RU2391397C2 - Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных - Google Patents

Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных Download PDF

Info

Publication number
RU2391397C2
RU2391397C2 RU2006106836/13A RU2006106836A RU2391397C2 RU 2391397 C2 RU2391397 C2 RU 2391397C2 RU 2006106836/13 A RU2006106836/13 A RU 2006106836/13A RU 2006106836 A RU2006106836 A RU 2006106836A RU 2391397 C2 RU2391397 C2 RU 2391397C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tuberculosis
mice
animals
medicine
months
Prior art date
Application number
RU2006106836/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2006106836A (ru
Inventor
Владислав Всеволодович Ерохин (RU)
Владислав Всеволодович Ерохин
Ольга Владимировна Демихова (RU)
Ольга Владимировна Демихова
Лев Евгеньевич Поспелов (RU)
Лев Евгеньевич Поспелов
Артур Александрович Исаев (RU)
Артур Александрович Исаев
Александр Викторович Приходько (RU)
Александр Викторович Приходько
Денис Сергеевич Станков (RU)
Денис Сергеевич Станков
Владимир Владимирович Мищенко (RU)
Владимир Владимирович Мищенко
Ирина Владимировна Бочарова (RU)
Ирина Владимировна Бочарова
Владислав Яковлевич Гергерт (RU)
Владислав Яковлевич Гергерт
Original Assignee
ГУ Центральный НИИ туберкулеза РАМН
ОАО Институт стволовых клеток человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ГУ Центральный НИИ туберкулеза РАМН, ОАО Институт стволовых клеток человека filed Critical ГУ Центральный НИИ туберкулеза РАМН
Priority to RU2006106836/13A priority Critical patent/RU2391397C2/ru
Publication of RU2006106836A publication Critical patent/RU2006106836A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2391397C2 publication Critical patent/RU2391397C2/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области клеточной биотехнологии, ветеринарии и медицине. Способ лечения экспериментального туберкулеза у мышей предусматривает введение суспензии клеток костного мозга больным мышам. Клетки костного мозга выделяют из бедренной кости инбредной линии мышей AKR, резистентной к туберкулезу. Введение осуществляют в хвостовую вену один раз в неделю в дозе 6 млн клеток на мышь в течение двух месяцев. Способ позволяет значительно снизить число микобактерий в организме опытных животных и гарантированно продлить жизнь зараженным животным. Изобретение может быть использовано в ветеринарии и медицине. 2 табл.

