivation of basidiomycetes, production media were prepared, the composition of which is shown in Table 3. Production media was sterilized at 1.2 atm for 30 minutes, cooled and seeded with seed mycelium of basidiomycetes obtained in Example 1.

Приготовленный посевной мицелий Armillaria mellea штамм Am-4, Flammulina velutipes штамм Fv-7, Hypsizygus marmareus штамм Hm-1, Hypsizygus tessulatus штамм Ht-1, Lyophyllum shimeji штамм Ls-2, Pleurotus djamor штамм Pd-3 гомогенизировали в гомогенизаторе в течение 4 минут перед засевом производственной среды, посевной мицелий Hericium erinaceus, Lentinus edodes, Pleurotus ostreatus гомогенизировали в процессе засева производственной среды в биореакторе при включенной мешалке на 500 об/мин в течение 0,5 минут.The prepared seed mycelium Armillaria mellea strain Am-4, Flammulina velutipes strain Fv-7, Hypsizygus marmareus strain Hm-1, Hypsizygus tessulatus strain Ht-1, Lyophyllum shimeji strain Ls-2, Pleurotus djamor genome strain 4 minutes before inoculation of the production medium, the seed mycelium Hericium erinaceus, Lentinus edodes, Pleurotus ostreatus were homogenized during the inoculation of the production medium in the bioreactor with the mixer turned on at 500 rpm for 0.5 minutes.

Таблица 3.Table 3. Составы сред для погруженного культивирования базидиомицетов.Compositions of media for submerged cultivation of basidiomycetes. ВидView Источники питания, г/л водыPower sources, g / l of water Источники углеродаCarbon sources Источники азотаNitrogen sources Минеральные солиMineral salts масло раст.oil rust. глюкозаglucose мелассаmolasses соевая мукаsoy flour КН2РO4 KN 2 PO 4 MgSO4 MgSO 4 A.melleaA.mellea 1717 -- -- 20twenty 0,50.5 0,050.05 F.velutipesF.velutipes 2727 -- -- 2727 2,42,4 0,240.24 H.erinaceusH.erinaceus 1010 -- 30thirty 2222 2,82,8 0,280.28 H.erinaceusH.erinaceus 2727 -- -- 2525 3,33.3 0,300.30 H.marmareusH.marmareus 2222 -- -- 1919 2,02.0 0,20.2 H.tessulatusH. tessulatus 2424 -- -- 2828 1,61,6 0,240.24 L.edodesL.edodes 15fifteen 88 -- 2121 1,51,5 0,240.24 L.edodesL.edodes 1212 11eleven -- 2424 2,62.6 0,30.3 L.shimejiL.shimeji 20twenty -- -- 2323 2,62.6 0,260.26 P.djamorP.djamor 18eighteen -- -- 18eighteen 2,62.6 0,260.26 P.ostreatusP.ostreatus 15fifteen -- -- 11eleven 2,42,4 0,240.24

Культивирование базидиомицетов Armillaria mellea, Flammulina velutipes, Hypsizygus marmareus, Hypsizygus tessulatus, Lyophyllum shimeji, Pleurotus djamor осуществляли в колбах на ротационной качалке при 200 об/мин. Базидиомицеты Hericium erinaceus, Lentinus edodes, Pleurotus ostreatus выращивали в биореакторах с постоянно работающей мешалкой (200 об/мин) и подачей воздуха 1,5 об./об. в минуту.The cultivation of basidiomycetes Armillaria mellea, Flammulina velutipes, Hypsizygus marmareus, Hypsizygus tessulatus, Lyophyllum shimeji, Pleurotus djamor was carried out in flasks on a rotary shaker at 200 rpm. Bazidiomycetes Hericium erinaceus, Lentinus edodes, Pleurotus ostreatus were grown in bioreactors with a constantly working stirrer (200 rpm) and an air supply of 1.5 rpm. per minute.

Температурный режим и длительность процессов погруженного культивирования, а также выход воздушно-сухой биомассы (влажность 5-6%) представлены в таблице 4. Контроль чистоты культур осуществляли с помощью световой микроскопии. Фиксировали наличие на мицелии грибов пряжек, являющихся специфической морфологической структурой базидиомицетов, и отсутствие посторонней мико- и микробиоты.The temperature regime and the duration of the processes of submerged cultivation, as well as the yield of air-dried biomass (humidity 5-6%) are presented in table 4. The purity of the cultures was monitored using light microscopy. The presence of buckles on the mycelium of fungi, which are a specific morphological structure of basidiomycetes, and the absence of extraneous micro- and microbiota were recorded.

Таблица 4.Table 4. Температурный режим, длительность процессов погруженного культивирования и выход воздушно-сухой биомассы базидиомицетов.The temperature regime, the duration of the processes of submerged cultivation and the yield of air-dry biomass of basidiomycetes. ВидView Температура культивирования, 0 СCultivation temperature, 0 C Длительность процесса культивирования, суткиThe duration of the cultivation process, day Выход воздушно-сухой биомассы, г/лThe output of air-dry biomass, g / l A.melleaA.mellea 24-2624-26 4,54,5 20-2220-22 F.velutipesF.velutipes 20-2220-22 6,06.0 36-4036-40 H.erinaceusH.erinaceus 25-2725-27 6,56.5 24-2524-25 Н.marmareusH. marmareus 24-2624-26 5,55.5 27-2927-29 Н.tessulatusH. tessulatus 24-2624-26 7,57.5 18-2118-21 L.edodesL.edodes 24-2624-26 6,06.0 20-2120-21 L.shimejiL.shimeji 28-3028-30 4,04.0 26-2826-28 P.djamorP.djamor 29-3129-31 3,03.0 23-2423-24 P.ostreatusP.ostreatus 25-2725-27 3,03.0 26-2726-27

Пример 3. Получение средства, обладающего противоопухолевыми свойствами.Example 3. Obtaining funds with antitumor properties.

