RU2264706C2 - Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape - Google Patents
Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape Download PDFInfo
- Publication number
- RU2264706C2 RU2264706C2 RU2003127668/13A RU2003127668A RU2264706C2 RU 2264706 C2 RU2264706 C2 RU 2264706C2 RU 2003127668/13 A RU2003127668/13 A RU 2003127668/13A RU 2003127668 A RU2003127668 A RU 2003127668A RU 2264706 C2 RU2264706 C2 RU 2264706C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- emistim
- plants
- grape
- nutrient medium
- roots
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии, в частности к способам размножения растений, и может быть использовано в виноградарстве для ускоренного размножения оздоровленных от вирусной инфекции перспективных сортов винограда, в исследованиях по физиологии винограда, служит охране окружающей среды.The invention relates to agricultural biotechnology, in particular to methods of propagation of plants, and can be used in viticulture for accelerated propagation of promising grape varieties recovered from viral infection, in studies on the physiology of grapes, serves to protect the environment.
Известен способ клонального микроразмножения растений, включающий введение в питательную среду цитокининов, что приводит к формированию побегов с относительно укороченными междоузлиями, а пазушные почки и меристематические бугорки дают начало новым побегам [Методические рекомендации по клональному микроразмножению винограда. Ялта, 1986, с.25-29]. Способ осуществления этого направления связан с пролиферацией пазушных почек и побегов.A known method of clonal micropropagation of plants, including the introduction of cytokinins into the nutrient medium, which leads to the formation of shoots with relatively shortened internodes, and axillary buds and meristematic tubercles give rise to new shoots [Methodical recommendations for clonal micropropagation of grapes. Yalta, 1986, pp. 25-29]. A method for implementing this direction is associated with the proliferation of axillary buds and shoots.
К недостатку этого способа клонального микроразмножения следует отнести большую трудоемкость процесса, так как необходима частая пересадка эксплантов; слабую их укореняемость; возможность образования каллуса на базальной части агрегата почек и побегов, что может привести к нарушению генетической стабильности размножаемых растений.The disadvantage of this method of clonal micropropagation is the high complexity of the process, since frequent explant transplantation is necessary; their weak rooting; the possibility of the formation of callus on the basal part of the aggregate of buds and shoots, which can lead to a violation of the genetic stability of propagated plants.
Известен способ микроклонального размножения винограда in vitro, включающий микрочеренкование пробирочных растений с 8-10 междоузлиями на фрагменты длиной 10-12 мм с узлом и листом и высадку их на питательную среду Мурасиге и Скуга [Клональное микроразмножение и оздоровление посадочного материала винограда для создания из него сортовых маточников интенсивного типа. Рекомендации. М.,1992, с.12-13] - прототип.A known method of microclonal propagation of grapes in vitro, including microcentering of test plants with 8-10 internodes into fragments 10-12 mm long with a knot and leaf and planting them on a nutrient medium Murashige and Skoog [Clonal micropropagation and improvement of planting material of grapes to create varietal varieties from it mother cells of intensive type. Recommendations M., 1992, p.12-13] - the prototype.
