RU2289138C2 - Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils - Google Patents

Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils Download PDF

Info

Publication number
RU2289138C2
RU2289138C2 RU2004136502/15A RU2004136502A RU2289138C2 RU 2289138 C2 RU2289138 C2 RU 2289138C2 RU 2004136502/15 A RU2004136502/15 A RU 2004136502/15A RU 2004136502 A RU2004136502 A RU 2004136502A RU 2289138 C2 RU2289138 C2 RU 2289138C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chemiluminescence
neutrophils
cells
level
allergic
Prior art date
Application number
RU2004136502/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2004136502A (en
Inventor
Тать на Анатольевна Грачева (RU)
Татьяна Анатольевна Грачева
Борис Анатольевич Рудой (RU)
Борис Анатольевич Рудой
Владимир Петрович Рассанов (RU)
Владимир Петрович Рассанов
Иль Владимирович Дармов (RU)
Илья Владимирович Дармов
Олег Евгеньевич Грачев (RU)
Олег Евгеньевич Грачев
Original Assignee
Научно-исследовательский институт микробиологии Министерства обороны Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт микробиологии Министерства обороны Российской Федерации filed Critical Научно-исследовательский институт микробиологии Министерства обороны Российской Федерации
Priority to RU2004136502/15A priority Critical patent/RU2289138C2/en
Publication of RU2004136502A publication Critical patent/RU2004136502A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2289138C2 publication Critical patent/RU2289138C2/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, laboratory diagnostics.
SUBSTANCE: one should isolate neutrophilic leukocytes, form immune complexes, measure background luminescence of incubation medium (A), add neutrophils, measure the level of spontaneous chemiluminescence (B), introduce immune complex and detect the value of stimulated chemiluminescence (C), calculate the coefficient of stimulation (CS) and at CS≥0.3 it is possible to diagnose allergic reaction. The innovation provides higher accuracy and specificity in detecting the presence of allergic sensitization to certain antigen, the chance for screening serial assay, excludes additional body sensitization associated with introducing allergens in case of skin sample.
EFFECT: higher accuracy of allergodiagnostics.
1 cl, 5 ex, 6 tbl

Description

Изобретение относится к способам выявления специфической сенсибилизации организма к полноценным антигенам различной природы. Способ предназначен для выявления повышенной чувствительности к полноценным антигенам, в том числе оценки аллергического побочного действия лечебных и профилактических медицинских препаратов.The invention relates to methods for detecting specific sensitization of the body to complete antigens of various nature. The method is intended to detect hypersensitivity to complete antigens, including the assessment of allergic side effects of therapeutic and prophylactic medications.

В последнее время наблюдается ухудшение общего аллергического статуса у населения, увеличение числа аллергических заболеваний и реакций, в том числе анафилактических, что связано с неблагоприятной экологической обстановкой, химическим загрязнением окружающей среды, широким использованием химических средств в быту, злоупотреблением лекарств, изменением характера питания, ростом числа профессиональных аллергенов. Установлено, что 1/5 часть жителей нашей планеты обращается за медицинской помощью из-за различных клинических проявлений аллергического характера (Мачаридзе Д.Ш., Тарасова С.В. Динамика распространенности симптомов аллергических заболеваний по данным ISAAC 1997-2000, г.Москва. // Аллергология и иммунология. - 2002. - том. 3. - №2. - С.50-54). В настоящее время антигены различной природы и строения рассматривают в качестве индукторов аллергии (Пыцкий В.И., Адрианова Н.В., Артомасова А.В.. Аллергические заболевания. - М.: Медицина, 1984). На территории Российской Федерации за последние 15-20 лет заболеваемость бронхиальной астмой возросла 3-4 раза.(Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - С.13-19). При этом в 80-90% случаях этого заболевания имеет инфекционную этиологию (Пыцкий В.И., Адрианова Н.В., Артомасова А.В.. Аллергические заболевания. - М.: Медицина, 1984).Recently, there has been a deterioration in the general allergic status in the population, an increase in the number of allergic diseases and reactions, including anaphylactic ones, which is associated with an unfavorable environmental situation, chemical pollution of the environment, widespread use of chemicals in everyday life, drug abuse, changes in the nature of nutrition, and growth number of occupational allergens. It has been established that 1/5 of the inhabitants of our planet seek medical help because of various clinical manifestations of an allergic nature (Macharidze D.Sh., Tarasova S.V. Dynamics of the prevalence of symptoms of allergic diseases according to ISAAC 1997-2000, Moscow. // Allergology and Immunology. - 2002. - Volume 3. - No. 2. - P.50-54). Currently, antigens of various nature and structure are considered as allergy inducers (Pytsky V.I., Adrianova N.V., Artomasova A.V. Allergic diseases. - M .: Medicine, 1984). Over the past 15-20 years, the incidence of bronchial asthma in the Russian Federation has increased 3-4 times. (Fedoskova T.G. et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - P.13- 19). Moreover, in 80-90% of cases of this disease it has an infectious etiology (Pytsky V.I., Adrianova N.V., Artomasova A.V. Allergic diseases. - M .: Medicine, 1984).

Принципиально выявление аллергической перестройки организма возможно с использованием двух подходов - in vivo и in vitro.In principle, the identification of allergic rearrangement of the body is possible using two approaches - in vivo and in vitro.

Выявление этиологического фактора аллергии до настоящего времени базируется главным образом на результатах кожных проб (Пыцкий В.И., Адрианова Н.В., Артомасова А.В.. Аллергические заболевания. - М.: Триада-Х, 1999. - С.102-112). Постановка кожных проб является диагностическим методом выявления специфической сенсибилизации организма путем введения под кожу аллергена и оценки величины и характера развившегося при этом отека или воспалительной реакции. Метод основан на взаимодействии аллергена с сенсибилизированными Т-лимфоцитами и антиген-презентирующими клетками (макрофагами и клетками Лангенгарса), что вызывает высвобождение медиаторов аллергии и развитие местной реакции у сенсибилизированных лиц (Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - С.13-19). Существуют разные методы кожного тестирования с использованием аллергенов: прик-тесты, скарификационные, аппликационные и внутрикожные пробы (Скепьян Н.А. Аллергические болезни. Диффиренциальный диагноз, лечение. - Минск: Беларусь, 2000. - С.35-43).The identification of the etiological factor of allergies to date is mainly based on the results of skin tests (Pytsky V.I., Adrianova N.V., Artomasova A.V. Allergic diseases. - M .: Triada-X, 1999. - P.102 -112). Staging of skin samples is a diagnostic method for identifying specific sensitization of the body by introducing an allergen under the skin and assessing the magnitude and nature of the edema or inflammatory reaction that has developed. The method is based on the interaction of an allergen with sensitized T-lymphocytes and antigen-presenting cells (macrophages and Langengars cells), which causes the release of allergy mediators and the development of a local reaction in sensitized individuals (Fedoskova T.G. et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - S.13-19). There are various methods of skin testing using allergens: prik-tests, scarification, application and intradermal tests (Skepyan N.A. Allergic diseases. Differential diagnosis, treatment. - Minsk: Belarus, 2000. - P.35-43).

В настоящее время одним из наиболее часто используемых кожных аллергопроб является прик-тест на специфический аллерген. Постановка этого теста производится путем укола в кожу и введением раствора аллергена на глубину не более 1-1,5 мм. Этот кожный тест считают менее травматичным по сравнению со скарификационными пробами, он требует меньшей поверхности кожи для проведения аллергодиагностики, что позволяет исследовать большее число проб.Currently, one of the most commonly used skin allergy tests is a specific allergen pri-test. The formulation of this test is carried out by injection into the skin and the introduction of an allergen solution to a depth of not more than 1-1.5 mm. This skin test is considered less traumatic in comparison with scarification tests, it requires a smaller surface of the skin for allergy diagnostics, which allows you to explore a larger number of samples.

Скарификационные аллерготесты широко используются для выявления сенсибилизации к пищевым аллергенам, аллергенам бактериального и грибкового происхождения. Однако при их постановке часто возникают ложноположительные результаты, так же как и при постановке накожной и внутрикожной пробы, например с туберкулином реакция бывает положительной у лиц, инфицированных нокардиями, родококками, коринебактериями. (Гущин И.С. Аллергическое воспаление и его фармакологическое действие. М.: Фармакус Приит, 1998). В настоящее время эксперты Европейской Академии Аллергологии и Клинической Иммунологии не рекомендуют использовать скарификационные кожные тесты для диагностики аллергии ввиду их низкой информативности (Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - С.13-19).Scarification allergy tests are widely used to detect sensitization to food allergens, allergens of bacterial and fungal origin. However, when they are staged, false-positive results often arise, as well as when staged skin and intradermal tests, for example with tuberculin, the reaction is positive in people infected with nocardia, rhodococcus, corynebacteria. (Gushchin I.S. Allergic inflammation and its pharmacological action. M: Farmakus Priit, 1998). Currently, experts from the European Academy of Allergology and Clinical Immunology do not recommend using scarification skin tests to diagnose allergies due to their low information content (Fedoskova TG et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - S.13-19).

