RU2302258C1

RU2302258C1 - Вакцина против ротавирусной инфекции крупного рогатого скота сорбированная инактивированная

Info

Publication number: RU2302258C1
Application number: RU2005135086/13A
Authority: RU
Inventors: Владимир Александрович Мищенко (RU); Владимир Александрович Мищенко; Ольга Николаевна Окулова (RU); Ольга Николаевна Окулова; Тать на Борисовна Никешина (RU); Татьяна Борисовна Никешина; Тать на Валентиновна Жбанова (RU); Татьяна Валентиновна Жбанова; Олег Иванович Гетманский (RU); Олег Иванович Гетманский; Дмитрий Константинович Павлов (RU); Дмитрий Константинович Павлов; Елена Сергеевна Гришина (RU); Елена Сергеевна Гришина; Алексей Петрович Пономарев (RU); Алексей Петрович Пономарев
Original assignee: Федеральное государственное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГУ "ВНИИЗЖ")
Priority date: 2005-11-11
Filing date: 2005-11-11
Publication date: 2007-07-10

Abstract

Изобретение относится к ветеринарии, вирусологии и биотехнологии. Вакцина содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойных культурах клеток MDBK или СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, и целевые добавки: гидроокись алюминия и сапонин в эффективных соотношениях. Штамм депонирован в коллекции ФГУ ВГНКИ под регистрационным номером - культуральный штамм №101 ВНИИЗЖ-ДЕП. Вакцина высокоиммуногенна, безвредна и ареактогенна, способна защитить поголовье крупного рогатого скота от эпизоотического возбудителя ротавирусной инфекции, циркулирующего на территории России. 14 з.п. ф-лы, 10 табл.

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при разработке и изготовлении средств специфической профилактики ротавирусной инфекции крупного рогатого скота (КРС).

Ротавирусная инфекция КРС (ротавирусный энтерит, диарея неонатальных телят) - остропротекающая контагиозная болезнь новорожденных телят, характеризующаяся поражением желудочно-кишечного тракта.

Болезнь широко распространена во всех странах мира и наносит большой экономический ущерб промышленному животноводству за счет высокого уровня заболеваемости телят (50-78%), смертности до 25-53% в результате диареи, потери массы тела животных и снижения сопротивляемости другим инфекциям.

Чрезвычайно широкое распространение возбудителя заболевания, его приспособленность к паразитированию в организме некоторых видов животных, тенденция вызывать длительную персистенцию, антигенная полиморфность и относительная устойчивость к воздействию разнообразных факторов обусловливают энзоотическое течение болезни в хозяйствах с неблагополучными условиями содержания животных.

Важными условиями успешной борьбы с этим заболеванием являются современная и правильная его диагностика и проведение мер специфической профилактики, что, в свою очередь, предполагает получение в достаточном количестве активного вирусного антигена.

Для специфической профилактики ротавирусного энтерита применяют живые и инактивированные вакцины, которыми прививают глубокостельных коров. При этом практическое значение для профилактики ротавирусной диареи новорожденных телят имеет колостральный иммунитет, обусловленный поступлением с молозивом в организм новорожденных телят специфических антител, нейтрализующих возбудитель в просвете тонкого кишечника, а также иммунокомпетентных клеток и других протективных факторов.

Ротавирусы КРС характеризуются значительным антигенным полиморфизмом и нестабильностью антигенной структуры. Сложная структура генома, в том числе его фрагментарность, обусловливают постоянную возможность модификации его антигенной структуры. Штаммы ротавируса нейтрализуются гомологичными сыворотками в более высоких титрах, чем гетерологичными. При выборе производственного штамма с помощью реакции нейтрализации (РН) результаты, полученные при исследовании сыворотки с гетерологичными штаммами, более важны, чем результаты нейтрализации с гомологичными штаммами.

Одним из основных требований, предъявляемых к производственным штаммам, является соответствие их антигенных свойств эпизоотическим штаммам возбудителя. Производственный штамм должен обладать широким антигенным спектром и доминировать над эпизоотическими. Штамм должен быть хорошо адаптированным к системе культивирования и обладать высокой антигенностью. Вакцины, изготовленные из таких штаммов, должны защищать животных против нескольких отличающихся штаммов возбудителя заболевания.

Обычно вакцины готовят из актуальных производственных штаммов возбудителя ротавирусной инфекции, антигенные свойства которых соответствуют антигенным свойствам эпизоотических штаммов возбудителя (1).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма Nebraska (Nebraska calf diarrheal virus, NCDV, он же Линкольн) ротавируса КРС, полученного преимущественно в культуре клеток почки теленка или поросенка с биологической активностью не менее 10^5,0 TCID/мл (tissue culture infective dose/мл), и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента гидроокиси алюминия (ГОА) в эффективном соотношении (2).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма Nebraska ротавируса КРС, полученного преимущественно в культуре клеток почки теленка или поросенка с биологической активностью 10²-10^6,5 TCID/мл, и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента ГОА в эффективном соотношении (3).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма Nebraska ротавируса КРС, полученного преимущественно в культуре клеток почки теленка или поросенка с биологической активностью 10²-10^6,5 TCID/мл, и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента ГОА в эффективном соотношении (4).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии инактивированного формалином и очищенного от балластных примесей антигенного материала из штамма SA11 ротавируса обезьян, полученного в монослойной культуре клеток МА-104 с биологической активностью не менее 2·10⁷TCID/мл, и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента фосфата алюминия в эффективном соотношении (5).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии и очищенного антигенного материала из штамма SA11 ротавируса обезьян, полученного в культуре клеток Vero с биологической активностью 10^5,5-10^7,5ЦПД₅₀/мл и антигенной активностью в РНГА 1:64-1:1024 ГАЕ/_{0,25 мл,} и целевую добавку в виде производных платины с полианионом ДНК в эффективном соотношении (6).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии инактивированного формалином и очищенного от балластных примесей антигенного материала из штамма «III-1» ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток свиной почки СПЭВ с биологической активностью 10⁷-10^7,8 ТЦД₅₀/мл, и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента ГОА в эффективном соотношении (7).

Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии инактивированного формалином и очищенного от балластных примесей антигенного материала из штамма Cody 81-4 и/или из штамма 10В223 типа G (АТСС №VR-1290), и/или штамма В641 ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток МА-104 с биологической активностью 10⁴-10⁷FAID₅₀/мл (fluorescent antibody infective dose/мл), и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента ГОА в эффективном соотношении (8).

