RU2384892C1 - Method for modelling atrophic skin scar - Google Patents
Method for modelling atrophic skin scar Download PDFInfo
- Publication number
- RU2384892C1 RU2384892C1 RU2008141966/14A RU2008141966A RU2384892C1 RU 2384892 C1 RU2384892 C1 RU 2384892C1 RU 2008141966/14 A RU2008141966/14 A RU 2008141966/14A RU 2008141966 A RU2008141966 A RU 2008141966A RU 2384892 C1 RU2384892 C1 RU 2384892C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- atrophic
- modelling
- needle
- skin
- scar
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Infusion, Injection, And Reservoir Apparatuses (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к медицине, а именно к дерматологии, и может быть использовано для изучения процессов образования атрофических рубцов, их коррекции и дегенеративных процессов в дерме.The present invention relates to medicine, namely to dermatology, and can be used to study the processes of formation of atrophic scars, their correction and degenerative processes in the dermis.
Прототипом предлагаемого изобретения является способ моделирования атрофических рубцов, заключающийся в создании линейного дефекта всех слоев кожи, включая подкожно-жировую клетчатку, путем 5-сантиметрового разреза хирургическим скальпелем и фиксации образованного дефекта введением в просвет образованной раны пластиковой рамки с целью предотвращения контракции, которую через 7 суток удаляли, после чего рану закрывали стерильными салфетками (Золотовицкая Н.В., автореф. на соиск. уч. степени канд. мед. наук. Москва, 2007, стр.6-7). Недостатком данной методики является сложность проведения эксперимента, его многоэтапность и длительность формирования рубца - 28 суток.The prototype of the present invention is a method for modeling atrophic scars, which consists in creating a linear defect of all layers of the skin, including subcutaneous fat, by 5-cm incision with a surgical scalpel and fixing the defect by introducing a plastic frame into the lumen of the formed wound in order to prevent contraction, which after 7 days removed, after which the wound was closed with sterile napkins (Zolotovitskaya N.V., author. for the degree. Candidate of Medical Sciences. Moscow, 2007, p.6-7). The disadvantage of this technique is the complexity of the experiment, its multi-stage and duration of scar formation - 28 days.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка близкого к патогенезу образования атрофических рубцов в клинике, технически простого в выполнении, легко воспроизводимого метода моделирования атрофических рубцов кожи.The objective of the invention is the development of a pathogenesis-related formation of atrophic scars in the clinic, technically simple to implement, easily reproducible method for modeling atrophic skin scars.
Технический результат при использовании изобретения - упрощение и сокращение сроков формирования атрофического рубца кожи.The technical result when using the invention is to simplify and shorten the formation of atrophic skin scar.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе моделирования атрофического рубца кожи согласно изобретению в толщу сетчатого слоя дермы параллельно поверхности кожи туннельно-ретроградным способом однократно вводят 0,2 мл раствора коллагеназы с содержанием не менее 100 КЕ.The specified technical result is achieved by the fact that in the method of modeling an atrophic scar of the skin according to the invention, 0.2 ml of a collagenase solution with a content of at least 100 KE is introduced once into the thickness of the reticular dermis parallel to the skin surface in a tunneling-retrograde manner.
