RU2401103C1

RU2401103C1 - Способ коррекции начинающейся вазопатии при анемии у новорожденных телят и поросят

Info

Publication number: RU2401103C1
Application number: RU2009109025/13A
Authority: RU
Inventors: Илья Николаевич Медведев (RU); Илья Николаевич Медведев; Евгения Геннадьевна Краснова (RU); Евгения Геннадьевна Краснова; Светлана Юрьевна Завалишина (RU); Светлана Юрьевна Завалишина; Борис Дмитриевич Беспарточный (RU); Борис Дмитриевич Беспарточный
Original assignee: Илья Николаевич Медведев; Борис Дмитриевич Беспарточный
Priority date: 2009-03-11
Filing date: 2009-03-11
Publication date: 2010-10-10

Abstract

Изобретение относится к области ветеринарии. Способ включает применение ферроглюкина по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренила внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз в дозе 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина, и крезацина 5 мг/кг, включенного в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина. Способ позволяет избежать нарушений трофики тканей за счет сосудистых осложнений у новорожденных телят и поросят с анемией, уменьшить падеж, оздоровить стадо, увеличить количество и качество получаемой мясной продукции и получать здоровое потомство. 1 ил., 1 табл.

Description

Изобретение относится к ветеринарии и биологии, а именно к гематологии и ангиологии.

Аналогов предлагаемого способа коррекции начинающейся вазопатии у новорожденных телят и поросят с анемией не существует.

В литературе имеются сведения о применении при анемии у телят и поросят ферроглюкина (Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных. Под ред. В.М.Данилевского. М.: «Агропромиздат», 1991, - 576 с.).

В качестве эффективных стимуляторов жизнедеятельности растущего организма в современной ветеринарии применяются фоспренил - препарат на основе фосфатов полипренолов, получаемых из хвои (Деева А.В., Салахова З.А., Лобова Т.П. и др. Повышение сохранности и продуктивности поросят при использовании фоспренила и гамавита. // Ветеринария. - 2006. - №4, - с.13-15) и крезацин - производное ароксиалкилкарбоновых кислот, оказывающего эффективное стимулирующее действие на живые организмы, повышая выживаемость животных в неблагоприятных и экстремальных условиях, стимулируя или нормализуя жизненные процессы (Байматов В.Н., Латыпов М.М. Влияние крезацина на состояние птицы. Ветеринария, 2006, №11, с. 49-51).

Однако никогда ранее лечебный комплекс, состоящий из ферроглюкина, фоспренила и крезацина, не применялся у новорожденных телят и поросят с анемией с целью коррекции у них начинающейся вазопатии.

Целью изобретения является коррекция начинающейся вазопатии у новорожденных телят и поросят с анемией.

Сущность заявляемого способа заключается в том, что для коррекции начинающейся вазопатии новорожденным телятам и поросятам с анемией в зависимости от степени начальных нарушений назначается ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренил внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина и крезацин 5 мг/кг, включенный в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина.

Способ позволяет корректировать начинающуюся вазопатию у новорожденных телят и поросят с анемией к концу курса лечения. При соблюдении рекомендаций заявляемого способа возможно поддержание в последующем на нормальном уровне состояния функций сосудистой стенки, что позволит существенно оздоровить стадо, сократить падеж, увеличить привесы и получать от этих животных здоровое потомство.

Заявляемый способ осуществляется следующим образом.

Для диагностики начинающейся вазопатии новорожденным поросятам проводится следующее обследование.

Антиагрегационная активность сосудистой стенки определяется по методу (Балуда В.П., Лукьянова Т.И., Балуда М.В. Метод определения антиагрегационной активности стенки сосудов человека. // Лабор. Дело, 1983. - №6, - с.17-20). В основе этого метода лежит вычисление степени торможения агрегации тромбоцитов в плазме, полученной из крови после временной венозной окклюзии.