Получали погруженную культуру Hericium erinaceus штамм He-4 по примеру 2 в биореакторе объемом 15 л (объем культуральной среды - 8 л). По окончании процесса культивирования погруженную культуру базидиомицета подвергали сублимационной сушке при профильном изменении температуры, включая многократное снижение температуры до минус 30°С, измельчали и использовали полученный сухой порошок в качестве противоопухолевого средства. Результаты оценки противоопухолевого действия средства представлены в таблице 5.Received an immersed culture of Hericium erinaceus strain He-4 according to example 2 in a bioreactor with a volume of 15 l (the volume of the culture medium is 8 l). At the end of the cultivation process, the submerged basidiomycete culture was freeze-dried at a profile temperature change, including a multiple drop in temperature to minus 30 ° С, crushed, and the obtained dry powder was used as an antitumor agent. The results of the evaluation of the antitumor effect of the drug are presented in table 5.

Пример 4. Получение средства, обладающего противоопухолевыми свойствами.Example 4. Obtaining funds with antitumor properties.

Получали погруженную культуру Hypsizygus marmareus штамм Hm-1 по примеру 2. По окончании процесса погруженную культуру базидиомицета подвергали автоклавированию при 1,2-1,5 атм в течение 2 часов, отделяли жидкую фазу и использовали ее в качестве противоопухолевого средства. Результаты оценки противоопухолевого действия средства представлены в таблице 5.An immersed culture of Hypsizygus marmareus strain Hm-1 was prepared according to Example 2. At the end of the process, the immersed culture of basidiomycete was autoclaved at 1.2-1.5 atm for 2 hours, the liquid phase was separated and used as an antitumor agent. The results of the evaluation of the antitumor effect of the drug are presented in table 5.

Пример 5. Получение средства, обладающего противоопухолевыми свойствами.Example 5. Obtaining funds with antitumor properties.

Получали погруженную культуру Lentinus edodes штамм Le-14 no примеру 2, выращивая базидиомицет в биореакторе объемом 15 л с загрузкой 8 л производственной среды. По окончании погруженного культивирования мицелий отделяли фильтрованием. Сырой мицелий заливали дистиллированной водой в соотношении 100 г/л, автоклавировали при 1,5 атм в течение 2 часов. Полученный водный экстракт отделяли фильтрованием и использовали в качестве противоопухолевого средства. Результаты оценки противоопухолевого действия средства представлены в таблице 6.An immersed culture of Lentinus edodes strain Le-14 in Example 2 was prepared by growing basidiomycete in a 15 L bioreactor with 8 L loading of the production medium. At the end of the submerged cultivation, the mycelium was separated by filtration. Crude mycelium was poured with distilled water in a ratio of 100 g / l, autoclaved at 1.5 atm for 2 hours. The resulting aqueous extract was separated by filtration and used as an antitumor agent. The results of the evaluation of the antitumor effect of the agent are presented in table 6.

Пример 6. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 6. Obtaining funds with antitumor properties.

Получали погруженные культуры Hericium erinaceus штамм He-4 и Lentinus edodes штамм Le-14 по примеру 2, выращивая базидиомицеты в биореакторах объемом 15 л, содержащих по 9 л производственной среды. По окончании процессов выращивания мицелий отделяли фильтрованием. Навески сырой биомассы Hericium erinaceus и Lentinus edodes в количестве 150 и 300 г, соответственно, заливали 100 мл этанола, экстракцию проводили в течение 1 часа при перемешивании. Этанольные экстракты отделяли фильтрованием и упаривали до сухого остатка на вакуумном испарителе. Оставшиеся после экстракции этанолом порции мицелия Hericium erinaceus и Lentinus edodes заливали по 1 л дистиллированной воды и автоклавировали при 1,2 атм в течение 2,5 часов. Водные экстракты отделяли от мицелия фильтрованием, водный экстракт мицелия Hericium erinaceus объединяли с сухим остатком этанольного экстракта мицелия Hericium erinaceus. Водный экстракт мицелия Lentinus edodes - с этанольным экстрактом мицелия Lentinus edodes. Таким образом было получено 2 противоопухолевых средства. Результаты оценки противоопухолевого действия средств представлены в таблице 6.Immersed cultures of Hericium erinaceus strain He-4 and Lentinus edodes strain Le-14 according to Example 2 were prepared by growing basidiomycetes in 15 L bioreactors containing 9 L of production medium. At the end of the cultivation processes, the mycelium was separated by filtration. Weighed portions of crude biomass Hericium erinaceus and Lentinus edodes in the amount of 150 and 300 g, respectively, were poured into 100 ml of ethanol, extraction was carried out for 1 hour with stirring. The ethanol extracts were separated by filtration and evaporated to dryness on a vacuum evaporator. The portions of the mycelium Hericium erinaceus and Lentinus edodes remaining after ethanol extraction were poured into 1 liter of distilled water and autoclaved at 1.2 atm for 2.5 hours. The aqueous extracts were separated from the mycelium by filtration, the aqueous extract of the mycelium Hericium erinaceus was combined with the dry residue of the ethanolic extract of the mycelium Hericium erinaceus. Lentinus edodes mycelium water extract - with Lentinus edodes ethanol mycelium extract. Thus, 2 antitumor agents were obtained. The results of the evaluation of the antitumor effect of the agents are presented in table 6.

Пример 7. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 7. Obtaining funds with antitumor properties.