Недостаток этого способа заключается в том, что при клональном микроразмножении на начальном этапе, после микрочеренкования, растения растут медленно, что ограничивает эффективность метода. Одной из причин медленного роста являются стрессовые условия, в которых оказываются микрочеренки in vitro. Наблюдается ингибирование ростовых процессов эксплантов токсическими веществами, выделяемыми ими в питательную среду. Грибные патогены также отрицательно влияют на развитие растений и могут способствовать их гибели. При многократных повторных субкультивированиях состояние их ухудшается, снижается выход микрочеренков, что ограничивает эффективность метода. Необходим способ оптимизации этого процесса. Новый класс фиторегуляторов - адаптогенов способствует активации и многоцелевой стимуляции защитных реакций растений. К ним относится препарат эмистим, который представляет собой композицию ростовых веществ цитокининовой и гиббереллиновой природы, продукты метаболизма симбиотического гриба Acremonium lichenicola, выделенного из корней женьшеня. Он положительно влияет на процессы роста и развития растений, снижает влияние неблагоприятных и стрессовых факторов внешней среды.The disadvantage of this method is that with clonal micropropagation at the initial stage, after microcrops, plants grow slowly, which limits the effectiveness of the method. One of the reasons for the slow growth is the stressful conditions in which microcherens appear in vitro. Inhibition of growth processes of explants by toxic substances secreted by them into the nutrient medium is observed. Fungal pathogens also negatively affect the development of plants and may contribute to their death. With repeated repeated subcultures, their condition worsens, the yield of micrograins decreases, which limits the effectiveness of the method. A way is needed to optimize this process. A new class of phytoregulators - adaptogens contributes to the activation and multipurpose stimulation of plant defense reactions. These include the preparation emistim, which is a composition of growth substances of a cytokinin and gibberellin nature, metabolic products of the symbiotic fungus Acremonium lichenicola isolated from ginseng roots. It positively affects the processes of plant growth and development, reduces the influence of adverse and stressful environmental factors.
Все это создает предпосылки для использования его в технологии in vitro для преодоления высказанных нами ранее трудностей.All this creates the prerequisites for its use in in vitro technology to overcome the difficulties we have expressed earlier.
Целью изобретения является повышение эффективности клонального микроразмножения растений винограда, оздоровленных от вирусной инфекции методом апикальных меристем, на этапе микрочеренкования побегов.The aim of the invention is to increase the efficiency of clonal micropropagation of grape plants, recovered from viral infection by the method of apical meristems, at the stage of microcherenking shoots.
Поставленная цель достигается тем, что в способе микроклонального размножения винограда in vitro, включающем микрочеренкование пробирочных растений с 8-10 междоузлиями на фрагменты длиной 10-12 мм с глазком и листом и высадку их в пробирки на питательную среду Мурасиге Скуга, посадку и культивирование их осуществляют на жидкой питательной среде Мурасиге и Скуга с уменьшенным количеством макроэлементов и витаминов: NH4NO3 - 130-140 мг/л, KNOз - 920-950 мг/л, MgSO4·7H2O - 180-191 мг/л, CaCl2·2Н2O - 290-300 мг/л, КН2PO4 - 65-70 мг/л; мезоинозита 48-50 мг/л, тиамина - 0,20-0,22 мг/л, индолилуксусной кислоты 0,1-0,3 мг/л с добавлением в ее состав препарата эмистим в концентрации 10-7-10-10%.This goal is achieved by the fact that in the method of microclonal propagation of grapes in vitro, including microcutting of test plants with 8-10 internodes into fragments 10-12 mm long with an eye and a leaf and planting them in test tubes on a nutrient medium Murashige Skoog, they are planted and cultivated on a liquid nutrient medium Murashige and Skoog with a reduced amount of macronutrients and vitamins: NH 4 NO 3 - 130-140 mg / l, KNO s - 920-950 mg / l, MgSO 4 · 7H 2 O - 180-191 mg / l, CaCl 2 · 2H 2 O - 290-300 mg / l, KH 2 PO 4 - 65-70 mg / l; mesoinositol 48-50 mg / l, thiamine - 0.20-0.22 mg / l, indolylacetic acid 0.1-0.3 mg / l with the addition of emistim in its composition at a concentration of 10 -7 -10 -10 % .