Description

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к способу лечения экспериментального туберкулеза легких у животных.
Заболеваемость туберкулезом растет во всем мире. По данным ВОЗ треть населения планеты инфицирована микобактерией М. tuberculosis. В России ежегодно регистрируется 75-85 тысяч впервые выявленных больных туберкулезом. Из общей смертности от инфекционных заболеваний до 75% составляет смерть от туберкулеза. Лечение туберкулеза - длительный процесс, проводимый с использованием одновременно 4-5 противотуберкулезных препаратов в течение 6-12 месяцев, а иногда и более, которые принимаются ежедневно. При этом часто у больных возникают различные побочные явления, а эффективность излечения колеблется в пределах
50-80% случаев. В связи с этим является актуальным отыскание новых средств, пригодных для лечения и профилактики туберкулеза, которые не давали бы тяжелых побочных эффектов.
Известен способ лечения туберкулеза легких путем введения гомогената ксеногенной поджелудочной железы подкожно однократно в дозе 0,2-0,3 мл при использовании стандартной химиотерапии в течение нескольких месяцев.
Задачей настоящего изобретения является отыскание новых средств, пригодных для лечения туберкулеза, а также повышение эффективности способа лечения туберкулеза.
Авторами настоящего изобретения в процессе исследований in vivo и in vitro было обнаружено, что в качестве такого средства могут быть использованы клетки костного мозга (ККМ).
В отличие от указанного в АС РФ SU 1727840 A1 эффективность введения только ККМ в соответствии с настоящим изобретением была подтверждена как в условия in vivo (выживаемость), так и в условиях in vitro (высеваемость микобактерий туберкулеза - МБТ). Исследования действия ККМ проводились in vivo на мышиной модели активного экссудативно-некротического туберкулеза.
Определить показатель выживаемости животных после заражения их смертельной дозой микобактерий туберкулеза H37Rv и показатель высеваемости МБТ из органов зараженных животных.
Исследованию подвергались клетки костного мозга (КММ) инбредной линии мышей AKR, резистентной к туберкулезу, содержащейся в питомнике Государственного Учреждения Центрального научно-исследовательского института туберкулеза Российской Академии медицинских наук (ГУ ЦНИИТ РАМН). Вес мышей - 20 граммов. Возраст - 2 месяца. Изучение действия ККМ проводили на самцах инбредной линии мышей C57BL/6, чувствительной к туберкулезу, полученных из того же питомника. Вес мышей - 20 граммов. Возраст - 3 месяца. Мышей заражали внутривенным введением М. tuberculosis штамма H37Rv из коллекции института Пастера (Франция) в ретроорбитальный синус глаза в дозе 1×107 КОЕ. В препаративных количествах МБТ были получены в лаборатории иммуногенетики указанного института. Аликвоты (1 мл) хранили при -70°С. Для определения количества КОЕ микобактерий в полученной суспензии отбирали аликвоту, готовили серию последовательных разведений и 20 мкл каждого разведения помещали в капле на чашку Петри с агаром Дюбо. Чашки культивировали при 37°С в течение 14 суток для определения концентрации МБТ в инфицирующем материале. Для заражения мышей аликвоту размораживали, переводили в фосфатно-буферный раствор, содержащий 0.025% Твина 80, и доводили до концентрации 1×107 КОЕ/мл. Клетки костного мозга получали из бедренной кости мышей, суспендировали в среде 199 и доводили до концентрации 6 млн клеток в 0,3 мл среды 199 на 1 инъекцию на мышь.
Все экспериментальные животные были разделены на следующие группы:
1 группа - интактные животные - 10 шт.
2 группа - инфицированные животные, не получающие лечения, - 10 шт.
3 группа - инфицированные животные, получающие противотуберкулезный препарат изониазид в дозе 38,5 мг/кг, - 10 шт.
4 группа - инфицированные животные, получающие противотуберкулезный препарат изониазид в дозе 38,5 мг/кг и ККМ (6 млн клеток на мышь), - 10 шт.
5 группа - инфицированные животные, получающие только ККМ (6 млн клеток на мышь), - 10 шт.
Изониазид вводили внутрижелудочно ежедневно в течение 2-х месяцев через 3 дня после заражения. ККМ вводили внутривенно в хвостовую вену мышей еженедельно в течение 2-х месяцев.
Основными показателями резистентности животного к туберкулезу являются срок выживаемости после инфицирования и число высеваемых микобактерий из органов зараженных экспериментальных животных.
У мышей контрольной группы, не получавших никаких препаратов, выживаемость после смертельной дозы заражения составила в среднем 24 дня. Мыши, получавшие ежедневно изониазид в течение 2-х месяцев (3 группа), изониазид и ККМ одновременно (4 группа) и только ККМ (5 группа), оставались живы в течение всего срока наблюдения - 4 месяца (таблица 1).
Таблица 1
Сроки выживания мышей, зараженных МБТ, в зависимости от вида ККМ
Без лечения Изониазид Изониазид + ККМ ККМ
Дни 24,1±1,9 120±0 120±0 120±0
После окончания лечения, через 4 месяца после заражения, часть животных была забита для оценки высеваемости МБТ из органов мышей. Результаты высеваемости МБТ представлены в таблице 2.
Таблица 2
Результаты высеваемости МБТ из органов зараженных животных (КОЕ)
Дни Препараты Селезенка Легкие
24 Без лечения (2,6±0,9)×109 (5,5±1,9)×109
120 ККМ (2,9±0,4)×105 (9,3±2,3)×105
ПТП (5,8±1,2)×103 0
ПТП + ККМ (5,3±3,2)×103 0
Как видно из таблицы, даже по прошествии 2-х месяцев после окончания трансплантации аллогенных ККМ число МБТ в органах было значительно снижено по сравнению с животными без лечения, которые погибли через 24 дня. На первом разведении клеточной суспензии легких мышей из групп 3 и 4 не удалось выявить выросшие колонии МБТ.
Таким образом, трансплантация чувствительным к туберкулезу мышам аллогенных ККМ от резистентной к туберкулезу линии мышей позволила значительно продлить жизнь зараженным экспериментальным животным.
Литература
1. Г.В.Терентьев, В.И.Голышевская, О.А.Уварова. Авторское свидетельство SU 1727840 А1.
2. Ortiz L.A. PNAS 2003; 14: 8407-11.
3. Kotton D.N. et al. Development 2001; 128: 5181-8.
4. Simonelli C., Michieli M. Blood 2005; 105; 2: 439-440.
5. Krishnan A. et al. Blood 2005; 105; 2: 874-878.