Получали погруженные культуры Flammulina velutipes штамм Fv-7 и Pleurotus ostreatus штамм 447 по примеру 2, выращивая первый базидиомицет в колбах на качалке, а второй - в биореакторе общим объемом 15 л с 9 л производственной среды. По окончании процессов погруженного культивирования мицелий базидиомицетов отделяли фильтрованием, сушили при 60°С, измельчали и использовали в качестве противоопухолевых средств. Результаты оценки противоопухолевого действия средств представлены в таблице 5.Received submerged cultures of Flammulina velutipes strain Fv-7 and Pleurotus ostreatus strain 447 according to example 2, growing the first basidiomycete in flasks on a rocking chair, and the second in a bioreactor with a total volume of 15 l from 9 l of production medium. At the end of the submerged cultivation processes, the mycelium of basidiomycetes was separated by filtration, dried at 60 ° C, ground and used as antitumor agents. The results of the evaluation of the antitumor effect of the funds are presented in table 5.

Пример 8. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 8. Obtaining funds with antitumor properties.

Выращивали погруженные культуры Armillaria mellea штамм Am-4, Flammulina velutipes штамм Fv-7, Hypsizygus tessulatus штамм Ht-1, Lyophyllum shimeji штамм Ls-2, Pleurotus djamor штамм Pd-3 и Pleurotus ostreatus штамм 447 согласно примеру 2, культивирование проводили в колбах на качалке. После окончания процессов погруженного культивирования мицелий базидиомицетов отделяли фильтрованием, сушили при 65°С и измельчали. Делали навески сухого измельченного мицелия базидиомицетов: Armillaria mellea - 6 г, Flammulina velutipes - 6 г, Hypsizygus tessulatus - 5 г, Lyophyllum shimeji - 10 г, Pleurotus djamor - 1,8 г, Pleurotus ostreatus - 3,6 г. Навески заливали 100 мл дистиллированной воды и экстрагировали в автоклаве при 1,2 атм в течение 2 часов. Водные экстракты отделяли фильтрованием и использовали в качестве противоопухолевых средств. Результаты оценки противоопухолевого действия полученных средств представлены в таблице 5.Immersed cultures of Armillaria mellea strain Am-4, Flammulina velutipes strain Fv-7, Hypsizygus tessulatus strain Ht-1, Lyophyllum shimeji strain Ls-2, Pleurotus djamor strain Pd-3 and Pleurotus ostreatus strain 447 were grown in Example 2, cultivated on a rocking chair. After the processes of submerged cultivation of the mycelium, the basidiomycetes were separated by filtration, dried at 65 ° C and ground. Weighed out dry powdered mycelium of basidiomycetes: Armillaria mellea - 6 g, Flammulina velutipes - 6 g, Hypsizygus tessulatus - 5 g, Lyophyllum shimeji - 10 g, Pleurotus djamor - 1.8 g, Pleurotus ostreatus - 3.6 g. Weighed portions 100 g. ml of distilled water and was autoclaved at 1.2 atm for 2 hours. The aqueous extracts were separated by filtration and used as antitumor agents. The evaluation results of the antitumor effect of the funds obtained are presented in table 5.

Пример 9. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 9. Obtaining funds with antitumor properties.

Водный экстракт сухого измельченного мицелия Armillaria mellea штамм Am-4, полученный по примеру 8, замораживали при температуре -18°С, водный экстракт сухого измельченного мицелия Pleurotus djamor штамм Pd-3, полученный по примеру 8, замораживали при температуре -70°С. Экстракты хранили при температуре заморозки в течение 4 месяцев, после чего размораживали при комнатной температуре и использовали в качестве противоопухолевых средств. Результаты изучения противоопухолевой активности средств представлены в таблице 5.The aqueous extract of dry powdered mycelium Armillaria mellea strain Am-4 obtained in example 8 was frozen at a temperature of -18 ° C, the aqueous extract of dry powdered mycelium Pleurotus djamor strain Pd-3 obtained in example 8 was frozen at a temperature of -70 ° C. The extracts were stored at freezing temperature for 4 months, after which they were thawed at room temperature and used as antitumor agents. The results of a study of the antitumor activity of the agents are presented in table 5.

Пример 10. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 10. Obtaining funds with antitumor properties.

Экстракт погруженного мицелия Hericium erinaceus штамм He-4, полученный по примеру 6, и водный экстракт сухого измельченного погруженного мицелия Hypsizygus tessulatus Ht-1, полученный по примеру 8, сушили с помощью распылительной сушилки. Полученные средства растворяли в дистиллированной воде таким образом, чтобы концентрации полученных растворов соответствовали концентрации растворов, подвергнутых сушке, и использовали для оценки их противоопухолевых свойств. Полученные результаты приведены в таблице 5.Hericium erinaceus immersed mycelium extract He-4 strain obtained in example 6 and Hypsizygus tessulatus Ht-1 dry ground immersed mycelium extract obtained in example 8 were dried using a spray dryer. The resulting preparations were dissolved in distilled water so that the concentration of the resulting solutions corresponded to the concentration of the solutions subjected to drying, and was used to evaluate their antitumor properties. The results are shown in table 5.

Пример 11. Получение средств, обладающих противоопухолевыми свойствами.Example 11. Obtaining funds with antitumor properties.

В работе использовали водный экстракт сырого мицелия Lentinus edodes штамм Le-14, полученный по примеру 5, и водные экстракты сухого измельченного мицелия Flammulina velutipes штамм Fv-7 и Pleurotus ostreatus штамм 447, полученные по примеру 8. В экстракты добавляли 96% этанол. Соотношение объемов этанола и экстракта мицелия Lentinus edodes было 4:1, соотношение объемов этанола и экстракта Flammulina velutipes было 2:1, соотношение объемов этанола и экстракта Pleurotus ostreatus было 6:1. Выпавшие осадки, представляющие собой суммарные фракции водорастворимых полисахаридов мицелия, отделяли цетрифугированием и подвергали лиофильной сушке. Сухие осадки использовали в качестве противоопухолевых средств. Результаты изучения их активности представлены в таблице 5.We used an aqueous extract of raw mycelium Lentinus edodes strain Le-14 obtained in Example 5 and aqueous extracts of dry minced mycelium Flammulina velutipes strain Fv-7 and Pleurotus ostreatus strain 447 obtained in example 8. 96% ethanol was added to the extracts. The ratio of the volumes of ethanol and Lentinus edodes mycelium extract was 4: 1, the ratio of the volumes of ethanol and Flammulina velutipes extract was 2: 1, the ratio of the volumes of ethanol and Pleurotus ostreatus extract was 6: 1. Precipitated precipitates, representing the total fractions of water-soluble mycelium polysaccharides, were separated by centrifugation and subjected to freeze drying. Dry sediments were used as antitumor agents. The results of the study of their activity are presented in table 5.

