RU2359269C2 - Способ получения диагностикума клещевого энцефалита - Google Patents

Способ получения диагностикума клещевого энцефалита Download PDF

Info

Publication number
RU2359269C2
RU2359269C2 RU2007130140/13A RU2007130140A RU2359269C2 RU 2359269 C2 RU2359269 C2 RU 2359269C2 RU 2007130140/13 A RU2007130140/13 A RU 2007130140/13A RU 2007130140 A RU2007130140 A RU 2007130140A RU 2359269 C2 RU2359269 C2 RU 2359269C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tick
borne encephalitis
virus
diagnosticum
strain
Prior art date
Application number
RU2007130140/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2007130140A (ru
Inventor
Валерий Серафимович Кокорев (RU)
Валерий Серафимович Кокорев
Юрий Александрович Кирсанов (RU)
Юрий Александрович Кирсанов
Ольга Александровна Кржижановская (RU)
Ольга Александровна Кржижановская
Original Assignee
Федеральное Государственное учреждение науки Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций (ФГУН ЕНИИВИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное Государственное учреждение науки Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций (ФГУН ЕНИИВИ) filed Critical Федеральное Государственное учреждение науки Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций (ФГУН ЕНИИВИ)
Priority to RU2007130140/13A priority Critical patent/RU2359269C2/ru
Publication of RU2007130140A publication Critical patent/RU2007130140A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2359269C2 publication Critical patent/RU2359269C2/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины и ветеринарии. Способ предусматривает ультразвуковую обработку вируссодержащей суспензии из различных, в том числе авидных, штаммов вируса клещевого энцефалита. При этом обрабатывают ультразвуком при частоте 22 кГц в течение 1 мин, повторяя эту процедуру трижды с интервалом 2 мин, на аппарате УЗДН-1 или УЗДН-А. Способ позволяет повысить диагностическую эффективность получаемого препарата, что выражается в возрастании титров детектируемых в сыворотках крови больных антител, диагностических приростов титров антител в реакции торможения гемагглютинации и достоверности частоты подтверждения клинического диагноза «клещевой энцефалит» до 33%. Изобретение может быть использовано при производстве диагностических препаратов и для повышения эффективности серологической диагностики клещевого энцефалита. 1 з.п. ф-лы, 4 табл.