Общим недостатком известных вакцин против ротавирусной инфекции КРС является их низкая противоэпизоотическая эффективность для Российской Федерации, обусловленная тем, что штаммы ротавируса КРС, используемые для их изготовления, обладают антигенными отличиями по сравнению с антигенными характеристиками эпизоотических изолятов ротавируса КРС, выделенных на территории России и СНГ в различные временные промежутки.

Известен также способ количественной оценки вируссодержащих суспензий с помощью электронной микроскопии, возникший как результат многолетних опытов по электронно-микроскопическому контролю вирусных препаратов и сопоставлению его данных с показателями биологических тестов, например титром инфекционности вируса (9).

Авторами данного способа установлена зависимость между титром инфекционности нативных суспензий вируса ящура и количеством физических вирусных частиц, наблюдаемых под электронным микроскопом, что послужило основанием для определения общей концентрации вирусных частиц в единице объема суспензии (степень накопления вирусных частиц в определенном объеме жидкости).

Для определения общей концентрации (N) вирусных частиц в единице объема анализируемой суспензии на экране электронного микроскопа площадью S₂ подсчитывают число одновременно наблюдаемых частиц n. По известному инструментальному увеличению электронного микроскопа М определяют размер участка пленки-подложки S₁, соответствующего полезной площади экрана:

При нанесении вирусных препаратов на пленки-подложки концентрация вирусных частиц (n) на данном участке S₁ соответствует суммарному количеству адсорбированных частиц и частиц, осажденных на подложку при испарении остаточной жидкости. Следовательно, наблюдаемое одновременно на экране число частиц распределяется в микрообъеме, равном:

M=S₁·l,

где l - толщина остаточного слоя жидкости на подложке (мм).

В определяемом объеме вируссодержащей суспензии число частиц равно:

а после замены значений v и S₁:

где V - объем анализируемой суспензии (1 мл);

N - среднее арифметическое ряда значений числа частиц, просчитанных с экрана электронного микроскопа, или экспонированных фотопластинок.

Толщину остаточного слоя (l) на подложке измеряют предварительно охлажденным микрометром после замораживания жидкости на подложке в парах жидкого азота. Она составляет 0,03-0,04 мм и ее принимают как постоянную величину.

Электронно-микроскопическое определение концентрации физических вирусных частиц позволяет не только определять количественную характеристику вируса в анализируемых суспензиях, но и одновременно оценивать морфологическое состояние исследуемых вирусных частиц.

Указанный способ оказался универсальным и пригодным для определения количественной характеристики различных вирусов в исследуемых жидкостях, особенно при изготовлении вакцинных препаратов против ротавирусной инфекции КРС.

Наиболее близкой к предлагаемому изобретению по совокупности существенных признаков является вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма Nebraska ротавируса КРС, полученного преимущественно в культуре клеток почки теленка или поросенка с биологической активностью не менее 10⁵ TCID/мл, и целевую добавку в виде адъюванта-сорбента ГОА в эффективном соотношении (2).

Недостаток вакцины-прототипа состоит также в ее низкой противоэпизоотической эффективности для Российской Федерации, обусловленной тем, что используемый для ее изготовления штамм Nebraska обладает антигенными отличиями по сравнению с антигенными характеристиками эпизоотических изолятов ротавируса КРС, выделенных на территории России и СНГ в различные временные промежутки.

В связи с этим актуальной остается проблема создания новых вакцинных препаратов против ротавирусной инфекции КРС сорбированных инактивированных на основе новых штаммов ротавируса КРС, обладающих широким антигенным спектром.

В задачу создания настоящего изобретения входили поиск и получение новых штаммов ротавируса КРС, обладающих широким антигенным спектром, и разработка на их основе вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной, создающей эффективную защиту восприимчивых животных против эпизоотического ротавируса КРС, циркулирующего на территории Российской Федерации.

Технический результат от использования предлагаемого изобретения заключается в расширении арсенала высокоиммуногенных, безвредных и ареактогенных вакцин против ротавирусной инфекции КРС сорбированных инактивированных, способных защитить поголовье КРС от эпизоотического возбудителя ротавирусной инфекции, циркулирующего на территории России.

Указанный технический результат достигнут созданием вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной, охарактеризованной следующей совокупностью признаков.

Предлагаемая вакцина содержит активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ (авторское наименование) ротавируса КРС, полученного в перевиваемой культуре клеток млекопитающих, и целевые добавки в виде адъюванта-сорбента ГОА и адъюванта сапонина в эффективном соотношении.

Исходный ротавирус штамма №101 ВНИИЗЖ выделен из фекалий новорожденного теленка с нарушением функции желудочно-кишечного тракта. Производственный штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС адаптирован к монослойной культуре клеток почки теленка MDBK, монослойной культуре клеток свиной почки СПЭВ, монослойной культуре клеток почки обезьяны Vero, монослойной культуре клеток почки зеленой мартышки Марс-145 и монослойной культуре клеток коронарных сосудов теленка КСТ. В течение 24-48 часов инкубирования вирус накапливается в указанных культурах в титрах 6,0-8,0 lgТЦД₅₀/мл.

Полученный штамм депонирован во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве, ФГУ ВГНКИ МСХ РФ 12 марта 2001 года под регистрационным номером (ссылкой) культуральный штамм №101 ВНИИЗЖ-ДЕП ротавируса КРС.

Для получения антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС в качестве чувствительной биологической системы используют преимущественно монослойную культуру клеток MDBK.

При необходимости для получения антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС можно использовать также монослойную культуру клеток СПЭВ.

Полученный вируссодержащий материал очищают от балластных примесей центрифугированием или любым другим известным методом.

Для инактивации вируса используют аминоэтилэтиленимин (АЭЭИ), который добавляют в очищенную вируссодержащую суспензию до концентрации 0,15%. Инактивацию вируса ведут при 37°С в течение 24 часов. По окончании инактивации АЭЭИ нейтрализуют внесением в суспензию тиосульфата натрия.

Предлагаемая вакцина содержит суспензию авирулентого и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного преимущественно в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в иммуноферментном анализе (ИФА) не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%.

При необходимости предлагаемая вакцина может содержать суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%.

В качестве целевой добавки предлагаемая вакцина содержит адъювант-сорбент ГОА в количестве 19,6-49,6 мас.%.