Пример 12. Оценка противоопухолевого действия полученных противоопухолевых средств.Example 12. Evaluation of the antitumor effect of the obtained antitumor agents.

Изучение противоопухолевого действия препаратов из погруженной культуры изучаемых видов грибов проводили in vivo на двух перевиваемых штаммах опухолей: Т-лимфоме EL-4 и Т-клеточном лимфолейкозе Р388. Опухоли прививали гибридным мышам (С57В1/6×DBA/2)F1 (далее B6D2F1), Т-лимфому EL-4 прививали самцам, Т-клеточный лимфолейкоз Р388 - самкам. Мышей получали из питомника РАМН «Крюково». После поступления мышей выдерживали в карантине 21 день. Штаммы опухолей хранили в азотном банке при температуре -196°С. После размораживания штаммы опухолей поддерживали в сингенных условиях в асцитной форме серийными внутрибрюшинными пассажами на мышах линии DBA/2. В опыте в день 0 Т-лимфому EL-4 прививали под кожу правого бока по 105 клеток. Т-клеточный лимфолейкоз Р388 - по 106 клеток. Лечение начинали через 10 суток после прививки Т-лимфомы EL-4 и через 2 суток после прививки Т-клеточного лимфолейкоза Р388. Действие изучаемых препаратов оценивали при пероральном введении. Препараты вводили с помощью зонда внутригастрально ежедневно 1 раз в сутки в течение 10 суток. Сухую измельченную биомассу грибов и сублимированные погруженные культуры грибов испытывали в дозе 50 мг/кг/сут, препараты готовили, добавляя измельченный грибной материал в крахмальный клейстер таким образом, чтобы суточная доза для каждого животного содержалась в 0,3 мл клейстера. Полисахаридные фракции применяли в дозе 2 мг/кг/сут в виде водных растворов, суточная доза раствора составляла 0,3 мл/мышь. Доза водных экстрактов мицелия базидиомицетов составляла 0,25-0,3 мл/кг/сут, содержание сухих веществ в водных экстрактах варьировало в диапазоне 13-19 мг/мл. Высушенные с помощью распылительной сушки водные экстракты мицелия грибов испытывали в дозе 4,8 мг/кг/сут, навески сухих экстрактов растворяли в воде, объем вводимого раствора составлял 0,3 мл/мышь. Количество мышей в контрольных и экспериментальных группах составляло 8-10 животных. В течение опытов следили за общим состоянием мышей, изменением массы тела, прививаемостью опухоли, динамикой роста опухоли. Торможение роста опухоли (ТРО) рассчитывали по формуле: ТРО(%)=(Мко)/(Мк)×100, где Мк и Mо - средняя расчетная масса опухоли в контроле и опыте, соответственно. Массу опухоли рассчитывали по формуле М (мг)=(а×b×с)/2, где М - расчетная масса опухоли, а, b, с - 3 наибольших взаимоперпедикулярных диаметра опухолевого узла в мм. Достоверность различий средних значений массы опухоли определяли по t-критерию Стьюдента. За достоверные принимали различия при Р≤0,05. Противоопухолевая эффективность полученных средств представлена в таблицах 5 и 6.The antitumor effect of preparations from the submerged culture of the studied species of fungi was studied in vivo on two transplantable tumor strains: T-lymphoma EL-4 and T-cell lymphocytic leukemia P388. Tumors were inoculated with hybrid mice (C57B1 / 6 × DBA / 2) F 1 (hereinafter B6D2F 1 ), T-lymphoma EL-4 was inoculated in males, and T-cell lymphocytic leukemia P388 - in females. Mice were obtained from the nursery RAMS "Kryukovo". After admission, the mice were quarantined for 21 days. Tumor strains were stored in a nitrogen bank at a temperature of -196 ° C. After thawing, the tumor strains were maintained under syngeneic conditions in ascites form by serial intraperitoneal passages on DBA / 2 mice. In the experiment on day 0, EL-4 T-lymphoma was inoculated with 10 5 cells under the skin of the right side. T-cell lymphocytic leukemia P388 - 10 6 cells. Treatment was started 10 days after vaccination with T-lymphoma EL-4 and 2 days after vaccination with T-cell lymphocytic leukemia P388. The effect of the studied drugs was evaluated by oral administration. The drugs were administered using a probe intragastric daily 1 time per day for 10 days. Dry crushed mushroom biomass and sublimated submerged fungal cultures were tested at a dose of 50 mg / kg / day, preparations were prepared by adding crushed mushroom material to starch paste so that the daily dose for each animal was contained in 0.3 ml of paste. Polysaccharide fractions were used at a dose of 2 mg / kg / day in the form of aqueous solutions; the daily dose of the solution was 0.3 ml / mouse. The dose of aqueous extracts of mycelium of basidiomycetes was 0.25-0.3 ml / kg / day, the solids content in aqueous extracts varied in the range of 13-19 mg / ml. The spray dried aqueous extracts of fungal mycelium were tested at a dose of 4.8 mg / kg / day, the weighed portions of dry extracts were dissolved in water, the volume of the injected solution was 0.3 ml / mouse. The number of mice in the control and experimental groups was 8-10 animals. During the experiments, the general condition of the mice, changes in body weight, tumor grafting, and tumor growth dynamics were monitored. Tumor growth inhibition (TPO) was calculated by the formula: TPO (%) = (M k -M o ) / (M k ) × 100, where M k and M o are the average calculated tumor mass in the control and experiment, respectively. Tumor mass was calculated according to the formula M (mg) = (a × b × s) / 2, where M is the calculated mass of the tumor, and a, b, c are the 3 largest mutually perpedicular diameters of the tumor node in mm. The significance of differences in the average values of tumor mass was determined by t-student test. For reliable, differences were taken at P≤0.05. The antitumor efficacy of the funds obtained is presented in tables 5 and 6.