Description

Изобретение относится к медицине и ветеринарии, а именно к вирусологии, и может быть использовано при производстве диагностических препаратов и для повышения эффективности серологической диагностики вирусных инфекций, в частности клещевого энцефалита (КЭ).
Известен способ получения диагностикума КЭ, отличающийся тем, что с целью повышения специфической активности диагностикума, используют авидный штамм вируса КЭ 4072, а для инактивации вируса к полученной вируссодержащей суспензии добавляют бетапропиолактон до 0,1%-ной концентрации и выдерживают в течение 24 ч при температуре 4°С, а после центрифугирования инактивация продолжается еще в течение 3-х суток (см. А.с. № 1378112 А1, А61К 39/12, G01N 33/53, 1987 /Кокорев B.C., Мансуров П.Г., Злобин В.И., Субботина Л.С., Гайдамович С.Я., Мельникова Е.Э./ Заявка № 4044449/28-13, от 11.02.1986).
Недостатком такого способа получения антигена является включение в технологический процесс высокоактивного химического реагента бетапропиолактона, отрицательно влияющего при инактивации инфекционной активности на антигенные детерминанты вируса. В связи с этим качество антигенных препаратов, даже при использовании авидных вариантов вируса, снижается.
Известен также способ, заключающийся в том, что в качестве источника антигена вируса КЭ используют авидные варианты вируса - штаммы 4072 или 3745, а инактивацию инфекционной активности осуществляют метилглиоксалем в концентрации 0,1-0,05% при 4-8°С в течение 24-72 часов (см. А.с. №1169219 А, А61К 39/12, C12R 1/91, 1985 /Гизатуллина Н.К., Равилов А.Э., Колотвинов С.В., Кокорев B.C./ Заявка № 3509839/28-13, от 05.11.1982).
Недостаток такого способа аналогичен изложенному выше. К тому же и в том, и в другом случае увеличивается время получения антигенного препарата и затраты на его производство при недостаточно высокой эффективности и чувствительности препаратов.
Известен и способ получения вакцины, при производстве которой инактивацию вируса в культуральной жидкости проводят облучением, при этом в качестве источника гамма-излучателя используют кобальт-60 в дозе 15-20 кГр в течение 2 ч при температуре 19-21°С (См. Патент РФ № 2181295, А61К 39/12, 39/245. Опубл. 20.04.2002. Бюл. № 11).
Основным недостатком такого способа являются особые условия обработки, требующие радиационной защиты и специально обученного высококвалифицированного персонала.
Известен также способ повышения антигенности и иммуногенности биоматериала путем воздействия на него излучением лазера длиной волны от 9 до 11 мкм и плотностью мощности 0,1-1,0 кВт/см2, проводимым на струю суспензии биоматериала диаметром 0,5-15 мм, при скорости истечении струи от 0,05 м/с до 10 м/с (см. Патент РФ № 2209085, А61К 41/00, 39/00. Опубл. 27.07.2003. Бюл. № 21).
При хороших результатах такой обработки некоторой сложностью процесса обработки лазером является потребность в лазерных установках, требующих специальных помещений и дополнительных мер защиты обслуживающего персонала, что повышает затраты на получение препаратов.
Задачей изобретения является исключение из технологического цикла получения диагностикума клещевого энцефалита токсичных химических реагентов и повышение при этом чувствительности и специфичности диагностикумов при снижении затрат времени и средств на получение препарата с расширением ассортимента диагностикумов, в частности клещевого энцефалита, повышенной чувствительности.
Задача решается тем, что при приготовлении препарата для обработки вируссодержащей суспензии применяют воздействие на нее ультразвуковым излучением (УЗ) при частоте 22 кГц в течение 1 мин, повторяя эту процедуру трижды с интервалом 2 мин, при этом УЗ обработку проводят на аппаратах типа УЗДН-1 или УЗДН-А с использованием универсального излучателя на 22 кГц, а пробы сыворотки крови больных клещевым энцефалитом подвергают антиингибиторной обработке каолином при рН 7,4, причем в качестве штаммов вируса клещевого энцефалита предпочтительно используют: эталонный штамм Софьин, авидные штаммы 4072 и 3445, неавидный штамм 80, причем обработка проводится при температуре среды 25-30°С.
Способ осуществляется следующим образом.
Подготовка антигенов:
Используют: 1. Авторский штамм вируса КЭ 4072 /Кокорев B.C. Мельникова Е.Э., Колотвинов С.В. и др./, депонированный в ГКВ под № 633. Штамм 4072 выделен в 1966 г. из крови больного, высокочувствителен к нейтрализующему действию специфических антител (по результатам перекрестной кинетической РТГА), авиден, чем отличается от эталонного штамма Софьин;
2. Авторский штамм вируса КЭ 3745 /Колотвинов С.В., Кокорев B.C., Мельникова Е.Э и др./, депонированный в ГКВ под №636. Штамм выделен из крови человека без клинических проявлений заболевания, ранее подвергавшегося нападению клещей, высокочувствителен к нейтрализующему действию специфических антител, авиден;
3. Авторский штамм вируса КЭ 80 /Кокорев B.C., Мельникова Е.Э., Колотвинов С.В. и др./, депонирований в ГКВ под №634. Штамм выделен и клещей Иксодес персулькатус, мало чувствителен к нейтрализующему действию специфических антител, неавиден;
4. Эталонный штамм Софьин вируса КЭ, полученный из ГКВ Института вирусологии им. Д.И.Ивановского РАМН.
Гемагглютинирующие антигены указанных вирусов получают методом боратно-солевой экстракции с обработкой протаминсульфатом. Для этого готовят 10 или 20% суспензию из мозга новорожденных белых мышей на боратном буферном растворе рН 9,0-9,3 на холоду, центрифугируют на холоду в течение 1 часа при 10000 об/мин. К надосадочной жидкости добавляют раствор протаминсульфата соответствующей концентрации в количестве 0,1 объема, т.е. на 10 мл добавить 1 мл раствора протаминсульфата. Раствор протаминсульфата готовят на физиологическом растворе в концентрации 50 мг/мл ил 25 мг/мл для 20% и 10% суспензии мозга соответственно. Смесь ставят на 30 минут в ледяную баню, периодически помешивая, а далее центрифугируют 15 минут при 2500 об/мин на холоду. Прозрачная надосадочная жидкость является антигеном.
Подготовка проб сыворотки крови.
Удаление сывороточных ингибиторов каолином при рН 9,0 и удаление нормальных сывороточных агглютининов проводят по общепринятой методике. Обработку проб сыворотки крови суспензией каолина при рН 7,4 проводят следующим образом. К 0,2 мл исследуемой пробы добавляют 0,8 мл боратного буферного раствора с рН 7,4 и 1 мл 25% суспензии каолина, приготовленной на боратном буферном растворе с рН 7,4. Полученную смесь встряхивают 25 мин, а затем центрифугируют при 1000 об/мин 30 мин. К надосадочной жидкости добавляют 2 капли (0,05 мл) отмытых гусиных эритроцитов (для удаления нормальных сывороточных агглютининов) и периодически встряхивают в течение 25 мин. Надосадочную жидкость, полученную после повторного центрифугирования, доводят до рН 9,0 раствором NaOH.
Новая предложенная операция - Обработка антигенного препарата - диагностикума ультразвуком.
Обработку антигенного препарата ультразвуком проводят на аппарате УЗДН-1 или УЗДН-А (выходной мощности 400 Вт) при частоте 22 кГц в течение 1 мин, повторяя эту процедуру трижды с интервалом 2 мин, при температуре среды 25-30°С. Обработанный материал центрифугируют при 12000 об/мин в течение 15 минут.
Технологические параметры предложенного способа ультразвуковой обработки: частота УЗ 22 кГц; время обработки УЗ - в течение 1 мин; повторность УЗ обработки - 3 цикла, температура среды и режимы центрифугирования после УЗ - определены и обоснованы практическим путем в лабораторных условиях по результатам многочисленных исследований с учетом анализа и обзора по доступным источникам, проведенных в лаборатории трансмиссивных вирусных инфекций и клещевого энцефалита ФГУН «Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций» и лаборатории кафедры микробиологии и вирусологии ФГОУ ВПО «Уральская государственная сельскохозяйственная академия» г.Екатеринбург.
Пример 1. По предлагаемому способу получают гемагглютинирующие антигены из эталонного штамма Софьин и авидного штамма 4072, которые используют при исследовании парных проб сывороток крови больных клещевым энцефалитом.
Обработка вируссодержащих суспензий УЗ изменяет не только и не столько их гемагглютинирующую активность (титры гемагглютининов, как правило, возрастают в 2 раза), сколько активность в реакции торможения гемагглютинации (РТГА): сокращается число так называемых серонегативных проб, прирост титров антител выше, чем при использовании необработанного ультразвуком препарата (Таблица 1 и Таблица 2), что является неочевидным эффектом предложенного способа с ультразвуковой обработкой препарата вместо введения химических консервантов - стабилизаторов.
