RU2372405C1 - Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood - Google Patents

Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood Download PDF

Info

Publication number
RU2372405C1
RU2372405C1 RU2008132233/15A RU2008132233A RU2372405C1 RU 2372405 C1 RU2372405 C1 RU 2372405C1 RU 2008132233/15 A RU2008132233/15 A RU 2008132233/15A RU 2008132233 A RU2008132233 A RU 2008132233A RU 2372405 C1 RU2372405 C1 RU 2372405C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
blood
dna
cancer
supernatant
cells
Prior art date
Application number
RU2008132233/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Евгеньевна Брызгунова (RU)
Ольга Евгеньевна Брызгунова
Татьяна Эвальдовна Скворцова (RU)
Татьяна Эвальдовна Скворцова
Ольга Борисовна Вайнер (RU)
Ольга Борисовна Вайнер
Елена Владимировна Елистратова (RU)
Елена Владимировна Елистратова
Елена Юрьевна Рыкова (RU)
Елена Юрьевна Рыкова
Валентин Викторович Власов (RU)
Валентин Викторович Власов
Павел Петрович Лактионов (RU)
Павел Петрович Лактионов
Original Assignee
Павел Петрович Лактионов
Валентин Викторович Власов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Павел Петрович Лактионов, Валентин Викторович Власов filed Critical Павел Петрович Лактионов
Priority to RU2008132233/15A priority Critical patent/RU2372405C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2372405C1 publication Critical patent/RU2372405C1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: chemistry.
SUBSTANCE: invention relates to clinical biochemistry and pertains to a method of extracting extracellular DNA from blood. Nonidet P-40 or triton X-100 is added to the analysed blood sample until final concentration of 0.5 to 1.5%. The mixture is incubated in ice for 1 to 15 minutes. Lysed blood is divided into supernatant and a nuclear fraction of cells by centrifuging. The supernatant is then treated with a RNA-hydrolysing enzyme and extracellular DNA is extracted from the obtained fraction using a fibre-glass sorbent.
EFFECT: use of the method simplifies the procedure of extracting extracellular DNA, simultaneously extract extracellular DNA, which is free and which is bonded to the surface of blood cells, from blood lysate, which allows for significantly increasing reliability and sensitivity of further amplification analysis for early detection of oncological and other diseases.
2 cl, 4 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к области медицины, конкретнее к клинической биохимии, а именно к разработке способов выделения внеклеточных ДНК (внДНК) из крови, которые могут быть использованы в амплификационном анализе для ранней диагностики предраковых состояний и ранних стадий рака, состояний плода при беременности, а также мониторинга эффективности противораковой терапии.The invention relates to medicine, more specifically to clinical biochemistry, namely the development of methods for the extraction of extracellular DNA (extra DNA) from the blood, which can be used in amplification analysis for early diagnosis of precancerous conditions and early stages of cancer, fetal conditions during pregnancy, and monitoring the effectiveness of anti-cancer therapy.

На сегодняшний день актуальной проблемой медицины является выявление онкологических заболеваний на ранних стадиях развития (предрак и ранний рак). Современные методы инструментального анализа, такие как рентгенология, эндоскопия, ультразвук, маммография, не только не являются достаточно эффективными на ранних стадиях заболевания, но и дают большое количество ложноотрицательных результатов. Использование опухолевых тканей в качестве биологического материала возможно только при сформировавшейся опухоли и не применимо для ранней диагностики и мониторинга эффективности противоопухолевой терапии. Исходя из всего вышесказанного, использование для диагностики маркеров, присутствующих в таком легкодоступном биологическом материале как периферическая кровь, является очень перспективным. Иммунохимический анализ онкомаркеров в настоящее время широко используется, но не обладает достаточной специфичностью и чувствительностью, поскольку достаточное для измерения количество белкового антигена может быть секретировано в кровь только сформировавшейся опухолью определенного размера. Анализ ДНК маркеров в составе внеклеточных ДНК крови представляется перспективным, поскольку обладает высокой чувствительностью и позволяет выявлять опухолевую трансформацию на ранних стадиях развития опухолей (предрак, рак in situ).Today, the urgent problem of medicine is the detection of cancer in the early stages of development (precancer and early cancer). Modern methods of instrumental analysis, such as radiology, endoscopy, ultrasound, mammography, not only are not sufficiently effective in the early stages of the disease, but also give a large number of false-negative results. The use of tumor tissues as biological material is possible only with a formed tumor and is not applicable for early diagnosis and monitoring of the effectiveness of antitumor therapy. Based on the foregoing, the use for the diagnosis of markers present in such readily available biological material as peripheral blood is very promising. Immunochemical analysis of tumor markers is currently widely used, but does not have sufficient specificity and sensitivity, since a sufficient amount of protein antigen for measurement can be secreted into the blood only by a formed tumor of a certain size. The analysis of DNA markers in the composition of extracellular blood DNA seems to be promising, since it is highly sensitive and can detect tumor transformation in the early stages of tumor development (precancer, cancer in situ).

В настоящее время используются различные методы исследования генетического материала крови, такие как определение концентраций нуклеиновых кислот [1], анализ изменений генов (точечные мутации и статус метилирования промоторных областей) и анализ дозы генов (потеря гетерозиготности, микросателлитная нестабильность) [2, 3].Currently, various methods are used to study the genetic material of blood, such as determining the concentration of nucleic acids [1], analyzing gene changes (point mutations and methylation status of promoter regions) and analyzing gene doses (loss of heterozygosity, microsatellite instability) [2, 3].

Известен способ выделения ДНК из крови для последующей ранней диагностики рака легкого при помощи определения концентрации ДНК в плазме крови онкологических больных [4], включающий сбор крови самотеком с последующим разделением собранной крови на плазму и фракцию клеток крови и определением концентрации ДНК в плазме крови онкологических больных. ДНК из плазмы крови больных раком легкого выделяли при помощи набора для выделения QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen, Канада), концентрацию выделенной ДНК определяли при помощи DNA DipStick TM Kit (Invitrogen, Carlsbad, CA). Концентрация ДНК в плазме у здоровых доноров (n=43) составила 18 нг/мл, у пациентов с первичным плоскоклеточным раком легкого I стадии (n=46) - 320-344 нг/мл, у пациентов II и III стадии (n=15 и n=23) - 304 и 290 нг/мл соответственно. Было показано, что при успешном хирургическом вмешательстве уровень раковой ДНК в плазме снижается в несколько раз по сравнению с уровнем до операции (n=35).A known method of DNA extraction from blood for subsequent early diagnosis of lung cancer by determining the concentration of DNA in the blood plasma of cancer patients [4], including collecting blood by gravity, followed by separation of the collected blood into plasma and blood cell fraction and determining the concentration of DNA in the blood plasma of cancer patients . DNA from the blood plasma of patients with lung cancer was isolated using the QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen, Canada), and the concentration of DNA was determined using the DNA DipStick TM Kit (Invitrogen, Carlsbad, CA). The plasma DNA concentration in healthy donors (n = 43) was 18 ng / ml, in patients with primary squamous cell lung cancer of stage I (n = 46) - 320-344 ng / ml, in patients of stage II and III (n = 15 and n = 23) - 304 and 290 ng / ml, respectively. It was shown that with successful surgery, the level of cancerous DNA in the plasma decreases several times compared with the level before surgery (n = 35).