Таблица 5.Table 5. Противоопухолевое действие полученных средств.Antitumor effect of the funds received. Модель: Т-клеточный лимфолейкоз Р388, учет на 14 сутки опыта.Model: T-cell lymphocytic leukemia P388, accounting for 14 days of experience. № примераExample No. ПрепаратA drug ТРО, %SRW,% 1one 22 33 33 Hericium erinaceus, сублимированная погруженная культураHericium erinaceus, sublimated submerged culture 7575 4four Hypsizygus marmareus, жидкий экстракт, полученный из погруженной культурыHypsizygus marmareus, liquid extract obtained from submerged culture 5656 77 Flammulina velutipes, сухой измельченный погруженный мицелийFlammulina velutipes, dry shredded submerged mycelium 5252 Pleurotus ostreatus, сухой измельченный погруженный мицелийPleurotus ostreatus, dry shredded submerged mycelium 5656 88 Armillaria mellea, водный экстракт сухого погруженного мицелияArmillaria mellea, dry submerged mycelium aqueous extract 6969 Flammulina velutipes, водный экстракт сухого погруженного мицелияFlammulina velutipes, dry submerged mycelium aqueous extract 8787 Hypsizygus tessulatus, водный экстракт сухого погруженного мицелияHypsizygus tessulatus, dry submerged mycelium aqueous extract 5959 Lyophyllum shimeji, водный экстракт сухого погруженного мицелияLyophyllum shimeji, dry submerged mycelium aqueous extract 7272 Pleurotus djamor, водный экстракт сухого погруженного мицелияPleurotus djamor, dry submerged mycelium aqueous extract 4444 Pleurotus ostreatus, водный экстракт сухого погруженного мицелияPleurotus ostreatus, aqueous extract of dry submerged mycelium 7575 99 Armillaria mellea, водный экстракт сухого погруженного мицелия, хранившийся при -18°СArmillaria mellea, dry submerged mycelium aqueous extract stored at -18 ° C 6666 Pleurotus djamor, водный экстракт сухого погруженного мицелия, хранившийся при -70°СPleurotus djamor, dry submerged mycelium aqueous extract stored at -70 ° C 4545

1one 22 33 1010 Hericium erinaceus, сухой экстракт сухого погруженного мицелия (после распылительной сушки)Hericium erinaceus, dry extract of dry submerged mycelium (after spray drying) 6565 Hypsizygus tessulatus, сухой экстракт сухого погруженного мицелия (после распылительной сушки)Hypsizygus tessulatus, dry extract of dry submerged mycelium (after spray drying) 6363 11eleven Lentinus edodes, полисахаридная фракция погруженного мицелияLentinus edodes, polysaccharide fraction of submerged mycelium 8181 Flammulina velutipes, полисахаридная фракция погруженного мицелияFlammulina velutipes, polysaccharide fraction of submerged mycelium 9494 Pleurotus ostreatus, полисахаридная фракция погруженного мицелияPleurotus ostreatus, polysaccharide fraction of submerged mycelium 7474

Таблица 6.Table 6. Противоопухолевое действие полученных средств.Antitumor effect of the funds received. Модель: Т-лимфома EL-4 учет на 18 сутки опыта.Model: T-lymphoma EL-4 accounting for 18 days of experience. No. ПрепаратA drug ТРО,SRW, примераan example %% 55 Lentinus edodes, водный экстракт сырого погруженногоLentinus edodes, crude submerged aqueous extract 6262 мицелияmycelium 66 Hericium erinaceus, объединенный водный иHericium erinaceus, combined aquatic and 5858 этанольный экстракт сырого погруженного мицелияethanol extract of crude submerged mycelium Lentinus edodes, объединенный водный и этанольныйLentinus edodes, combined water and ethanol 5959 экстракт сырого погруженного мицелияraw submerged mycelium extract

Таким образом, поставленная задача решена. Длительность процесса культивирования сокращена до 2-6 дней при сохранении эффективности полученных средств, обладающих противоопухолевой активностью.Thus, the task is solved. The duration of the cultivation process is reduced to 2-6 days while maintaining the effectiveness of the obtained funds with antitumor activity.