При необходимости в качестве целевой добавки предлагаемая вакцина может содержать дополнительно адъювант сапонин в количестве 0,4 мас.%.

При необходимости в качестве целевой добавки предлагаемая вакцина может содержать консервант мертиолят натрия в количестве 0,001 мас.%, что соответствует 3 г препарата на 10000 доз вакцины.

Предлагаемое изобретение включает следующую совокупность существенных признаков, обеспечивающих получение технического результата во всех случаях, на которые испрашивается правовая охрана:

1. Вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная.

2. Активное вещество в виде суспензии авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС в эффективном количестве.

3. Целевые добавки.

Признаками изобретения, характеризующими предлагаемую вакцину и совпадающими с признаками прототипа, в том числе родовое понятие, отражающее назначение, являются:

2. Активное вещество.

3. Целевые добавки.

По сравнению с вакциной-прототипом существенным отличительным признаком предлагаемой вакцины является то, что в качестве активного вещества она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, обладающего широким антигенным спектром, в эффективном количестве.

Предлагаемое изобретение характеризуется также другими отличительными признаками, выражающими конкретные формы выполнения или особые условия его использования:

1. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в чувствительной биологической системе.

2. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток млекопитающих.

3. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK.

4. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂.

5. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%.

6. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ.

7. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂.

8. Суспензия авирулентного и очищенного анигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%

9. Из целевых добавок адъювант-сорбент ГОА.

10. ГОА в количестве 19,6-49,6 мас.%

11. Из целевых добавок дополнительно адъювант сапонин.

12. Сапонин в количестве 0,4 мас.%.

13. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, целевые добавки ГОА и сапонин в соотношении, мас.%:

Антигенный материал	50,0-80,0
ГОА	19,6-49,6
Сапонин	0,4.

14. Суспензия авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток свиной почки СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, и целевые добавки ГОА и сапонин в соотношении, мас.%:

15. Из целевых добавок консервант мертиолят натрия.

16. Мертиолят натрия в количестве 0,001 мас.%.

Предлагаемая вакцина расширяет арсенал высокоиммуногенных, безвредных и ареактогенных вакцин против ротавирусной инфекции КРС сорбированных инактивированных, способных защитить поголовье КРС от эпизоотического возбудителя ротавирусой инфекции, циркулирующего на территории России.

Достижение технического результата от использования предлагаемой вакцины объясняется тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из нового штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, сохраняющего нативные биологические свойства после инактивации и обладающего широким антигенным спектром, высокой антигенной и иммуногенной активностью.

Экспериментально подтверждена возможность его использования для изготовления инактивированной сорбированной вакцины против ротавирусной инфекции. Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС обеспечивает получение эффективной инактивированной вакцины против ротавирусной инфекции, создающей защиту восприимчивых животных от возбудителя заболевания, циркулирующего на территории России.

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС характеризуется следующими признаками и свойствами.

Морфологические свойства

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС относится к семейству Reoviridae, роду Rotavirus и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ротавирусной инфекции КРС: сферическая форма диаметром 65-75 нм, имеющая вид "колеса". Вирион состоит из сердцевины, внутреннего и наружного капсида. Сердцевина диаметром 40-45 нм имеет гексагональную форму и состоит из 3-х белков (VP1, VP2 и VP3) и РНК. Внутренний капсид (диаметр 15-20 нм) имеет икосаэдрическую форму и построен из 260 морфологических единиц, каждая из которых представлена белком VP6. Наружный капсид представлен белком VP7. На поверхности наружного капсида расположены "шипики", представленные димером белка VP4.

Плавучая плотность полных вирионов ротавируса КРС в градиенте плотности хлористого цезия составляет 1,36 г/мл, а однокапсидных частиц 1,38 г/мл. Коэффициент седиментации полных частиц 500-530 S, а однокапсидных частиц 380-400 S.

Антигенные свойства

Антиген ротавируса КРС штамма №101 ВНИИЗЖ индуцирует в организме иммунизированных морских свинок и кроликов образование вирусспецифических антител, выявляемых в реакции диффузионной преципитации (РДП) в разведениях от 1:16 до 1:64. В иммуноферментном анализе (ИФА) сыворотки положительно реагировали в разведении от 1:128 до 1:2048, в реакции связывания комплемента (РСК) - от 1:40 до 1:160.

В сыворотках крови глубокостельных коров через 10 дней после второй вакцинации антитела к ротавирусу в ИФА выявляли в титрах 8,2-10,8 log₂, в молозиве от вакцинированных коров титры антител к ротавирусу в ИФА составляли 8,8-14,0 log₂. Скармливание такого молозива обеспечивает высокий уровень колостральных антител (7,0-8,5) в организме телят.

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС обладает широким антигенным спектром и доминантностью. Средний показатель двустороннего антигенного родства (R%) используемого штамма в реакции нейтрализации (РН) с 12 эталонными и эпизоотическими штаммами ротавируса КРС составил 56,3%. Результаты исследований представлены в таблице 1.

Как свидетельствуют данные таблицы 1, штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС доминирует над изученными возбудителями ротавирусной инфекции КРС.

Биотехнологические характеристики

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС предназначен для изготовления инактивированных вакцин против ротавирусной инфекции КРС и диагностических антигенов и сывороток.

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС проявляет высокую антигенную и иммуногенную активность как в нативном виде, так и после инактивации, обладает широким антигенным спектром и доминирует по отношению к полевым штаммам.

Штамм №101 ВНИИЗЖ репродуцируется в монослойных культурах клеток MDBK, СПЭВ, КСТ, Vero и Marc-145 со степенью накопления 10⁶-10⁸ вирусных частиц/мл. Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в культурах клеток.

Устойчивость к внешним факторам

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС устойчив к хлороформу, фреону, эфиру, кислой (pH 4,0) и щелочной среде (pH 8,0). Возбудитель устойчив к воздействию трипсина.

Инактивированный ротавирус КРС штамма №101 ВНИИЗЖ устойчив в процессе хранения при 4°С как в нативном состоянии, так и в составе инактивированной сорбированной вакцины.

Дополнительные признаки и свойства

Антигенная активность - обладает антигенностью в составе инактивированной вакцины и препарата для гипериммунизации доноров диагностических сывороток и антительных лечебных препаратов.

Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.

Стабильность - сохраняет исходные биологические (антигенные) свойства при пассировании в перевиваемых культурах клеток на протяжении 20 пассажей (срок наблюдения).