Недостатками данного способа являются высокая вероятность получения ложноотрицательных результатов, поскольку данный способ не позволяет выявлять опухоли, локализованные в различных органах. Еще один недостаток - высокая вероятность получения ложноположительных результатов, поскольку увеличение концентрации ДНК в плазме крови наблюдается не только при онкологических, но и при неонкологических заболеваниях (травма [5], аутоиммунные заболевания [6] и т.д.).The disadvantages of this method are the high probability of obtaining false negative results, since this method does not allow to detect tumors localized in various organs. Another disadvantage is the high probability of obtaining false-positive results, since an increase in the concentration of DNA in the blood plasma is observed not only for oncological, but also for non-oncological diseases (trauma [5], autoimmune diseases [6], etc.).

Известен способ выделения РНК для последующей диагностики рака предстательной железы путем выявления мутантных генов раковых клеток методами ПЦР-анализа [7]. Известно, что на поздних стадиях рака метастатические клетки циркулируют в крови, поэтому для анализа используют клеточную фракцию крови, из которой выделяют РНК одним из известных способов, а затем проводят мультиплексную ОТ-ПЦР. При раке предстательной железы у 84% пациентов (43/51) со злокачественной опухолью были выявлены значительные количества (3800 копий/0.5 мл крови) PSA и hK2 мРНК, тогда как лишь у одного из 19 пациентов (5%) с доброкачественной опухолью было обнаружено присутствие фрагментов PSA и hK2 мРНК в количестве 1500 и 3100 копий/0,5 мл крови. Главным недостатком этого метода является то, что требуется обязательное наличие метастатических, циркулирующих в крови больного раковых клеток (для негематологических опухолей), что ограничивает использование амплификационного анализа для больных в предраковом состоянии и с раком на начальной стадии.A known method of RNA isolation for subsequent diagnosis of prostate cancer by identifying mutant cancer cell genes by PCR analysis [7]. It is known that in the advanced stages of cancer, metastatic cells circulate in the blood, therefore, for analysis, the cellular fraction of blood is used, from which RNA is isolated by one of the known methods, and then multiplex RT-PCR is performed. Significant amounts (3800 copies / 0.5 ml of blood) of PSA and hK2 mRNA were detected in 84% of patients with malignant tumor in prostate cancer, while only one out of 19 patients (5%) with benign tumor were detected the presence of fragments of PSA and hK2 mRNA in the amount of 1500 and 3100 copies / 0.5 ml of blood. The main disadvantage of this method is that it requires the presence of metastatic cancer cells circulating in the patient’s blood (for non-hematologic tumors), which limits the use of amplification analysis for patients in a precancerous state and with cancer at the initial stage.

Известен способ выделения ДНК для последующей диагностики онкозаболеваний путем выявления мутантных онкогенов ras в плазме периферической крови с помощью аллельспецифичной ПЦР с последующим секвенированием полученных фрагментов ДНК [8]. Недостатками этого способа являются большая трудоемкость и длительность выделения ДНК, а также низкая достоверность результатов диагностики раковых и особенно предраковых состояний из-за небольшого удельного содержания специфических последовательностей НК, что затрудняет клиническое использование данного способа.A known method of DNA extraction for subsequent diagnosis of cancer by detecting mutant ras oncogenes in plasma of peripheral blood using allele-specific PCR followed by sequencing of the obtained DNA fragments [8]. The disadvantages of this method are the high complexity and duration of DNA isolation, as well as the low reliability of the results of the diagnosis of cancer and especially precancerous conditions due to the small specific content of specific sequences of NK, which complicates the clinical use of this method.

Известен способ выделения внеклеточных ДНК для последующей диагностики преэклампсии путем оценки количества внеклеточных НК, циркулирующих в плазме беременных женщин, методами амплификации [9]. Недостатком данного способа является низкая достоверность результатов диагностики ранней патологии беременности.A known method of isolation of extracellular DNA for the subsequent diagnosis of preeclampsia by estimating the amount of extracellular NK circulating in the plasma of pregnant women, amplification methods [9]. The disadvantage of this method is the low reliability of the results of the diagnosis of early pregnancy pathology.

Наиболее ближайшим к заявленному способу - прототипом является способ выделения внДНК из крови для последующей диагностики онкологических заболеваний путем выявления онкоспецифических маркеров в плазме и элюатах с поверхностей клеток крови [10]. Данный способ включает следующие стадии: разделение крови на форменные элементы и плазму, разделение клеток крови на эритроциты и лейкоциты, обработку данных клеток PBS буфером, содержащим ЭДТА (для элюции нуклеиновых кислот, связанных с клетками за счет ионных взаимодействий), затем обработку клеток трипсином (для элюции нуклеиновых кислот, связанных с клетками за счет белковых взаимодействий) и выделение внеклеточной циркулирующей ДНК из всех вышеперечисленных фракций (5 штук) сорбцией на мелкодисперсном стекле (ММС). После выделения ДНК подвергают бисульфитной модификации с последующей постановкой полимеразной цепной реакции для выявления изменений статуса метилирования генов RAR/32, RASSF1A и HIC-1.The closest to the claimed method, the prototype is a method for isolating vDNA from blood for the subsequent diagnosis of cancer by identifying cancer-specific markers in plasma and eluates from the surfaces of blood cells [10]. This method includes the following stages: separation of blood into formed elements and plasma, separation of blood cells into red blood cells and white blood cells, processing of these PBS cells with a buffer containing EDTA (for elution of nucleic acids bound to cells due to ionic interactions), then processing of cells with trypsin ( for elution of nucleic acids associated with cells due to protein interactions) and the isolation of extracellular circulating DNA from all of the above fractions (5 pieces) by sorption on fine glass (MMS). After isolation, the DNA is subjected to bisulfite modification followed by polymerase chain reaction to detect changes in methylation status of the RAR / 32, RASSF1A and HIC-1 genes.

Недостатком прототипа является высокая трудоемкость и многостадийность способа и, в связи с этим, недостаточная чувствительность последующего выявления онкоспецифических маркеров.The disadvantage of the prototype is the high complexity and multi-stage method and, in this regard, the insufficient sensitivity of the subsequent detection of cancer-specific markers.

Технической задачей изобретения является упрощение способа и повышение чувствительности анализа.An object of the invention is to simplify the method and increase the sensitivity of the analysis.

Поставленная задача достигается предлагаемым способом, заключающимся в следующем.The problem is achieved by the proposed method, which consists in the following.