На сосуд, из которого еще не производился забор крови, накладывается манжетка сфигмоманометра и создается давление на 10 мм рт.ст. выше систолического. Через 3 минуты производится взятие 9 мл крови в 1 мл 3,8% раствора цитрата натрия. Ее немедленно центрифугируют 5 минут при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы (БТП). Плазму отсасывают пипеткой и сразу же помещают в тающий лед, где хранят до начала исследований. Повторно пробу центрифугируют 20 минут при 3000 об/мин для получения бестромбоцитной плазмы. После подсчета количества тромбоцитов в богатой тромбоцитами плазме, полученной до венозного застоя (подробно описано ниже), ее разводят бедной тромбоцитами плазмой (БеТП), взятой до (1 проба) и после (2 проба) венозного застоя до концентрации 200 000 тромбоцитов/мкл. Полученную смесь встряхивают и инкубируют 10 минут при 20-22°С. Затем проводят агрегацию тромбоцитов (AT) с коллагеном (разведение 1:2 основной суспензии) на стекле следующим способом (Шитикова А.С. В кн.: Гемостаз. Физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний. Под ред. Н.Н.Петрищева, Л.П.Папаян. СПб.: 1999. С.49-52).

Кровь забирают с цитратом натрия 3,8% в соотношении 9:1, центрифугируют 5 мин при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы. Часть плазмы отбирают, а оставшуюся центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин, получая БеТП. БТП стандартизируют по числу тромбоцитов путем разбавления исходной БТП аутологичным образцом БеТП (полученной до венозного застоя - 1 проба или после него - 2 проба) до 200·10⁹/л. Концентрация кровяных пластинок в исходной БТП подсчитывается в камере Горяева (в 50 больших квадратах). Объемы смешиваемых БТП и БеТП определяют по формуле

V_БеТП=V_БТП·[(N/200000)-1],

V_БеТП - объем бедной тромбоцитами плазмы,

V_БТП - объем богатой тромбоцитами плазмы,

N - счетная концентрация тромбоцитов в исходной БТП (клеток/мкл).

Из отобранного объема стандартизированной плазмы на предметное стекло наносят 0,02 мл плазмы и другой пипеткой 0,02 мл р-ра индуктора коллагена в стандартной концентрации (разведение 1:2 основной суспензии). Стеклянной палочкой смешивают плазму с индукторами и включают секундомер. Смесь перемешивают так, чтобы жидкость занимала окружность диаметром около 2 см.

Покачивая стекло круговыми движениями в проходящем свете осветителя, на черном фоне следят через лупу за возникновением агрегатов. При появлении отчетливых агрегатов, просветлении раствора и прилипании части агрегатов к стеклу секундомер отключают, фиксируя время агрегации тромбоцитов.

Реакцию повторяют по 2-3 раза в 1 и 2 пробе, находя для каждой из них среднее арифметическое значение.

По степени торможения агрегации тромбоцитов после венозного застоя судят об антиагрегационной активности плазмы крови, обусловленной поступлением в кровоток простациклина из сосудистой стенки. Индекс антиагрегационной активности сосудистой стенки (ИААСС) при исследовании AT на стекле рассчитывали по формуле

Нормальными значениями для коллагена можно считать ИААСС 1,45-1,50.

Определение антитромбогенных свойств сосудистой стенки, зависящих от продукции веществ, активирующих антитромбин III, оценивая его базальный уровнь до и после временной дозированной ишемии стенки вены, приведены ниже (Баркаган З.С., Момот А.П. Основы диагностики нарушений гемостаза. М. 1999, - 214с.).

Принцип метода основан на выявлении снижения активности (в отсутствии гепарина) в плазме антитромбина III (AT III), которую определяют по способности исследуемой плазмы инактивировать тромбин, для чего ее предварительно обрабатывают сорбентом гепарина, затем подвергают тепловой дефибринации и смешивают со стандартным количеством тромбина. После инкубации смеси в ней определяют остаточную коагуляционную активность тромбина. По уровню снижения активности тромбина в процентах от нормы оценивают активность AT III в исследуемой плазме.