Внутрикожные тесты считают более чувствительными, чем скарификационные, но они менее специфичны. (Бережная Н.М., Бобкова Л.П., Петровская И.А. и др. Аллергология словарь-справочник. Киев: Наукова Думка, 1986).Intradermal tests are considered more sensitive than scarification tests, but they are less specific. (Berezhnaya N.M., Bobkova L.P., Petrovskaya I.A. et al. Allergology dictionary-reference book. Kiev: Naukova Dumka, 1986).

Таким образом, к общим недостаткам кожного тестирования как способа диагностики аллергии можно отнести следующее:Thus, the general disadvantages of skin testing as a way to diagnose allergies include the following:

во-первых, способ небезопасен для обследуемого, так как не исключается возникновение не только (местных) локальных, но и общих реакций организма на введение аллергена, а в случае высокого уровня сенсибилизации - развития тяжелых аллергических осложнений. Кроме того, для постановки аллергологических проб требуется опытный, специально подготовленный персонал, безупречно владеющий методикой их постановки, а также наличие постоянного запаса противошоковых препаратов, что обуславливает необходимость проведения реакции в условиях специализированных аллергоцентров;firstly, the method is unsafe for the subject, since the occurrence of not only (local) local, but also general reactions of the body to the introduction of the allergen is not excluded, and in the case of a high level of sensitization, the development of severe allergic complications. In addition, the formulation of allergological samples requires experienced, specially trained personnel who are fluent in the procedure for their formulation, as well as a constant supply of anti-shock drugs, which necessitates a reaction in specialized allergocenters;

во-вторых, недостаточна экспрессность - результаты пробы учитываются через 24-48 часов;secondly, insufficient expressivity - the results of the test are taken into account after 24-48 hours;

в-третьих, ограничено количество анализируемых антигенов.thirdly, the number of analyzed antigens is limited.

Другим методом диагностики аллергии является постановка провокационных тестов. Провокационные тесты считают достаточно достоверным методом аллергодиагностики. Их используют в случае расхождения данных анамнеза и результатов кожного тестирования. В зависимости от способа введения аллергена в организм различают конъюнктивальный, назальный, ингаляционный и подъязычный провокационные тесты (Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - C.13-19).Another method of diagnosing allergies is the setting of provocative tests. Provocative tests are considered a fairly reliable method of allergy diagnosis. They are used if there is a discrepancy between the history and the results of skin testing. Depending on the method of introducing the allergen into the body, conjunctival, nasal, inhalation and sublingual provocative tests are distinguished (Fedoskova T.G. et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - C.13-19 )

Недостатком провокационных тестов является частое развитие аллергических осложнений, поэтому проведение провокационных проб ограничено только одним исследованием в день (Пыцкий В.И., Адрианова Н.В., Артомасова А.В.. Аллергические заболевания. - М.: Триада-Х, 1999. - С.102-112). Кроме того, при их постановке требуется специально подготовленный персонал, а также специально оборудованное помещение для проведения ингаляционного провокационного теста.The disadvantage of provocative tests is the frequent development of allergic complications, therefore, provocative tests are limited to only one study per day (Pytsky V.I., Adrianova N.V., Artomasova A.V. Allergic diseases. - M .: Triada-X, 1999 . - S.102-112). In addition, when they are staged, specially trained personnel are required, as well as a specially equipped room for an inhalation provocation test.

В связи с вышесказанным особую актуальность для оценки специфической сенсибилизации приобретают методы диагностики аллергии in vitro, что подчеркивается в решении международной группы экспертов-иммунологов ВОЗ. (Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - C.13-19).In connection with the foregoing, in vitro allergy diagnostic methods are of particular relevance for assessing specific sensitization, which is emphasized in the decision of the WHO international group of expert immunologists. (Fedoskova T.G. et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - C.13-19).

Известен инструментальный метод оценки сенсибилизации организма к аллергену (антигену), основанный на выявлении антител класса IgE в сыворотке крови в условиях in vitro - радиоаллергосорбентный тест (PACT) (Бережная Н.М., Бобкова Л.П., Петровская И.А. и др. Аллергология словарь-справочник. Киев: Наукова Думка, 1986). Сущность метода заключается в связи специфического IgE исследуемой сывортки с аллергеном, размещенным на бумажной пластинке. После отмывания неспецифического IgE к пробе добавляются меченные 125I антитела против IgE. Образовавшийся радиоактивный комплекс считывается на сцинтилляционном счетчике (Пыцкий В.И., Адрианова Н.В., Артомасова А.В.. Аллергические заболевания. - М.: Триада-Х, 1999. - С.102-112). PACT является экспрессным методом, высокочувствительным, специфичным и точным, так как основан на использовании радиоактивной метки (Скепьян Н.А. Аллергические болезни. Дифференциальный диагноз, лечение. - Минск: Беларусь, 2000. - С.35-43).Known instrumental method for assessing the sensitization of the body to an allergen (antigen), based on the detection of antibodies of the IgE class in blood serum in vitro - radio allergenic sorbent test (PACT) (Berezhnaya N.M., Bobkova L.P., Petrovskaya I.A. and other Allergology dictionary-reference. Kiev: Naukova Dumka, 1986). The essence of the method is the association of the specific IgE of the test serum with an allergen placed on a paper plate. After washing the non-specific IgE, 125 I-labeled anti-IgE antibodies are added to the sample. The resulting radioactive complex is read on a scintillation counter (Pytsky V.I., Adrianova N.V., Artomasova A.V. Allergic diseases. - M .: Triada-X, 1999. - S.102-112). PACT is an express method, highly sensitive, specific and accurate, as it is based on the use of a radioactive label (Skepyan N.A. Allergic diseases. Differential diagnosis, treatment. - Minsk: Belarus, 2000. - P.35-43).

Недостатком метода PACT является необходимость использования специальной дорогостоящей аппаратуры, он обладает меньшей чувствительностью по сравнению с кожной пробой, требует организации регулярной поставки меченных изотопом компонентов, специально оборудованного рабочего места и соблюдения мер радиационной безопасности при проведении работы с радиоактивно меченным анти-IgE (Федоскова Т.Г. и др. Принципы диагностики аллергических заболеваний. // Consilium medicum. - 2002. - №4. - C.13-19).The disadvantage of the PACT method is the need to use special expensive equipment, it has less sensitivity compared to a skin sample, it requires the organization of a regular supply of isotope-labeled components, a specially equipped workplace and compliance with radiation safety measures when working with radioactively labeled anti-IgE (Fedoskova T. G. et al. Principles for the diagnosis of allergic diseases. // Consilium medicum. - 2002. - No. 4. - C.13-19).

Известен также инструментальный метод определения содержания общего и аллергоспецифического IgE - постановка иммуноферментного анализа (ИФА). Принцип метода по существу совпадает с PACT. Оптимальной концентрацией аллергена обрабатывают сорбент (полистирол в виде микроплат), избыток аллергена отмывают, добавляют исследуемую сыворотку, в результате происходит образование комплекса «антиген-антитело». После этого несвязавшиеся компоненты удаляют отмыванием, добавляют анти-IgE (меченные ферментом), полученный субстрат определяют фотометрическим способом (Фрадкин. В.А. Диагностические и лечебные препараты. - М.: Медицина, 1990). Метод является достаточно чувствительным, специфичным и экспрессным, кроме того, в настоящее время чаще используется для определения аллергенспецифических IgE (Азимов А.Г. О роли иммуноглобина Е в патологии. // Иммун. Пат. Аллер., инфекц. - 2002. - №2. - С.73-77).There is also a known instrumental method for determining the content of total and allergy-specific IgE - enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). The principle of the method essentially coincides with PACT. The sorbent is treated with the optimal concentration of the allergen (polystyrene in the form of microplates), the excess allergen is washed off, the test serum is added, and as a result the formation of the antigen-antibody complex occurs. After this, unbound components are removed by washing, anti-IgE (labeled with an enzyme) is added, and the obtained substrate is determined photometrically (Fradkin. VA Diagnostic and therapeutic preparations. - M .: Medicine, 1990). The method is quite sensitive, specific and express, in addition, it is now more often used to determine allergen-specific IgE (A. Asimov. On the role of immunoglobin E in pathology. // Immun. Pat. Aller., Infect. - 2002. - No. 2. - S.73-77).

Недостатком иммуноферментного анализа является необходимость наличия специальных стандартизированных препаратов (тест-систем) к конкретным аллергенам, однако выбор доступных систем в настоящее время ограничен. Кроме того, метод предъявляет высокие требования к стандартности постановки теста и к качеству антигенных компонентов, то есть воспроизводимость метода существенно зависит от качества и производителя тест-системы.The disadvantage of enzyme immunoassay is the need for special standardized drugs (test systems) for specific allergens, however, the choice of available systems is currently limited. In addition, the method places high demands on the standardization of the test and on the quality of antigenic components, that is, the reproducibility of the method substantially depends on the quality and manufacturer of the test system.

Известен также метод диагностики аллергии - прямой и непрямой тест дегрануляции базофилов, основанный на выявлении активации (дегрануляции) иммунокомпетентных базофильных лейкоцитов крови, сенсибилизированных IgE, при воздействии на такие клетки специфическим антигеном (Sheley W/ Circulating basophile as indicator of hyper-sensitivity in man. - // Arch. Dermal. - 1963. - v.88. - P.759). Метод не требует дорогостоящих препаратов, обеспечивает высокую специфичность.There is also a known method for diagnosing allergies - a direct and indirect test of basophil degranulation, based on the detection of activation (degranulation) of immunocompetent basophilic leukocytes of blood sensitized by IgE when exposed to such cells with a specific antigen (Sheley W / Circulating basophile as indicator of hyper-sensitivity in man. - // Arch. Dermal. - 1963. - v.88. - P.759). The method does not require expensive drugs, provides high specificity.