Осуществляют сбор крови самотеком при помощи иглы для переливания крови в антисвертывающий раствор, содержащий PBS буфер (10 мМ фосфатный буфер, рН 7,5, 0,15 М NaCl) и 8-15 мМ ЭДТА. Далее в кровь добавляют Nonidet P-40 (NP-40) или тритон Х-100 до конечной концентрации 0.5-1.5%, инкубируют смесь во льду в течение 1-15 мин, лизированную кровь разделяют на супернатант, содержащий фракцию плазмы и мембран-цитозольную фракцию клеток крови, содержащую адсорбированные на поверхности клеточных мембран внеклеточные нуклеиновые кислоты и ядерную фракцию клеток, при помощи центрифугирования в течение 15 мин при 2000 g. Ядерную фракцию клеток отбрасывают. Далее проводят обработку супернатанта РНК-гидролизиующим ферментом, преимущественно РНКазой А с концентрацией 5-100 U при 37°С в течение 20-120 минут для гидролиза как клеточной, так и внеклеточной РНК. Из обработанного ферментом супернатанта проводят выделение суммарного пула внДНК (свободных и связанных с поверхностью клеток крови) с использованием стекловолокнистых сорбентов (преимущественно производства Biosilica) и выявление известных специфических последовательностей нуклеиновых кислот методами амплификационного анализа с последующим анализом ПЦР продуктов и составлением заключения о наличии или отсутствии детектируемых нуклеотидных последовательностей.Blood is collected by gravity using a needle for transfusion of blood into an anticoagulant solution containing PBS buffer (10 mM phosphate buffer, pH 7.5, 0.15 M NaCl) and 8-15 mM EDTA. Next, Nonidet P-40 (NP-40) or Triton X-100 is added to the blood to a final concentration of 0.5-1.5%, the mixture is incubated in ice for 1-15 minutes, lysed blood is separated into a supernatant containing a plasma fraction and a cytosolic membrane a fraction of blood cells containing extracellular nucleic acids adsorbed on the surface of cell membranes and a nuclear fraction of cells by centrifugation for 15 min at 2000 g. The nuclear fraction of the cells is discarded. Next, the supernatant is treated with an RNA-hydrolyzing enzyme, mainly RNase A with a concentration of 5-100 U at 37 ° C for 20-120 minutes to hydrolyze both cellular and extracellular RNA. From the supernatant treated with the enzyme, a total pool of vnDNA (free and surface-bound blood cells) is extracted using glass fiber sorbents (mainly produced by Biosilica) and known specific nucleic acid sequences are detected by amplification analysis followed by PCR analysis and the conclusion on the presence or absence of detectable nucleotide sequences.

Использование для анализа внДНК не только свободных, но и связанных с поверхностью клеток крови особенно эффективно для диагностики ранних стадий патогенеза, в частности рака, когда основная масса внДНК крови связана с клеточной поверхностью.The use of not only free, but also surface-bound blood cells for analysis of vDNA is especially effective for diagnosing the early stages of pathogenesis, in particular cancer, when the bulk of blood vDNA is associated with the cell surface.

Определяющими отличительными признаками предлагаемого способа, по сравнению с прототипом, являются:The defining hallmarks of the proposed method, compared with the prototype, are:

1. Клетки исследуемой крови лизируют добавлением Nonidet P-40 (NP-40) или тритона Х-100 до конечной концентрации этих реагентов 0.5-1.5%, что обеспечивает одновременное выделение из крови свободных и связанных с поверхностью клеток крови внДНК, что позволяет значительно повысить достоверность выявления специфических последовательностей ДНК на ранних стадиях заболеваний, связанных с нарушением функционирования генетического аппарата клетки.1. The cells of the test blood are lysed by the addition of Nonidet P-40 (NP-40) or Triton X-100 to a final concentration of these reagents 0.5-1.5%, which ensures the simultaneous release of free and surface-bound vDNA from the blood, which can significantly increase the reliability of identifying specific DNA sequences in the early stages of diseases associated with impaired functioning of the cell’s genetic apparatus.

2. Лизированную кровь разделяют на супернатант и ядерную фракцию клеток при помощи центрифугирования, что позволяет уменьшить количество балластных нуклеиновых кислот из нормальных клеток крови и увеличить удельное содержание выявляемых специфических последовательностей для дальнейшего амплификационного анализа.2. Lysed blood is separated into the supernatant and the nuclear fraction of the cells by centrifugation, which allows to reduce the number of ballast nucleic acids from normal blood cells and increase the specific content of detected specific sequences for further amplification analysis.

3. Супернатант обрабатывают РНК-гидролизиующим ферментом и из полученной фракции выделяют внДНК при помощи стекловолокнистых сорбентов, что позволяет упростить способ за счет сокращения времени на подготовку образца и, соответственно, времени всего анализа (от забора крови до выдачи готового результата), тогда как в прототипе используют отдельно свободные и связанные с клеточной поверхностью внДНК.3. The supernatant is treated with an RNA-hydrolyzing enzyme and vNDNA is isolated from the obtained fraction using glass fiber sorbents, which allows to simplify the method by reducing the time for sample preparation and, accordingly, the time of the entire analysis (from blood sampling to delivery of the finished result), whereas the prototype use separately free and associated with the cell surface of vDNA.

Одновременное использование такого диагностического объекта как свободные и связанные с поверхностью клеток крови внДНК позволяет увеличить чувствительность детекции специфических последовательностей за счет их повышенного удельного содержания на ранних стадиях патогенеза.The simultaneous use of such a diagnostic object as free and associated with the surface of blood cells vDNA allows you to increase the sensitivity of detection of specific sequences due to their increased specific content in the early stages of pathogenesis.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами конкретного выполнения способа.The invention is illustrated by the following examples of specific performance of the method.

Пример 1.Example 1

Была взята кровь у 20 впервые поступивших женщин в Новосибирский Областной Онкологический диспансер с первичным диагнозом рак молочной железы и 20 здоровых доноров, пришедших в отделение переливания крови Центральной Клинической Больницы СО РАН.Blood was drawn from 20 women who first arrived at the Novosibirsk Regional Oncology Center with a primary diagnosis of breast cancer and 20 healthy donors who came to the blood transfusion department of the Central Clinical Hospital of the SB RAS.

Кровь была собрана самотеком при помощи иглы для переливания крови в антисвертывающий раствор, содержащий PBS, 8 мМ ЭДТА. Собранную кровь лизировали добавлением NP-40 до его конечной концентрации 0.5%. После инкубации во льду в течение 15 минут ядра осаждали центрифугированием в течение 15 минут при 2000 g. Далее проводили обработку супернатанта 5 U РНКазы А при 37°С в течение 120 минут для гидролиза как клеточной, так и внеклеточной PHK. Из полученной фракции выделяли внДНК с использованием коммерческого набора для выделения ДНК из крови «Biosilica».Blood was collected by gravity using a blood transfusion needle in an anticoagulant solution containing PBS, 8 mM EDTA. The collected blood was lysed by the addition of NP-40 to a final concentration of 0.5%. After incubation in ice for 15 minutes, the cores were precipitated by centrifugation for 15 minutes at 2000 g. Next, the supernatant of 5 U RNase A was treated at 37 ° C for 120 minutes to hydrolyze both cellular and extracellular PHK. VDNA was isolated from the obtained fraction using a Biosilica commercial DNA isolation kit.

