RU2400219C1

RU2400219C1 - Способ коррекции вазопатии у новорожденных поросят с анемией

Info

Publication number: RU2400219C1
Application number: RU2009105459/13A
Authority: RU
Inventors: Илья Николаевич Медведев (RU); Илья Николаевич Медведев; Светлана Юрьевна Завалишина (RU); Светлана Юрьевна Завалишина; Евгения Геннадьевна Краснова (RU); Евгения Геннадьевна Краснова; Борис Дмитриевич Беспарточный (RU); Борис Дмитриевич Беспарточный
Original assignee: Илья Николаевич Медведев; Борис Дмитриевич Беспарточный
Priority date: 2009-02-18
Filing date: 2009-02-18
Publication date: 2010-09-27
Also published as: RU2009105459A

Abstract

Изобретение относится к ветеринарии и биологии, а именно к ангиологии. Способ включает введение ферроглюкина по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двукратно с интервалом 10 дней. Поросятам также вводят полизон 4 мг/кг и кезацин 4 мг/кг, которые включают в схему выпаивания на 8 суток. Способ позволяет сократить падеж у поросят, оздоровить стадо, увеличить привесы и получать в последующем от этих животных здоровое потомство. 1 ил., 1 табл.

Description

Изобретение относится к ветеринарии и биологии, а именно к ангиологии.

Аналогов предлагаемого способа коррекции ослабления функций стенки сосудов у новорожденных поросят с анемией не существует.

В литературе имеются сведения о применении при анемии у поросят ферроглюкина (Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных. / Под ред. В.М.Данилевского. М.: «Агропромиздат», 1991. - 576 с.).

В качестве эффективных стимуляторов жизнедеятельности растущего организма в современной ветеринарии применяются полизон - фосфорнокислая соль 2-амино-4-метилтио-(S-оксо-S-амино)-масляной кислоты - представляет собой слабо растворимый в воде порошок от белого до кремового цвета (Овчинников А. и др. Полизон - стимулятор роста. // Птицеводство, 2006. - №12. - с.14-15.) и крезацин - производным ароксиалкилкарбоновых кислот. Он представляет собой белый кристаллический порошок, хорошо растворимый в воде, со слабым специфическим запахом, сладковато-горьковатого вкуса. Он проявляет эффективное стимулирующее действие на живые организмы, повышая выживаемость человека и животных в неблагоприятных и экстремальных условиях, стимулируя или нормализуя жизненные процессы (Байматов В.Н., Латыпов М.М. Влияние крезацина на состояние птицы. Ветеринария, 2006, №11, с.49-51).

Однако никогда ранее лечебный комплекс, состоящий из ферроглюкина, полизона и крезацина, не применялся у новорожденных поросят с анемией с целью коррекции у них вазопатии.

Целью изобретения является коррекция ослабления функций стенки сосудов у новорожденных поросят с анемией.

Сущность заявляемого способа заключается в том, что для коррекции ослабления функций стенки сосудов новорожденным поросятам с анемией назначается ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, полизон 4 мг/кг и кезацин 4 мг/кг, включенные в схему выпаивания на 8 суток.

Способ позволяет корректировать ослабление функций стенки сосудов у новорожденных поросят с анемией через 3 дня после завершения лечения. При соблюдении рекомендаций заявляемого способа возможна нормализация функций сосудистой стенки, что позволит существенно оздоровить поголовье поросят, увеличить привесы, снизить падеж и получать в последующем от этих животных здоровое потомство.

Заявляемый способ осуществляется следующим образом.

Для диагностики ослабления функций стенки сосудов новорожденным поросятам с анемией проводится следующее обследование.

Антиагрегационная активность сосудистой стенки определяется по методу (Балуда В.П., Лукьянова Т.И., Балуда М.В. Метод определения антиагрегационной активности стенки сосудов человека. // Лабор. Дело, 1983. - №6. - с.17-20). В основе этого метода лежит вычисление степени торможения агрегации тромбоцитов в плазме, полученной из крови после временной венозной окклюзии.

На сосуд, из которой еще не производился забор крови, накладывается манжетка сфигмоманометра и создается давление на 10 мм рт.ст. выше систолического. Через 3 минуты производится взятие 9 мл крови в 1 мл 3,8% раствора цитрата натрия. Ее немедленно центрифугируют 5 минут при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы. Плазму отсасывают пипеткой и сразу же помещают в тающий лед, где хранят до начала исследований. Повторно пробу центрифугируют 20 минут при 3000 об/мин для получения бестромбоцитной плазмы (БТП). После подсчета количества тромбоцитов в богатой тромбоцитами плазмы, полученной до венозного застоя (подробно описано ниже), ее разводят бедной тромбоцитами плазмой (БеТП), взятой до (1 проба) и после (2 проба) венозного застоя до концентрации 200000 тромбоцитов/мкл. Полученную смесь встряхивают и инкубируют 10 минут при 20-22°C. Затем проводят агрегацию тромбоцитов (AT) с коллагеном (разведение 1:2 основной суспензии) на стекле следующим способом (Шитикова А.С. В кн.: Гемостаз. Физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний. / Под ред. Н.Н.Петрищева, Л.П.Папаян. СПб.: - 1999. С.49-52).