Недостатком данной методики является сложность ее воспроизведения, высокая субъективность полученных результатов, низкая экспрессность, наличие лабораторных животных при постановке непрямого теста.The disadvantage of this technique is the complexity of its reproduction, high subjectivity of the results, low expressivity, the presence of laboratory animals in the formulation of an indirect test.

Известен способ оценки наличия аллергии in vitro путем регистрации активности сенсибилизированных клеток крови по специфическому повреждению (разрушению) нейтрофилов (В.А.Фрадкин. Диагностика аллергии реакциями нейтрофилов крови. - М., 1985).A known method for assessing the presence of allergies in vitro by recording the activity of sensitized blood cells by specific damage (destruction) of neutrophils (V. A. Fradkin. Diagnosis of allergies by reactions of blood neutrophils. - M., 1985).

Для данного подхода общим с заявляемым способом является гипотеза о взаимодействии специфического иммунного комплекса «аллерген (антиген) - антитело» со специфическими рецепторами нейтрофилов.For this approach, the hypothesis about the interaction of a specific immune complex “allergen (antigen) - antibody” with specific neutrophil receptors is common with the claimed method.

К недостаткам рассматриваемого способа следует отнести субъективность при учете результатов реакции, плохую воспроизводимость и большую трудоемкость. Одним из существенных источников ошибок этой методики являются погрешности в приготовлении фиксированных мазков, качестве их окрашивания, а также сложность обеспечения точного подсчета поврежденных клеток до и после инкубации фагоцитов (Н.Д.Беклемишев, Г.С.Суходоева. Аллергия в клинике и эксперименте. - М.: Медицина, 1979).The disadvantages of the method under consideration include subjectivity when taking into account the results of the reaction, poor reproducibility and high complexity. One of the significant sources of errors in this technique is the error in the preparation of fixed smears, the quality of their staining, and the difficulty in ensuring accurate counting of damaged cells before and after incubation of phagocytes (N.D. Beklemishev, G.S. Sukhodoeva. Allergy in the clinic and experiment. - M.: Medicine, 1979).

Наиболее близким к заявляемому способу является способ выявления сенсибилизации организма к бактериальным антигенам с использованием хемилюминесцентного анализа нейтрофилов периферической крови (Н.К.Вознесенский, Н.С.Манеркина. Хемилюминесценция нейтрофилов в аллергодиагностике. // Клинич. лабораторная диагностика. 1999. - №8. - С.18-20), включающая диагностику аллергии у лиц, контактирующих с аллергенами грибкового происхождения (C.albicans).Closest to the claimed method is a method for detecting sensitization of the body to bacterial antigens using chemiluminescent analysis of peripheral blood neutrophils (N.K. Voznesensky, N.S. Manerkina. Chemiluminescence of neutrophils in allergy diagnostics. // Clinical laboratory diagnostics. 1999. - No. 8. . - S.18-20), including the diagnosis of allergies in persons in contact with allergens of fungal origin (C.albicans).

Способ включает в себя следующие этапы:The method includes the following steps:

получение из образца исходной крови нейтрофилов с концентрацией 2×106 кл·мл-1;obtaining from a sample of the original blood neutrophils with a concentration of 2 × 10 6 cells · ml -1 ;

формирование in vitro комплекса антиген-антитело;the formation of an in vitro antigen-antibody complex;

добавление комплекса к суспензии;adding a complex to the suspension;

измерение хемилюминесценции образца суспензии.measurement of chemiluminescence of a suspension sample.

Для получения фракции нейтрофилов используют 1 мл гепаринизированной крови. Взвесь нейтрофилов готовят из цельной гепаринизированной крови методом лизиса эритроцитов. Каждые 300 мкл крови гемолизируют 3 мл 0,083% раствора хлорида аммония, начиная с экспозиции 40 с и уменьшая ее до 20, 10 и 1 с соответственно. Прекращения действия хлорида аммония добиваются введением в смесь 7 мл 1,5 М фосфатного буфера (рН 7,2) с последующей отмывкой клеток путем центрифугирования при 200 g в течение 7 мин и их ресуспендированием в этом же растворе с концентрацией 2×10 кл·мл-1.To obtain the neutrophil fraction, 1 ml of heparinized blood is used. A suspension of neutrophils is prepared from whole heparinized blood by erythrocyte lysis. Every 300 μl of blood hemolyses 3 ml of a 0.083% solution of ammonium chloride, starting with an exposure of 40 s and decreasing it to 20, 10 and 1 s, respectively. The termination of the action of ammonium chloride is achieved by introducing 7 ml of 1.5 M phosphate buffer (pH 7.2) into the mixture, followed by washing the cells by centrifugation at 200 g for 7 min and resuspending them in the same solution with a concentration of 2 × 10 cells · ml -1 .

Для формирования иммунных комплексов in vitro используют различные соотношения аллергена и сыворотки в количестве 20 и 100 мкл соответственно. Аллерген разводят 5% раствором глюкозы.For the formation of immune complexes in vitro using different ratios of allergen and serum in the amount of 20 and 100 μl, respectively. The allergen is diluted with 5% glucose solution.

Хемилюминесцентный анализ проводят с использованием прибора БХЛ-06. В кювету прибора вносят реакционную смесь, содержащую 400 мкл фосфатного буфера (рН 7,6), 100 мкл 5 мМ раствора глюкозы, 100 мкл 0,37 мМ раствора сульфата магния и 200 мкл 0,65 мМ раствора люминола, добавляют 50 мкл лейковзвеси, измеряют уровень спонтанной хемилюминесценции. Затем в кювету вносят 20 мкл сыворотки с иммунными комплексами и регистрируют динамику свечения на протяжении 7-8 мин. В качестве контроля используют аутологическую сыворотку без антигена и раствор антигена без сыворотки. Для оценки результатов используют отношение максимального значения хемилюминесценции (Imax) к уровню стационарного свечения (I0) - так называемый индекс стимуляции (ИС). ИС=Imax/I0.Chemiluminescent analysis is carried out using a BHL-06 device. A reaction mixture containing 400 μl of phosphate buffer (pH 7.6), 100 μl of a 5 mM glucose solution, 100 μl of a 0.37 mm magnesium sulfate solution and 200 μl of a 0.65 mm luminol solution is added to a cuvette of the device, 50 μl of a white suspension are added, measure the level of spontaneous chemiluminescence. Then, 20 μl of serum with immune complexes is added to the cuvette and the luminescence dynamics is recorded for 7-8 minutes. Autologous serum without antigen and a solution of antigen without serum are used as a control. To evaluate the results, the ratio of the maximum value of chemiluminescence (I max ) to the level of stationary luminescence (I 0 ) is used - the so-called stimulation index (IS). IP = I max / I 0 .

Общим с заявляемым способом является принцип индукции хемилюминесцентного свечения нейтрофилов крови за счет воздействия на них преформированным in vitro иммунным комплексом аллергена с антителом.In common with the claimed method is the principle of induction of a chemiluminescent glow of blood neutrophils due to exposure to them by a preformed in vitro immune complex of an allergen with an antibody.

Недостатками рассматриваемого способа являются:The disadvantages of this method are:

многоэтапная процедура лизиса эритроцитов, приводящего к значительному повреждению и гибели до 60-70% нейтрофилов, что отрицательно влияет как на хемилюминесцентную способность, так и существенно снижает концентрацию клеток, т.е. уровень (амплитуду) хемилюминесцентного сигнала.a multi-stage red blood cell lysis procedure that leads to significant damage and death of up to 60-70% of neutrophils, which negatively affects both chemiluminescent ability and significantly reduces cell concentration, i.e. level (amplitude) of the chemiluminescent signal.

Кроме того, для оценки результатов исследований в прототипе в формуле расчета не используется показатель фоновой хемилюминесценции реакционной смеси, что существенно искажает результат измерения. Следует отметить, что использованная в прототипе концентрация нейтрофилов 2×106 кл·мл-1 является недостаточной в условиях измерения для получения статистически значимых различий значений фоновой хемилюминесценции реакционной среды и спонтанной хемилюминесценции нейтрофилов в силу получения низких по абсолютной величине цифр показателя хемилюминесценции (единиц у.е.).In addition, to evaluate the results of studies in the prototype in the calculation formula does not use an indicator of the background chemiluminescence of the reaction mixture, which significantly distorts the measurement result. It should be noted that the concentration of neutrophils used in the prototype 2 × 10 6 cells · ml -1 is insufficient under the measurement conditions to obtain statistically significant differences in the background chemiluminescence of the reaction medium and spontaneous chemiluminescence of neutrophils due to the low absolute values of the chemiluminescence index (units of .e.).