Способ моделирования атрофического рубца кожи выполняется следующим образом. В качестве экспериментальных животных используют белых крыс. Производят механическую депиляцию участка кожи спины животного. Затем в течение одного часа экспозиция с целью нивелирования местного раздражения, которое может быть вызвано механическим воздействием при депиляции. Под местной аппликационной анестезией (кремом «Эмла», выдержка 15 минут под окклюзионной пленкой), параллельно поверхности кожи, вдоль позвоночника, на расстоянии 2 см от него, в толщу сетчатого слоя дермы вводят на всю длину иглу инсулинового шприца. Длина иглы - 1,6 см, диаметр - 0,40 G. Для соблюдения условия введения иглы на требуемую глубину производят визуальный контроль - игла должна четко контурироваться при ее поднятии, но поверхность иглы (ее цвет) не должна быть видна. Затем туннельно-ретроградным способом при плавном вытягивании иглы и равномерном давлении на поршень шприца вводят 0,2 мл раствора коллагеназы с содержанием не менее 100 КЕ (например, препарат Коллализин, разведение 500 КЕ в 1 мл). Под действием коллагеназы реализуется лизис участка соединительнотканного компонента кожи, что симулирует механизм образования минус ткани при угревой болезни и других воспалительных заболеваниях кожи. В результате в области проекции на поверхность кожи введенного интрадермально объема раствора коллагеназы образуется линейный атрофический рубцовый дефект. Выраженный атрофический дефект формируется в течение 7-10 дней.A method for modeling an atrophic skin scar is as follows. As experimental animals use white rats. Produce mechanical depilation of the skin of the back of the animal. Then, within one hour, exposure to level local irritation, which may be caused by mechanical action during depilation. Under local application anesthesia (Emla cream, holding for 15 minutes under an occlusal film), parallel to the skin surface, along the spine, at a distance of 2 cm from it, an insulin syringe needle is inserted into the thickness of the reticular layer of the dermis. The needle length is 1.6 cm, the diameter is 0.40 G. To comply with the conditions for introducing the needle to the required depth, visual inspection is performed - the needle should be clearly contoured when it is raised, but the surface of the needle (its color) should not be visible. Then, using a tunneling-retrograde method, with a smooth pulling of the needle and uniform pressure, 0.2 ml of a collagenase solution with a content of at least 100 KE is injected onto the syringe plunger (for example, Collalizin, dilution of 500 KE in 1 ml). Under the action of collagenase, a lysis of the area of the connective tissue component of the skin is realized, which simulates the formation mechanism minus tissue in case of acne and other inflammatory skin diseases. As a result, a linear atrophic scar defect forms in the area of projection onto the skin surface of the intradermally injected volume of the collagenase solution. A pronounced atrophic defect is formed within 7-10 days.
Для оценки достоверности результатов предлагаемого способа моделирования атрофического рубца кожи проводилась дерматоскопия с фотодокументированием. Методика апробирована на 15 крысах. Животные содержались в виварии в соответствии с «Санитарными правилами по устройству, оборудованию и содержанию экспериментально-биологических помещений (вивариев), утвержденными МЗ СССР 06.07.1973 г. и приказом МЗ СССР №163 от 10.03.1966 г. Работа на крысах выполнялась в соответствии с принципами гуманного обращения с подопытными животными, утвержденными приказом МЗ СССР №755 от 12.08.1977 и №701 от 27.07.1978.To assess the reliability of the results of the proposed method for modeling an atrophic skin scar, dermatoscopy was performed with photo documentation. The technique was tested on 15 rats. Animals were kept in a vivarium in accordance with the Sanitary Rules for the Design, Equipment and Maintenance of Experimental Biological Facilities (Vivariums), approved by the Ministry of Health of the USSR on 07/06/1973 and order of the Ministry of Health of the USSR No. 163 of 03/10/1966. Work on rats was carried out in accordance with with the principles of humane treatment of experimental animals, approved by order of the Ministry of Health of the USSR No. 755 of 08/12/1977 and No. 701 of 07/27/1978.
Предлагаемый способ иллюстрируется следующими чертежами.The proposed method is illustrated by the following drawings.
На фиг.1 изображено, что в зоне введения препарата через 15 минут отмечается появление инфильтрации, геморрагического окрашивания кожи над участком введения.Figure 1 shows that in the injection zone of the drug after 15 minutes, the appearance of infiltration, hemorrhagic staining of the skin over the injection site is noted.
На фиг.2 показано, что через 1 час появляется максимальный отек и кровоизлияние в месте инъекции.Figure 2 shows that after 1 hour there is a maximum swelling and hemorrhage at the injection site.
На фиг.3 изображено, что на 3-и сутки опыта образовался рубец с геморрагической коркой над ним.Figure 3 shows that on the 3rd day of the experiment, a scar was formed with a hemorrhagic crust above it.
На фиг.4 виден образовавшийся атрофический рубец после отхождения корки на 8-е сутки.Figure 4 shows the formed atrophic scar after the discharge of the crust on the 8th day.
Предлагаемый способ позволяет определить стадии формирования атрофических рубцов кожи, что позволяет проводить эксперименты по их лечению в разных стадиях формирования.The proposed method allows to determine the stage of formation of atrophic skin scars, which allows experiments to treat them at different stages of formation.