Исходя из полученных данных, можно утверждать, что штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС по антигенному и иммунологическому спектрам является оригинальным, в таксономическом отношении новым, ранее неизвестным штаммом. Диагностикумы и вакцины, изготовленные из этого штамма, обеспечивают высокую эффективность мер борьбы с ротавирусной инфекцией КРС.

Проведенный заявителем анализ уровня техники, включающий поиск по патентным и научно-техническим источникам информации и выявление источников, содержащих сведения об аналогах предлагаемого изобретения, позволил установить, что заявитель не обнаружил источники, характеризующиеся признаками, тождественными (идентичными) всем существенным признакам предлагаемого изобретения.

Определение из перечня выявленных аналогов прототипа как наиболее близкого по совокупности существенных признаков аналога позволило установить совокупность существенных по отношению к усматриваемому заявителем техническому результату отличительных признаков предлагаемой вакцины, изложенных в независимом пункте формулы изобретения.

Следовательно, заявляемое решение соответствует условию патентоспособности «новизна».

Для проверки соответствия предлагаемого решения условию патентоспособности «изобретательский уровень» проведен дополнительный поиск известных решений для выявления признаков, включенных в отличительную часть независимого пункта формулы изобретения. Результаты поиска показали, что предлагаемое решение не вытекает для специалиста явным образом из известного уровня техники, изложенного в соответствующем разделе описания (не выявлены решения, имеющие признаки, совпадающие с отличительными признаками предлагаемого изобретения), а также не выявлено влияние предусматриваемых существенными признаками предлагаемого изобретения преобразований для достижения технического результата.

Следовательно, предлагаемая вакцина соответствует условию патентоспособности «изобретательский уровень».

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его исполнения, которые не ограничивают объем изобретения.

Пример 1. Получение штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС в культуре клеток MDBK.

Штамм №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС был изолирован из пробы фекалий от новорожденного теленка с нарушением функции желудочно-кишечного тракта. При изоляции возбудителя был использован комплекс вирусологических методов, изложенных в "Руководстве по индикации возбудителей особо опасных болезней сельскохозяйственных животных в объектах ветнадзора", утвержденном ГУВ ГАПК СССР 15 марта 1990 г.

С этой целью суспензию фекалий пропускали через фильтр ФПП-15-1,5. Сорбированный ротавирус элюировали смесью, состоящей из равных частей хлороформа и раствора Хенкса. Объем элюата составлял 1/100-1/200 объема суспензии фекалий. В очищенный элюат добавляли антибиотики, выдерживали при 37°С 2-4 часа. К суспензии добавляли трипсин до концентрации 20 мкг/мл и термостатировали при 37°С в течение 30 минут. Перед заражением культуру клеток MDBK дважды отмывали от ростовой сыворотки раствором Хенкса, вносили вируссодержащий материал и после контакта при 37°С в течение 1 часа заливали поддерживающую питательную среду, содержащую трипсин в концентрации 15 мкг/мл. Сосуды инкубировали при 37°С до появления цитопатических изменений в клетках. Полученную вируссодержащую суспензию замораживали-оттаивали и использовали для последующих пассажей. После 9 пассажей в культуре клеток MDBK штамм ротавируса КРС обладал следующими характеристиками: накопление в клетках достигало 10⁷-10⁸ вирусных частиц/мл, активность в ИФА 5,0 log₂.

Полученному штамму ротавируса КРС присвоено авторское наименование «№101 ВНИИЗЖ».

Пример 2. Изучение адаптационных свойств штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС.

Использование трипсина для предобработки штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС перед заражением, а также в процессе его репродукции позволило значительно расширить круг чувствительных к нему перевиваемых культур клеток, в том числе гетерологичных. Заражение культур клеток проводили 9 пассажем (MDBK) штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС. Результаты исследований приведены в таблице 2.

Из приведенных в таблице 2 результатов следует, что наиболее продуктивными для производства вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной являются монослойные культуры клеток СПЭВ и MDBK. Концентрация вируса в этих культурах достигает 10⁷-10⁸ вирусных частиц/мл.

Пример 3.

С целью определения биологической, антигенной и иммуногенной активности ротавируса КРС штамма №101 ВНИИЗЖ осуществляли гипериммунизацию морских свинок живой массой 0,45-0,5 кг и кроликов живой массой 2,5-3,0 кг.

Для получения антигена исходную вируссодержащую суспензию осветляли низкоскоростным центрифугированием (2500-3000 об/мин, 30 мин). Для высвобождения вирусных частиц, связанных с мембранными компонентами клеток, к ресуспендированному осадку добавляли фреон-113 (1:1) и центрифугировали при 2000-2200 об/мин в течение 30 мин и объединяли с осветленной суспензией вируса.

Инактивацию вирусной суспензии проводили рабочим раствором АЭЭИ. Конечная концентрация инактиванта составляла 0,1-0,2%. Смесь тщательно встряхивали и выдерживали при 37°С в течение 24 часов.

Концентрирование антигена проводили с помощью полиэтиленгликоля (м.м. 6000) в соответствии с общепринятыми методами. Преципитат осаждали центрифугированием при 5000 об/мин в течение 30 мин. Осадок ресуспендировали в 1/5 от объема исходной суспензии в STE-буфере (pH 7,4-7,5).

Полученную суспензию очищали 5% хлороформа, смесь эмульгировали и осветляли центрифугированием при 5000 об/мин в течение 10 мин. Концентрирование дополнительно проводили методом статической ультрафильтрации в установке ФМ-02-1000 с ацетатцеллюлозной мембраной «Владипор» типа УАМ-300 со средним диаметром пор 50 нм.

Для гипериммунизации морских свинок и кроликов использовали эмульсию инактивированного концентрированного антигена ротавируса КРС штамма №101 ВНИИЗЖ. Для изготовления эмульсии использовали минеральные или синтетические масла с соответствующими эмульгаторами. Стерильный адъювант в равных объемах смешивали с антигеном и гомогенизировали до получения стойкой водно-масляной эмульсии. Эмульсию подогревали на водяной бане до 30-37°С и иммунизировали морских свинок в дозе 0,5-1,0 мл, кроликов в дозе 2,0 мл.

Иммунизацию кроликов проводили по следующей схеме: первую - в мягкие подушечки задних лапок; вторую - через 7-10 дней в подколенные лимфоузлы; третью - через 21 день внутримышечно.

Морских свинок иммунизировали внутримышечно по схеме: вторая иммунизация через 7-10 дней после первой; третья - через 21 день после первой.