Задачей изобретения является разработка усовершенствованного способа выявления специфической сенсибилизации организма к антигенам на основе регистрации хемилюминесценции нейтрофилов крови in vitro.The objective of the invention is to develop an improved method for identifying specific sensitization of the body to antigens based on the registration of chemiluminescence of blood neutrophils in vitro.

Поставленная задача решается благодаря тому, что что нейтрофилы выделяют в градиенте плотности разделяющей жидкости с последующей отмывкой клеток в щадящем режиме; концентрацию нейтрофилов доводят до (4...6)·106 кл·мл-1, иммунные комплексы получают, смешивая сыворотку крови исследуемого и антиген (аллерген), и инкубируют их; измеряют показатели фонового значения хемилюминесценции среды инкубации, спонтанной хемилюминесценции внесенных в пробу отмытых нейтрофилов и интенсивность хемилюминесценции после добавления в пробу комплекса сыворотки крови и исследуемого аллергена (антигена); вычисляют показатель коэффициента стимуляции; оценку достоверности отличий в показателях до и после стимуляции проводят по результатам не менее чем трехкратных повторных измерений.The problem is solved due to the fact that neutrophils are isolated in the density gradient of the separating liquid, followed by washing the cells in a gentle mode; the neutrophil concentration is adjusted to (4 ... 6) · 10 6 cells · ml -1 , the immune complexes are obtained by mixing the test blood serum and the antigen (allergen), and incubated; measures the background values of the chemiluminescence of the incubation medium, spontaneous chemiluminescence of washed neutrophils introduced into the sample, and the intensity of chemiluminescence after adding a complex of blood serum and the test allergen (antigen) to the sample; calculate the indicator of the coefficient of stimulation; the significance of differences in the indicators before and after stimulation is evaluated based on the results of at least three repeated measurements.

Поставленная задача решается благодаря тому, что:The problem is solved due to the fact that:

на этапе подготовки пробы объем отбираемой у исследуемого крови увеличен до 5 мл гепаринизированной и 5 мл негепаринизированной крови;at the stage of sample preparation, the volume of blood taken from the test blood is increased to 5 ml of heparinized and 5 ml of non-heparinized blood;

на этапе выделения фракции нейтрофилов предусмотрено использование жидкости для разделения клеток (фиколл-верографин, фиколл-гипак, фиколл-урографин или любой коммерческой смеси или жидкости для выделения фракции нейтрофилов);at the stage of separation of the neutrophil fraction, the use of a liquid for separation of cells (ficoll-verographin, ficoll-hypak, ficoll-urographin or any commercial mixture or liquid for isolating the neutrophil fraction) is provided;

выполнение операции предварительной отмывки нейтрофилов в щадящих режимах (1000 об·мин-1), в минимальной степени повреждающих нейтрофильные лейкоциты крови;the operation of preliminary washing of neutrophils in gentle modes (1000 rpm -1 ), minimally damaging neutrophilic white blood cells;

свечение регистрируется на доступном для большинства лабораторий люминометре;the luminescence is recorded on a luminometer accessible to most laboratories;

в качестве жидкости, разводящей суспензию нейтрофилов, используется коммерческий раствор Хенкса (рН 7,4), благодаря которому обеспечиваются оптимальные условия для сохранения жизнеспособности клеток;as a liquid diluting a suspension of neutrophils, a commercial Hanks solution (pH 7.4) is used, due to which optimal conditions for maintaining cell viability are ensured;

по результатам регистрации хемилюминесцентного свечения рассчитывают коэффициент стимуляции хемилюминесценции и определяется уровень значимости его величины.based on the results of registration of the chemiluminescent glow, the stimulation coefficient of chemiluminescence is calculated and the significance level of its magnitude is determined.

Способ включает следующие этапы:The method includes the following steps:

1. Получение из образца исследуемой крови суспензии нейтрофилов с концентрацией (4-6)·106 кл·мл-1;1. Obtaining from a sample of the studied blood a suspension of neutrophils with a concentration of (4-6) · 10 6 cells · ml -1 ;

2. Формирование in vitro комплекса «антиген-сыворотка крови»;2. Formation of the in vitro complex "antigen-blood serum";

3. Измерение уровня фоновой хемилюминесценции реакционной среды, хемилюминесценции нейтрофилов спонтанной и после добавления комплекса «антиген-сыворотка крови».3. Measurement of the background chemiluminescence level of the reaction medium, the neutrophil chemiluminescence spontaneous and after adding the complex "antigen-blood serum."

Этап 1. Для получения суспензии нейтрофилов используют 5 мл гепаринизированной крови. Пробу крови инкубируют в термостате при 37°С в течение 40 мин. Отбирают надосадочную жидкость (плазму), содержащую фракцию лейкоцитов, и наслаивают на 5 мл разделяющей жидкости, центрифугируют в течение 15 мин при 1500 об·мин-1. В результате происходит разделение образца на три слоя. Нижний слой состоит из разделяющей жидкости, в среднем слое находится фракция нейтрофилов, в верхнем слое - плазма крови. Осторожно с помощью пластиковой пипетки собирают фракцию нейтрофилов. Выделенные клетки ресуспендируют и отмывают бесцветным раствором Хенкса в течение 10 мин при 1000 об·мин-1. Концентрацию нейтрофильных лейкоцитов доводят до (4-6)·106 кл·мл-1, разводя раствором Хенкса.Stage 1. To obtain a suspension of neutrophils using 5 ml of heparinized blood. A blood sample is incubated in an incubator at 37 ° C for 40 minutes. The supernatant (plasma) containing the leukocyte fraction is taken and layered on 5 ml of separating liquid, centrifuged for 15 min at 1500 rpm -1 . As a result, the sample is divided into three layers. The lower layer consists of a separating liquid, the middle layer contains the neutrophil fraction, and the upper layer contains blood plasma. A neutrophil fraction is collected carefully with a plastic pipette. The isolated cells are resuspended and washed with a colorless Hanks solution for 10 min at 1000 rpm -1 . The concentration of neutrophilic leukocytes is adjusted to (4-6) · 10 6 cells · ml -1 , diluted with Hanks solution.

Этап 2. Для формирования иммунных комплексов in vitro используют сыворотку крови исследуемого и антиген (аллерген). Сыворотку получают из того же отобранного образца негепаринизированной крови путем центрифугирования при скорости 1500 об·мин-1 в течение 15 мин. Разведения антигенов готовят на физиологическом растворе. Равные количества сыворотки и раствора антигена (по 0,1 мл) инкубируют при 37±1°С в течение 40 мин.Stage 2. For the formation of immune complexes in vitro, the test blood serum and antigen (allergen) are used. Serum is obtained from the same sample of non-heparinized blood by centrifugation at a speed of 1500 rpm -1 for 15 minutes Dilutions of antigens are prepared in physiological saline. Equal amounts of serum and antigen solution (0.1 ml each) are incubated at 37 ± 1 ° C for 40 minutes.

Этап 3. Измерение уровня хемилюминесценции осуществляют с помощью хемилюминометра.Step 3. Measurement of the level of chemiluminescence is carried out using a chemiluminometer.

В кюветы прибора вносят 0,7...0,9 мл раствора Хенкса, добавляют 0,1 мл 0,1...0,5 мМ раствора люминола и определяют уровень фоновой хемилюминесценции. Затем добавляют 0,1 мл подготовленной, как указано выше, суспензии нейтрофилов, перемешивают, инкубируют 5 мин и измеряют уровень спонтанной хемилюминесценции, при этом регистрация значений проводится в промежутке от 5 до 40 мин с момента окончания периода инкубации суспензии нейтрофилов. Для индукции хемилюминесцентного ответа нейтрофилов в пробу вносят 0,1 мл сформированного in vitro комплекса «антиген-сыворотка крови», вновь фиксируют интенсивность хемилюминесценции. Результаты оценивают по показателю коэффициента стимуляции (КС) хемилюминесценции, который определяют по формуле:0.7 ... 0.9 ml of Hanks solution is added to the cuvettes of the device, 0.1 ml of 0.1 ... 0.5 mM luminol solution is added and the level of background chemiluminescence is determined. Then add 0.1 ml of the prepared, as described above, suspension of neutrophils, mix, incubate for 5 minutes and measure the level of spontaneous chemiluminescence, while the values are recorded in the interval from 5 to 40 minutes from the end of the incubation period of the suspension of neutrophils. To induce a chemiluminescent neutrophil response, 0.1 ml of the antigen-serum complex formed in vitro is added to the sample, and the chemiluminescence intensity is again recorded. The results are evaluated by the rate of stimulation coefficient (CS) of chemiluminescence, which is determined by the formula:

Figure 00000001
Figure 00000001

где В - уровень ХЛ после стимуляции, мВ;where B is the level of CL after stimulation, mV;

Б - уровень спонтанной ХЛ, мВ;B - level of spontaneous CL, mV;

А - уровень фоновой ХЛ, мВ.A is the level of background CL, mV.

и при значении КС≥0,3 диагностируют аллергическую реакцию.and with a value of COP ≥ 0.3 diagnosed with an allergic reaction.

Для повышения достоверности результатов регистрируют хемилюминесценцию образцов, приготовленных не менее чем в трех повторностях (независимо приготовленных из исходной суспензии нейтрофилов), определяют среднее арифметическое и доверительный интервал с 95% уровнем вероятности.To increase the reliability of the results, the chemiluminescence of samples prepared in at least three replicates (independently prepared from the initial neutrophil suspension) is recorded, and the arithmetic mean and confidence intervals are determined with a 95% probability level.