Используются следующие реактивы. 1. Трис-HCl буфер 0,05 М, рН 7,4. 2. Раствор тромбина в буфере: 0,2 мл раствора должны свертывать 0,3 мл 0,4% раствора фибриногена за 15-16 с. Рабочий раствор тромбина готовят в пластиковой или силиконированной пробирке, хранят при комнатной температуре и используют в тесте в день исследования. 3. Сорбент гепарина Гепасорб-1 (фирма "Технология-Стандарт"). 4. Свежеприготовленный раствор фибриногена в концентрации 3,5-4,0 г/л, который применяют для тестирования остаточной активности тромбина. Допускается замена раствора фибриногена нормальной бедной тромбоцитами цитратной плазмой, разведенной буфером в 2 раза. 5. Свежая цитратная бедная тромбоцитами плазма, полученная от 6-8 здоровых поросят или здоровых телят, соответственно, или лиофилизированная фирменная, с известной активностью AT III, которую используют для построения калибровочного графика.

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма.

Для приготовления сорбированной и дефибринированной плазмы в пробирке смешивают 10 мг сорбента гепарина с 1,0 мл исследуемой плазмы. Постоянно встряхивая пробирку, перемешивают ее содержимое при комнатной температуре в течение 8 мин, исключая образование пены и осадка на ее дне. После этого смесь центрифугируют в течение 2 мин при 1000-1500 об/мин. Плазму в надосадке переносят в чистую пробирку и дефибринируют на водяной бане при +56°С в течение 6 мин, после чего вновь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин, снимают надосадочную часть и исследуют в течение первых 2 ч.

Ход определения.

В пробирку вносят 0,4 мл рабочего раствора тромбина и прогревают его на водяной бане при +37°С в течение 2 мин. Затем добавляют 0,1 мл исследуемой адсорбированной и дефибринированной плазмы, включают секундомер. Через 2 мин (точно!) 0,2 мл смеси переносят в пробирку с 0,3 мл раствора фибриногена (или разведенной нормальной плазмы), предварительно подогретой до +37°С. Немедленно включают секундомер и регистрируют время свертывания.

По калибровочной кривой находят активность AT III в процентах. Построение калибровочной кривой проводят следующим образом. Плазму здоровых людей подвергают дефибринированию, как указано выше. Затем из нее готовят разведения для построения калибровочной кривой в соответствии с табл.1.

Таблица 1
Схема приготовления разведений плазмы для построения калибровочной кривой при определении активности AT III
Номер разведения	Плазма + буфер	Активность АТ III, %
1	Плазма без буфера	100
2	0,2 мл + 0,2 мл	50
3	0,1 мл + 0,3 мл	25

С каждым из разведений определяют время свертывания по указанной выше методике. Все измерения проводят трижды, рассчитывают средний результат. При построении калибровочной кривой по логарифмической оси ординат откладывают время свертывания в секундах, по оси абсцисс - активность AT III в % в соответствии с указанными выше разведениями. Примерная калибровочная кривая приведена на чертеже.

Калибровочную кривую для одного типа и одной серии тромбина и буфера строят однократно. Периодически контролируют лишь активность рабочего раствора тромбина.

В норме без венозной окклюзии активность AT III составляет 85-115%. При взятии крови после временной венозной окклюзии, как описано в методе по оценке антиагрегационной активности сосудов, и определении в ней AT III возможно косвенно оценить уровень синтеза в стенке сосуда тканевых активаторов AT III. На фоне временной венозной окклюзии активность AT III повышается и находится в границах 120-143%. Рассчитывается индекс синтеза активаторов AT III в сосудах (ИСААС) путем деления величины активности AT III на фоне венозной окклюзии на величину AT III без нее. В норме он равен 1,20-1,40.

Активность синтеза тканевых активаторов плазминогена по времени лизиса эуглобулинового сгустка до- и после временной венозной окклюзии оценивали следующим образом.

Принцип метода заключается в осаждении эуглобулиновой фракции плазмы, при этом основные ингибиторы фибринолиза, в частоности α₂-антиплазмином, остаются в надосадочной части и удаляются. Поэтому эуглобулиновый лизис отражает активность фибринолиза в условиях исключения ингибирующего действия антиплазминов. Его скорость отражает, в основном, количество плазминогена в плазме и степень его активации. Определяют время спонтанного лизиса сгустка, получаемого из эуглобулиновой фракции плазмы при добавлении к ней раствора хлорида кальция.