Новым в предложенном способе является то, что микрочеренки пробирочных растений высаживают на жидкую модифицированную питательную среду Мурасиге и Скуга с уменьшенным содержанием макросолей, витаминов и индолилуксусной кислоты.·New in the proposed method is that microcirculation of test plants is planted on a liquid modified nutrient medium Murashige and Skoog with a reduced content of macrosalts, vitamins and indolylacetic acid. ·
Существенным является то, что содержание макросолей уменьшено следующим образом: NH4NO3 с 1650 до 138 мг/л, KNO3 с 1900 до 950 мг/л, MgSO4·7H2O с 370 до 185 мг/л, CaCl2·2H2O с 440 до 296 мг/л, КН2PO4 с 444 до 68 мг/л; содержание мезоинозита со 100 мг/л до 50 мг/л, тиамина с 0,5 до 0,2 мг/л, исключена из состава витаминов никотиновая кислота, индолилуксусная кислота в количестве 0,1-0,3 мг/л с добавлением в состав питательной среды препарата эмистим в концентрации 10-7-10-10%.It is significant that the content of macrosalts is reduced as follows: NH 4 NO 3 from 1650 to 138 mg / L, KNO 3 from 1900 to 950 mg / L, MgSO 4 · 7H 2 O from 370 to 185 mg / L, CaCl 2 · 2H 2 O from 440 to 296 mg / L; KH 2 PO 4 from 444 to 68 mg / L; the content of mesoinositol from 100 mg / l to 50 mg / l, thiamine from 0.5 to 0.2 mg / l, nicotinic acid, indolylacetic acid in the amount of 0.1-0.3 mg / l with the addition of the composition of the nutrient medium of the drug emistim at a concentration of 10 -7 -10 -10 %.
Эмистим оказывает двоякое действие на микрочеренки: способствует индукции ризогенеза и, кроме этого, оказывает влияние на конус нарастания почек глазка, способствуя делению клеток и вытягиванию в длину клеток всех тканей. То есть в данном случае воздействие эмистима и направлено на микрочеренок с целью регенерации из него растения и осуществляется одновременно на тканевом и организменном уровне.Emistim has a twofold effect on microcranes: it promotes the induction of rhizogenesis and, in addition, affects the cone of growth of the kidneys of the eye, promoting cell division and elongation of the cells of all tissues. That is, in this case, the effect of emistim is aimed at microcranes in order to regenerate plants from it and is carried out simultaneously at the tissue and organism level.
В результате его применения происходит оптимизация метаболических процессов, усиливаются функции иммунитета у растений, активизируются защитные механизмы растений против многих патогенов. Гиббереллиновая и цитокининовая активность препарата положительно влияет на процессы роста растений. Таким образом, препарат эмистим является препаратом широкого спектра действия.As a result of its use, metabolic processes are optimized, immunity functions in plants are enhanced, and plant defense mechanisms against many pathogens are activated. Gibberellin and cytokinin activity of the drug positively affects the processes of plant growth. Thus, the drug emistim is a broad-spectrum drug.
Замена твердой питательной среды (агаризированной) на жидкую питательную среду, уменьшение в ее составе количества макросолей, витаминов и индолилуксусной кислоты обеспечивает улучшение приживаемости микрочеренков, соотношения между развитием у растений ризогенной зоны и надземной части, образование большего числа листьев, а также лучшее развитие растений после субкультивирования, то есть снимается торможение ростовых процессов, которое наблюдается при высоких концентрациях. Кроме этого, за счет замены агара жидкой питательной средой и уменьшения количества реактивов происходит удешевление процесса клонального микроразмножения растений винограда.Replacing a solid nutrient medium (agarized) with a liquid nutrient medium, reducing the amount of macrosalts, vitamins, and indolylacetic acid in its composition improves the survival rate of micrograins, the ratio between the development of the rhizogenic zone and the aerial part in plants, the formation of a larger number of leaves, and also the better development of plants after subcultivation, that is, the inhibition of growth processes that is observed at high concentrations is removed. In addition, by replacing agar with a liquid nutrient medium and reducing the number of reagents, the process of clonal micropropagation of grape plants is cheaper.