Claims (1)

  1. Способ лечения экспериментального туберкулеза у мышей, включающий введение мышам суспензии клеток костного мозга, выделенных из бедренной кости инбредной линии мышей AKR, резистентной к туберкулезу, в хвостовую вену один раз в неделю в дозе 6 млн клеток на мышь в течение двух месяцев.
RU2006106836/13A 2006-03-09 2006-03-09 Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных RU2391397C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006106836/13A RU2391397C2 (ru) 2006-03-09 2006-03-09 Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006106836/13A RU2391397C2 (ru) 2006-03-09 2006-03-09 Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006106836A RU2006106836A (ru) 2007-09-20
RU2391397C2 true RU2391397C2 (ru) 2010-06-10

Family

ID=42681708

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006106836/13A RU2391397C2 (ru) 2006-03-09 2006-03-09 Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2391397C2 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2496868C1 (ru) * 2012-06-19 2013-10-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза" Российской академии медицинских наук СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ТУБЕРКУЛЕЗА У МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6(H-2b)
RU2675692C1 (ru) * 2017-08-18 2018-12-21 Дамир Зиннатович Хабибуллин Способ воздействия на микобактерии туберкулеза в эксперименте in vitro

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2496868C1 (ru) * 2012-06-19 2013-10-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза" Российской академии медицинских наук СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ТУБЕРКУЛЕЗА У МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6(H-2b)
RU2675692C1 (ru) * 2017-08-18 2018-12-21 Дамир Зиннатович Хабибуллин Способ воздействия на микобактерии туберкулеза в эксперименте in vitro

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006106836A (ru) 2007-09-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Abraham Biology of Dirofilaria immitis
US8809268B2 (en) Combination therapy to combat helminth resistance
Zimmerman et al. Efficacy of novel histone deacetylase inhibitor, AR42, in a mouse model of, human T-lymphotropic virus type 1 adult T cell lymphoma
JP6513729B2 (ja) 同種異系移植片
CN106470676A (zh) 用于非细胞毒性干细胞移植的方法和组合物
Kim et al. Type 1 and 2 diabetes are associated with reduced natural killer cell cytotoxicity
Franssen et al. In vitro nitroimidazole resistance of Trichomonas gallinae and successful therapy with an increased dosage of ronidazole in racing pigeons (Columba livia domestica)
RU2391397C2 (ru) Способ лечения экспериментального туберкулеза у животных
JP6912800B2 (ja) 造血器腫瘍治療剤、およびスクリーニング方法
JP4709552B2 (ja) Lfa−1抑制剤、及びその用途
AU2018219273A1 (en) In vivo model for parasitic worm infection and methods for evaluating antiparasitic compounds, including compounds active against canine heartworm
Fu et al. T-bet promotes acute graft-versus-host disease by regulating recipient hematopoietic cells in mice
Owen Eimeria falciformis (Eimer, 1870) in specific pathogen free and gnotobiotic mice
CN114949000B (zh) 麝香提取物及其增强car-t细胞疗效的应用
JPH07500601A (ja) バシトラシンを用いた原生動物感染の治療
Nakasone et al. Single oral administration of the novel CXCR4 antagonist, KRH-3955, induces an efficient and long-lasting increase of white blood cell count in normal macaques, and prevents CD4 depletion in SHIV-infected macaques: a preliminary study
KR20210052366A (ko) 근육 유래 미토콘드리아를 포함하는 면역질환의 예방 또는 치료용 조성물
CN114599379A (zh) 一种用于预防或治疗脓毒症的药物组合物、试剂盒及其应用和治疗方法
KR102502770B1 (ko) 알로페론으로 배양된 nk 세포를 함유하는 암 예방 또는 치료용 조성물
Voorn et al. Paradoxical dose effect of continuously administered cloxacillin in treatment of tolerant Staphylococcus aureus endocarditis in rats
Giardina et al. Use of cyclosporine in the mouse heterotopic heart transplant model
Pattison et al. Unsuccessful attempts to produce disease with tissues from mice fed on a diet containing cuprizone
PT1562571E (pt) Combinação de derivados de diamina e agentes imunossupressores para a indução da tolerância imunológica
Peter et al. Murine Models for Development of Anti-Infective Therapeutics
EP3946309A1 (en) Treatment of al amyloidosis with melflufen