Используются следующие реактивы:

1. 1% раствор уксусной кислоты.

2. 0,277% раствор хлорида кальция.

3. Буфер Михаэлиса или трис-НС буфер, 0.05М, рН 7,3-7,4.

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма до и после временной венозной окклюзии.

Ход определения.

Для получения эуглобулиновой фракции к 8,0 мл дистиллированной воды добавляют 0,15 мл 1% уксусной кислоты и 0,5 мл исследуемой плазмы. После 30-минутного охлаждения смеси в холодильнике при +2-8°С эуглобулины осаждают центрифугированием при 1500 об/мин в течение 7 мин. Надосадочную жидкость сливают, пробирку осушают опрокидыванием на фильтровальную бумагу. Осадок эуглобулинов разводят в 0,5 мл буфера и помещают на водяную баню (+37°С). Затем, не вынимая пробирку из бани, добавляют 0,5 мл раствора хлорида кальция, осторожно перемешивают покачиванием пробирки (не встряхивая!) включают секундомер и инкубируют на водяной бане при +37°С. Регистрируют время с момента добавления хлорида кальция до полного растворения сгустка.

Результат выражают в минутах. В норме время спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка составляет 175-230 мин. После временной венозной окклюзии время лизиса снижается, находясь в границах 126-170 мин. При делении величины длительности спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка до окклюзии на величину после рассчитан индекс фибринолитической активности сосудистой стенки (ИФАСС), в норме равный 1,35-1,45.

Для каждой лаборатории необходимо обследование группы здоровых новорожденных телят и поросят, чтобы найти средние нормативные значения с расчетом S² по всем трем методикам для последующих расчетов.

По каждой методике у каждого больного поросенка или теленка для большей точности диагностики проводят тест 3-4 раза с вычислением среднеарифметических значений, которые используют в последующих расчетах и вычислении S².

Для определения весомости отдельных исследуемых параметров у больных поросят и вычисления у них общего антитромботического потенциала сосудов применялся системный многофакторный анализ, позволяющий переводить многомерные количественные характеристики исследуемого процесса с несопоставимыми абсолютными значениями в сопоставимые относительные величины (Применение методов морфометрии и статистического анализа в морфологических исследованиях. Сост. М.В.Углова, Б.А.Углов, В.В.Архипов и др., Куйбышев, 1982, - 47 с.). Расчет производился по формулам

X_j - исследуемый параметр, Х₀ - нормативный параметр, X_j - относительная разность.

Pi - весовой коэффициент (коэффициент влияния), а - постоянный множитель (в наших исследованиях а=0,1), σ_j - среднеквадратическое отклонение значения X_j в относительных единицах.

S_i ² - дисперсия исследуемого параметра X_i, n_i - количество наблюдений при определении X_i, S₀ ² - дисперсия нормативного параметра Х₀, n₀ - количество наблюдений при определении Х₀.

X_{Bi ОАПС} - величина, интегрально характеризующая исследуемый процесс в заданный срок (в относительных единицах), является общим антитромботическим потенциалом сосудов (ОАПС).

Сочетанное применение описанных методов с последующей обработкой полученных значений ИААСС, ИСААС и ИФАСС системным многофакторным анализом с определением общего антитромботического потенциала сосудов

(X_{Bi ОАПС}) - норма 0,180 и выше, позволяет выявлять у животных риск развития ослабления антитромботической активности сосудов (X_{Bi ОАПС} от 0,179 до 0,060), что является по сути дела начинающейся вазопатией и требует проведения соответствующих мероприятий, нормализующих функции стенки сосуда и не позволяющих развиться клинически проявляющейся тромбофиллии (X_{Bi ОАПС} от 0,059 и ниже), требующей немедленного проведения серьезных лечебных мероприятий.

Начинающаяся вазопатия может корректироваться лечебным комплексом из ферроглюкина по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренила внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина и крезацина 5 мг/кг, включенного в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина.