Кровь забирают с цитратом натрия 3,8% в соотношении 9:1, центрифугируют 5 мин при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы. Часть плазмы отбирают, а оставшуюся центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин, получая БеТП. БТП стандартизируют по числу тромбоцитов путем разбавления исходной БТП аутологичным образцом БеТП (полученной до венозного застоя - 1-я проба или после него - 2-я проба) до 200·10⁹/л. Концентрация кровяных пластинок в исходной БТП подсчитывается в камере Горяева (в 50 больших квадратах). Объемы смешиваемых БТП и БеТП определяют по формуле:

V_БеТП=V_БТП·[(N/200000)-1],

V_БеТП - объем бедной тромбоцитами плазмы,

V_БТП - объем богатой тромбоцитами плазмы,

N - счетная концентрация тромбоцитов в исходной БТП (клеток/мкл).

Из отобранного объема стандартизированной плазмы на предметное стекло наносят 0,02 мл плазмы и другой пипеткой 0,02 мл р-ра индуктора коллагена в стандартной концентрации (разведение 1:2 основной суспензии). Стеклянной палочкой смешивают плазму с индукторами и включают секундомер. Смесь перемешивают так, чтобы жидкость занимала окружность диаметром около 2 см.

Покачивая стекло круговыми движениями в проходящем свете осветителя, на черном фоне следят через лупу за возникновением агрегатов. При появлении отчетливых агрегатов, просветлении раствора и прилипании части агрегатов к стеклу секундомер отключают, фиксируя время агрегации тромбоцитов.

Реакцию повторяют по 2-3 раза в 1-й и 2-й пробе, находя для каждой из них среднее арифметическое значение.

По степени торможения агрегации тромбоцитов после венозного застоя судят об антиагрегационной активности плазмы крови, обусловленной поступлением в кровоток простациклина из сосудистой стенки. Индекс антиагрегационной активности сосудистой стенки (ИААСС) при исследовании AT на стекле рассчитывали по формуле:

Нормальными значениями для коллагена можно считать ИААСС 1,45-1,50.

Определение антитромбогенных свойств сосудистой стенки, зависящих от продукции веществ, активирующих антитромбин III, оценивая его базальный уровнь до и после временной дозированной ишемии стенки вены, приведены ниже (Баркаган З.С., Момот А.П. Основы диагностики нарушений гемостаза. М. 1999. - 214 с.).

Принцип метода основан на выявлении снижения активности (в отсутствие гепарина) в плазме антитромбина III (AT III), которую определяют по способности исследуемой плазмы инактивировать тромбин, для чего ее предварительно обрабатывают сорбентом гепарина, затем подвергают тепловой дефибринации и смешивают со стандартным количеством тромбина. После инкубации смеси в ней определяют остаточную коагуляционную активность тромбина. По уровню снижения активности тромбина в процентах от нормы оценивают активность AT III в исследуемой плазме.

Используются следующие реактивы: 1. Трис-HCl буфер 0,05 М, рН 7,4. 2. Раствор тромбина в буфере: 0,2 мл раствора должны свертывать 0,3 мл 0,4% раствора фибриногена за 15-16 сек. Рабочий раствор тромбина готовят в пластиковой или силиконированной пробирке, хранят при комнатной температуре и используют в тесте в день исследования. 3. Сорбент гепарина Гепасорб-1 (фирма "Технология-Стандарт"). 4. Свежеприготовленный раствор фибриногена в концентрации 3,5-4,0 г/л, который применяют для тестирования остаточной активности тромбина. Допускается замена раствора фибриногена нормальной бедной тромбоцитами цитратной плазмой, разведенной буфером в 2 раза; 5. Свежая цитратная бедная тромбоцитами плазма, полученная от 6-8 здоровых поросят, или лиофилизированная фирменная, с известной активностью AT III, которую используют для построения калибровочного графика.

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма.

Для приготовления сорбированной и дефибринированной плазмы в пробирке смешивают 10 мг сорбента гепарина с 1,0 мл исследуемой плазмы. Постоянно встряхивая пробирку, перемешивают ее содержимое при комнатной температуре в течение 8 мин, исключая образование пены и осадка на ее дне. После этого смесь центрифугируют в течение 2 мин при 1000-1500 об/мин. Плазму в надосадке переносят в чистую пробирку и дефибринируют на водяной бане при +56°C в течение 6 мин, после чего вновь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин, снимают надосадочную часть и исследуют в течение первых 2 ч.

