RU2402774C1 - Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований - Google Patents

Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований Download PDF

Info

Publication number
RU2402774C1
RU2402774C1 RU2009118870/15A RU2009118870A RU2402774C1 RU 2402774 C1 RU2402774 C1 RU 2402774C1 RU 2009118870/15 A RU2009118870/15 A RU 2009118870/15A RU 2009118870 A RU2009118870 A RU 2009118870A RU 2402774 C1 RU2402774 C1 RU 2402774C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
fish
medium
isolation
tissue
Prior art date
Application number
RU2009118870/15A
Other languages
English (en)
Inventor
Игорь Степанович Щелкунов (RU)
Игорь Степанович Щелкунов
Артем Игоревич Щелкунов (RU)
Артем Игоревич Щелкунов
Татьяна Ивановна Щелкунова (RU)
Татьяна Ивановна Щелкунова
Original Assignee
ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to RU2009118870/15A priority Critical patent/RU2402774C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2402774C1 publication Critical patent/RU2402774C1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области вирусологии. Сущность способа заключается в том, что кусочки покровных тканей, используемые для выделения вируса, после предварительной отмывки в среде с повышенным содержанием антибиотиков помещают во флаконы с питательной средой - среда Игла MEM или среда 199 с 2% сыворотки крови плода коровы и 200 ЕД/мл пенициллина, 200 мкг/мл стрептомицина и 25 мкг/мл нистатина. Инкубируют в течение 3-5 суток при оптимальной для репродукции вируса температуре и постоянном качании на шейкере (50 качаний в мин). После этого проводят выделение вируса из ткани. Использование способа позволяет повысить эффективность выделения вируса, позволяет выделять вирус при исследовании клинического материала от переболевших рыб на поздних стадиях эпизоотии, материала от рыб-вирусоносителей в межэпизоотический период и при мониторинге популяций осетровых и карповых рыб на наличие возбудителей герпесвирусной болезни и весенней виремии, когда мала вероятность выделения вируса известным способом. 1 з.п. ф-лы, 4 табл.