Таким образом, налицо неоднозначность предлагаемого приемаThus, the ambiguity of the proposed method is obvious.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Отбирают растения винограда, регенерированные из апикальных меристем размером 0,1-0,2 мм и размноженные в культуре in vitro. Растения должны иметь 8-10 междоузлий. Затем приступают к приготовлению жидкой питательной среды Мурасиге и Скуга следующего состава, мг/л: макроэлементы - аммоний азотнокислый - NH4NO3 - 138, калий азотнокислый - KNO3 - 950, магний сернокислый 7-водный - MgSO4·7Н2O - 185, калий фосфорнокислый однозамещенный - КН2PO4 - 68, кальций хлористый 2-водный - CaCl2·2H2O - 296; микроэлементы - борная кислота - Н3ВО3 - 6.2, марганец сернокислый 4-водный - MnSO4·4H2O - 22.3; медь сернокислая 5-водная - CuSO4·5Н2О - 0.025, кобальт хлористый 6-водный - CoCl2·6Н2О - 0.025; цинк сернокислый 4-водный - ZnSO4·4Н2О - 8.6, натрий молибденовокислый 2-водный - Na2MoO4·2H2O - 0.25, калий иодистый - KJ - 0.86; хелат железа: железо сернокислое 7-водное - FeSO4·7H2O - 27.8, трилон-Б - Na2ЭДТА - 37.3; витамины - мезоинозит - 50, тиамин HCl - 0,2; ИУК - 0,1-3 мг/л; рН среды перед автоклавированием 5,7-5,9. В состав питательной среды добавляют эмистим в концентрации 10-7-10-11%, которая определена ранее опытным путем для каждого размножаемого сорта.Vine plants are selected that are regenerated from apical meristems 0.1-0.2 mm in size and propagated in vitro. Plants should have 8-10 internodes. Then they begin to prepare the liquid nutrient medium Murashige and Skoog of the following composition, mg / l: macrocells - ammonium nitrate - NH 4 NO 3 - 138, potassium nitrate - KNO 3 - 950, magnesium sulfate 7-water - MgSO 4 · 7Н 2 O - 185, monosubstituted potassium phosphate - KH 2 PO 4 - 68, 2-aqueous calcium chloride - CaCl 2 · 2H 2 O - 296; trace elements - boric acid - H 3 BO 3 - 6.2, 4-aqueous manganese sulfate - MnSO 4 · 4H 2 O - 22.3; 5-hydrous sulfate copper — CuSO 4 · 5H 2 O — 0.025, 6-aqueous cobalt chloride — CoCl 2 · 6H 2 O — 0.025; 4-aqueous zinc sulfate — ZnSO 4 · 4H 2 O — 8.6, 2-aqueous molybdenum sodium — Na 2 MoO 4 · 2H 2 O — 0.25, potassium iodide — KJ — 0.86; iron chelate: iron sulfate 7-aqueous - FeSO 4 · 7H 2 O - 27.8, trilon-B - Na 2 EDTA - 37.3; vitamins - mesoinositol - 50, thiamine HCl - 0.2; IAA - 0.1-3 mg / l; pH of the medium before autoclaving 5.7-5.9. Emistim is added to the composition of the nutrient medium at a concentration of 10 -7 -10 -11 %, which was previously determined empirically for each propagated variety.
Изготавливают мостики из фильтровальной бумаги, помещают их в пробирки, разливают в них приготовленную питательную среду, закрывают фольгой, штатив с пробирками закрывают целлофаном, обвязывают шпагатом и автоклавируют в автоклаве ГК-100-3.Bridges are made of filter paper, placed in test tubes, the prepared nutrient medium is poured into them, covered with foil, the rack with the tubes is closed with cellophane, tied with twine and autoclaved in the GK-100-3 autoclave.