Таким образом, из таблиц 1 и 2 видно что, при использовании УЗ-антигенов повышается диагностическая ценность РТГА, а именно: до 33% возрастает частота подтверждения клинического диагноза «клещевой энцефалит» по 2-4-кратному приросту титра антител по сравнению с реакцией, поставленной с необработанным УЗ диагностикумом.
Таблица 1
Исследование проб сывороток крови больных КЭ в РТГА с диагностикумом из эталонного штамма Софьин, обработанным ультразвуком
Парные пробы сывороток крови больных Титры антигемагглютининов в РТГА с УЗ-диагностикумом из штамма Софьин
Необработанный препарат Обработанный УЗ препарат
4501 1 1:20 1:320
2 1:20 1:1280
Х-ов 1 1:160 1:320
2 1:160 1:640
И-ев 1 1:80 1:160
2 1:80 1:320
4512 1 1:20 1:40
2 1:40 1:80
4271 1 1:160 1:320
2 1:320 1:1280
Таблица 2
Исследование проб сывороток крови больных КЭ в РТГА с диагностикумом из авидного штамма 4072, обработанным ультразвуком
Парные пробы сывороток крови больных Титры антигемагглютининов в РТГА с УЗ-диагностикумом из штамма 4072
Необработанный препарат Обработанный УЗ препарат
4501 1 1:320 1:320
2 1:640 1:1280
Х-ов 1 1:640 1:640
2 1:640 1:1280
Пример 2. Аналогичным способом приготовленные диагностикумы используют в РТГА при исследовании проб сывороток крови, подвергнутых предварительно антиингибиторной обработке каолином при рН 7,4. Диагностический прирост титров антител возрастает в 8-32 раза (Таблица 3).
Разработанные и использованные в диагностической практике препараты и методики позволяют подтверждать клинический диагноз «клещевой энцефалит» своевременно и практически в каждом конкретном случае без применения дорогостоящих и дефицитных серологических тестов.
Таблица 3
Зависимость результатов РТГА от способа антиингибиторной обработки сыворотки крови больного и УЗ-обработки гемагглютинирующего антигена вируса КЭ (штамм Софьин)
№ парной пробы сыворотки крови рН среды при антиингибиторной обработке сыворотки Титры антигемагглютининов в реакции с диагностикумом
Необработанным Обработанным ультразвуком
4968 1 1:40 1:80
2 9,0 1:40 1:80
1 1:20 1:40
2 7,4 1:320 1:1280
4569 1 0 1:20
2 9,0 1:40 1:40
1 1:10 1:20
2 74 1:40 1:160
Пример 3. По предлагаемому способу с использованием УЗ обработки в указанных параметрах обработан гемагглютинирующий антиген вируса КЭ из неавидного штамма 80. По данным перекрестной РТГА отмечено, что авидитет неавидного штамма возрастает до уровня авидного (Таблица 4). Этот феномен (неочевидный эффект) выявлен впервые за всю историю изучения авидитета вирусных и бактериальных антигенов в практике и по доступным источникам.
Предлагаемый способ с УЗ обработкой препарата в указанных параметрах делает возможным использование практически любого штамма вируса КЭ для диагностических целей без трудоемких поисков природных авидных вариантов возбудителя, что является новизной способа.
Таблица 4
Влияние обработки ультразвуком на активность антигенного препарата из авидного и неавидного варианта вируса клещевого энцефалита в реакции с антителами
Штамм вируса КЭ 3745 /авидный/ 80 /неавидный/
Антигенный препарат необработанный обработанный ультразвуком необработанный обработанный ультразвуком
Результат РТГА с иммунной кроличьей сывороткой к штамму Софьин 1:1280 1:2560 1:320 1:2560
При УЗ воздействии на вирусы в указанных параметрах отрываются или освобождаются крупные макромолекулярные комплексы, которые при дальнейшем озвучивании «расшатываются» с обнажением большего количества активных антигенных групп (демаскирование или деэкранизация антигенных детерминант). Не исключено, что УЗ обработка вируссодержащих субстратов может повысить и эффективность вакцинных препаратов, если иммуногенное и превентивное действие последних определяется активностью тех же антигенных детерминант, что и при приготовлении диагностикума клещевого энцефалита.
Предложенный способ получения диагностикума клещевого энцефалита может найти широкое практическое и научное применение в медицине и ветеринарии, расширяя ассортимент необходимых эффективных диагностикумов клещевого энцефалита при минимальных затратах труда и с использованием распространенного оборудования.

