RU2273987C2 - Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro - Google Patents
Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- RU2273987C2 RU2273987C2 RU2004105633/13A RU2004105633A RU2273987C2 RU 2273987 C2 RU2273987 C2 RU 2273987C2 RU 2004105633/13 A RU2004105633/13 A RU 2004105633/13A RU 2004105633 A RU2004105633 A RU 2004105633A RU 2273987 C2 RU2273987 C2 RU 2273987C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- ovules
- sucrose
- embryos
- weeks
- vitro
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к способу получения полноценных растений-регенератов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro. Используют агаризованную половинную среду Мурасиге и Скуга, дополненную глицином, альфа-нафтилуксусной кислотой, антибиотиком ампициллином и 9%-ной или 3%-ной сахарозой (в зависимости от возраста семяпочек) для развития эмбрионов после изоляции от материнского растения семяпочек с частью завязи. Переносят разросшиеся семяпочки на свежую питательную среду сначала с тем же составом регуляторов роста и уменьшенным до 3% содержанием сахарозы, а затем на модифицированную среду Мурасиге и Скуга, содержащую 6% сахарозы, 6 БАП и НУК, при последовательной смене температурного и светового режимов. Заявленное изобретение обеспечивает сохранность гибридных эмбрионов на ранней стадии их развития, повышает жизнеспособность семинедельных гибридных зародышей, а также дает возможность сохранить оригинальные образцы генотипов от единичных эмбрионов. 5 ил., 5 табл.
Description
Способ относится к сельскохозяйственной биотехнологии, в частности к способу культивирования in vitro изолированных семяпочек растений, и может быть использован для выполнения работ по практической селекции и семеноводству тюльпанов, а также при разработке более совершенных методов селекции этой ценной промышленной цветочной культуры в условиях in vitro - гаплоидии, полиплоидии, клеточной селекции.
Наиболее эффективными методами формообразования у тюльпанов считаются отдаленная гибридизация и разноплоидные скрещивания, при которых очень часто наблюдаются проявления генеративной несовместимости, что мешает формированию полноценных гибридных семян.
Исследование совместимости родительских форм и причин плохой завязываемости семян тюльпанов при межвидовых и разноплоидных скрещиваниях люминесцентно-микроскопическим методом (Братухина Е.В, 1997) показало, что во всех изученных комбинациях барьерные моменты несовместимости морфологически четко не обозначены. Тюльпанам свойственна случайность, неспецифичность нарушений, которая проявлялась на всех этапах прогамной фазы (на рыльце, в столбике, в каналах завязи), как и в вариантах, наблюдаемых у ячменно-ржаных гибридов.
Кроме того, нормальное проникновение мужских гаметофитов в пестики не может служить надежным критерием полной совместимости родительских форм. Нарушение оплодотворения нередко может обнаруживаться только при созревании плодов.
В результате исследований, проведенных в 1993-1996 гг., нами разработан "Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro (патент № 2123256 Россия МПК6 A 01 4/00, Бюл. 35 - М., 1998 г.).
Вместе с тем было выявлено, что возможности использования метода изолированных зародышей на культуре тюльпана ограничены. По характеру развития зародыша тюльпан выделен в особую группу - эмбриогенез с замедленной дифференциацией зародыша. Извлечь эмбрион из незрелых семян удается лишь на 53-55 день после опыления, когда они достигают размера не менее 1-1,5 мм, в то время как приостановка их развития в несовместимых комбинациях скрещивания может наступить на 15-40 день после опыления.
За последние 10-20 лет опубликован целый ряд работ, касающихся технологии сохранения эмбрионов различных растений через культуру семяпочек (F.Kishi, Y.Kagami, M.Shinohara S.Hatano, 1994; F.S.Rangan, 1984).
Однако аналоги способа получения полноценных растений тюльпанов из семяпочек нам не известны. По M.G.M.Van Creij, D.M.F.J.Kerckhoffs & J.M.Van Tuyl (1999), стадия развития эмбриона, возможность его изоляции и переноса вместе с семяпочкой in vitro зависит от условий культивирования растений in vivo.
Метод получения полноценных растений тюльпанов из семяпочек, изолированных на ранней стадии развития эмбрионов, разработан в нашей стране впервые.
Цель изобретения - через культивирование семяпочек in vitro повысить жизнеспособность зародышей на возможно ранней стадии их развития, сохранить уникальные новообразования полиплоидных и межвидовых гибридов с одновременным увеличением их коэффициента размножения в ювенильном возрасте.
Поставленная цель достигается культивированием изолированных семяпочек тюльпанов в условиях in vitro в 3 этапа, каждый из которых отличается использованием определенной питательной среды, температурным и световым режимом.