Ход определения. В пробирку вносят 0,4 мл рабочего раствора тромбина и прогревают его на водяной бане при +37°C в течение 2 мин. Затем добавляют 0,1 мл исследуемой адсорбированной и дефибринированной плазмы, включают секундомер. Через 2 мин (точно!) 0,2 мл смеси переносят в пробирку с 0,3 мл раствора фибриногена (или разведенной нормальной плазмы), предварительно подогретой до +37°C. Немедленно включают секундомер и регистрируют время свертывания.

По калибровочной кривой находят активность AT III в процентах.

Построение калибровочной кривой проводят следующим образом. Плазму здоровых людей подвергают дефибринированию, как указано выше. Затем из нее готовят разведения для построения калибровочной кривой в соответствии с таблицей.

Схема приготовления разведений плазмы для построения калибровочной кривой при определении активности AT III
Номер разведения	Плазма + буфер	Активность AT III, %
1	Плазма без буфера	100
2	0,2 мл + 0,2 мл	50
3	0,1 мл + 0,3 мл	25

С каждым из разведений определяют время свертывания по указанной выше методике. Все измерения проводят трижды, рассчитывают средний результат. При построении калибровочной кривой по логарифмической оси ординат откладывают время свертывания в секундах, по оси абсцисс - активность AT III в % в соответствии с указанными выше разведениями. Примерная калибровочная кривая приведена на чертеже 1.

Калибровочную кривую для одного типа и одной серии тромбина и буфера строят однократно. Периодически контролируют лишь активность рабочего раствора тромбина.

В норме без венозной окклюзии активность AT III составляет 85-115%. При взятии крови после временной венозной окклюзии, как описано в методе по оценке антиагрегационной активности сосудов, и определении в ней AT III возможно косвенно оценить уровень синтеза в стенке сосуда тканевых активаторов AT III. На фоне временной венозной окклюзии активность AT III повышается и находится в границах 120-143%. Рассчитывается индекс синтеза активаторов AT III в сосудах (ИСААС) путем деления величины активности AT III на фоне венозной окклюзии на величину AT III без нее. В норме он равен 1,20-1,40.

Активность синтеза тканевых активаторов плазминогена по времени лизиса эуглобулинового сгустка до и после временной венозной окклюзии оценивали следующим образом.

Принцип метода заключается в осаждении эуглобулиновой фракции плазмы, при этом основные ингибиторы фибринолиза, в частоности α₂-антиплазмином, остаются в надосадочной части и удаляются. Поэтому эуглобулиновый лизис отражает активность фибринолиза в условиях исключения ингибирующего действия антиплазминов. Его скорость отражает, в основном, количество плазминогена в плазме и степень его активации. Определяют время спонтанного лизиса сгустка, получаемого из эуглобулиновой фракции плазмы при добавлении к ней раствора хлорида кальция.

Используются следующие реактивы: 1. 1% раствор уксусной кислоты. 2. 0,277% раствор хлорида кальция. 3. Буфер Михаэлиса или трис-HC буфер, 0.05М, pH 7,3-7,4.

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма до и после временной венозной окклюзии.

Ход определения. Для получения эуглобулиновой фракции к 8,0 мл дистиллированной воды добавляют 0,15 мл 1% уксусной кислоты и 0,5 мл исследуемой плазмы. После 30-минутного охлаждения смеси в холодильнике при +2-8°C эуглобулины осаждают центрифугированием при 1500 об/мин в течение 7 мин. Надосадочную жидкость сливают, пробирку осушают опрокидыванием на фильтровальную бумагу. Осадок эуглобулинов разводят в 0,5 мл буфера и помещают на водяную баню (+37°C). Затем, не вынимая пробирку из бани, добавляют 0,5 мл раствора хлорида кальция, осторожно перемешивают покачиванием пробирки (не встряхивая!), включают секундомер и инкубируют на водяной бане при +37°C. Регистрируют время с момента добавления хлорида кальция до полного растворения сгустка.

Результат выражают в минутах. В норме время спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка составляет 180-240 мин. После временной венозной окклюзии время лизиса снижается, находясь в границах 126-170 мин. При делении величины длительности спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка до окклюзии на величину после рассчитан индекс фибринолитической активности сосудистой стенки (ИФАСС), в норме равный 1,35-1,45.

Для каждой лаборатории необходимо обследование группы здоровых новорожденных поросят, чтобы найти средние нормативные значения с расчетом S² по всем трем методикам для последующих расчетов.

По каждой методике у каждого новорожденного поросенка с анемией для большей точности диагностики проводят тест 3-4 раза с вычислением среднеарифметических значений, которые используют в последующих расчетах и вычислении S².