Description

Изобретение относится к области вирусологии и может быть использовано для выделения вирусов-возбудителей весенней виремии карпа и герпесвирусной болезни сибирского осетра при проведении диагностических и мониторинговых исследований.
Известен способ выделения вирусов из клинического материала от рыб [Wolf К. Guidelines for virological examination of fishes. In: A Symposium on Diseases of Fishes and Shellfishes. S.F.Snieszko (ed.). Spec. Publ. N 5, American Fisheries Society, Washington, D.C., 1970, p.327-340; «Методические указания по идентификации вирусов и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб», утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 10.10.97 г., №13-4-2/1054. В кн.: Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. - М.: Отдел маркетинга АМБ-агро. - 1998. - 4.1. - С.60-113.]. При его использовании исследуемый образец ткани обрабатывают без предварительной подготовки следующим образом: гомогенизация ткани, приготовление 10%-ной суспензии тканевого гомогената в питательной среде, центрифугирование, деконтаминация супернатанта, инокулирование чувствительной культуры клеток.
Известный способ быстр и чувствителен при работе с материалом, отобранным на стадии разгара эпизоотии, однако вероятность выделения им вируса мала при исследовании материала на поздних стадиях эпизоотии, материала от рыб-вирусоносителей в межэпизоотический период и при мониторинге популяций рыб на наличие вирусов-возбудителей заболеваний вследствие того, что уровень содержания в нем вирусов значительно ниже порога чувствительности метода, равного 102-103 ТЦД50/г ткани.
Целью изобретения является разработка высокочувствительного способа выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для проведения диагностических и мониторинговых исследований.
Сущность изобретения заключается в предварительной отмывке эксплантатов покровных тканей рыб в среде с повышенным содержанием антибиотиков, переносе их во флаконы с питательной средой (среда Игла MEM или среда 199 с 2% сыворотки крови плода коровы и 200 ЕД/мл пенициллина, 200 мкг/мл стрептомицина и 25 мкг/мл нистатина) и инкубации в течение 3-5 суток при оптимальной для репродукции вируса температуре (15°-21°С) при постоянном качании (50 качаний в минуту на шейкере), приводящей к увеличению содержания вируса в ткани в 100 и более раз, что выявляется при последующем выделении его известным способом с одновременным титрованием материала в культуре клеток. Способ пригоден для выявления вирусов, обладающих покровно-тканевым тропизмом.
Способ реализуют следующим образом.
Пробы покровных тканей (при выделении герпесвируса сибирского осетра рекомендуется отбирать плавники и кожу, при выделении рабдовируса весенней виремии карпа - кожу) измельчают на кусочки размером 3-5 мм и десятикратно отмывают во флаконе с питательной средой (среда 199 или Игла MEM), содержащей 500 ЕД/мл пенициллина, 500 мкг/мл стрептомицина и 500 мкг/мл нистатина при комнатной температуре, но не выше 20-22°С. Соотношение ткани и среды при каждой отмывке должно быть 1:20.
Продолжительность каждой отмывки, за исключением последней, - 5 мин при регулярном энергичном встряхивании. Продолжительность последней отмывки - 60 мин.
После отмывки кусочки ткани переносят в новые стерильные флаконы и добавляют среду 199 (при выделении герпесвируса сибирского осетра) или Игла MEM (при выделении рабдовируса весенней виремии карпа) с 2% сыворотки крови плода коровы и антибиотиками (200 ЕД/мл пенициллина, 200 мкг/мл стрептомицина и 25 мкг/мл нистатина). Соотношение ткани и среды 1:100.
Флаконы помещают на шейкер (50 качаний в минуту) и инкубируют при температуре 15°С в течение 5 суток - для герпесвируса сибирского осетра или при 19-21°С в течение 3 суток - для вируса весенней виремии карпа.
По окончании инкубации ведут выделение вируса известным способом [Wolf, 1970; Метод. указания…, 1997]. При выделении герпесвируса сибирского осетра 10%-ную суспензию инкубируемого тканевого материала готовят в свежей питательной среде 199 с 2% сыворотки крови плода коровы и антибиотиками (200 ЕД/мл пенициллина, 200 мкг/мл стрептомицина и 25 мкг/мл нистатина). Для выделения вируса используют клеточные линии осетрового происхождения (наиболее чувствительной является линия SSO-2 - пула печени, почки и селезенки сибирского осетра, Acipenser baeri). Инкубацию инокулированных культур ведут при 15°С.
Для выделения рабдовируса весенней виремии карпа можно отбирать только жидкость, в которой проводилась инкубация материала, и не использовать сам тканевой материал или готовить 10%-ную суспензию инкубируемого материала непосредственно в среде инкубации. Дальнейшую обработку и исследование материала проводят согласно вышеупомянутым «Метод. указаниям…» и «Инструкции о мероприятиях по профилактике и борьбе с весенней виремией карпа (ВВК)», утвержденной Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 26.11.97 г., №13-4-2/1091 (В кн.: Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. - М.: Отдел маркетинга АМБ-агро. - 1998. - 4.1. - С.76-86).