Claims (23)

1. Способ получения средства, обладающего противоопухолевой активностью, включающий приготовление посевного мицелия базидиомицета, приготовление производственной питательной среды, засев производственной питательной среды, содержащей источники углерода, азота, минеральные соли и воду, приготовленным посевным мицелием, культивирование базидиомицета с последующим получением погруженной культуры, отличающийся тем, что приготовление посевного мицелия осуществляют на стерильной жидкой питательной среде, содержащей, г/л воды: глюкозу - 18,0-22,0, соевую муку - 8,0-12,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,4 и арахидоновую кислоту - 1,0-5,0×10-5, выращивание посевного мицелия проводят при температуре 22-29°С в течение 2-6 суток при аэрации, при этом готовый посевной мицелий гомогенизируют.1. The method of obtaining funds with antitumor activity, including the preparation of inoculum seed mycelium of basidiomycete, preparation of the production medium, inoculation of the production medium containing sources of carbon, nitrogen, mineral salts and water prepared by inoculum mycelium, cultivation of basidiomycete, followed by obtaining a submerged culture, characterized the fact that the preparation of seed mycelium is carried out on a sterile liquid nutrient medium containing, g / l of water: glucose - 1 8.0-22.0, soy flour - 8.0-12.0, potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.0, magnesium sulfate - 0.2-0.4 and arachidonic acid - 1.0-5, 0 × 10 -5 , the cultivation of seed mycelium is carried out at a temperature of 22-29 ° C for 2-6 days during aeration, while the finished seed mycelium is homogenized. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что гомогенизацию готового посевного мицелия перед засевом производственной питательной среды осуществляют в гомогенизаторе в течение 2-5 мин, а в процессе засева - в биореакторе при включенной мешалке на 300-500 об/мин в течение 0,5-6 мин.2. The method according to claim 1, characterized in that the homogenization of the finished seed mycelium before sowing the production nutrient medium is carried out in the homogenizer for 2-5 minutes, and in the process of sowing in the bioreactor with the stirrer turned on at 300-500 rpm for 0.5-6 minutes 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что культивируют базидиомицеты, выбранные из группы Armillaria mellea (Fr.) Karst., Flammulina velutipes (Curt.:Fr.) Singer, Hericium erinaceus (Bull.:Fr.) Pers., Hypsizygus marmareus 1611 (Peck) H.E.Bigelow, Hypsizygus tessulatus (Bulliard:Fr.) Singer, Lentinus edodes (Berk.) Singer, Lyophyllum shimeji (Kawam.) Hongo, Pleurotus djamor (Rumphius ex Fries) Boedjin, Pleurotus ostreatus (Jacg.:Fr.) Kumm.3. The method according to claim 1, characterized in that the cultivated basidiomycetes selected from the group Armillaria mellea (Fr.) Karst., Flammulina velutipes (Curt.:Fr.) Singer, Hericium erinaceus (Bull.:Fr.) Pers., Hypsizygus marmareus 1611 (Peck) HEBigelow, Hypsizygus tessulatus (Bulliard: Fr.) Singer, Lentinus edodes (Berk.) Singer, Lyophyllum shimeji (Kawam.) Hongo, Pleurotus djamor (Rumphius ex Fries) Boedjin, Pleus ostre, Fr.) Kumm. 4. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Armillaria mellea ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 15,0-18,0, соевую муку -18,0-20,0, дигидрофосфат калия - 0,5-2,5, сульфат магния - 0,05-0,26, при температуре 24-28°С в течение 4,5-5,5 суток.4. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of basidiomycete Armillaria mellea is carried out in a production medium containing, g / l of water: vegetable oil - 15.0-18.0, soy flour -18.0-20.0 , potassium dihydrogen phosphate - 0.5-2.5, magnesium sulfate - 0.05-0.26, at a temperature of 24-28 ° C for 4.5-5.5 days. 5. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Flammulina velutipes ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 19,0-27,0, соевую муку 19,0-27,0, дигидрофосфат калия - 1,4-3,0, сульфат магния - 0,14-0,30, при температуре 20-28°С в течение 5,5-6,5 суток.5. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of the basidiomycete Flammulina velutipes is carried out in a production medium containing, g / l water: vegetable oil - 19.0-27.0, soy flour 19.0-27.0, potassium dihydrogen phosphate - 1.4-3.0, magnesium sulfate - 0.14-0.30, at a temperature of 20-28 ° C for 5.5-6.5 days. 6. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Hericium erinaceus ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 10,0-27,0, соевую муку - 20,0-25,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,3, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-30°С в течение 5,5-6,5 суток.6. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of basidiomycetes Hericium erinaceus is carried out in a production medium containing, g / l of water: vegetable oil - 10.0-27.0, soy flour - 20.0-25.0 , potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.3, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-30 ° C for 5.5-6.5 days. 7. Способ по п.6, отличающийся тем, что в производственную среду дополнительно вводят мелассу в количестве 1-40 г/л среды.7. The method according to claim 6, characterized in that molasses is additionally introduced into the production medium in an amount of 1-40 g / l of medium. 8. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Hypsizygus marmareus ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды:растительное масло- 20,0-24,0, соевую муку - 16,0-22,0, дигидрофосфат калия - 1,5-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-31°С в течение 5,5-6,5 суток.8. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of the basidiomycete Hypsizygus marmareus is carried out in a production nutrient medium containing, g / l of water: vegetable oil - 20.0-24.0, soy flour - 16.0-22.0 , potassium dihydrogen phosphate - 1.5-3.0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-31 ° C for 5.5-6.5 days. 9. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Hypsizygus tessulatus ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 18,0-25,0, соевую муку - 20,0-28,0, дигидрофосфат калия - 1,6-2,6, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-33°С в течение 6,5-7,5 суток.9. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of the basidiomycete Hypsizygus tessulatus is carried out in a production medium containing, g / l of water: vegetable oil - 18.0-25.0, soy flour - 20.0-28.0 , potassium dihydrogen phosphate - 1.6-2.6, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-33 ° C for 6.5-7.5 days. 10. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Lentinus edodes ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 12,0-16,0, соевую муку - 18,0-24,0, глюкозу - 8-12, дигидрофосфат калия - 1,3-2,6, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-30°С в течение 5,5-6,5 суток.10. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of Lentinus edodes basidiomycetes is carried out in a production medium containing, g / l water: vegetable oil - 12.0-16.0, soy flour - 18.0-24.0 glucose - 8-12, potassium dihydrogen phosphate - 1.3-2.6, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-30 ° C for 5.5-6.5 days. 11. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Lyophyllum shimeji ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 16,0-22,0, соевую муку - 18,0-25,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-34°С в течение 3,5-4,5 суток.11. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of basidiomycete Lyophyllum shimeji is carried out in a production medium containing, g / l water: vegetable oil - 16.0-22.0, soy flour - 18.0-25.0 , potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-34 ° C for 3.5-4.5 days. 12. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Pleurotus djamor ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 15,0-20,0, соевую муку - 15,0-21,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,3, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 26-35°С в течение 2,5-3,5 суток.12. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of the basidiomycete Pleurotus djamor is carried out in a production medium containing, g / l water: vegetable oil - 15.0-20.0, soy flour - 15.0-21.0 , potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.3, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 26-35 ° C for 2.5-3.5 days. 13. Способ по п.3, отличающийся тем, что культивирование базидиомицета Pleurotus ostreatus ведут в производственной питательной среде, содержащей, г/л воды: растительное масло - 14,0-20,0, соевую муку - 11,0-19,0, дигидрофосфат калия - 2,0-3,0, сульфат магния - 0,2-0,3, при температуре 24-28°С в течение 2,5-3,5 суток.13. The method according to claim 3, characterized in that the cultivation of basidiomycete Pleurotus ostreatus is carried out in a production nutrient medium containing, g / l of water: vegetable oil - 14.0-20.0, soy flour - 11.0-19.0 , potassium dihydrogen phosphate - 2.0-3.0, magnesium sulfate - 0.2-0.3, at a temperature of 24-28 ° C for 2.5-3.5 days. 14. Способ по п.1, отличающийся тем, что после культивирования базидиомицета полученную погруженную культуру подвергают сублимационной сушке, затем высушенную культуру измельчают и полученный сухой порошок используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.14. The method according to claim 1, characterized in that after the cultivation of basidiomycete, the resulting submerged culture is subjected to freeze-drying, then the dried culture is ground and the resulting dry powder is used as an agent with antitumor activity. 15. Способ по п.1, отличающийся тем, что после культивирования базидиомицета полученную погруженную культуру автоклавируют при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-3 ч, отделяют жидкую фазу и используют ее в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.15. The method according to claim 1, characterized in that after culturing the basidiomycete, the resulting submerged culture is autoclaved at 1.2-1.5 atm for 1.5-3 hours, the liquid phase is separated and used as an agent with antitumor activity . 16. Способ по п.1, отличающийся тем, что после культивирования из погруженной культуры отделяют мицелий базидиомицета, заливают его дистиллированной водой в количестве 90-360 г/л, автоклавируют при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 ч, полученный водный экстракт отделяют и используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.16. The method according to claim 1, characterized in that after cultivation, the mycelium of basidiomycete is separated from the submerged culture, filled with distilled water in an amount of 90-360 g / l, autoclaved at 1.2-1.5 atm for 1.5- 2.5 hours, the resulting aqueous extract is separated and used as an agent having antitumor activity. 17. Способ по п.1, отличающийся тем, что после культивирования из погруженной культуры отделяют мицелий базидиомицета и проводят экстракцию этанолом в количестве 90-360 г/100 мл экстрагента в течение 0,5-1,5 ч при перемешивании, полученный этанольный экстракт отделяют от остатков мицелия, упаривают до сухого остатка на испарителе, а остаток мицелия заливают дистиллированной водой в количестве 90-360 г/л, автоклавируют при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 ч, полученный водный экстракт отделяют от остатка мицелия и объединяют с сухим остатком этанольного экстракта, и полученную смесь используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.17. The method according to claim 1, characterized in that after cultivation, the mycelium of basidiomycete is separated from the submerged culture and extraction is carried out with ethanol in an amount of 90-360 g / 100 ml of extractant for 0.5-1.5 hours with stirring, the obtained ethanol extract separated from the remains of the mycelium, evaporated to a dry residue on the evaporator, and the remainder of the mycelium is poured with distilled water in an amount of 90-360 g / l, autoclaved at 1.2-1.5 atm for 1.5-2.5 hours, the resulting aqueous the extract is separated from the residue of the mycelium and combined with a dry residue of ethanol extra one and the resulting mixture was used as an agent having antitumoral activity. 18. Способ по п.1, отличающийся тем, что после культивирования из погруженной культуры отделяют мицелий базидиомицета, высушивают его при температуре 35-80°С, измельчают и сухой порошок мицелия используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.18. The method according to claim 1, characterized in that after cultivation, the mycelium of basidiomycete is separated from the submerged culture, dried at a temperature of 35-80 ° C, ground, and dry mycelium powder is used as an agent with antitumor activity. 19. Способ по п.18, отличающийся тем, что сухой измельченный мицелий базидиомицета подвергают экстрагированию дистиллированной водой в количестве 18-72 г/л при 1,2-1,5 атм в течение 1,5-2,5 ч, затем водный экстракт отделяют от остатков мицелия и полученный водный экстракт мицелия используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.19. The method according to p. 18, characterized in that the dry ground mycelium of basidiomycete is subjected to extraction with distilled water in an amount of 18-72 g / l at 1.2-1.5 atm for 1.5-2.5 hours, then water the extract is separated from the remains of the mycelium and the resulting aqueous extract of mycelium is used as an agent with antitumor activity. 20. Способ по п.19, отличающийся тем, что полученное противоопухолевое средство замораживают при температуре -18…-70°С и используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.20. The method according to claim 19, characterized in that the obtained antitumor agent is frozen at a temperature of -18 ... -70 ° C and is used as an agent having antitumor activity. 21. Способ по п.19, отличающийся тем, что полученное жидкое противоопухолевое средство сушат и используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.21. The method according to claim 19, characterized in that the obtained liquid antitumor agent is dried and used as an agent having antitumor activity. 22. Способ по п.19, отличающийся тем, что в водный экстракт мицелия базидиомицета добавляют 2-6 объемов этанола, выпавший осадок отделяют и используют в качестве средства, обладающего противоопухолевой активностью.22. The method according to claim 19, characterized in that 2-6 volumes of ethanol are added to the aqueous extract of mycelium of basidiomycete, the precipitated precipitate is separated and used as an agent with antitumor activity. 23. Средство, обладающее противоопухолевой активностью, отличающееся тем, что оно получено по любому из пп.1-22. 23. An agent having antitumor activity, characterized in that it is obtained according to any one of claims 1 to 22.
RU2009148354/10A 2009-12-25 2009-12-25 Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity RU2418062C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009148354/10A RU2418062C1 (en) 2009-12-25 2009-12-25 Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009148354/10A RU2418062C1 (en) 2009-12-25 2009-12-25 Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2418062C1 true RU2418062C1 (en) 2011-05-10