Взятие крови проводили через 14 дней после последней иммунизации. Активность сывороток проверяли в РДП и ИФА. Результаты исследований представлены в таблицах 3 и 4.

Представленные в таблицах 3 и 4 данные характеризуют высокую биологическую, антигенную и иммуногенную активность штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС при введении в организм лабораторных животных.

Пример 4.

Для получения сорбированной инактивированной вакцины против ротавирусной инфекции КРС матровый вирус штамма №101 ВНИИЗЖ, хранившийся при минус 20°С, размораживают и подогревают до 37°С. К суспензии добавляют трипсин до концентрации 15-20 мкг/мл и термостатируют при 37°С в течение 30 мин. Перед заражением культуру клеток MDBK или СПЭВ с качественным монослоем дважды отмывают от ростовой сыворотки раствором Хенкса. В культуральные сосуды вносят вирус, обработанный трипсином. Доза заражения должна составлять 0,1-1,0 вирусных частиц/клетку. После заражения в культуру клеток вносят поддерживающую питательную среду, содержащую трипсин в концентрации 10-15 мкг/мл. Сосуды инкубируют при 37°С до появления ЦПД вируса более чем в 90% клеток монослоя (24-48 часов). Полученную вируссодержащую суспензию замораживают-оттаивают. Охлажденную суспензию очищают от балластных примесей низкоскоростным центрифугированием (2500-3000 об/мин) в течение 30 мин. Полученный вирус подвергают контролю на инфекционную и антигенную активность. Производственная серия ротавируса должна иметь инфекционную активность не менее 6,0 Ig ТЦД₅₀/мл и активность в ИФА не менее 4,0 log₂.

Инактивацию вирусной суспензии проводят рабочим раствором АЭЭИ. Во избежание изменения pH вирусной суспензии раствор АЭЭИ предварительно доводят 5 М раствором уксусной кислоты до рН 7,8-8,2. Конечная концентрация инактиванта в суспензии должна быть не менее 0,15%. Инактивацию вируса проводят при температуре 36-37°С в течение 24 часов с периодическим перемешиванием суспензии (по 3-5 мин через каждые 5-6 часов). По окончании инактивации для нейтрализации АЭЭИ в суспензию антигенного материала добавляют 1 М раствор тиосульфата натрия из расчета 10% к объему использованного АЭЭИ. Затем антигенный материал охлаждают до 2-8°С и отбирают пробы для проверки на остаточную инфекционность в культуре клеток MDBK.

Для изготовления вакцины используют суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного преимущественно в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂.

При необходимости для изготовления вакцины можно использовать суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂.

Необходимую концентрацию вирусных частиц в вакцине получают путем добавления в суспензию антигена целевой добавки в виде адъюванта-сорбента ГОА. Расчетный объем ГОА в виде 3% геля добавляют в суспензию антигена при работающей мешалке. Смесь суспензии с ГОА перемешивают в течение 1 часа. После седиментации ГОА сливают расчетный объем оставшейся суспензии. Конечная концентрация ГОА в суспензии должна быть в пределах 19,6-49,6 мас.% в готовом препарате. Затем в суспензию добавляют дополнительно 10% водный раствор адъюванта сапонина до конечной его концентрации 0,4 мас.% в готовом препарате. Смесь выдерживают при температуре 2-6°С в течение 120 часов при периодическом перемешивании.

Оптимальный компонентный состав (мас.%) полученной вакцины приведен в таблице 5.

Содержание антигена в вакцине в указанных выше пределах является его эффективным количеством в препарате, обеспечивающем достижение технического результата.

При необходимости полученная вакцина может содержать консервант мертиолят натрия в количестве 0,001 мас.%, что соответствует 3 г препарата на 10000 доз вакцины.

Вакцина против ротавирусной инфекции КРС из штамма №101 ВНИИЗЖ представляет собой жидкость розового цвета с рыхлым осадком сорбента, который при встряхивании легко разбивается в гомогенную взвесь.

Полученную вакцину фасуют в стерильные флаконы, которые закрывают резиновыми пробками, обкатывают металлическими колпачками и этикетируют, а затем подвергают контролю на стерильность, авирулентность, безвредность и антигенную активность.

Стерильность вакцины определяют в соответствии с ГОСТ 28085-89. Авирулентность препарата определяют методом трехкратных последовательных пассажей инактивированного антигена в монослойной культуре клеток MDBK по отсутствию ЦПД.

Определение безвредности вакцины проводят на морских свинках или белых мышах. Для этого препарат вводят подкожно в область спины в дозе 0,5 мл 10 морским свинкам или 10 белым мышам в дозе 0,3 мл.

Вакцина считается безвредной, если лабораторные животные в течение 10 суток наблюдения остаются клинически здоровыми, без каких-либо патологических изменений. На месте введения допускается местная тканевая реакция.

Антигенную активность каждой серии вакцины проверяют на кроликах. Для этого берут 5 кроликов массой 2,5-3,0 кг. Вакцину вводят 3 кроликам подкожно в область спины по 2 мл. Через 14 суток после двукратного введения вакцины с интервалом 20-25 суток у кроликов из ушной вены берут по 2-3 мл крови, выдерживают при температуре 37°С, отделяют сыворотку и исследуют на наличие антител к ротавирусу КРС в РДП или в ИФА. Контрольных кроликов (2 головы) обескровливают одновременно с вакцинированными. Пробы сывороток крови иммунизированных и контрольных кроликов объединяют в серии и исследуют одновременно на наличие антител к ротавирусу КРС.

Определение антител к ротавирусу в сыворотках крови в РДП.

В 1000 мл дистиллированной воды растворяют 15 г агара и 16 г хлорида натрия. Раствор агара доводят до кипения, добавляют к нему 1 г азида натрия и 0,03 г метилоранжа. Хранят флаконы с агаром при комнатной температуре. Расплавленный на водяной бане агар разливают по 25 мл в чашки Петри с диаметром 9 см или на стеклянные пластинки размером 9×12 см. В застывшей агаровой пластинке штампами делают лунки по шестиугольной системе, в которой одна лунка расположена в центре, а шесть - вокруг. Диаметр каждой луночки 5 мм, расстояние между ними 5 мм. В центральную лунку вносят антиген, а в каждую пару периферических лунок - разведения сывороток от 1:4 до 1:128. После постановки реакции агаровые пластинки выдерживают во влажной среде камеры при 37°С. Реакцию учитывают через 16, 24, 48 и 72 часа после ее постановки. За предельный титр антител считают максимальное разведение испытуемой сыворотки, с которым наблюдается положительная реакция.