Пример 1. Выделение герпесвируса сибирского осетра
В качестве клинического материала использовали:
1) объединенные в 4 пробы грудные плавники, ротовой аппарат, жаберные крышки и анус от 17 сеголетков гибрида русского и ленского осетров, отобранные из рыбоводного хозяйства на стадии завершения эпизоотии и повышения температуры воды до 20-23°С;
2) плавники и кожу от экспериментально зараженных герпесвирусом двухгодовиков сибирского осетра на разных стадиях течения заболевания.
Получены следующие результаты.
1) От рыб из хозяйства не удалось выделить герпесвирус известным способом после проведения 3 слепых пассажей материалов в чувствительных линиях клеток сибирского осетра SSO-2 (пул печени, почек и селезенки) и SSF-2 (плавники), а также белого осетра WSSK-1 (кожа). Предлагаемым способом тканевых эксплантатов вирус был выделен из 2 проб этих же материалов в клетках линии SSO-2 и WSSK-1 (табл.1).
2) Во всех вариантах эксперимента выделение герпесвируса предлагаемым способом тканевых эксплантатов оказалось более эффективным. Содержание вируса в исследуемом материале после его предварительной инкубации повышалось более чем в 100 раз. Из кожи рыбы №3 известным способом вирус не был выделен даже после проведения 3 слепых пассажей, но был выделен после инкубации тканевых эксплантатов в титре 104.1ТЦД50/г ткани (табл.2).
Таблица 1
Сравнение двух способов выделения герпесвируса сибирского осетра от выздоравливающих рыб рыбоводного хозяйства на стадии завершения эпизоотии
№ пробы Известный способ Предлагаемый способ тканевых эксплантатов
SSO-2 WSSK-1
1 н.о. +* н.о.
2 н.о. +* +**
3 н.о. н.о. н.о.
4 н.о. н.о. н.о.
Примечание: н.о. - вирус не обнаружен после 3 «слепых» пассажей;
+*-вирус выделен во втором пассаже;
+** - вирус выделен в третьем пассаже.
Figure 00000001
Пример 2. Выделение рабдовируса весенней виремии карпа
В качестве клинического материала использовали:
1) кожу от 60 двухгодовиков карпа без признаков заболевания из рыбоводного хозяйства, неблагополучного по весенней виремии; в одну пробу объединяли материал от 5 рыб;
2) отдельно кожу, плавники, жабры и пул внутренних органов (печень, почка, селезенка) от экспериментально зараженных годовиков карпа на разных стадиях течения эпизоотии; в одну пробу объединяли материал от 5 рыб.
Получены следующие результаты.
1) Из 12 проб от рыб из неблагополучного хозяйства, обработанных известным способом, при инокуляции культуры клеток карпа ЕРС вирус был обнаружен в одной пробе (№10), а предлагаемым способом тканевых эксплантатов в 2-х пробах (№9 и 10). При этом содержание вируса в этих пробах повысилось более чем в 103 раз по сравнению с таковым при известном способе выделения (табл.3).
Таблица 3
Сравнение двух способов выделения рабдовируса весенней виремии карпа из проб кожи от клинически здоровых рыб-вирусоносителей из неблагополучного рыбоводного хозяйства
№ пробы Содержание вируса в пробе при разных способах выделения, lgТЦД50/г ткани
Известный способ Предлагаемый способ тканевых эксплантатов
1 н.о. н.о.
2 н.о. н.о.
3 н.о. н.о.
4 н.о. н.о.
5 н.о. н.о.
6 н.о. н.о.
7 н.о. н.о.
8 н.о. н.о.
9 н.о. 6,10
10 3,27 6,35
11 н.о. н.о.
12 н.о. н.о.
Примечание: н.о. - вирус не обнаружен после 3-х «слепых» пассажей материала в клетках ЕРС.
2) В эксперименте по выделению вируса весенней виремии от карпов на разных стадиях эпизоотии получены следующие результаты. На стадии разгара эпизоотии известный метод не уступал методу тканевых эксплантатов в частоте выделения вируса из всех видов материала кроме кожи. При этом содержание вируса во внутренних органах этих же рыб, определенное известным способом, было даже выше, чем в эксплантатах кожи.
В то же время на стадии угасания эпизоотии, постэпизоотической и межэпизоотической стадиях частота выделения вируса из кожи при использовании предлагаемого способа тканевых эксплантатов возрастала, также как и содержание в ней вируса (в 100 и более раз). Известным способом вирус обнаружили только в одной пробе кожи из 11 исследованных, а предлагаемым способом тканевых эксплантатов в 9 пробах и в большем количестве. К тому же содержание вируса в среде, в которой проводилась инкубация, нередко было выше, чем в самой ткани (табл.4). Инкубация проб плавников и жабр увеличивала эффективность выделения вируса не столь значительно, а инкубация проб внутренних органов не влияла на результаты выделения.
Figure 00000002
Таким образом, использование предлагаемого метода тканевых эксплантатов позволяет значительно увеличить содержание вируса в инкубируемой ткани и повысить частоту выделения его от рыб на поздних стадиях эпизоотии и в межэпизоотический период.