Полученную ДНК модифицировали обработкой бисульфитом натрия, при которой неметилированные цитозины в 5 положении превращаются в урацилы (20 минут при 75°С в присутствии 3М NaOH; 4 часа при 56°С в присутствии Na2S2O5; 30 минут при 37°С в присутствии 3М NaOH).The obtained DNA was modified by treatment with sodium bisulfite, in which unmethylated cytosines at 5 position are converted to uracils (20 minutes at 75 ° C in the presence of 3M NaOH; 4 hours at 56 ° C in the presence of Na 2 S 2 O 5 ; 30 minutes at 37 ° C in the presence of 3M NaOH).

Далее для исследования концентрации и статуса метилирования промоторной области гена RARβ2 проводили полимеразную цепную реакцию в реальном времени с использованием флуоресцирующих красителей SYBR Green I и флуоресцеина. После начальной денатурации 1.5 минуты при 95°С проводили 38 циклов в следующем режиме: денатурация ДНК при 95°С - 15 секунд; отжиг праймеров при 64.5°С - 20 секунд; элонгация при 72°С - 40 секунд; детекция флуоресценции после 87°С - 12 секунд.Further, to study the concentration and methylation status of the promoter region of the RARβ2 gene, a real-time polymerase chain reaction was performed using fluorescent dyes SYBR Green I and fluorescein. After initial denaturation of 1.5 minutes at 95 ° C, 38 cycles were performed in the following mode: DNA denaturation at 95 ° C - 15 seconds; primer annealing at 64.5 ° С - 20 seconds; elongation at 72 ° C - 40 seconds; fluorescence detection after 87 ° C - 12 seconds.

Были использованы следующие праймеры:The following primers were used:

(прямой) 5'-GGT TAG TAG TTC GGG TAG GGT TTA TC-3'(direct) 5'-GGT TAG TAG TTC GGG TAG GGT TTA TC-3 '

(обратный) 5'-CCG AAT CCT ACC CCG ACG-3'(reverse) 5'-CCG AAT CCT ACC CCG ACG-3 '

Полученные данные по 10 пациентам представлены в таблице 1 (Количество копий гена RARbeta (метилированная форма) в супернатанте крови из расчета на 1 мл крови).The data obtained for 10 patients are presented in table 1 (The number of copies of the RARbeta gene (methylated form) in the blood supernatant per 1 ml of blood).

Данный пример иллюстрирует, что выделенные разработанным способом внДНК могут быть использованы для ранней диагностики онкологических заболеваний с помощью анализа статуса метилирования внДНК, выделенных из супернатанта крови.This example illustrates that the vDNA isolated by the developed method can be used for early diagnosis of cancer by analyzing the methylation status of vDNA isolated from blood supernatant.

Пример 2.Example 2

При проведении ежегодного обследования рабочих (производство плутония и, как следствие, риск онкозаболеваний дыхательных путей) в 2006 и 2007 годах были взяты образцы крови. Целью обследования было выявление среди рабочих с неопределенными хроническими заболеваниями легких (группа риска) профиля гиперметилирования генов (АРС и RASSF1A), вовлеченных в регуляцию онкообразований.During the annual examination of workers (plutonium production and, as a consequence, the risk of cancer of the respiratory tract) in 2006 and 2007, blood samples were taken. The purpose of the survey was to identify among workers with undetermined chronic lung diseases (risk group) the profile of gene hypermethylation (APC and RASSF1A) involved in the regulation of cancer.

Кровь была собрана самотеком при помощи иглы для переливания крови в антисвертывающий раствор, содержащий PBS, 15 мМ ЭДТА. Взятую кровь лизировали добавлением NP-40 до его конечной концентрации 1.5% в течение 1 минуты во льду с последующим разделением при помощи центрифугирования в течение 15 минут при 2000 g на супернатант и ядерную фракцию. Далее супернатант обрабатывали 100 U РНКазы А в течение 20 минут при 37°С и из полученной фракции выделяли внДНК с использованием стекловолокнистых сорбентов производства «Biosilica».Blood was collected by gravity using a blood transfusion needle in an anticoagulant solution containing PBS, 15 mM EDTA. The collected blood was lysed by adding NP-40 to its final concentration of 1.5% for 1 minute in ice, followed by separation by centrifugation for 15 minutes at 2000 g into the supernatant and nuclear fraction. Next, the supernatant was treated with 100 U RNase A for 20 minutes at 37 ° C, and the vDNA was isolated from the obtained fraction using glass fiber sorbents manufactured by Biosilica.

После проведения модификации ДНК, как описано в примере 1, проводили ПЦР в реальном времени с использованием флуоресцирующих красителей SYBR Green I и флуоресцеин: начальная денатурация 1.5 минуты при 95°С, затем 38 циклов в следующем режиме:After DNA modification, as described in example 1, real-time PCR was performed using fluorescent dyes SYBR Green I and fluorescein: initial denaturation 1.5 minutes at 95 ° C, then 38 cycles in the following mode:

- для гена АРС - денатурация ДНК при 95°С - 25 секунд; отжиг праймеров при 64°С - 30 секунд; элонгация при 72°С - 30 секунд; детекция флуоресценции после 85°С - 12 секунд; были использованы праймеры [11]:- for the APC gene - DNA denaturation at 95 ° C - 25 seconds; primer annealing at 64 ° C for 30 seconds; elongation at 72 ° C for 30 seconds; fluorescence detection after 85 ° C - 12 seconds; primers were used [11]:

метилированная пара - 5'-TATTGCGGAGTGCGGGTC-3' (Пр1),methylated steam - 5'-TATTGCGGAGTGCGGGTC-3 '(Pr1),

5'-TCGACGAACTCCCGACGA-3' (Пр2);5'-TCGACGAACTCCCGACGA-3 '(Pr2);

неметилированная пара - 5'-GTGTTATTGTGGAGTGTGGGTT-3' (Пр1),unmethylated pair - 5'-GTGTTATTGTGGAGTGTGGGTT-3 '(Pr1),

5'-ССААТСААСАААСТСССААСАА-3' (Пр2);5'-CCAATSAAAAASTSSSSAAA-3 '(Pr2);

- для гена RASSF1A - 20 секунд при 95.5°С, 25 секунд при 64°С (для метелированной пары праймеров), 25 секунд при 59°С (для неметилированной пары праймеров), 30 секунд при 72°С; детекция флуоресценции после 86°С - 15 секунд; были использованы праймеры [12]:- for the RASSF1A gene - 20 seconds at 95.5 ° C, 25 seconds at 64 ° C (for a labeled pair of primers), 25 seconds at 59 ° C (for an unmethylated pair of primers), 30 seconds at 72 ° C; fluorescence detection after 86 ° C - 15 seconds; primers were used [12]:

метилированная пара - 5'-GGGTTTTGCGAGAGCGCG-3' (Пр1),methylated pair - 5'-GGGTTTTGCGAGAGCGCG-3 '(Pr1),

5'-GCTAACAAACGCGAACCG-3' (Пр2);5'-GCTAACAAACGCGAACCG-3 '(Pr2);

неметилированная пара - 5'-GGTTTTGTGAGAGTGTGTTTAG-3' (Пр1),unmethylated pair - 5'-GGTTTTGTGAGAGTGTGTTTAG-3 '(Pr1),

5'-CACTAACAAACACAAACCAAAC-3' (Пр2);5'-CACTAACAAACACAAACCAAAC-3 '(Pr2);

Полученные данные представлены в таблице 2, из которой видно, что метилированные маркеры АРС и RASSF1A, ассоциированные с легочным канцерогенезом, выявляются с частотой до 63% во внДНК, выделенной из лизата крови, на ранней стадии заболевания (обследование 2006 г.), что позволило поставить предварительный диагноз. Через год при повторном обследовании процент гиперметилированых маркеров в группе риска практически не изменялся. В течение 4 лет с момента первого взятия крови у 62% пациентов из группы риска был клинически подтвержден рак легкого. У всех больных, показавших положительный профиль гиперметилирования, был диагностирован рак легкого.The data obtained are presented in table 2, from which it can be seen that the methylated markers APC and RASSF1A associated with pulmonary carcinogenesis are detected with a frequency of up to 63% in the vDNA isolated from blood lysate at an early stage of the disease (2006 survey), which allowed make a preliminary diagnosis. After a year at repeated examination, the percentage of hypermethylated markers in the risk group remained practically unchanged. Within 4 years of the first blood collection, lung cancer was clinically confirmed in 62% of patients at risk. All patients who showed a positive hypermethylation profile were diagnosed with lung cancer.

Данный пример иллюстрирует пригодность использования внДНК, выделенных из лизата крови заявляемым способом, для ранней диагностики рака легкого, что способствует своевременному выбору правильной стратегии лечения.This example illustrates the suitability of using vDNA isolated from a blood lysate of the claimed method for the early diagnosis of lung cancer, which contributes to the timely selection of the right treatment strategy.

Пример 3.Example 3

У группы женщин (N=25), успешно прооперированных два года назад по поводу раковой опухоли груди и прошедших курс химиотерапии, были взяты образцы крови с профилактической целью, так как пациентки с раком груди входят в группу онкологических больных с высоким риском повторных новообразований.A group of women (N = 25), successfully operated on two years ago for a breast cancer and undergoing chemotherapy, received blood samples for prophylactic purposes, as patients with breast cancer are included in the group of cancer patients with a high risk of recurrent neoplasms.

Взятую кровь лизировали добавлением Тритона Х-100 до его конечной концентрации 0.5% в течение 15 минут во льду с последующим разделением при помощи центрифугирования в течение 15 минут при 2000 g на супернатант и ядерную фракцию. Обработку супернатанта, выделение и исследование внДНК, циркулирующих в крови, проводили аналогично примеру 1 (выделение из лизата крови).The collected blood was lysed by the addition of Triton X-100 to its final concentration of 0.5% for 15 minutes in ice, followed by centrifugation for 15 minutes at 2000 g into a supernatant and a nuclear fraction. Processing of the supernatant, isolation and study of vDNA circulating in the blood was carried out analogously to example 1 (isolation from blood lysate).

Для оценки экспрессии онкогенов, имеющих важное прогностическое значение при раке груди, ПЦР-анализ в реальном времени провели с использованием праймеров, специфичных для генов с-myc и с-erbB2.To evaluate the expression of oncogenes, which are of great prognostic value in breast cancer, real-time PCR analysis was performed using primers specific for the c-myc and c-erbB2 genes.

Условия реакции после полутороминутной денатурации ДНК при 95°С были следующее:The reaction conditions after one and a half minute DNA denaturation at 95 ° C were as follows:

- для гена c-myc - 30 циклов: 40 секунд при 94°С, 40 секунд при 65°С, 50 секунд при 72°С; детекция флуоресценции после 88°С - 15 секунд; были использованы праймеры [13]:- for the c-myc gene - 30 cycles: 40 seconds at 94 ° C, 40 seconds at 65 ° C, 50 seconds at 72 ° C; fluorescence detection after 88 ° C - 15 seconds; primers were used [13]:

5'-CTCGAATTCCTTCCAGATATCCTCGCTG-3' (Пр1);5'-CTCGAATTCCTTCCAGATATCCTCGCTG-3 '(Pr1);

5'-CACTGCGCGCTGCGCCAGGTTT-3' (Пр2);5'-CACTGCGCGCTGCGCCAGGTTT-3 '(Pr2);

- для гена с-erbB2 - 35 циклов: 35 секунд при 94°С, 30 секунд при 56°С, 40 секунд при 72°С; детекция флуоресценции после 85°С - 12 секунд; были использованы праймеры [14]:- for the c-erbB2 gene - 35 cycles: 35 seconds at 94 ° C, 30 seconds at 56 ° C, 40 seconds at 72 ° C; fluorescence detection after 85 ° C - 12 seconds; primers were used [14]:

5'-CAGGTAGTTTGGCGTAAAAATAAA-3' (Пр1);5'-CAGGTAGTTTTGGCGTAAAAAAAA-3 '(Pr1);

5'-CAAAATCCAGGGTTTTTTAAGAGGT-3' (Пр2).5'-CAAAATCCAGGGTTTTTTAAGAGGT-3 '(Pr2).

Процент выявленной у пациенток (N=30) сверхэкспрессии исследованных генов представлен в таблице 3.The percentage revealed in patients (N = 30) overexpression of the studied genes is presented in table 3.

Из табл.3 видно, что анализ внДНК, выделенной из лизата крови, выявил сверхэкспрессию исследованных генов у 23% женщин (7/30). В течение последующих двух лет у 23% пациенток были клинически диагностированы повторные метастазы в региональные лимфоузлы.Table 3 shows that analysis of the vDNA isolated from blood lysate revealed overexpression of the studied genes in 23% of women (7/30). Over the next two years, 23% of patients were clinically diagnosed with repeated metastases to regional lymph nodes.

Данный пример иллюстрирует, что разработанный способ может быть использован для оценки эффективности хирургического вмешательства и постоперационной терапии.This example illustrates that the developed method can be used to evaluate the effectiveness of surgical intervention and postoperative therapy.