Семяпочки через 5 недель после опыления (НПО) изолируют от материнского растения с частью завязи и высаживают в чашки Петри на агаризованную половинную питательную среду Мурасиге и Скуга с содержанием 9% сахарозы, дополненную глицином 2 мл/г, α-нафтилуксусной кислотой 1 мг/л, антибиотиком ампициллином 100 мг/л (фиг.1). Семяпочки культивируют в течение 16-17 недель в темноте, при температуре не выше +20°С. По мере разрастания и увеличения в размере семяпочек их выделяют из завязи и переносят в чашки Петри на свежую питательную среду того же состава, уменьшая содержание сахарозы до 3%. Культивируют 9-12 недель в темноте при температуре +5°С (фиг.2).
Семяпочки, изолированные с плацентой через 7 недель после опыления (НПО), высаживают на половинную агаризованную питательную среду Мурасиге и Скуга того же состава, что и пятинедельные, но с 3%-ной концентрацией сахарозы. Культивируют 4 недели в темноте при температуре +20°С.
Сформировавшиеся зародыши размером до 1,5 мм извлекают из семяпочек, переносят на питательную среду Ван Гофа и выращивают в течение 2-3 недель при температуре 22-25°С, освещенности 2-3 тыс. лк, 16-часовом фотопериоде. Разросшиеся семинедельные семяпочки, из которых после 4 недель культивирования невозможно извлечь зародыши (они размером менее 1 мм), переносят на питательную среду того же состава и содержат еще 9-12 недель в темноте при температуре +5°С для стимулирования прорастания зародышей.
Проростки, полученные из семяпочек 5 и 7 НПО, переносят на модифицированную питательную среду Мурасиге и Скуга с содержанием регуляторов роста α-нафтилуксусной кислоты - 0,15 мг/л, 6-бензиламинопурина (6-БАП) - 3,0 мг/л и 6% сахарозы. Культивируют при температуре +23-25°С, освещенности 2-3 тыс. лк, 16-часовом фотопериоде в течение 12-20 недель. Это дает возможность получить от одного эмбриона от 5 до 15 растений-регенерантов размером до 30 мм ( фиг.3, 4, 5).
Пример получения растений-регенерантов тюльпанов из изолированных семяпочек в условиях in vitro, осуществляемого в 3 этапа, показан на комбинации Уайт триумфатор×смесь пыльцы, Куин оф Найт×смесь пыльцы, Крисмэс Марвел×смесь пыльцы.
1 Этап - введение семяпочек in vitro:
а) изоляция семяпочек от материнского растения через 5 НПО с частью завязи и перенос на 3 варианта питательной среды с 9%-ной сахарозой, культивирование 16-17 недель в темноте при температуре +20°С;
б) изоляция семяпочек от материнского растения через 7 НПО на 2 варианта питательной среды с 3%-ной сахарозой, культивирование 4 недели в темноте при температуре +20°C.
Активность развития семяпочек на первом этапе культивирования устанавливалась по степени разрастания эндосперма, таблица 1, фиг.1.
Таблица 1. Развитие пяти- и семинедельных семяпочек тюльпанов через 16 недель культивирования in vitro. |
|||
Вариант питательной среды | Высажено семяпочек in vitro, шт. | % разросшихся семяпочек | |
5НПО | 7НПО | ||
I | 300 | - | 66,7 |
II | 100 | - | 90,0 |
III | 100 | - | 0 |
IV | - | 150 | 53,3 |
V | - | 100 | 48,3 |
Лучшей питательной средой на 1 этапе культивирования для пятинедельных семяпочек с частью завязи оказался вариант II (половинная Мурасиге и Скуга с 9%-сахарозой), а для семинедельных семяпочек - вариант IV (половинная Мурасиге и Скуга с 3%-ной сахарозой).
2 Этап - перенос разросшихся семяпочек на половинную питательную среду Мурасиге и Скуга с исходным содержанием регуляторов роста, 3%-ной сахарозой и культивирование их в темноте при температуре +5°С в течение 9-12 недель с целью получения проростков. Результаты экспериментов представлены в таблице 2, фиг.2.