Claims (2)

1. Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований, включающий гомогенизацию тканевого материала, приготовление 10%-ной суспензии гомогената в питательной среде, центрифугирование, деконтаминацию супернатанта, инокулирование чувствительной культуры клеток, отличающийся тем, что тканевой материал перед гомогенизацией подвергают 10-кратной отмывке в среде 199 или Игла MEM с 500 ЕД/мл пенициллина, 500 мкг/мл стрептомицина и 500 мкг/мл нистатина, а затем инкубируют в течение 3-5 суток в свежей порции этих же сред с 2% сыворотки крови плода коровы и 200 ЕД/мл пенициллина, 200 мкг/мл стрептомицина и 25 мкг/мл нистатина при постоянном качании на шейкере с частотой 50 качаний/мин, температуре 15-21°С и соотношении тканевого материала и среды 1:100.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что для выделения вирусов в качестве тканевого материала используют кусочки кожи и плавников рыб.
RU2009118870/15A 2009-05-20 2009-05-20 Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований RU2402774C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009118870/15A RU2402774C1 (ru) 2009-05-20 2009-05-20 Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009118870/15A RU2402774C1 (ru) 2009-05-20 2009-05-20 Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2402774C1 true RU2402774C1 (ru) 2010-10-27

Family

ID=44042352

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009118870/15A RU2402774C1 (ru) 2009-05-20 2009-05-20 Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2402774C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
WOLF К. Guidelines for virological examination of fishes. In: A symposium on diseases of fish and shellfish. Am. Fish. Soc., Spec. Publ. No. 5, Washington, DC, 1970, p.327-340, реф., найдено в Интернет, найдено 25.02.2010. Методические указания по идентификации вирусов и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. 10.10.97 г., №13-4-2/1054, найдено 25.02.2010, найдено в Интернет: http://gov.cap.ru/home/65/aris/bd/vetzac/document/203.html. RU 2127884 C1 (НИИ ДЕТСКИХ ИНФЕКЦИЙ), 20.03.1999. RU 2116796 C1 (РАЗИНЬКОВ С.П.), 10.08.1998. RU 2007130149 А (АЛЕКСАНДЕР РОБЕРТ), 20.02.2009. WOLF К et al. Fish Viruses: Buffers and Methods for Plaquing Eight Agents Under Normal Atmosphere. Appi Microbiol., 1973, 25(4), p.659-664, PMCID: PMC 380881, реф., найдено в PubMed, найдено 25.02.2010. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3950500B2 (ja) 魚類用のイリドウイルス感染症ワクチンと診断剤並びにこれ等の製法
CN103463133A (zh) 蜂王浆分解酶含有物
CN102212623A (zh) 一种猪瘟病毒和猪蓝耳病病毒的双色荧光定量pcr联合检测方法及其试剂盒
Peralta et al. Isolation and characterization of arboviruses from Almirante, Republic of Panama
JP4944643B2 (ja) 魚類用のイリドウイルス感染症ワクチンと診断剤並びにこれ等の製法
Belova et al. Hybrids of Ixodes ricinus and Ixodes persulcatus ticks effectively acquire and transmit tick-borne encephalitis virus
RU2402774C1 (ru) Способ выделения ихтиовирусов из клинического материала от рыб для диагностических и мониторинговых исследований
Giangaspero et al. Epidemiological survey for visna-maedi among sheep in northern prefectures of Japan
US20170088821A1 (en) Methods and compositions for caliciviridae
McAllister et al. Determining the prevalence of infectious pancreatic necrosis virus in asymptomatic brook trout Salvelinus fontinalis: a study of clinical samples and processing methods
Yanni et al. Virological, molecular and immuno-biochemical studies of lumpy skin disease in naturally infected cattle
Cooke Understanding the effects of Culicoides saliva on Bluetongue virus infection of bovine monocytes
JP2011016845A (ja) 魚類用のイリドウイルス感染症ワクチンと診断剤並びにこれ等の製法
Gao et al. Genome analysis of an atypical bovine pestivirus from fetal bovine serum
CN106011248A (zh) 一种用于检测肌萎缩的方法及试剂盒
Hamad The effect of aqueous and alcoholic extract of nerium oleander on biochemical parameters of rats infected with echinococcus granulosus
Poudel et al. Canine parvovirus infection in young German Shepherd dog: A Case Report
Ørpetveit et al. Binding of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) to membrane proteins from different fish cell lines
Andriyanto et al. Application of immunohistochemistry methods for detecting of betanodavirus in tiger grouper fish (Epinephelus fuscoguttatus)
Gamal Elden et al. Virological, Molecular and Immuno-Biochemical Studies of Lumpy Skin Disease in Naturally Infected Cattle
da SILVA et al. Implications of bovine viral diseases for udder health
CN107236714B (zh) 一种猪细小病毒的分离方法
Radzykhovskyi et al. Adenovirus infections in dogs: Diagnostic features.
Baheeg et al. Isolation and identification of recent Bovine Herpesvirus-1 from cattle at Menoufiya governorate, Egypt 2021.
Kızılkaya et al. The Effect of Granulocyte Colony Stimulating Factor Use in addition to Classical Treatment on Prognosis and Blood Values in Patients with Feline Panleukopenia

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140521