Пример 4.Example 4

У группы женщин (N=30) из отделения патологии беременности роддома №7 для обоснования возможности постановки на учет женщин с Х и Y сцепленными наследственными заболеваниями были взяты образцы крови с целью определения пола будущего ребенка.Blood samples were taken from a group of women (N = 30) from the pregnancy pathology department of maternity hospital No. 7 to substantiate the possibility of registering women with X and Y linked with hereditary diseases in order to determine the sex of the unborn child.

Выделение внДНК, циркулирующих в крови, проводили аналогично примеру 1 (выделение из супернатанта крови). Далее полученную ДНК использовали в качестве матрицы для ПЦР анализа в реальном времени.Isolation of vDNA circulating in the blood was carried out analogously to Example 1 (isolation from blood supernatant). Further, the obtained DNA was used as a matrix for real-time PCR analysis.

В качестве контроля для определения количества суммарной внДНК использовали ДНК с известной концентрацией, разведенную от 50 до 5000 копий из расчета, что 6.6 пг ДНК на клетку соответствует 1 геномному эквиваленту. Количественное определение (эквивалент генома на 1 мл крови) суммарной внДНК проводили методом ПЦР-анализа в реальном времени. Реакционную смесь денатурировали 10 минут при 95°С, после чего проводили 40 циклов полимеразной цепной реакции в следующем режиме: 1 минута при 60°С и 15 секунд при 95°С; при этом были использованы следующие праймеры и флуоресцентно-меченный зонд:As a control, to determine the amount of total vnDNA, DNA with a known concentration diluted from 50 to 5000 copies was used, based on the assumption that 6.6 pg of DNA per cell corresponds to 1 genomic equivalent. Quantitative determination (genome equivalent per 1 ml of blood) of total vnDNA was performed by real-time PCR analysis. The reaction mixture was denatured for 10 minutes at 95 ° C, after which 40 cycles of the polymerase chain reaction were carried out in the following mode: 1 minute at 60 ° C and 15 seconds at 95 ° C; the following primers and a fluorescently-labeled probe were used:

прямой 5'-GGGAACTAATGACAAAAGAATTGAC-3' (Пр.1),direct 5'-GGGAACTAATGACAAAAGAATTGAC-3 '(Ex. 1),

обратный 5'-AAGAAATAACTTCTGGGTGTGAATAAG-3' (Пр.2),reverse 5'-AAGAAATAACTTCTGGGTGTGAATAAG-3 '(Ex 2),

прямой 5'-GGGAAGAAATGACAAAAGAATTGAC-3' (Пр.3),straight 5'-GGGAAGAAATGACAAAAGAATTGAC-3 '(Ex 3),

обратный 5'-AAGAAATAACGTCTGGGTGTGAATACG-3' (Пр.4),reverse 5'-AAGAAATAACGTCTGGGTGTGAATACG-3 '(Ex 4),

5'-(6-carboxyfluorescein; FAM) ATTTCACCAAAGTTTACCTTATACTGTG (6-carboxytetramethylrhodamine; TAMPA)-3' (зонд).5 '- (6-carboxyfluorescein; FAM) ATTTCACCAAAGTTTACCTTATACTGTG (6-carboxytetramethylrhodamine; TAMPA) -3' (probe).

Полученные данные представлены в таблице 4.The data obtained are presented in table 4.

Из табл.4 видно, что ни в одном образце внДНК, выделенной из лизата крови беременных женщин, у которых после родов было подтверждено рождение девочки, данная последовательность не была обнаружена. Данный пример иллюстрирует пригодность внДНК, выделенных из лизата крови, для ранней диагностики пола плода, что является необходимым в случае, когда беременность отягощена заболеваниями, сцепленными с полом.From table 4 it can be seen that in no sample of cDNA isolated from the blood lysate of pregnant women in whom the birth of a girl was confirmed after childbirth, this sequence was not detected. This example illustrates the suitability of vDNA isolated from blood lysate for early diagnosis of fetal sex, which is necessary when pregnancy is weighed down by diseases linked to the floor.

Использование предлагаемого способа позволит по сравнению с прототипом:Using the proposed method will allow, in comparison with the prototype:

- упростить способ и уменьшить время выделения внДНК из крови до 40-180 минут;- to simplify the method and reduce the time of allocation of vDNA from the blood to 40-180 minutes;

- повысить достоверность последующей диагностики неонкологических и онкологических заболеваний за счет дополнительного использования более специфичного диагностического показателя (внДНК, связанных с поверхностью клеток крови);- increase the reliability of the subsequent diagnosis of non-cancer and oncological diseases due to the additional use of a more specific diagnostic indicator (vDNA associated with the surface of blood cells);

- исключить получение ложноположительных или ложноотрицательных результатов анализа за счет увеличения количества специфических нуклеиновых кислот в пробе;- exclude the receipt of false positive or false negative results of the analysis by increasing the number of specific nucleic acids in the sample;

- увеличить чувствительность детекции специфических (маркерных) последовательностей ДНК, связанных с поверхностью клеток крови, что особенно важно на ранних стадиях развития патологий, когда основная масса внеклеточных нуклеиновых кислот связана с поверхностью клеток.- increase the sensitivity of detection of specific (marker) DNA sequences associated with the surface of blood cells, which is especially important in the early stages of the development of pathologies, when the bulk of extracellular nucleic acids is associated with the surface of the cells.

Источники информацииInformation sources

1. Shapiro В., Chakrabarty M., Cohn E., Leon S. Determination of circulating DNA levels in patients with benign or malignant gastrointestinal disease // Cancer. 1983. V.51. P.2116-2120.1. Shapiro B., Chakrabarty M., Cohn E., Leon S. Determination of circulating DNA levels in patients with benign or malignant gastrointestinal disease // Cancer. 1983. V. 51. P.2116-2120.

2. Sorenson GD, Pribish DM, Valone FH, Memoli VA, Bzik DJ, Yao SL. Soluble normal and mutated DNA sequences from single-copy genes in human blood // Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention, 1994, V.3: 67-71.2. Sorenson GD, Pribish DM, Valone FH, Memoli VA, Bzik DJ, Yao SL. Soluble normal and mutated DNA sequences from single-copy genes in human blood // Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention, 1994, V.3: 67-71.

3. Брызгунова О.Е., Власов В.В., Лактионов П.П. Современные методы диагностики рака предстательной железы // Биомедицинская химия. 2007. Т.2. С.128-139.3. Bryzgunova O.E., Vlasov VV, Laktionov P.P. Modern methods for diagnosing prostate cancer // Biomedical chemistry. 2007.V.2. S.128-139.

4. Sozzi G, Conte D., Mariani L., Vullo S., Roz L., Lombargo C., Pierotti M., Tavecchio L. Analysis of circulating tumor DNA in plasma at diagnosis and during follow-up of lung cancer patients // Cancer Res. 2001. V.61. P.4675-4678.4. Sozzi G, Conte D., Mariani L., Vullo S., Roz L., Lombargo C., Pierotti M., Tavecchio L. Analysis of circulating tumor DNA in plasma at diagnosis and during follow-up of lung cancer patients // Cancer Res. 2001. V.61. P. 4675-4678.