Таблица 2. Развитие эмбрионов тюльпанов на вторичной питательной среде (24 недели культивирования in vitro) |
||||
Комбинация скрещивания | Срок изоляции семяпочек(НПО) | Высажено семяпочек, штук | Проросло эмбрионов через 8 недель холодной обработки | |
штук | % | |||
Уайт триумфатор×см.п. | 3 | 130 | 2 | 1,50 |
Уайт триумфатор×см.п. | 5 | 290 | 10 | 3,45 |
Уайт триумфатор×см.п. | 7 | 80 | 9 | 11,25 |
Куин оф Найт×см.п. | 3 | 100 | 2 | 2,00 |
Куин оф Найт×см.п. | 5 | 155 | 2 | 1,30 |
Куин оф Найт×см.п. | 7 | 48 | 1 | 2,10 |
3 Этап - перенос зародышей, развившихся из пяти- и семинедельных семяпочек, на модифицированную питательную среду Мурасиге и Скуга, содержащую в качестве регуляторов роста 6-бензиламинопурин (6 БАП) от 2,0 до 3,0 мг/л и α-нафтилуксусную кислоту (НУК) от 0,1 до 0,2 мг/л, сахарозу 3-6% при световом режиме 16/8 и температуре +23-25°С. Влияние совместного действия ауксинов и цитокининов на развитие регенератов из изолированных зародышей тюльпанов оценивалось по выходу полноценных растений после культивирования in vitro и по образованию дополнительных побегов, таблица 3, фиг.3.
Таблица 3. Выход регенерантов тюльпанов in vitro в зависимости от концентрации регуляторов роста в питательной среде (Крисмэс Марвел×смесь пыльцы) |
|||||
Концентрация регуляторов роста, мг/л | Высажено зародышей, шт. | Получено регенерантов | |||
всего, шт. | % | Дополнительных побегов, % | Полноценных растений, % | ||
Контроль(без регуляторов роста) | 20 | 3 | 15,0 | 0 | 66,7 |
6БАП-2,0+НУК-0,15 | 21 | 45 | 214,3 | 114.3 | 80,0 |
6БАП-2,0+НУК-0,20 | 21 | 41 | 195,2 | 95.2 | 76,9 |
6БАП-З,0+НУК-0,15 | 21 | 49 | 233,3 | 133,3 | 89,8 |
6БАП-3,0+НУК-0,20 | 21 | 46 | 219,0 | 119,0 | 78,3 |
Наилучшее развитие регенерантов и образование дополнительных побегов получено с регуляторами роста 6 БАП-3 мг/л плюс НУК-0,15 мг/л при содержании в питательной среде 6% сахарозы (табл.4).
Таблица 4. Выход регенерантов тюльпанов in vitro в зависимости от концентрации сахарозы (среда М-С модифицированная, комб. Крисмэс Марвел×смесь пыльцы) |
||||
Концентрация сахарозы в питательной среде, % | Высажено зародышей, шт. | Получено регенератов | Средняя длина растений, мм | |
штук | % | |||
3 | 18 | 6 | 33,3 | 4,6 |
5 | 18 | 11 | 61,1 | 8,5 |
6 | 18 | 16 | 88,9 | 12,1 |
7 | 17 | 15 | 88,2 | 10,4 |
9 | 18 | 7 | 38,9 | 3,9 |
Исходя из полученных данных, наиболее ранним сроком изоляции семяпочек от материнского растения для введения in vitro является 5 недель после опыления, показавшим наилучшие результаты, табл.5.
Таблица 5. Выход регенерантов тюльпанов in vitro при разном сроке изолирования семяпочек от материнского растения |
||||||
Комбинация скрещивания | Срок изоляции (НПО) | Высажено семяпочек, шт. | Перенесено на вторичную питательную среду | Получено регенерантов | ||
штук | % | штук | % | |||
Уайт триумфатор×см.п. | 3 | 400 | 130 | 32,5 | 1 | 0,8 |
Уайт триумфатор×см.п. | 5 | 400 | 290 | 72,5 | 86 | 29,6 |
Куин оф Найт×см.п. | 3 | 600 | 100 | 16,7 | 0 | 0 |
Куин оф Найт×см.п. | 5 | 500 | 155 | 31,0 | 37 | 23,9 |
Предложенный способ культивирования семяпочек in vitro позволяет обеспечить сохранность гибридных эмбрионов на ранней стадии их развития (через 5 недель после опыления), увеличить коэффициент размножения в ювенильном возрасте и значительно ускорить селекционный процесс, продолжающийся у тюльпанов около 25 лет. Кроме того, этот метод позволяет сохранить оригинальные образцы генотипов от единичных эмбрионов, полученных при отдаленных и разноплоидных скрещиваниях.
В целом заявленный способ дает возможность управлять селекционным процессом для получения сортов тюльпанов по заданным признакам.