Family

ID=44732655

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009148354/10A RU2418062C1 (en) 2009-12-25 2009-12-25 Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2418062C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2499040C2 (en) * 2011-07-15 2013-11-20 Федеральное государственное образовательное бюджетное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" Production method of agent having antitumour activity
RU2522880C2 (en) * 2012-10-10 2014-07-20 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" Antiviral preparation obtaining method and antiviral preparation
RU2586483C1 (en) * 2015-04-02 2016-06-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова" (АлтГТУ) Nutrient medium for submerged cultivation of mycelium armillaria mellea
CN110833560A (en) * 2016-12-30 2020-02-25 河南中医药大学 Application of 2,4, 6-tri-O-galloyl-D-glucose in decocting of Chinese herbal medicines in preparation of antitumor medicines

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АВТОНОМОВА А.В., КРАСНОПОЛЬСКАЯ Л.М., МАКСИМОВ В.Н. Оптимизация состава питательной среды для погружного культивирования Galoderma lucidum (Curt.:Fr) P.Karst. Микробиология, 2006, т.75, №2, с.186-192. СЫЧЕВ П.А., ТКАЧЕНКО Н.П. Особенности физиологии роста и макроморфогенеза штаммов съедобного лекарственного гриба сиитаке Lentinus edodes Веrk (компоненты питательных сред и субстратов для культивирования) Успехи медицинской микологии. Материалы II Всероссийского конгресса по медицинской микологии. М.: 2004, т.III, с.309-310. *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2499040C2 (en) * 2011-07-15 2013-11-20 Федеральное государственное образовательное бюджетное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" Production method of agent having antitumour activity
RU2522880C2 (en) * 2012-10-10 2014-07-20 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" Antiviral preparation obtaining method and antiviral preparation
RU2586483C1 (en) * 2015-04-02 2016-06-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова" (АлтГТУ) Nutrient medium for submerged cultivation of mycelium armillaria mellea
CN110833560A (en) * 2016-12-30 2020-02-25 河南中医药大学 Application of 2,4, 6-tri-O-galloyl-D-glucose in decocting of Chinese herbal medicines in preparation of antitumor medicines
CN110833560B (en) * 2016-12-30 2022-09-16 河南中医药大学 Application of 2,4, 6-tri-O-galloyl-D-glucose in decocting of Chinese herbal medicines in preparation of antitumor medicines

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bandara et al. Polyporus umbellatus, an edible-medicinal cultivated mushroom with multiple developed health-care products as food, medicine and cosmetics: a review
AU769173B2 (en) Novel substance originating in basidiomycete culture, process for producing the same and use thereof
JP2003520576A (en) Method, method and composition for producing cholesterol-lowering agent from higher basidiomycetes mushroom
CN102731365B (en) Hericium erinaceum biological micro-molecules for inhibiting helicobacter pylori and use of hericium erinaceum biological micro-molecules in treatment of digestive tract diseases
RU2418062C1 (en) Method for production of remedy with antineoplastic activity and remedy with antineoplastic activity
CN1379082A (en) Solid culture method of antrodia camphorate, its cultured solid substance, and its product and application
RU2409658C1 (en) Basidiomycete inoculating mycelium and preparation method thereof
CN112574893A (en) Phellinus baumii, and preparation method and application of fermentation product thereof
CN110004065B (en) Novel Ganoderma lucidum strain and artificial cultivation method and application thereof
JP4587442B2 (en) Novel antihyperlipidemic agent and food
CN104195052A (en) Hericium erinaceus mycelium and culture method thereof
RU2430155C1 (en) Basidiomycete inoculating mycelium and preparation method thereof
JPS5973519A (en) Preparation of swainsonine and immuno-regulating agent containing the same
JP4852353B2 (en) Novel cinnamic acid derivative, process for producing the same and propolis fermented product
CN114854604B (en) Ganoderma lucidum, high-concentration oral liquid containing ganoderma lucidum and preparation method thereof
KR100572405B1 (en) Process for preparing nontoxic Rhus Verniciflua extract, and the use of the extract
CN105535035A (en) Inonotus obliquus fermentation culture composition and preparation method thereof
KR20120085956A (en) Method for manufacturing of fermented ginseng or fermented red ginseng
RU2416418C1 (en) Method for producing agent showing anticancer activity, and agent produced by this method (versions)
KR100706132B1 (en) Composition for the culturing of Phellinus linteus mycelium
CN103272216B (en) Pleurotus citrinopileatus protein extract and antineoplastic application thereof
CN108611279B (en) Domestication method of sorangium cellulosum, domesticated sorangium cellulosum and application
JP2004277414A (en) Estrogenic active substance derived from edible mushroom
CN111685234A (en) Pig feed and method for enhancing immunity by feeding pig feed
CN1212387C (en) Fine rod bundle spore SX-1 separated and cultured from cordyceps and its saparation, culture process and use

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20191226