Определение антител к ротавирусу в сыворотках крови в ИФА.

В лунки планшетов вносят по 0,1 мл раствора специфического антигена в 0,015 М Na-карбонатном буфере (pH 9,6) в рабочем разведении и инкубируют в течение 18 часов при 4°С. Затем удаляют раствор антигена и 3-4 раза отмывают лунки 0,85% раствором хлористого натрия с 0,05% твин-20.

В лунки с адсорбированным антигеном вносят по 0,2 мл стандартных (положительной и отрицательной) и исследуемых сывороток в разведении 1:25 и титруют их последовательным двукратным разведением в физиологическом растворе с 0,05% твин-20. Тщательно перемешивают в течение 5-7 секунд и инкубируют в термостате 1,5-2 час при 37°С. Затем лунки отмывают 3-4 раза от несвязавшихся антител 0,85% раствором хлористого натрия с 0,05% твин-20.

В отмытые лунки вносят по 0,1 мл раствора антивидового иммунопероксидазного конъюгата против IgG кролика в физиологическом растворе с 0,05% твин-20 в рабочем разведении, инкубируют 1,5-2 часа при 37°С и отмывают лунки тем же раствором. Затем добавляют 0,1 мл субстратной смеси на основе 5-аминосалициловой кислоты.

Через 30 мин реакцию останавливают внесением в каждую лунку по одной капле 5Н HCl и измеряют оптическую плотность.

Исследуемая на содержание специфических антител сыворотка считается положительной, если среднее значение регистрируемой оптической плотности продукта пероксидазной реакции превышает соответствующее значение для отрицательного стандарта не менее чем в 2 раза.

При визуальной оценке результатов реакции интенсивность окраски продукта пероксидазной реакции при анализе исследуемого материала сравнивается с интенсивностью окраски, полученной для положительного и отрицательного стандарта в тех же разведениях.

Серию вакцины считают прошедшей контроль на антигенную активность, если титр вирусспецифических антител к ротавирусу в РДП не ниже 4,0 log₂ или в ИФА не ниже 5,0 log₂.

Вакцину применяют в неблагополучных по ротавирусной инфекции КРС хозяйствах для профилактики заболевания. Вакцинации подлежат все клинически здоровые животные. Вакцину вводят коровам и нетелям в дозе 2 мл двукратно внутримышечно в область крупа или средней трети шеи: первый раз - за 1,5 месяца до отела, второй - через 25 суток после первичной вакцинации. Вакцина в организме привитых животных индуцирует образование антител, которые передаются с молозивом и обеспечивают пассивную защиту новорожденных телят от инфицирования ротавирусом. Продолжительность иммунитета у телят составляет не менее 3 месяцев после двукратной вакцинации матерей.

Пример 5.

Проведены испытания антигенной активности предлагаемой вакцины против ротавирусной инфекции КРС, изготовленной так, как описано в примере 4, и содержащей, мас.%:

Суспензия авирулентного и очищенного
антигенного материала из штамма
№101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, репродуцированного
в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью
накопления 10⁸ вирусных частиц/мл и активностью
в ИФА 5,0 log₂	70,0
ГОА	29,6
Сапонин	0,4.

Антигенную активность полученного препарата определяли на кроликах массой 2,5-3,0 кг.

Результаты исследований представлены в таблице 6. Согласно данным таблицы 6 видно, что вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная из штамма №101 ВНИИЗЖ обладает высокой антигенной активностью.

Пример 6.

Суспензия авирулентного и очищенного
антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ
ротавируса КРС, репродуцированного в монослойной
культуре клеток СПЭВ со степенью накопления
10⁸ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА 5,5 log₂	70,0
ГОА	29,6
Сапонин	0,4.

Антигенную активность полученного препарата определяли на морских свинках массой 0,45-0,5 кг.

Результаты исследований представлены в таблице 7. Согласно данным таблицы 7 видно, что вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная из штамма №101 ВНИИЗЖ обладает высокой антигенной активностью.

Пример 7.

Проведены испытания по количественному контролю антигенной активности предлагаемой вакцины против ротавирусной инфекции КРС, изготовленной так, как описано в примере 4, и содержащей, мас.%:

При количественном контроле с целью установления 50%-ной иммунизирующей дозы 4 группы морских свинок однократно внутримышечно прививали препаратом в дозах 0,1; 0,2; 0,4 и 0,8 мл по 6 голов на каждую дозу. Через 21 день после иммунизации у животных брали кровь для исследования. Результаты представлены в таблице 8.

Результаты исследований по количественному определению антигенной активности вакцины, приведенные в таблице 8, свидетельствуют о том, что в прививном объеме (2,0 мл) свежеприготовленной вакцины содержится от 25 до 44 иммунизирующих доз, а после хранения вакцины в течение 4-14 месяцев от 22 до 40 доз.

Пример 8.

Суспензия авирулентного и очищенного
антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ
ротавируса КРС, репродуцированного в монослойной
культуре клеток СПЭВ со степенью накопления
10⁸ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА 5,5 log₂	50,0
ГОА	49,6
Сапонин	0,4.

Антигенную активность полученного препарата определяли на глубокостельных коровах, которых иммунизировали дважды: за 1,5 месяца до отела и через 25 дней после первой вакцинации. Опыты проводили в хозяйстве, неблагополучном по ротавирусной инфекции КРС. Кровь для исследования отбирали у вакцинированных и невакцинированных животных по схеме: до вакцинации за 7-18 дней до отела, через 3 и 7 дней после отела. В течение 6 дней отбирали и исследовали молозиво от вакцинированных и невакцинированных коров. Исследовали кровь от 2-3-дневных телят, полученных от вакцинированных коров. Результаты исследований представлены в таблице 9.