По результатам исследований определяют уровень значимости коэффициента стимуляции хемилюминесценции. Коэффициент стимуляции значимый при условии наличия статистически значимых различий значений уровня спонтанной хемилюминесценции нейтрофилов и хемилюминесценции после стимуляции комплексом «антиген-сыворотка крови», т.е. доверительные интервалы средних величин этих показателей не перекрываются. Наличие причинно-следственной связи между совокупностью существенных признаков заявляемого объекта и достигаемыми техническими результатами показано в таблице 1.According to the research results, the significance level of the chemiluminescence stimulation coefficient is determined. The stimulation coefficient is significant provided that there are statistically significant differences between the levels of spontaneous neutrophil chemiluminescence and chemiluminescence after stimulation with the antigen-blood serum complex, i.e. confidence intervals of the average values of these indicators do not overlap. The presence of a causal relationship between the totality of the essential features of the claimed object and the achieved technical results are shown in table 1.

Возможность осуществления предлагаемого способа показана в следующих примерах.The possibility of implementing the proposed method is shown in the following examples.

Пример 1. Оценка количества нейтрофилов при получении суспензии клеток с помощью разделяющей жидкости и методом лизиса эритроцитов.Example 1. Evaluation of the number of neutrophils in obtaining a suspension of cells using a separating fluid and the method of lysis of red blood cells.

Этапы получения суспензии нейтрофилов с помощью жидкости для разделения клеток проводили согласно заявляемому способу, описанному выше, получение нейтрофилов методом лизиса эритроцитов проводили по вышеописанной методике Н.К.Вознесенского (прототип).The stages of obtaining a suspension of neutrophils using a liquid for separating cells was carried out according to the claimed method described above, the production of neutrophils by the method of erythrocyte lysis was carried out according to the method described above by N.K. Voznesensky (prototype).

Из представленных в таблице 2 данных следует, что при выделении фракции нейтрофилов из крови людей при помощи разделяющей жидкости наблюдается гибель 4-8% клеток, в то время как гибель нейтрофилов, выделенных методом лизиса эритроцитов, составила 68-82%.From the data presented in table 2, it follows that when the neutrophil fraction is isolated from the blood of people using a separating liquid, 4-8% of the cells are killed, while the death of neutrophils isolated by the erythrocyte lysis method was 68-82%.

Пример 2. Оценка хемилюминесцентной реакции нейтрофилов (спонтанная хемилюминесценция) при подготовке образца клеток с использованием разделяющей жидкости и методом лизиса эритроцитов.Example 2. Evaluation of the chemiluminescent reaction of neutrophils (spontaneous chemiluminescence) in the preparation of a sample of cells using a separating liquid and erythrocyte lysis.

Для исследования использовали суспензию нейтрофилов, полученную в опыте 1. Хемилюминесцентную реакцию нейтрофилов измеряли с помощью люминометра LKB-1251. Реакционные среды готовили согласно описанным выше методикам, при этом концентрация клеток составила (4-6)·106 кл·мл-1 в заявляемом способе и (1-2)·106 кл·мл-1 - в прототипе.The neutrophil suspension obtained in experiment 1 was used for the study. The chemiluminescent neutrophil response was measured using an LKB-1251 luminometer. The reaction medium was prepared according to the methods described above, while the cell concentration was (4-6) · 10 6 cells · ml -1 in the present method and (1-2) · 10 6 cells · ml -1 in the prototype.

Анализ результатов регистрации хемилюминесценции, представленных в таблице 3, показал, что уровень спонтанной хемилюминесценции нейтрофилов, выделенных по методике заявляемого способа значительно выше, чем в случае выделения клеток по методике, предложенной в прототипе, кроме того, при регистрации хемилюминесценции нейтрофилов, полученных по методике Н.К.Вознесенского, отмечается отсутствие статистически значимых различий интенсивности уровня фоновой и спонтанной хемилюминесценции.Analysis of the results of the registration of chemiluminescence, presented in table 3, showed that the level of spontaneous chemiluminescence of neutrophils isolated by the method of the proposed method is significantly higher than in the case of isolation of cells by the method proposed in the prototype, in addition, when registering chemiluminescence of neutrophils obtained by the method of N .K. Voznesensky, there is a lack of statistically significant differences in the intensity of the level of background and spontaneous chemiluminescence.

Пример 3. Оценка уровня сенсибилизации организма морских свинок, однократно иммунизированных бруцеллезной вакциной.Example 3. Assessment of the level of sensitization of the body of guinea pigs, once immunized with brucellosis vaccine.

Выявление феномена специфической аллергизации в ответ на введение вакцин было проведено на морских свинках - животных, рекомендованных для оценки побочного действия вакцин, с использованием живой коммерческой бруцеллезной вакцины (шт. 19-ВА), которую вводили подкожно по 0,5 мл с концентрацией 2·109 КОЕ·мл-1. Хемилюминесцентную реакцию нейтрофилов морских свинок оценивали на 35 сутки после иммунизации, при этом конечная концентрация нейтрофилов составила 2·106 кл·мл-1. В качестве специфического антигена в этих опытах использовали коммерческий препарат бруцеллина. Для определения специфичности хемилюминесцентной реакции к бруцеллезному антигену в качестве неспецифического антигена применяли коммерческий препарат тулярина. Одновременно выполняли реакцию лейколизиса и постановку кожной пробы с использованием бруцеллина.The specific allergization phenomenon in response to vaccines was detected in guinea pigs - animals recommended for evaluating the side effects of vaccines, using a live commercial brucellosis vaccine (pcs. 19-VA), which was administered subcutaneously at 0.5 ml with a concentration of 2 · 10 9 CFU · ml -1 . The chemiluminescent reaction of guinea pig neutrophils was evaluated 35 days after immunization, with a final concentration of neutrophils of 2 · 10 6 cells · ml -1 . In these experiments, the commercial drug brucellin was used as a specific antigen. To determine the specificity of the chemiluminescent reaction to brucellosis antigen, the commercial preparation of tularine was used as a non-specific antigen. At the same time, a leukolysis reaction and a skin test were performed using brucellin.

Из данных, представленных в таблице 4, видно, что в группе животных у 11 из 20 (55%) иммунизированных морских свинок отмечалось значительное повышение уровня хемилюминесценции после индукции специфическим комплексом антиген - антитело в сравнении со значениями показателя спонтанной хемилюминесценции (р<0,05). У остальных 9 животных значение показателя хемилюминесценции после воздействия бруцеллина не отличались от уровня спонтанной хемилюминесценции (р>0,05) что свидетельствует об отсутствии стимуляции ХЛ нейтрофилов специфическим аллергеном данных животных. По результатам статистического анализа значимый уровень КС хемилюминесценции в этих исследованиях составил ≥0,71. В этой же группе животных наблюдались выраженные реакции при кожной пробе и положительная реакция лейколизиса. Статистический анализ результатов оценки коэффициента стимуляции хемилюминесценции, кожной пробы и реакции лейколизиса у опытных животных показали их хорошую сходимость (коэффициент корреляции Спирмена 0,879 (р<0,001) и 0,795 (р<0,001) для кожной пробы и лейколизиса соответственно). При анализе результатов изменения интенсивности хемилюминесценции нейтрофилов крови иммунизированных морских свинок после добавления неспецифического комплекса тулярин-сыворотка достоверно отмечается отсутствие стимуляции хемилюминесценции лейкоцитов. Этот факт свидетельствует о специфическом характере индукции хемилюминесцентной реакции нейтрофильных лейкоцитов антигенами бруцеллезной вакцины.From the data presented in table 4, it is seen that in the group of animals, 11 out of 20 (55%) immunized guinea pigs showed a significant increase in the level of chemiluminescence after induction by a specific antigen-antibody complex in comparison with the values of the spontaneous chemiluminescence index (p <0.05 ) In the remaining 9 animals, the value of the chemiluminescence index after exposure to brucellin did not differ from the level of spontaneous chemiluminescence (p> 0.05), which indicates the absence of CL stimulation of neutrophils by a specific allergen of these animals. According to the results of statistical analysis, a significant level of chemiluminescence CS in these studies was ≥0.71. In the same group of animals, pronounced reactions with a skin test and a positive leukolysis reaction were observed. Statistical analysis of the results of the evaluation of the chemiluminescence stimulation coefficient, skin test and leukolysis reaction in experimental animals showed their good convergence (Spearman correlation coefficient 0.879 (p <0.001) and 0.795 (p <0.001) for skin test and leukolysis, respectively). When analyzing the results of changes in the intensity of chemiluminescence of blood neutrophils of immunized guinea pigs after the addition of a non-specific complex of tularine-serum, there is a significant absence of stimulation of chemiluminescence of leukocytes. This fact indicates the specific character of the induction of the chemiluminescent reaction of neutrophilic leukocytes by antigens of the brucellosis vaccine.

Пример 4. Оценка уровня сенсибилизации организма людей, однократно и многократно иммунизированнных туляремийной, бруцеллезной и сибиреязвенной вакцинами.Example 4. Assessment of the level of sensitization of the human body, once and repeatedly immunized with tularemia, brucellosis and anthrax vaccines.