Claims (2)

1. Способ получения диагностикума клещевого энцефалита, включающий приготовление вируссодержащей суспензии на буферном растворе на холоду, антиингибиторную обработку каолином, центрифугирование и отделение надосадочной жидкости с последующим физическим воздействием на нее для активации, отличающийся тем, что вируссодержащую суспензию из штаммов вируса клещевого энцефалита обрабатывают ультразвуком при частоте 22 кГц в течение 1 мин, повторяя процедуру трижды с интервалом 2 мин, при этом ультразвуковую обработку вируссодержащей суспензии проводят на аппаратах УЗДН-1 или УЗДН-А с использованием универсального излучателя при температуре суспензии 25-30°С.
2. Способ получения диагностикума клещевого энцефалита по п.1, отличающийся тем, что в качестве штаммов вируса клещевого энцефалита используют: эталонный штамм Софьин, авидные штаммы 4072 и 3445, неавидный штамм 80.
RU2007130140/13A 2007-08-06 2007-08-06 Способ получения диагностикума клещевого энцефалита RU2359269C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007130140/13A RU2359269C2 (ru) 2007-08-06 2007-08-06 Способ получения диагностикума клещевого энцефалита

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007130140/13A RU2359269C2 (ru) 2007-08-06 2007-08-06 Способ получения диагностикума клещевого энцефалита

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2007130140A RU2007130140A (ru) 2009-02-20
RU2359269C2 true RU2359269C2 (ru) 2009-06-20

Family

ID=40531227

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007130140/13A RU2359269C2 (ru) 2007-08-06 2007-08-06 Способ получения диагностикума клещевого энцефалита

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2359269C2 (ru)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104422771B (zh) * 2013-09-02 2016-03-30 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 检测蜱传脑炎病毒的单克隆抗体及其试剂盒

Also Published As

Publication number Publication date
RU2007130140A (ru) 2009-02-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6048537A (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
Ennis et al. Evidence that cytotoxic T cells are part of the host's response to influenza pneumonia.
Fazakerley et al. Semliki Forest virus-induced, immune-mediated demyelination: adoptive transfer studies and viral persistence in nude mice
RU2446824C2 (ru) Вакцина против гриппа и способ ее получения
Leung et al. Specificity, Ly phenotype, and H-2 compatibility requirements of effector cells in delayed-type hypersensitivity responses to murine influenza virus infection.
JP3950500B2 (ja) 魚類用のイリドウイルス感染症ワクチンと診断剤並びにこれ等の製法
CN105349499B (zh) 一种禽流感全病毒颗粒标记疫苗的制备方法及其产品和用途
Beare et al. A comparative study of attenuated influenza viruses.
JP4944643B2 (ja) 魚類用のイリドウイルス感染症ワクチンと診断剤並びにこれ等の製法
RU2359269C2 (ru) Способ получения диагностикума клещевого энцефалита
Leung et al. Selective suppression of the cytotoxic T cell response to influenza virus in mice
Schmidt et al. The complement-fixing antigen of rubella virus.
Jackson et al. Viruses causing common respiratory infections in man. II. Enteroviruses and paramyxoviruses
Raie Jadidi et al. Optimizing the process of inactivating influenza virus subtype H9N2 by formalin in the production of killed avian influenza vaccine
CN104857511B (zh) 含人参皂甙的疫苗稀释剂
CN101506654B (zh) 一种鉴定分子模拟的方法及由此产生的应用
AU2005253864B2 (en) Q fever vaccine preparation and method of producing the vaccine
CN111057683A (zh) 一种鸡胚接种用病毒稀释液及其制备方法和应用
CN112107683A (zh) 一种冠状病毒的光化学灭活方法、以及疫苗
KR920010872B1 (ko) Dna 비루스에 대한 백신의 제조방법
RU2231793C1 (ru) Способ оценки иммуногенности коклюшных вакцин
Ananthanarayan The fabric of virus elementary bodies
CN108703952A (zh) 一种猪瘟口服弱毒冻干疫苗用冻干保护剂及应用
Nishioka et al. STUDIES ON VIRAL ONCOLYSIS 2. COMPLEMENT FIXING ANTIGEN, HEMAGGLUTININ AND EGG INFECTIVITY IN EHRLICH CARCINOMA CELLS INFECTED WITH ED VIRUS
RU2802251C1 (ru) Вакцинная композиция для профилактики энзоотического аборта у овец

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090807