Внедрение данного способа коррекции начинающегося ослабления антитромботической активности сосудов у новорожденных телят и поросят с анемией в практику ветеринарных учреждений позволит решить ряд насущных биологических, ветеринарных и экономических проблем современного животноводства и свиноводства. Эффективная коррекция у новорожденных телят и поросят с анемией позволит оздоровить стадо, получать высокие привесы, а в последующем здоровое потомство.

Пример 1. У новорожденного поросенка №29 с анемией было выявлено нарушение эритропоэза с признаками снижения уровня содержания железа в его организме (сывороточное железо 12,8 мкмоль/л, сидероциты 1,2%, при количестве гемоглобина у него 83,0 г/л, эритроцитов 4,00×10¹²/л.

Поросенок обследован в условиях свинарника по поводу клиники анемии. У поросенка была взята кровь и исследована троекратно по изложенной выше схеме с оценкой ИААСС, ИСААС и ИФАСС и вычислением общего антитромботического потенциала сосудов.

У поросенка были выявлены выраженные признаки угнетения антитромботической функции сосудистой стенки. ИААСС составлял 1,45, ИСААС 1,22 и ИФАСС 1,37. Общий антитромботический потенциал сосудов у него составил X_{Bi ОАПС}=0,122.

Поросенку было назначено лечение: ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренил внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина и крезацин 5 мг/кг, включенного в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина.

После завершения лечения признаки анемии купировались - сывороточное железо 23,4 мкмоль/л, сидероциты 8,2%, при количестве гемоглобина у него 125,0 г/л, эритроцитов 4,92×10¹²/л, ИААСС составлял 1,49, ИСААС 1,35 и ИФАСС 1,39, отмечена нормализация значения общего антитромботического потенциала сосудов (X_{Bi ОАПС}=0,182). Дальнейшее наблюдение за данным поросенком не выявило в последующем нарушений параметров антитромботической активности сосудов.

Пример 2. У новорожденного теленка №42 с анемией было выявлено нарушение эритропоэза с признаками снижения уровня содержания железа в его организме (сывороточное железо 11,5 мкмоль/л, сидероциты 1,1%, при количестве гемоглобина у него 85,0 г/л, эритроцитов 3,90×10¹²/л.

Теленок обследован в условиях телятника по поводу клиники анемии. У теленка была взята кровь и исследована троекратно по изложенной выше схеме с оценкой ИААСС, ИСААС и ИФАСС и вычислением общего антитромботического потенциала сосудов.

У теленка были выявлены выраженные признаки угнетения антитромботической функции сосудистой стенки. ИААСС составлял 1,44, ИСААС 1,21 и ИФАСС 1,36. Общий антитромботический потенциал сосудов у него составил X_{Bi ОАПС}=0,121.

Теленку было назначено лечение: ферроглюкин по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренил внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина и крезацин 5 мг/кг, включенного в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина.

После завершения лечения признаки анемии купировались - сывороточное железо 23,6 мкмоль/л, сидероциты 8,3%, при количестве гемоглобина у него 126,0 г/л, эритроцитов 4,99×l0¹²/л, ИААСС составлял 1,49, ИСААС 1,36 и ИФАСС 1,38, отмечена нормализация значения общего антитромботического потенциала сосудов (X_{Bi ОАПС}=0,183). Дальнейшее наблюдение за данным теленком не выявило в последующем нарушений параметров антитромботической активности сосудов.

Использование предлагаемого способа коррекции начинающейся вазопатии в ветеринарии поможет избежать нарушений трофики тканей за счет сосудистых осложнений у новорожденных телят и поросят с анемией, уменьшить у них падеж, оздоровить стадо, увеличить количество и качество получаемой мясной продукции и здоровое потомство.

Claims

Способ коррекции начинающейся вазопатии при анемии у новорожденных телят и поросят, включающий применение ферроглюкина по 150 мг (2 мл) внутримышечно, двоекратно с интервалом 10 дней, фоспренила внутримышечно, двоекратно в разных шприцах в разные точки, первый раз 0,07 мл/кг одновременно с препаратом железа, второй раз в дозе 0,07 мл/кг через пять дней после первой инъекции ферроглюкина и крезацина 5 мг/кг, включенного в схему выпаивания на 7 суток, начиная одновременно с первой инъекции ферроглюкина.