Хемилюминесцентный анализ нейтрофилов людей, иммунизированных туляремийной вакциной, осуществляли в соответствии с методикой заявляемого способа. В ходе хемилюминесцентного анализа для стимулирования нейтрофильных лейкоцитов крови лиц, иммунизированных бруцеллезной вакциной, использовали бруцеллин, туляремийной вакциной - тулярин, сибиреязвенной вакциной - антраксин. Кроме того, для оценки специфичности хемилюминесцентной реакции нейтрофилов осуществляли индукцию хемилюминесценции клеток иммунизированных лиц неспецифическими антигенами.Chemiluminescent analysis of neutrophils of people immunized with tularemia vaccine was carried out in accordance with the method of the proposed method. In the course of chemiluminescent analysis, brucellin was used to stimulate neutrophilic leukocytes of the blood of individuals immunized with a brucellosis vaccine, tularemia vaccine was used tularine, and anthraxin was used for anthrax vaccine. In addition, to assess the specificity of the neutrophil chemiluminescent reaction, chemiluminescence of cells of immunized individuals was induced by nonspecific antigens.

В целях сравнения результатов разных методов оценки сенсибилизации людей, иммунизированных бруцеллезной, туляремийной и сибиреязвенными вакцинами, выполняли реакцию лейколизиса с соответствующими антигенами (бруцеллином, тулярином или антраксином), постановку кожной пробы с антраксином (у первично привитых сибиреязвенной вакциной) и определяли уровень общего IgE в сыворотке крови методом иммуноферментного анализа. Результаты исследований представлены в таблице 5.In order to compare the results of different methods for assessing the sensitization of people immunized with brucellosis, tularemia and anthrax vaccines, a leukolysis reaction was performed with the corresponding antigens (brucellin, tularia or anthraxin), a skin test was performed with anthraxin (in primary vaccinated with anthrax vaccine), the level was determined serum enzyme-linked immunosorbent assay. The research results are presented in table 5.

Как видно из данных, представленных в таблице 5, хемилюминесцентный анализ нейтрофилов крови людей, однократно и неоднократно иммунизированных против туляремии, показал повышение уровня ХЛ нейтрофилов после индукции клеток тулярином, значимый уровень КС ХЛ у этих людей составил ≥0,3. При этом у привитых туляремийной вакциной с резковыраженной и сильной ХЛ реакцией на антиген одновременно отмечались положительные и резко положительные реакции лейколизиса с тулярином (коэффициент корреляции Спирмена в этих исследованиях ставил 0,863, р<0,01).As can be seen from the data presented in table 5, a chemiluminescent analysis of blood neutrophils from people once and repeatedly immunized against tularemia showed an increase in the level of neutrophil CL after induction of cells by tularine, a significant level of CL CL in these people was ≥0.3. At the same time, in vaccinated with tularemia vaccine with a pronounced and strong CL reaction to the antigen, positive and sharply positive reactions of leukolysis with tularin were simultaneously observed (Spearman's correlation coefficient in these studies was 0.863, p <0.01).

В результате анализа хемилюминесцентной реакции нейтрофилов крови людей, иммунизированных бруцеллезной вакциной, было установлено достоверное повышение уровня ХЛ нейтрофилов после стимулирования клеток иммунным комплексом. Значимый уровень КС ХЛ у этих исследуемых составил ≥0,30. Статистический анализ результатов применения метода регистрации ХЛ нейтрофилов и реакции лейколизиса показал высокую корреляцию (r=0,929, р<0,001). При анализе результатов определения хемилюминесцентной реакции нейтрофилов людей, однократно и неоднократно привитых сибиреязвенной вакциной, была установлена повышенная реакция на антраксин. Значимый уровень КС ХЛ в этих исследованиях составил ≥0,32. Высокая степень надежности подтверждена при постановки реакции лейколизиса и кожной пробы на антраксин, при этом коэффициент корреляции Спирмена составил 0,762 (р<0,05) и 0,875 (р<0,01) соответственно.An analysis of the chemiluminescent reaction of blood neutrophils from people immunized with a brucellosis vaccine revealed a significant increase in the level of neutrophil CL after stimulation of the cells with the immune complex. A significant level of CL CS in these subjects was ≥0.30. A statistical analysis of the results of applying the neutrophil CL detection method and leukolysis reaction showed a high correlation (r = 0.929, p <0.001). When analyzing the results of determining the chemiluminescent reaction of neutrophils in people once and repeatedly vaccinated with an anthrax vaccine, an increased reaction to anthraxin was established. A significant level of CL CS in these studies was ≥0.32. A high degree of reliability was confirmed when the reaction of leukolysis and a skin test to anthraxin was formulated, while the Spearman correlation coefficient was 0.762 (p <0.05) and 0.875 (p <0.01), respectively.

Таким образом, аллергическая перестройка организма происходит индивидуально и по КС ХЛ может колебаться в широких диапазонах от полного отсутствия стимуляции ХЛ до значительного повышения значений этого показателя. Необходимо отметить, что наибольшим сенсибилизирующим действием обладает туляремийная вакцина и меньшим - сибиреязвенная.Thus, allergic restructuring of the body occurs individually and according to CL CL can vary in wide ranges from the complete absence of CL stimulation to a significant increase in the values of this indicator. It should be noted that tularemia vaccine has the greatest sensitizing effect and anthrax ulcer less.

Пример 5. Хемилюминесценция нейтрофилов людей, имеющих аллергические реакции на аллергены пера подушки.Example 5. Chemiluminescence of neutrophils of people with allergic reactions to allergens feather pillows.

Для исследования использовали суспензию нейтрофилов людей, имеющих повышенную чувствительность к аллергенам пера подушки. Работу по выявлению специфической сенсибилизации проводили согласно описанной выше методике. В качестве специфического стимулятора хемилюминесцентной реакции нейтрофилов у лиц с повышенной чувствительностью к аллергену пера подушки использовали коммерческий препарат аллергена пера подушки, в качестве неспецифического антигена - бруцеллин. Одновременно проводили реакцию лейколизиса со специфическим аллергеном.For the study, a suspension of neutrophils of people with hypersensitivity to allergens feather pillows was used. The work to identify specific sensitization was carried out according to the method described above. As a specific stimulator of the chemiluminescent reaction of neutrophils in individuals with hypersensitivity to the pillow feather allergen, a commercial pill pill allergen preparation was used, and brucellin was used as a non-specific antigen. At the same time, a leukolysis reaction with a specific allergen was carried out.

Анализ данных, представленных в таблице 6, показывает, что значения КС ХЛ людей, имеющих аллергию к перу подушки, составили от 1,12 до 3,12. Одновременно отмечается отсутствие стимуляции хемилюминесценции нейтрофилов крови людей при воздействии неспецифического антигена.An analysis of the data presented in table 6 shows that the CL CS values of people who are allergic to pillow feathers ranged from 1.12 to 3.12. At the same time, there is a lack of stimulation of chemiluminescence of human neutrophils when exposed to a nonspecific antigen.