Антитела к ротавирусу выявлялись: в сыворотках крови, отобранных от вакцинированных коров за 7 дней до отела, на уровне 10,8 log₂, в молозиве от вакцинированных коров в первый день после отела на уровне 13,0±0,71 log₂ и на 6 день после отела на уровне 6,4±0,45 log₂, а в молозиве от невакцинированных коров на уровне 10,2±0,37 log₂ и 3,6±0,38 log₂ соответственно. Отмечается снижение уровня антител в молозиве, однако на 6-й день уровень антител в молозиве вакцинированных коров на 2,8 log₂ выше, чем у невакцинированных. Через 7 дней после отела уровень антител к ротавирусу КРС в сыворотке крови вакцинированных коров составлял 9,0 log₂, а невакцинированных 5,4 log₂. В сыворотке крови коров с момента вакцинации до отела шло накопление антител с 5,2 log₂ до 10,8 log₂. За 7 дней до отела титр антител в сыворотке крови вакцинированных коров на 4,9 log₂ превышал этот показатель у невакцинированных коров. Полученные результаты позволяют судить о высокой антигенной активности сорбированной инактивированной вакцины против ротавирусной инфекции КРС и о высоких титрах колостральных антител в молозиве и крови телят, полученных от вакцинированных коров.

Пример 9.

Проведены испытания эффективности предлагаемой вакцины против ротавирусной инфекции КРС, изготовленной так, как описано в примере 4, и содержащей, мас.%:

Испытания препарата проведены на 2292 головах глубокостельных коров в 19 животноводческих хозяйствах России. Вакцину применяли согласно «Наставлению по применению вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной». Результаты испытаний представлены в таблице 10.

От вакцинированных 2292 коров был получен приплод в количестве 2181 теленка, из которых заболело 21,3% и пало 4,5%. В этих же хозяйствах, где проводились испытания вакцины, у 5881 головы глубокостельных коров, невакцинированных против ротавирусной инфекции, были зарегистрированы следующие показатели: 82,5% от полученных телят заболели и 33,1% из них пали.

Таким образом, после вакцинации коров сорбированной инактивированной вакциной против ротавирусной инфекции КРС количество заболевших телят снизилось с 82,5% до 21,3%. Снизился и падеж телят с 33,1% до 4,5%. Следовательно, защищенность телят, полученных от вакцинированных коров, в каждом опыте составила в среднем 95,5%.

Таким образом, приведенная выше информация свидетельствует о выполнении при использовании предлагаемого изобретения следующей совокупности условий:

- вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, воплощающая предлагаемое изобретение, предназначена для использования в сельском хозяйстве, а именно в ветеринарной вирусологии и биотехнологии;

- для предлагаемого изобретения в том виде, как оно охарактеризовано в независимом пункте формулы изобретения, подтверждена возможность его осуществления с помощью описанных в заявке или известных до даты приоритета средств и методов;

- вакцина против ротавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, изготовленная из штамма №101 ВНИИЗЖ в соответствии с предлагаемым изобретением, обладает высокой антигенной и иммуногенной активностью и является безвредной.

Следовательно, предлагаемое изобретение соответствует условию патентоспособности «промышленная применимость».

Источники информации

1. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я. и др. Вирусные болезни животных. - М., ВНИТИБП, 1998. - С.43-54.

2. Пат. США №3838004, 195-1.3, 24.09.1974 г. (прототип).

3. Пат. США №3839556, 424-89, 01.10.1974 г.

4. Пат. США №3869547, 424-89, 04.03.1975 г.

5. WO 94/01134, А61К 39/42, 39/15; C12N 7/04, 7/08; 20.01.1994 г.

6. Пат. РФ №2095083, А61К 39/15, 23.05.1995 г.

7. Пат. РФ №2145236, А61К 39/295, 39/108, 39/215, 39/245, 39/12; C12N 7/00 (C12N 7/00, C12R 1/93); 10.02.2000 г.

8. WO 02/062382, А61К 39/15, 39/215, 39/08, 39/108; 15.08.2002 г.

9. Пономарев А.П., Молчанова А.И. и Узюмов В.Л. Определение концентрации части вируса ящура в суспензиях. - Ветеринария, 1983, №1, 22-24.

Таблица 1 Результаты изучения антигенного родства (R%) штаммов ротавируса в реакции нейтрализации
№№ п/п	Наименование штаммов ротавируса		Среднее (R%) антигенное родство изучаемых штаммов
1	Тиверваль		31,6
2	Nebraska		44,5
3	SA-11		12,5
4	№101		56,3
5	3		21,3
6	ЛА		31,6
7	В		26,7
8	С		22,7
9	ВО		28,8
10	К		26,0
11	П		30,7
12	Д		32,8
13	Б		26,9
Таблица 2 Сравнение продуктивности различных клеточных культур при заражении штаммом №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС
Культура клеток		Время репродукции, ч		Концентрация вирусных частиц/мл
MDBK		18-20		10⁷-10⁸
СПЭВ		18-20		10⁸
Marc-145		24		10⁶
Vero		48		10⁶
КСТ		48		10⁶

Таблица 3 Активность сывороток морских свинок, гипериммунизированных антигеном ротавируса КРС, штамм №101 ВНИИЗЖ
Серия		Титр антител, log₂
		РДП		ИФА			РСК
1		5,54±0,201		11,03±0,156			5,33±0,2
2		5,91±0,076		11,84±0,204			6,33±0,3
3		5,37±0,321		11,32±0,059			7,33±0,4
Таблица 4 Активность сывороток кроликов, гипериммунизированных антигеном ротавируса КРС, штамм №101 ВНИИЗЖ
Серия	Титр антител, log₂
	РДП				ИФА
1	5,73±0,065				10,43±0,402
2	5,64±0,024				10,82±0,153
3	5,49±0,121				10,71±10,127
Таблица 5 Оптимальный компонентный состав (мас.%) вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной из штамма №101 ВНИИЗЖ
Ингредиенты			Минимум			Средний		Максимум
Антигенный материал			50			70		80
ГОА			49,6			29,6		19,6
Сапонин			0,4			0,4		0,4

Таблица 6 Антигенная активность вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной из штамма №101 ВНИИЗЖ на кроликах
№ серии		Средние титры антител (log₂) к ротавирусу КРС в сыворотках крови вакцинированных животных
		РДП	ИФА
1		4,85±0,72	7,60±0,15
6		6,32±0,69	10,1±0,01
9		4,80±0,76	8,12±0,12
10		8,20±0,90	11,32±0,06
11		4,65±0,75	7,50±0,20
12		6,50±0,81	11,03±0,16
13		6,30±0,70	10,38±0,12
14		5,90±0,51	8,62±0,11
15		6,70±0,47	10,3±0,11
Среднее значение		6,03±0,74	9,44±0,12
Таблица 7 Антигенная активность вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной из штамма №101 ВНИИЗЖ на морских свинках
№ серии	Средние титры антител (log₂) в РДП к ротавирусу КРС в сыворотках крови вакцинированных животных
	РДП			ИФА
1	5,33±0,79			9,11±0,11
6	5,10±0,77			9,51±0,02
9	5,95±0,72			10,81±0,02
10	5,33±0,81			10,69±0,03
11	5,23±0,78			10,43±0,41
12	6,50±0,76			10,72±0,02
13	6,20±0,83			10,71±0,13
14	5,70±0,69			10,62±0,15
15	4,80±0,75			8,92±0,02
Среднее значение	5,57±0,80			10,17±0,07