5. Rainer Т., Lo D., Chan L., Lam N., Lit L., Cocks R. Derivation of a prediction rule for posttraumatic organ failure using plasma DNA and other variables. Annals of the New York Academy of Sciences. 2001. V.945. P.211-220.5. Rainer T., Lo D., Chan L., Lam N., Lit L., Cocks R. Derivation of a prediction rule for posttraumatic organ failure using plasma DNA and other variables. Annals of the New York Academy of Sciences. 2001. V.945. P.211-220.

6. Raptis L., Menard H. Quantitation and characterization of plasma DNA in normals and patients with systemic lupus erythematosus // J. Clin. Invest. 1980. V.66. №12. P.1391-1399.6. Raptis L., Menard H. Quantitation and characterization of plasma DNA in normals and patients with systemic lupus erythematosus // J. Clin. Invest. 1980. V.66. No. 12. P.1391-1399.

7. Ylikoski A, Pettersson К, Nurmi J, Irjala K, Karp M, Lilja H, Lovgren T, Nurmi M. Simultaneous quantification of prostate-specific antigen and human glandular kallikrein 2 mRNA in blood samples from patients with prostate cancer and benign disease // Clin. Chem. 2002, V.48(8): 1265-71.7. Ylikoski A, Pettersson K, Nurmi J, Irjala K, Karp M, Lilja H, Lovgren T, Nurmi M. Simultaneous quantification of prostate-specific antigen and human glandular kallikrein 2 mRNA in blood samples from patients with prostate cancer and benign disease // Clin. Chem. 2002, V. 48 (8): 1265-71.

8. Sorenson GD, Pribish DM, Valone FH, Memoli VA, Bzik DJ, Yao SL. Soluble normal and mutated DNA sequences from single-copy genes in human blood // Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention, 1994, V.3: 67-71.8. Sorenson GD, Pribish DM, Valone FH, Memoli VA, Bzik DJ, Yao SL. Soluble normal and mutated DNA sequences from single-copy genes in human blood // Cancer Epidemiology, Biomarkers & Prevention, 1994, V.3: 67-71.

9. Zhong XZ, Lavuori H, Livingston JC, Ylikorkala O, Sibai BM, Holzgreve W, Hahn S. Elevation of maternal and fetal extracellular circulating deoxyribonucleic acid concentrations in the plasma of pregnant women with preeclampsia // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001, V.184(3): 414-419.9. Zhong XZ, Lavuori H, Livingston JC, Ylikorkala O, Sibai BM, Holzgreve W, Hahn S. Elevation of maternal and fetal extracellular circulating deoxyribonucleic acid concentration in the plasma of pregnant women with preeclampsia // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001, V.184 (3): 414-419.

10. Skvortsova Т.Е., Rykova E.Y., Tamkovich S.N., Bryzgunova O.E., Starikov A.V., Kuznetsova N.P., Vlassov V.V., Laktionov P.P. Cell-free and cell-bound circulating DNA in breast tumours: DNA quantification and analysis of tumor-related gene methylation // British Journal of Cancer. 2006. V.94. P.1492-1495.10. Skvortsova T.E., Rykova E.Y., Tamkovich S.N., Bryzgunova O.E., Starikov A.V., Kuznetsova N.P., Vlassov V.V., Laktionov P.P. Cell-free and cell-bound circulating DNA in breast tumors: DNA quantification and analysis of tumor-related gene methylation // British Journal of Cancer. 2006. V.94. P.1492-1495.

11. Virmani AK, Rathi A, Sathyanarayana UG, Padar A, Huang CX, Cunnigham HT, Farinas AJ, Milchgrub S, Euhus DM, Gilcrease M, Herman J, Minna JD, Gazdar AF. Aberrant methylation of the adenomatous polyposis coli (APC) gene promoter 1A in breast and lung carcinomas // Clin. Canc. Res. 2001, V.7(7): 1998-2004.11. Virmani AK, Rathi A, Sathyanarayana UG, Padar A, Huang CX, Cunnigham HT, Farinas AJ, Milchgrub S, Euhus DM, Gilcrease M, Herman J, Minna JD, Gazdar AF. Aberrant methylation of the adenomatous polyposis coli (APC) gene promoter 1A in breast and lung carcinomas // Clin. Canc. Res. 2001, V.7 (7): 1998-2004.

12. Burbee D.G.; Forgacs E.; Zochbauer-Muller S.; Shivakumar L.; Fong K.; Gao В.; Randle D.; Kondo M.; Virniani A.; Bader S.; Sekido Y; Latif F.; Milchgrub S.; Toyooka S, Gazdar AF, Lerman MI, Zabarovsky E, White M, Minna JD. Epigenetic inactivation of RASSF 1A in lung and breast cancers and malignant phenotype suppression // J. Natl. Cane. Inst. 2001, V.93(9): 691-699.12. Burbee D.G .; Forgacs E .; Zochbauer-Muller S .; Shivakumar L .; Fong K .; Gao W .; Randle D .; Kondo M .; Virniani A .; Bader S .; Sekido Y; Latif F .; Milchgrub S .; Toyooka S, Gazdar AF, Lerman MI, Zabarovsky E, White M, Minna JD. Epigenetic inactivation of RASSF 1A in lung and breast cancers and malignant phenotype suppression // J. Natl. Cane. Inst. 2001, V.93 (9): 691-699.

13. Kowara R, Golebiowski F, Chrzan P, Skokowski J, Karmolinski A, awelczyk T. Abnormal FHIT gene transcript and c-myc and c-erbB2 amplification in breast cancer // Acta Biochimica Polonica, 2002, V.49(2): 341-350.13. Kowara R, Golebiowski F, Chrzan P, Skokowski J, Karmolinski A, awelczyk T. Abnormal FHIT gene transcript and c-myc and c-erbB2 amplification in breast cancer // Acta Biochimica Polonica, 2002, V.49 (2) : 341-350.

14. Lonn U, Lonn S, Nilsson B, Stenkvist B. Prognostic value of erb-B2 and myc amplification in breast cancer imprints. Cancer, 1995, V.75(11): 2681-2687.14. Lonn U, Lonn S, Nilsson B, Stenkvist B. Prognostic value of erb-B2 and myc amplification in breast cancer imprints. Cancer, 1995, V.75 (11): 2681-2687.