Таблица 1.
Сведения о причинно-следственной связи между совокупностью существенных признаков заявляемого объекта и достигаемыми техническими результатами.
Table 1.
Information about the causal relationship between the totality of the essential features of the claimed object and the achieved technical results.
Виды технического результата и их размерностьTypes of technical result and their dimension Показатели фактические или расчетныеActual or Estimated Indicators Объяснение за счет чего (отличительный признак и/или их совокупность) стало возможным улучшение показателей предложенного объекта по сравнению с прототипомThe explanation of what (the hallmark and / or their combination) made it possible to improve the performance of the proposed object in comparison with the prototype прототипаprototype заявляемого объектаthe claimed object Способ получения суспензии нейтрофилов.A method of obtaining a suspension of neutrophils. Многоэтапный лизис эритроцитов хлоридом аммония с последующей отмывкой фосфатным буфером.Multi-stage lysis of red blood cells with ammonium chloride, followed by washing with phosphate buffer. Одноэтапное выделение клеток с помощью разделяющей жидкости, однократная отмывка раствором Хенкса.One-stage cell isolation using a separating liquid, a single wash with Hanks solution. Одностадийное выделение фракции нейтрофилов позволяет уменьшить повреждение клеток, получить суспензию нейтрофилов с большим содержанием жизнеспособных высокоактивных нейтрофильных лейкоцитов, с меньшим количеством примесей, что обеспечивает более качественный анализ.Single-stage isolation of the neutrophil fraction allows to reduce cell damage, to obtain a neutrophil suspension with a high content of viable highly active neutrophilic leukocytes, with fewer impurities, which provides a better analysis. Концентрация нейтрофилов в конечной пробе, кл·мл-1.The concentration of neutrophils in the final sample, cells · ml -1 . 2·106 2 · 10 6 (4-6)·106 (4-6) · 10 6 Увеличение концентрации нейтрофилов наряду с улучшенным их качеством (жизнеспособностью) обеспечивает увеличение абсолютных регистрируемых показателей хемилюминесценции, получение статистически значимых различий величин интенсивности фоновой и спонтанной хемилюминесценции.An increase in the concentration of neutrophils, along with their improved quality (viability), provides an increase in the absolute recorded chemiluminescence indices, obtaining statistically significant differences in the intensities of the background and spontaneous chemiluminescence. Показатель фоновой хемилюминесценции при вычислении результатов измерения.The indicator of background chemiluminescence in calculating the measurement results. Не учитываетсяNot taken into account УчитываетсяTaken into account Учет результатов фоновой хемилюминесценциии обеспечивает повышение достоверности анализа.Taking into account the results of background chemiluminescence provides an increase in the reliability of the analysis. Состав среды инкубации.The composition of the incubation medium. Фосфатный буфер, рН 7,6-0,4 мл; глюкоза 5 мМ - 0,1 мл; MgSO4 0,37 мМ - 0,1 мл; люминол 0,65 мМ - 0,2 млPhosphate buffer, pH 7.6-0.4 ml; glucose 5 mm - 0.1 ml; MgSO 4 0.37 mmol - 0.1 ml; luminol 0.65 mm - 0.2 ml Раствор Хенкса, рН 7,4 - 0,7 мл; люминол 1 мМ - 0,1 млHanks solution, pH 7.4 - 0.7 ml; luminol 1 mm - 0.1 ml Использование коммерческого раствора Хенкса обеспечивает оптимальные условия для поддержания жизнеспособности нейтрофилов, сохранение стабильной величины рН.The use of a commercial Hanks solution provides optimal conditions for maintaining the viability of neutrophils, maintaining a stable pH value. Повторность числа измерений уровня хемилюминесценции.The repetition of the number of measurements of the level of chemiluminescence. Отсутствует.Absent. Не менее чем в трех повторностях.In at least three replicates. Повторная регистрация хемилюминесценции образца обеспечивает повышение достоверности результатов исследования.Re-registration of the chemiluminescence of the sample provides an increase in the reliability of the results of the study. Оценка достоверности отличий в показателях хемилюминесценции до и после стимуляции.Assessment of the significance of differences in chemiluminescence indices before and after stimulation. Не определяется.Not determined. Определяется.It is determined. Оценка достоверности отличий в показателях до и после стимуляции нейтрофильных лейкоцитов позволяет определить факт стимуляции нейтрофилов специфическим иммунным комплексом.Assessment of the significance of differences in indicators before and after stimulation of neutrophilic leukocytes allows one to determine the fact of neutrophil stimulation by a specific immune complex.

Таблица 2.
Количество жизнеспособных нейтрофилов при различных способах подготовки клеток.
Table 2.
The number of viable neutrophils in various cell preparation methods.
№ пробыSample number Доля жизнеспособных нейтрофилов при выделении клеток (%)

Figure 00000002
The proportion of viable neutrophils in the selection of cells (%)
Figure 00000002
с помощью разделяющей жидкости (по предлагаемому способу)using a separating liquid (by the proposed method) методом лизиса эритроцитов (по прототипу)erythrocyte lysis (prototype) 1one 94±0,1894 ± 0.18 25±0,3125 ± 0.31 22 92±0,4492 ± 0.44 32±0,1232 ± 0.12 33 95±0,4395 ± 0.43 18±0,2418 ± 0.24 4four 95±0,4195 ± 0.41 19±0,1719 ± 0.17 55 96±0,7896 ± 0.78 20±0,2120 ± 0.21 Средняя для выборочных среднихMedium for sample averages 94,2±1,594.2 ± 1.5 22,8±5,822.8 ± 5.8 Таблица 3.
Показатели хемилюминесценции образцов проб крови при различных режимах подготовки суспензии нейтрофилов.
Table 3.
Chemiluminescence indices of blood samples under various modes of preparation of a suspension of neutrophils.
№ пробыSample number Способ разделения нейтрофиловThe method of separation of neutrophils Интенсивность хемилюминесценции
Figure 00000003
мВ
Chemiluminescence intensity
Figure 00000003
mV
фоновойbackground спонтаннойspontaneous 1one С помощью разделяющей жидкости (по предложенному способу).Using a separating liquid (according to the proposed method). 0,698±0,0070.698 ± 0.007 4,174±0,5144.174 ± 0.514 22 0,762±0,0080.762 ± 0.008 6,646±0,3536.646 ± 0.353 33 0,696±0,0040.696 ± 0.004 4,752±0,3854.752 ± 0.385 4four 0,681±0,0080.681 ± 0.008 4,512±0,2274.512 ± 0.227 55 0,762±0,0070.762 ± 0.007 6,438±0,1166.438 ± 0.116 1one Методом лизиса эритроцитов (по прототипу).The method of lysis of red blood cells (prototype). 0,697±0,0670.697 ± 0.067 1,007±0,2611.007 ± 0.261 22 0,865±0,0820.865 ± 0.082 1,114±0,1071.114 ± 0.107 33 0,781±0,1540.781 ± 0.154 0,757±0,0480.757 ± 0.048 4four 0,759±0,2030.759 ± 0.203 0,821±0,2060.821 ± 0.206 55 0,875±0,2030.875 ± 0.203 0,862±0,1340.862 ± 0.134

Figure 00000004
Figure 00000005
Figure 00000004
Figure 00000005

Таблица 5.
Сравнительная характеристика методов диагностики аллергии у людей, однократно и неоднократно иммунизированных туляремийной, бруцеллезной и сибиреязвенной вакцинами.
Table 5.
Comparative characteristics of diagnostic methods for allergies in people once and repeatedly immunized with tularemia, brucellosis and anthrax vaccines.
Условный номер иследуемогоConventional number of the subject Наименование вакциныVaccine name Коэффициент стимуляции, усл.ед.The coefficient of stimulation, conventional units Коэффициент лейколизиса, усл.ед.Leukolysis coefficient, conventional units Кожная проба, ммSkin test, mm Общий IgE, МЕ·мл-1 Total IgE, IU · ml -1 1one туляремийнаяtularemia 1,801.80 1,801.80 -- 410410 22 4,304.30 4.304.30 -- 62,662.6 33 0,340.34 0,340.34 -- 257,6257.6 4four 0,960.96 0,960.96 -- 132,9132.9 55 1,621,62 1,621,62 -- 26,026.0 66 3,463.46 3,463.46 -- 404404 77 «0»"0" «0»"0" -- 14,514.5 88 «0»"0" «0»"0" -- 44,444,4 99 бруцеллезнаяbrucellosis «0»"0" «0»"0" -- 12,512.5 1010 1,831.83 0,310.31 -- 28,228,2 11eleven 2,962.96 0,400.40 -- 501,3501.3 1212 1,061.06 0,310.31 -- 279,9279.9 1313 «0»"0" 0,180.18 -- 47,547.5 14fourteen 0,300.30 0,140.14 -- 64,164.1 15fifteen 0,910.91 0,280.28 -- 187,3187.3 1616 «0»"0" «0»"0" -- 75,675.6 1717 сибиреязвеннаяanthrax «0»"0" «0»"0" 1313 40,440,4 18eighteen «0»"0" «0»"0" 1616 187,3187.3 1919 0,370.37 0,40.4 4040 75,675.6 20twenty «0»"0" 0,110.11 15fifteen 0,10.1 2121 «0»"0" 0,180.18 20twenty 31,131.1 2222 «0»"0" 0,120.12 18eighteen 29,829.8 2323 0,440.44 0,280.28 4040 149149 2424 0,350.35 0,120.12 2525 26,326.3 Примечания: 1 «0» - коэффициент стимуляции меньше значимого уровня;
2 - - не определяли
Notes: 1 “0” - stimulation coefficient less than a significant level;
2 - - not determined

Таблица 6.
Показатели хемилюминесценции образцов проб крови людей, при оценке сенсибилизации к аллергену пера подушки.
Table 6.
Chemiluminescence indices of human blood samples when evaluating sensitization to pillow feather allergen.
Условный номер исследуемогоConditional number of the researched Уровень фоновой хемилюминесценции (X±I95), мВThe level of background chemiluminescence (X ± I 95 ), mV Интенсивность хемилюминесценции нейтрофилов

Figure 00000006
мВ:Neutrophil chemiluminescence intensity
Figure 00000006
mV: Значения показателей при использовании туляринаValues when using tularine спонтаннойspontaneous После добавления комплекса сыворотка с...After adding the complex, serum with ... Коэффициент стимуляции, усл.ед.The coefficient of stimulation, conventional units Коэффициент лейколизиса, усл.ед.Leukolysis coefficient, conventional units аллергеном пера пуха подушкиfeather pillow allergen бруцеллиномbrucellin 1one 0,842±0,0040.842 ± 0.004 4,174±0,3564.174 ± 0.356 14,570±0,48314.570 ± 0.483 5,035±0,1265.035 ± 0.126 3,123.12 0,240.24 22 0,811±0,0060.811 ± 0.006 6,646±0,2516.646 ± 0.251 13,181±0,75813.181 ± 0.758 6,870±0,5436.870 ± 0.543 1,121.12 0,280.28 33 0,769±0,0050.769 ± 0.005 5,364±0,1395.364 ± 0.139 5,257±0,1075.257 ± 0.107 5,408±0,0875,408 ± 0,087 «0»*"0" * 0,120.12 4four 0,711±0,0060.711 ± 0.006 6,943±0,2656.943 ± 0.265 6,457±0,5206.457 ± 0.520 6,704±0,1836,704 ± 0,183 «0»*"0" * «0»"0" 55 0,837±0,0080.837 ± 0.008 4,752±0,1494,752 ± 0,149 9,646±0,5439.646 ± 0.543 5,251±0,1275.251 ± 0.127 1,251.25 0,110.11 66 0,753±0,0070.753 ± 0.007 5,815±0,0745.815 ± 0.074 6,009±0,2356.009 ± 0.235 5,819±0,5045.819 ± 0.504 «0»*"0" * «0»"0" 77 0,802±0,0080.802 ± 0.008 5,448±0,1275,448 ± 0,127 5,639±0,1545.639 ± 0.154 5,085±0,4965.085 ± 0.496 «0»*"0" * 0,120.12 Примечания: 1 «0»* - коэффициент стимуляции меньше значимого уровня;
2 «0» - коэффициент лейколизиса отрицательный
Notes: 1 "0" * - stimulation coefficient less than a significant level;
2 "0" - negative leukolysis coefficient