Таблица 8 Данные по количественному определению антигенной активности вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной из штамма №101 ВНИИЗЖ
№ серии		После изготовления		После хранения
		ИМД₅₀	антигенная доза	срок (мес)		ИМД₅₀		антигенная доза
1		0,050	40,0	4		0,052		38,4
2		0,049	40,8	4		0,050		40,0
3		0,050	40,0	6		0,054		37,0
4		0,050	40,0	6		0,050		40,0
5		0,070	28,5	6		0,072		27,7
6		0,045	44,4	6		0,049		40,8
7		0,078	25,6	7		0,080		25,0
8		0,070	28,5	7		0,086		23,2
9		0,065	30,7	7		0,070		28,5
10		0,061	32,7	8		0,065		30,7
11		0,059	33,8	8		0,061		32,7
12		0,080	25,0	9		0,082		24,3
13		0,080	25,0	9		0,087		22,9
14		0,080	25,0	9		0,085		23,5
15		0,080	25,0	10		0,090		22,2
16		0,060	33,3	13		0,084		23,8
17		0,068	29,4	14		0,091		21,9
Таблица 9 Содержание антител к ротавирусу КРС в сыворотках крови и молозиве коров и в сыворотках крови телят
№№ п/п	Характеристика сыворотки				Кол-во проб		Титр антител к ротавирусу в ИФА, log₂
1	Кровь взята до вакцинации коров				10		5,2±0,88
2	Кровь взята от вакцинированных коров за 18 дней до отела				10		8,1±0,77
3	Кровь взята от вакцинированных коров за 7 дней до отела				10		10,8±0,37
4	Кровь взята от вакцинированных коров через 3 дня после отела				10		9,6±0,54
5	Кровь взята от вакцинированных коров через 7 дней после отела				10		9,0±0,82
6	Кровь взята от невакцинированных коров за 7 дней до отела				10		5,9±0,76
7	Кровь взята от невакцинированных коров через 7 дней после отела				10		5,4±0,66
8	Молозиво от вакцинированных коров, отобранное после отела в:
	1-й день				10		13,0±0,71
	2-й день				10		11,6±0,51

1		2						3		4
		3-й день						10		10,6±0,43
		4-й день						10		8,8±0,58
		5-й день						10		7,4±0,40
		6-й день						10		6,4±0,45
9		Кровь взята от 2-3-дневных телят, полученных от вакцинированных коров						10		7,35±0,38
10		Молозиво от невакцинированных коров, отобранное после отела в:
		1-й день						10		10,2±0,37
		2-й день						10		9,4±0,25
		3-й день						10		6,0±0,32
		4-й день						10		4,2±0,10
		5-й день						10		4,2±0,20
		6-й день						10		3,6±0,38
Таблица 10 Результаты испытания вакцины против ротавирусной инфекции КРС сорбированной инактивированной из штамма №101 ВНИИЗЖ на глубокостельных коровах
№	Кол-во хоз-в		Кол-во невакц. коров	% забол. телят	% павших телят	Кол-во вакц. коров	Кол-во родившихся телят		% заболевших телят		% павших телят	Защищен. телят от вакц. коров
1	3		294	70,2	30,9	105	94		24,7		2,2	97,8
2	1		336	97,1	22,9	287	271		17,9		4,7	95,3
3	2		418	89,4	47,1	276	267		23,4		8,3	91,7
4	1		479	83,4	29,2	183	179		14,7		6,5	93,5
5	6		2649	74,2	9,8	876	832		17,8		2,4	97,6
6	4		914	76,8	27,8	192	178		14,1		2,6	97,4
7	1		276	99,1	84,1	167	165		37,8		7,2	92,8
8	1		315	70,0	13,0	206	195		20,0		2,1	97,9
	19		5681	82,5	33,1	2292	2181		21,3		4,5	95,5

Claims

1. Вакцина против ротавирусной инфекции крупного рогатого скота (КРС) сорбированная инактивированная, содержащая активное вещество и целевые добавки, отличающаяся тем, что в качестве активного вещества она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, сем. Reoviridae, рода Rotavirus, коллекция ФГУ ВГНКИ №101 ВНИИЗЖ-ДЕП, в эффективном количестве.

2. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в чувствительной биологической системе.

3. Вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ, полученного в монослойной культуре клеток млекопитающих, выбранной из группы, состоящей из монослойной культуры клеток почки теленка MDBK и монослойной культуры клеток свиной почки СПЭВ.

4. Вакцина по п.3, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в иммуноферментном анализе (ИФА) не менее 5,0 log₂.

5. Вакцина по п.4, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%.

6. Вакцина по п.3, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂.

7. Вакцина по п.6, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, в количестве 50,0-80,0 мас.%.

8. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что из целевых добавок она содержит адъювант-сорбент гидроокись алюминия (ГОА).

9. Вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит ГОА в количестве 19,6-49,6 мас.%.

10. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что из целевых добавок она содержит дополнительно адъювант сапонин.

11. Вакцина по п.10, отличающаяся тем, что она содержит адъювант сапонин в количестве 0,4 мас.%.

12. Вакцина по любому из пп.1-5, 8-11, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, и целевые добавки ГОА и сапонин в соотношении, мас.%:

Антигенный материал 50,0-80,0 ГОА 19,6-49,6 Сапонин 0,4

13. Вакцина по любому из пп.1-3, 6-11, отличающаяся тем, что она содержит суспензию авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма №101 ВНИИЗЖ ротавируса КРС, полученного в монослойной культуре клеток СПЭВ со степенью накопления не менее 10⁶ вирусных частиц/мл и активностью в ИФА не менее 5,0 log₂, и целевые добавки ГОА и сапонин в соотношении, мас.%:

14. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что из целевых добавок она содержит консервант мертиолят натрия.

15. Вакцина по п.14, отличающаяся тем, что она содержит консервант мартиолят натрия в количестве 0,001 мас.%.