Claims (1)
- Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro, заключающийся в том, что изолируют семяпочки с частью завязи через пять или семь недель после опыления, культивируют их в течение 16-17 недель в случае пятинедельных семяпочек и 4 недели - в случае семинедельных семяпочек при температуре +20°С на агаризованной половинной питательной среде Мурасиге и Скуга, дополненной глицином 2,0 мг/л, α-нафтилуксусной кислотой 1,0 мг/л, антибиотиком ампициллином 100 мг/л и 9%-ной сахарозой - в случае пятинедельных семяпочек или 3%-ной сахарозой - в случае семинедельных семяпочек, затем разросшиеся семяпочки переносят на свежую питательную среду с тем же составом регуляторов роста с 3%-ным содержанием сахарозы, культивируют их в темноте при температуре +5°С в течение 9-12 недель, снова переносят на модифицированную среду Мурасига и Скуга с 6%-ной сахарозой, содержащую регуляторы роста 6 БАП-3 мг/л, НУК-0,15 мг/л и продолжают культивировать при температуре +23-25°С, 16-часовом фотопериоде, освещенности 2-3 тыс. люкс до развития регенерантов высотой около 30 мм и образования дополнительных побегов.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004105633/13A RU2273987C2 (ru) | 2004-02-24 | 2004-02-24 | Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004105633/13A RU2273987C2 (ru) | 2004-02-24 | 2004-02-24 | Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2004105633A RU2004105633A (ru) | 2005-08-10 |
RU2273987C2 true RU2273987C2 (ru) | 2006-04-20 |
Family
ID=35844592
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004105633/13A RU2273987C2 (ru) | 2004-02-24 | 2004-02-24 | Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2273987C2 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2039427C1 (ru) * | 1991-04-25 | 1995-07-20 | Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства | Способ размножения смородины in vitro |
RU2080780C1 (ru) * | 1994-05-11 | 1997-06-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии РАСХН | Способ клонального микроразмножения растений |
RU2123256C1 (ru) * | 1996-08-08 | 1998-12-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт цветоводства и субтропических культур | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro |
-
2004
- 2004-02-24 RU RU2004105633/13A patent/RU2273987C2/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2039427C1 (ru) * | 1991-04-25 | 1995-07-20 | Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства | Способ размножения смородины in vitro |
RU2080780C1 (ru) * | 1994-05-11 | 1997-06-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии РАСХН | Способ клонального микроразмножения растений |
RU2123256C1 (ru) * | 1996-08-08 | 1998-12-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт цветоводства и субтропических культур | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2004105633A (ru) | 2005-08-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103314861B (zh) | 一种石斛兰试管内杂交育种方法 | |
Stanton et al. | Controlled reproduction of Populus | |
CN104381131B (zh) | 一种油松体细胞胚发生与植株再生方法 | |
US6677154B2 (en) | Micropropagation, synthetic seeds and germplasm storage of bamboos | |
Zhao et al. | Micropropagation and in vitro flowering of Dendrobium wangliangii: a critically endangered medicinal orchid | |
US6689609B1 (en) | Enhancing germination of plant somatic embryos by priming | |
CN109169266A (zh) | 一种高通量的耐热水稻筛选方法 | |
CN103749300B (zh) | 一种甘蓝小孢子单倍体植株加倍的方法 | |
EP2067401A1 (en) | Cocoa somatic embryogenesis | |
Chandra et al. | Synthetic seed—Future prospects in crop improvement | |
RU2302106C1 (ru) | Способ подготовки растений земляники садовой (fragaria l.), размноженных in vitro, к условиям культивирования ex vitro | |
Sharma et al. | In vitro propagation of Citrus rootstocks | |
RU2273987C2 (ru) | Способ получения полноценных растений-регенерантов тюльпанов культивированием семяпочек in vitro | |
Saifullah et al. | Cultivation of lilies (Lilium regale) for commercialization in Pakistan | |
Ponce et al. | Influence of CCC, putrescine and gellam gum concentration on gynogenic embryo induction in Allium cepa | |
EP1170986B1 (en) | Enhancing germination of plant somatic embryos by priming | |
US20160198657A1 (en) | Late embryo development and maturation at colder temperature | |
Mochizuki et al. | ‘Yotsuboshi’, a new F1 hybrid strawberry of seed propagation type for year-round production | |
CN101889548A (zh) | 菜心单倍体育种的方法 | |
Sinha et al. | In vitro mass clonal propagation of Spathoglottis plicata Blume | |
CN115443902B (zh) | 一种克服圆叶葡萄与真葡萄远缘杂交受精前障碍的育种方法及其鉴定方法 | |
Mudoi et al. | Factors affecting the frequency of in vitro flowering of Bambusa balcooa Roxb | |
KR102200935B1 (ko) | 절간 배양 방법을 이용한 대추나무 '복조' 품종의 기내 식물체 형성 방법 | |
Sunian | Development of sterilisation procedures and in vitro studies of Nymphaea lotus | |
Zarnadze et al. | Goji Berry (Lycium Barbarum L.) Plant-Obtaining Regenerants through Adventitious Bud Formation in vitro Culture |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20080225 |