Для определения весомости отдельных исследуемых параметров у сосудистых больных поросят и вычисления у них общего антитромботического потенциала сосудов применялся системный многофакторный анализ, позволяющий переводить многомерные количественные характеристики исследуемого процесса с несопоставимыми абсолютными значениями в сопоставимые относительные величины (Применение методов морфометрии и статистического анализа в морфологических исследованиях. Сост. М.В.Углова, Б.А.Углов, В.В.Архипов и др. Куйбышев, 1982. - 47 с.). Расчет производился по формулам:

где X_j - исследуемый параметр, X₀ - нормативный параметр, X_j - относительная разность,

где Pi - весовой коэффициент (коэффициент влияния), a - постоянный множитель (в наших исследованиях a=0,1), σ_j - среднеквадратическое отклонение значения X_j в относительных единицах.

где S_i ² - дисперсия исследуемого параметра X_i, n_i - количество наблюдений при определении X_i, S₀ ² - дисперсия нормативного параметра X₀, n₀ - количество наблюдений при определении X₀.

где X_{Bi ОАПС} - величина, интегрально характеризующая исследуемый процесс в заданный срок (в относительных единицах), является общим антитромботическим потенциалом сосудов (ОАПС).

Сочетанное применение описанных методов с последующей обработкой полученных значений ИААСС, ИСААС и ИФАСС системным многофакторным анализом с определением общего антитромботического потенциала сосудов (X_{Bi ОАПС}) - норма 0,180 и выше позволяет выявлять у новорожденных поросят риск развития ослабления антитромботической активности сосудов (X_{Bi ОАПС} от 0,179 до 0,060), что требует нормализации кормления и содержания животных и назначение ферроглюкина и ежемесячного контроля состояния сосудистых функций. При значении X_{Bi ОАПС} от 0,059 и ниже необходимо немедленно проводить лечение новорожденных поросят согласно заявленному способу.

Для коррекции ослабления функций стенки сосудов новорожденным поросятам с анемией назначается ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, полизон 4 мг/кг и кезацин 4 мг/кг, включенные в схему выпаивания на 8 суток.

Внедрение данного способа коррекции функций стенки сосудов у новорожденных поросят с анемией в практику свиноводческих хозяйств позволит решить ряд насущных ветеринарных и экономических проблем современности. Эффективная коррекция у новорожденных поросят с анемией позволит сократить падеж у поросят, оздоровить стадо, профилактировать ослабление организма животных, увеличить привесы и получать в последующем от этих животных здоровое потомство.

Пример. У новорожденного поросенка №29 с анемией было выявлено нарушение эритропоэза и признаками снижения уровня содержания железа в его организме (сывороточное железо 13,0 мкмоль/л, сидероциты 1,0%, при количестве гемоглобина у него 82,0 г/л, эритроцитов - 4,02×10¹²/л.

Поросенок был обследован в условиях свинарника по поводу клиники анемии. У поросенка была взята кровь и исследована по изложенной выше схеме с оценкой ИААСС, ИСААС и ИФАСС и вычислением общего антитромботического потенциала сосудов.

У животного были выявлены выраженные признаки угнетения антитромботической функции сосудистой стенки. ИААСС составлял - 1,07, ИСААС 1,10 и ИФАСС 1,14. Общий антитромботический потенциал сосудов составил X_{Bi ОАПС}=0,055.

Поросенку было назначено лечение: ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, полизон 4 мг/кг и кезацин 4 мг/кг, включенные в схему выпаивания на 8 суток.

Через 3 дня после завершения лечения признаки анемии купировались - сывороточное железо 21,8 мкмоль/л, сидероциты 7,8%, при количестве гемоглобина у него 123,0 г/л, эритроцитов - 4,97×10¹²/л), ИААСС составлял - 1,50, ИСААС 1,37 и ИФАСС 1,42, отмечена нормализация значения общего антитромботического потенциала сосудов (X_{Bi ОАПС} =0,182). Дальнейшее наблюдение за данным поросенком не выявило отклонений от нормы в последующем, а исследованные параметры антитромботической активности сосудов оставались в нормальных границах.

Использование предлагаемого способа коррекции ослабления функций стенки сосудов у новорожденных поросят с анемией в свиноводстве, поможет избежать нарушений у них микроциркуляции и трофики тканей, замедления роста и развития животных, сосудистых осложнений, оздоровить поголовье, оптимизировать привесы и своевременно получать достаточный объем мясной продукции.

Claims

Способ коррекции вазопатии у новорожденных поросят с анемией, включающий применение ферроглюкина по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, полизона 4 мг/кг и кезацина 4 мг/кг, включенных в схему выпаивания на 8 сут.