Микрочеренкование осуществляют в операционной комнате в ламинарном боксе "Фотран". Побеги, имеющие 8-10 междоузлий, при помощи пинцета извлекают из пробирки, помещают на стерильную чашку Петри, разрезают на микрочеренки, имеющие глазок с листом. Длина микрочеренка 10-12 мм, 2 мм над глазком, остальные под глазком. Полученные микрочеренки высаживают в пробирки на мостики из фильтровальной бумаги, которые погружены в жидкую питательную среду. Культивирование осуществляют в культуральной комнате при освещенности 2,0-3,0 тыс. люксов, фотопериоде - 16 часов, температуре 25-27±2°С, влажности воздуха 70-75%.Microcutting is carried out in the operating room in the Fotran laminar box. Shoots having 8-10 internodes are removed with tweezers from the test tube, placed on a sterile Petri dish, cut into micro stems having a peephole with a leaf. The length of the microcranium is 10-12 mm, 2 mm above the eye, the rest under the eye. The obtained micro-stems are planted in test tubes on filter paper bridges that are immersed in a liquid nutrient medium. Cultivation is carried out in a culture room with illumination of 2.0-3.0 thousand lux, a photoperiod of 16 hours, a temperature of 25-27 ± 2 ° C, air humidity of 70-75%.
Наблюдения за ростом растений осуществляют через 15 дней.Observations of plant growth are carried out after 15 days.
Результаты развития пробирочных растений винограда на 50-й день культивирования на питательных средах с различным содержанием ИУК и эмистима представлены в табл.1.The results of the development of test tube grape plants on the 50th day of cultivation on nutrient media with different contents of IAA and emistima are presented in Table 1.
Состояние пробирочных растений винограда сорта Рупестрис дю Ло на питательных средах различного составаTable 1
The state of test-tube plants of grapes of the Rupestris du Lo variety on nutrient media of various compositions
Как следует из приведенных данных, на питательной среде Мурасиге и Скуга (прототип) образование корней и их рост, образование побегов и листьев происходило намного слабее, чем на модифицированной питательной среде (техническое решение без эмистима).As follows from the above data, on the nutrient medium Murashige and Skoog (prototype), the formation of roots and their growth, the formation of shoots and leaves occurred much weaker than on the modified nutrient medium (technical solution without emistim).
ИУК в концентрации 0,3 мг/л на этой питательной среде до 50-го дня культивирования не оказывал отрицательного влияния на растения. Позже (на 64-й день культивирования) отмечено угнетение образования и роста корней и, как следствие этого, уменьшение величины ризогенной зоны, а также снизилось число образовавшихся листьев и коэффициент полярности, то есть нарушилось оптимальное соотношение между развитием корней и побегов.IAA at a concentration of 0.3 mg / L on this nutrient medium until the 50th day of cultivation did not adversely affect the plants. Later (on the 64th day of cultivation), inhibition of root formation and growth was noted and, as a result, a decrease in the size of the rhizogenic zone, as well as a decrease in the number of formed leaves and the polarity coefficient, that is, the optimal ratio between the development of roots and shoots was disrupted.
Скорость роста пробирочных растений винограда сорта Рупестрис дю Ло на питательных средах различного составаtable 2
The growth rate of test tube grape plants of the Rupestris du Lo variety on nutrient media of various compositions
На питательной среде Мурасиге и Скуга (техническое решение без эмистима) улучшились все показатели развития растений: число корней увеличилось в 2,1-5,8 раз, их длина в 1,1-3,9 раза, величина ризогенной зоны в 7,0-8,4 раза, в 2,2-3,0 увеличилось высота растений и несколько увеличилась образование листьев.On the nutrient medium Murashige and Skoog (technical solution without emistim), all indicators of plant development improved: the number of roots increased 2.1-5.8 times, their length 1.1-3.9 times, the size of the rhizogenic zone 7.0 -8.4 times, the height of plants increased by 2.2-3.0 and the formation of leaves increased slightly.
При применении ИУК в концентрации 0,1-0,3 мг/л существенной разницы в развитии растений не отмечено. Длина корней уменьшилась, но число их увеличилось, что не оказало отрицательного влияния на величину ризогенной зоны и на процесс стеблеобразования. Таким образом, на модифицированной среде Мурасиге и Скуга с уменьшенным количеством макроэлементов и витаминов возможно применение ИУК в концентрации 0,1-0,3 мг/л.When using IAA at a concentration of 0.1-0.3 mg / l, there was no significant difference in plant development. The length of the roots decreased, but their number increased, which did not adversely affect the size of the rhizogenic zone and the process of stem formation. Thus, on a modified medium Murashige and Skoog with a reduced amount of macrocells and vitamins, it is possible to use IAA at a concentration of 0.1-0.3 mg / l.