Claims (2)

1. Способ аллергодиагностики, включающий выделение нейтрофильных лейкоцитов, формирование иммунных комплексов и измерение уровней хемилюминесценции, отличающийся тем, что нейтрофильные лейкоциты выделяют путем наслаивания плазмы крови на разделяющую жидкость и центрифугирования 15 мин при 1500 об/мин, фракцию нейтрофилов выделяют из среднего слоя, ресуспендируют и отмывают средой Хенкса, концентрацию нейтрофильных лейкоцитов раствором Хенкса доводят до 4·106-6·106 кл/мл, формирование иммунных комплексов проводят путем смешивания равных количеств исследуемой сыворотки крови и антигена, приготовленного на физиологическом растворе, инкубируют 40 мин при 37°С, измеряют фоновую люминесценцию среды инкубации (А), состоящей из 0,7-0,9 мл раствора Хенкса и 0,1 мл 0,1-0,5 мМ раствора люминола, добавляют 0,1 мл суспензии нейтрофилов, инкубируют 5 мин и измеряют уровень спонтанной хемилюминесценции (Б) в промежутке времени 5-40 мин с момента окончания периода инкубации нейтрофилов, затем вносят 0,1 мл сформированного иммунного комплекса и определяют значение стимулированной хемилюминесценции (В), вычисляют коэффициент стимуляции по формуле1. The method of allergic diagnostics, including the selection of neutrophilic leukocytes, the formation of immune complexes and the measurement of chemiluminescence levels, characterized in that neutrophilic leukocytes are isolated by layering blood plasma on a separating liquid and centrifuged for 15 min at 1500 rpm, the neutrophil fraction is isolated from the middle layer, resuspended and washed with Hanks' medium, concentration of neutrophilic leucocytes Hank's solution is adjusted to 4 × 10 6 -6 10 6 cells / ml, the formation of immune complexes is carried out by mixing equal the amount of test blood serum and antigen prepared in physiological saline, incubated for 40 min at 37 ° C, measure the background luminescence of the incubation medium (A), consisting of 0.7-0.9 ml of Hanks solution and 0.1 ml of 0.1- 0.5 mmoluminolum solution, add 0.1 ml of a suspension of neutrophils, incubate for 5 minutes and measure the level of spontaneous chemiluminescence (B) over a period of 5-40 minutes from the end of the incubation period of neutrophils, then add 0.1 ml of the formed immune complex and determine the value of stimulated chemiluminescence (B ), calculate the stimulation coefficient according to the formula
Figure 00000007
Figure 00000007
и при значении КС≥0,3 диагностируют аллергическую реакцию.and with a value of COP ≥ 0.3 diagnosed with an allergic reaction.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что оценку показателей проводят по результатам не менее трех повторных измерений.2. The method according to claim 1, characterized in that the evaluation of the indicators is carried out according to the results of at least three repeated measurements.
RU2004136502/15A 2004-12-14 2004-12-14 Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils RU2289138C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004136502/15A RU2289138C2 (en) 2004-12-14 2004-12-14 Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004136502/15A RU2289138C2 (en) 2004-12-14 2004-12-14 Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2004136502A RU2004136502A (en) 2006-05-20
RU2289138C2 true RU2289138C2 (en) 2006-12-10

Family

ID=36658303

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004136502/15A RU2289138C2 (en) 2004-12-14 2004-12-14 Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2289138C2 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA018686B1 (en) * 2012-07-04 2013-09-30 ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ "ДИСофт" Method for determining functional condition of biologic tissue and use of this method for determining viability and/or necrotization rate thereof
RU2555352C1 (en) * 2013-12-12 2015-07-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИМПС" СО РАМН) Method of diagnosing staphylococcal allergy in case of allergic rhinitis
RU2662997C2 (en) * 2016-11-22 2018-07-31 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Минздрава России (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) Method for rapid evaluation of viability of cells in tissue engineering structures
CN109387636A (en) * 2017-08-08 2019-02-26 欧蒙医学诊断技术有限公司 Method for examining basicyte to activate
CN112941025A (en) * 2021-03-25 2021-06-11 四川大学华西医院 Method and kit for separating neutrophils from blood

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Н.К.ВОЗНЕСЕНСКИЙ и др. Хемилюминисценция нейтрофилов в аллергодиагностике, Клиническая лабораторная диагностика, 1999, №8, стр.18-20. ФРАДКИН В.А. Диагностика аллергии реакциями нейтрофилов крови, Москва, «Медицина», 1985, с.18-23. НОВИКОВ Д.К. и др. Оценка иммунного статуса, Москва-Витебск, 1996, с.105. MONTESEIRIN J et al Enhancement of Antigen-specific functional responses by neutrophils from allergic patients J Exp Med. 1996 Jun 1; 183(6):2571-9. *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA018686B1 (en) * 2012-07-04 2013-09-30 ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ "ДИСофт" Method for determining functional condition of biologic tissue and use of this method for determining viability and/or necrotization rate thereof
RU2555352C1 (en) * 2013-12-12 2015-07-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИМПС" СО РАМН) Method of diagnosing staphylococcal allergy in case of allergic rhinitis
RU2662997C2 (en) * 2016-11-22 2018-07-31 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Минздрава России (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) Method for rapid evaluation of viability of cells in tissue engineering structures
CN109387636A (en) * 2017-08-08 2019-02-26 欧蒙医学诊断技术有限公司 Method for examining basicyte to activate
CN112941025A (en) * 2021-03-25 2021-06-11 四川大学华西医院 Method and kit for separating neutrophils from blood

Also Published As

Publication number Publication date
RU2004136502A (en) 2006-05-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Trombone et al. Use of a chimeric ELISA to investigate immunoglobulin E antibody responses to Der p 1 and Der p 2 in mite‐allergic patients with asthma, wheezing and/or rhinitis
JP5700934B2 (en) Cellular immune response assay and kit therefor
Hamilton et al. Human IgE antibody serology: a primer for the practicing North American allergist/immunologist
Oshita et al. Semi-quantitative procalcitonin test for the diagnosis of bacterial infection: clinical use and experience in Japan
Salazar et al. Allergen-based diagnostic: Novel and old methodologies with new approaches
EP2732288B1 (en) Biological microchip for the estimation of immunoglobulin e and g levels in human blood, method of assay thereof, and reagent kit comprising same
Hall et al. Simultaneous detection and quantification of six equine cytokines in plasma using a fluorescent microsphere immunoassay (FMIA)
RU2289138C2 (en) Method for allergodiagnostics by the values of chemiluminescent phosphorescence of neutrophils
Makhija et al. Common in vitro tests for allergy and immunology.
CN109991417A (en) A kind of immunological marker object lungy and application
US20190049461A1 (en) Method for detecting basophil activation
US20230160887A1 (en) Flow Cytometry System and Methods for the Diagnosis of Infectious Disease
RU2523418C1 (en) Method of assessment of disorder of cellular immunity in exposed to phenol
RU2426130C2 (en) Instant diagnostic test for alzheimer&#39;s disease
CN114121162A (en) Method for evaluating immunity
Shokouhi et al. Diagnostic value of the leukocyte esterase test for early detection of pleocytosis in cerebrospinal fluid of patients with suspected acute bacterial meningitis
Holliman et al. The post-natal serodiagnosis of congenital toxoplasmosis
Patel et al. Assessment of fecal calprotectin and fecal occult blood as point-of-care markers for soil-transmitted helminth attributable intestinal morbidity in a case-control substudy conducted in Côte d'Ivoire, Lao PDR and Pemba Island, Tanzania
Karameşe et al. A comparison of a new diagnostic test of the human Brucellosis, the Brucella Coombs Gel Test, with other methods
Chapman Lateral flow tests for allergy diagnosis: point-of-care or point of contention?
WO2023046111A1 (en) Basophil activation detection method and application thereof
KR102368216B1 (en) Process for detecting latent infected cow with bovine tuberculosis using ELISA boosting method
Huang et al. Evaluation of a fully automated and completely quantitative allergen-specific IgE and total IgE detection assay
Pecoud et al. Application of microtitre plates and fluorescence reading to shorten handling of Phadezym RAST® and Phadezym IgE PRIST®
KR20220018149A (en) Detection method of latent tuberculosis infection using inline microtube set

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20071215