Предлагаемый способ иллюстрируется следующим примером: крысе, самцу линии «Вистар», весом 250-300 г, под местной аппликационной анестезией в толщу сетчатого слоя дермы параллельно поверхности кожи туннельно-ретроградным способом однократно ввели 0,2 мл раствора коллагеназы с содержанием 100 КЕ с помощью инсулинового шприца. На 8-е сутки на поверхности кожи в области проекции на нее пути введения коллагеназы сформировался атрофический рубец.The proposed method is illustrated by the following example: a rat, a male of the Wistar strain, weighing 250-300 g, under local application anesthesia, into the thickness of the reticular dermis parallel to the skin surface by a tunneling-retrograde method, 0.2 ml of a collagenase solution containing 100 KE was injected once using insulin syringe. On the 8th day, an atrophic scar was formed on the skin surface in the area of the projection of the path of collagenase administration onto it.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008141966/14A RU2384892C1 (en) | 2008-10-22 | 2008-10-22 | Method for modelling atrophic skin scar |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008141966/14A RU2384892C1 (en) | 2008-10-22 | 2008-10-22 | Method for modelling atrophic skin scar |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2384892C1 true RU2384892C1 (en) | 2010-03-20 |
Family
ID=42137507
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008141966/14A RU2384892C1 (en) | 2008-10-22 | 2008-10-22 | Method for modelling atrophic skin scar |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2384892C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456674C1 (en) * | 2011-05-31 | 2012-07-20 | Тагир Уралович Гафаров | Method for simulating atrophic skin scar |
-
2008
- 2008-10-22 RU RU2008141966/14A patent/RU2384892C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
ЗОЛОТОВИЦКАЯ Н.В. Применение клеточных культур фибробластов в лечении атрофических рубцов кожи (экспериментально-клиническое исследование), автореф. дис. к.м.н. 2007, с.24. * |
ШАПОВАЛОВ Д.А. и др. Особенности строения кожи крыс в норме и при действии пирогенала. Морфология. 2008. том II. №2. с.71-74. YANG DY et al. Establishment of a hypertrophic scar model by transplanting full-thickness human skin grafts onto the backs of nude mice. Plast Reconstr Surg. 2007 Jan; 119 (1): 104-9; discussion 110-1. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456674C1 (en) * | 2011-05-31 | 2012-07-20 | Тагир Уралович Гафаров | Method for simulating atrophic skin scar |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Pertin et al. | The spared nerve injury model of neuropathic pain | |
Fyfe et al. | Mast cell degranulation and increased vascular permeability induced by'therapeutic'ultrasound in the rat ankle joint. | |
Peterson et al. | Direct mouse trauma/burn model of heterotopic ossification | |
WO2011022045A3 (en) | Apparatus and process for generating and harvesting adult stem cells and fluid associated with it from skin and omentum for medical, cosmetic, and veterinary use | |
Müller et al. | The impact of shock wave therapy at varied energy and dose levels on functional and structural changes in erectile tissue | |
Liao et al. | Method for the quantitative measurement of collecting lymphatic vessel contraction in mice | |
Turayevich et al. | DETERMINATION OF THE MECHANISM OF HEMOSTATIC ACTION OF GEPROCELL IN AN EXPERIMENTAL MODEL OF HEAT INJURY | |
Zhao et al. | Anti-arthritic effects of microneedling with bee venom gel | |
Lee et al. | A novel needle‐free microjet drug injector using Er: YAG LASER: a completely new concept of transdermal drug delivery system | |
Niimi et al. | Polyurethane foam for skin graft fixation in clinical-relevant ovine burn wound model for wound repair and regeneration research | |
RU2384892C1 (en) | Method for modelling atrophic skin scar | |
RU2582215C1 (en) | Method for skin discoloration in bruising area | |
RU2456674C1 (en) | Method for simulating atrophic skin scar | |
Carrer et al. | Continuous therapeutic ultrasound in the healing process in rat skin | |
Özaydın et al. | Experimental skin-wound methods and healing-assessment in animal models: a review. | |
RU2465838C1 (en) | Method of treating lymphangiomas | |
Han et al. | Reproducible hindlimb ischemia model based on photochemically induced thrombosis to evaluate angiogenic effects | |
Ibrahim et al. | Drug treatment by central venous catheter in a mouse model of angiotensin II induced abdominal aortic aneurysm and monitoring by 3D ultrasound | |
RU2709220C1 (en) | Method for modeling acute pancreatitis of various severity in rat | |
Manaph et al. | A direct and non-invasive method for kidney delivery of therapeutics in mice | |
RU2232430C1 (en) | Method for modeling acute purulent cholangitis in experimental animals | |
Christakis et al. | Learning curve of vessel cannulation in rats using cumulative sum analysis | |
UA22357U (en) | Method for treatment of pancreatic pseudocyst and of parapancreatic liquid accumulation | |
Parasuraman | Preclinical models for wound-healing and repair studies | |
Matolych et al. | Dynamics of regeneration of striated muscles in rats with posttraumatic reflex contractures |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20101023 |