Таблица 1Table 1 НормаNorm Рак молочной железыMammary cancer № пациентаPatient No. 1one 22 33 4four 55 66 77 88 99 1010 Количество копий/мл кровиThe number of copies / ml of blood 108108 399399 193193 193193 n/an / a 947947 380380 396396 11481148 914914 * n/а - количество копий ДНК в образце ниже уровня детекции используемого метода* n / a - the number of DNA copies in the sample is below the detection level of the method used

Таблица 2table 2 Группы обследованияSurvey groups ГенGene ГодYear внДНК кровиblood vnDNA Группа риска, N=30Risk group, N = 30 АРСARS 20062006 63%63% 20072007 62%62% RASSF1ARASSF1A 20062006 64%64% 20072007 66%66% В 2006-2007 - саркома легкого обнаружена у 62% пациентов из группы риска, притом, что в эту группу вошли все пациенты с повышенным уровнем гиперметилирования внДНКIn 2006-2007, lung sarcoma was detected in 62% of patients at risk, despite the fact that this group included all patients with an increased level of vDNA hypermethylation Здоровые доноры, N=25Healthy donors, N = 25 АРСARS 20062006 1%one% 20072007 2%2% RASSF1ARASSF1A 20062006 00 20072007 00

Таблица 3Table 3 ГеныGenes внДНК кровиblood vnDNA c-mycc-myc 23%23% c-erbB2c-erbB2 23%23%

Таблица 4Table 4 Количество образцовNumber of samples Кол-во плодной внДНК в лизате крови (количество копий/мл крови)The number of fetal vDNA in the blood lysate (number of copies / ml of blood) Количество беременных плодом мужского полаNumber of pregnant males 20twenty 1405,5* (50-2837)1405.5 * (50-2837) Количество беременных плодом женского полаNumber of pregnant women with a female fetus 1010 00 * - среднее значение* - average value

Claims (2)

1. Способ выделения внеклеточных дезоксирибонуклеиновых кислот (внДНК) из крови для выявления специфических последовательностей нуклеиновых кислот амплификационными методами, отличающийся тем, что в исследуемую кровь добавляют Nonidet Р-40 или тритон Х-100 до конечной концентрации 0,5-1,5%, инкубируют смесь во льду в течение 1-15 мин, лизированную кровь разделяют на супернатант и ядерную фракцию клеток при помощи центрифугирования, супернатант обрабатывают 5-100 U РНКазы А и из полученной фракции выделяют внДНК при помощи стекловолокнистого сорбента.1. The method of extraction of extracellular deoxyribonucleic acids (vDNA) from the blood to detect specific nucleic acid sequences by amplification methods, characterized in that Nonidet P-40 or Triton X-100 is added to the test blood to a final concentration of 0.5-1.5%, the mixture is incubated in ice for 1-15 minutes, the lysed blood is separated into the supernatant and the nuclear fraction of the cells by centrifugation, the supernatant is treated with 5-100 U of RNase A, and vDNA is isolated from the obtained fraction using a glass fiber sorbent . 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют стекловолокнистые сорбенты производства «Biosilica». 2. The method according to claim 1, characterized in that they use fiberglass sorbents produced by "Biosilica".
RU2008132233/15A 2008-08-04 2008-08-04 Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood RU2372405C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2008132233/15A RU2372405C1 (en) 2008-08-04 2008-08-04 Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2008132233/15A RU2372405C1 (en) 2008-08-04 2008-08-04 Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2372405C1 true RU2372405C1 (en) 2009-11-10

Family

ID=41354731

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2008132233/15A RU2372405C1 (en) 2008-08-04 2008-08-04 Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2372405C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2585232C1 (en) * 2015-05-06 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоСилика" Method of extracting micro-rna from biological fluids
RU2595816C1 (en) * 2015-11-09 2016-08-27 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кемеровская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of preparing suspension of human lymphocytes in ethanol-acetic retainer for dna extraction
RU2603098C1 (en) * 2015-12-04 2016-11-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) Method for extracting circulating dna from plasma or blood serum
RU2753768C1 (en) * 2020-12-11 2021-08-23 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение «Российский Научный Центр Радиологии И Хирургических Технологий Имени Академика А.М. Гранова» Министерства Здравоохранения Российской Федерации Dna extraction kit

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ДЖЕРБАШЬЯН А.Р. и др. Действие дсРНК и полинуклеотидов на апоптоз. Доклады HAH PA. 2000, №1. Молекулярная биология. *
Инструкция по применению набора «Минипред» для выделения ДНК для ПЦР из образцов крови. ЗАО «Силекс», 2005-2007, [найдено on-line:www.sileks.com]. *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2585232C1 (en) * 2015-05-06 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоСилика" Method of extracting micro-rna from biological fluids
RU2595816C1 (en) * 2015-11-09 2016-08-27 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кемеровская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of preparing suspension of human lymphocytes in ethanol-acetic retainer for dna extraction
RU2603098C1 (en) * 2015-12-04 2016-11-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) Method for extracting circulating dna from plasma or blood serum
RU2753768C1 (en) * 2020-12-11 2021-08-23 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение «Российский Научный Центр Радиологии И Хирургических Технологий Имени Академика А.М. Гранова» Министерства Здравоохранения Российской Федерации Dna extraction kit

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Muraoka et al. The degree of microRNA-34b/c methylation in serum-circulating DNA is associated with malignant pleural mesothelioma
CN109837343B (en) Early lung adenocarcinoma specific exosome miRNA and application thereof
Dong et al. Frequent SLIT2 promoter methylation in the serum of patients with ovarian cancer
CN111676287B (en) Gene marker combination and application thereof
US20140011199A1 (en) Non-invasive cancer diagnosis
WO2021004215A1 (en) Multi-gene combined detection reagent
TWI730429B (en) HOXA7 methylation detection reagent
CN110317871B (en) Gene marker combination and application thereof
WO2021243906A1 (en) Genetic marker combination and application thereof
RU2372405C1 (en) Method of extracting extracellular deoxyribonucleic acid from blood
WO2023088335A1 (en) Reagent and kit for detecting endometrial cancer, and method for using kit
WO2020063899A1 (en) Use of hoxa9 methylation detection reagent in preparing lung cancer diagnostic reagent
US20080286784A1 (en) Method for Detection of DNA Methyltransferase RNA in Plasma and Serum
CN111363811A (en) Lung cancer diagnostic agent and kit based on FOXD3 gene
TWI815044B (en) Lung cancer detection reagent and kit
US20020004206A1 (en) Methods of screening for disease
EP3368684A1 (en) Biomarker for breast cancer
TW202028464A (en) Application of HOXA7 methylation detection reagent to preparation of lung cancer diagnosis reagent
EP2844776B1 (en) Cancer blood test using bc200 rna isolated from peripheral blood for diagnosis and treatment of invasive breast cancer
RU2249820C1 (en) Early diagnosis method for detecting diseases related to cellular genetic apparatus disorders
CN110964811B (en) HOXA9 methylation detection reagent
Miura et al. A diagnostic evaluation of serum human telomerase reverse transcriptase mRNA as a novel tumor marker for gynecologic malignancies
CN111647657A (en) Lung cancer detection reagent and kit
CN111363812A (en) Lung cancer diagnostic agent and kit based on DMRTA2 gene
US20100159464A1 (en) Method for Detection of DNA Methyltransferase RNA in Plasma and Serum

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140805