При применении эмистима продолжалось улучшение всех показателей развития растений, установилось оптимальное соотношение между развитием корней и побегов (коэффициент полярности = 2,2-2,8), что обеспечило при оптимальных концентрациях препарата (10-9-10-10%) выход растений 92,8-100,0%.With the use of emistim, the improvement of all indicators of plant development continued, the optimal ratio between the development of roots and shoots (polarity coefficient = 2.2-2.8) was established, which ensured the yield of plants at optimal drug concentrations (10 -9 -10 -10 %) 92 , 8-100.0%.
Кроме этого, эмистим оказал влияние на скорость роста ризогенной зоны и побегов (табл.2). Показатели скорости роста при добавлении эмистима в питательную среду уже на 49 день культивирования превосходили почти в 2 раз показатели роста пробирочных растений на питательных средах без эмистима на 64 день культивирования. То есть происходит ускорение процесса клонального микроразмножения более чем на две недели и, как следствие, повышение его эффективности.In addition, emistim influenced the growth rate of the rhizogenic zone and shoots (Table 2). The growth rate with the addition of emistim to the nutrient medium already by the 49th day of cultivation exceeded almost 2 times the growth rates of test plants on nutrient media without emistim on the 64th day of cultivation. That is, there is an acceleration of the process of clonal micropropagation by more than two weeks and, as a result, an increase in its effectiveness.
Стимулирование развития корней и побегов отмечено у всех сортов и подвоев, но концентрации, обеспечивающие стимулирование, были различными для каждого сорта (табл.3). Так у сорта Дружба, подвоев Кобер5ББ, 1615-2 лучшее развитие растений произошло при разведении эмистима 10-7-10-8 мл/л, у сорта Цветочный при разведении 10-10.Stimulation of the development of roots and shoots was noted in all varieties and stocks, but the concentrations providing stimulation were different for each variety (Table 3). So, in the Druzhba cultivar, Kober 5BB rootstocks, 1615-2, the best development of plants occurred when diluting emistim 10 -7 -10 -8 ml / l, in the Variety Tsvetochny when breeding 10 -10 .
При добавлении эмистима в питательную среду у сорта Рупестрис дю Ло (табл.3) происходит увеличение числа корней, причем более значительное, чем меньше разведение препарата. Влияние эмистима на длину корней менее значительное. Увеличение числа корней и их длины сказалось на величине ризогенной зоны во всех вариантах опыта. При разведении 10-10 она составила 246,4 мм, а при разведении 10-7- 266,5 мм.When emistim is added to the nutrient medium of the Rupestris du Lo variety (Table 3), the number of roots increases, more significantly, the less dilution of the preparation. The effect of emistim on the length of the roots is less significant. An increase in the number of roots and their length affected the size of the rhizogenic zone in all variants of the experiment. With a dilution of 10 -10, it amounted to 246.4 mm, and with a dilution of 10 -7 - 266.5 mm.
Под воздействием эмистима произошли изменения и в надземной части пробирочных растений. Увеличение высоты растений отмечено при концентрации препарата 10-10 и 10-9%. При концентрации эмистима 10-7% произошло торможение роста растений, что связано с чрезмерным развитием корневой системы. Аналогичные изменения произошли и с образованием листьев, большее их число отмечено при разведении эмистима 10-10 и 10-9.Under the influence of emistima, changes also occurred in the aerial part of test plants. An increase in plant height was noted at drug concentrations of 10 -10 and 10 -9 %. At a concentration of emistim of 10 -7 %, inhibition of plant growth occurred, which is associated with excessive development of the root system. Similar changes occurred with the formation of leaves, a greater number were noted when diluting emistima 10 -10 and 10 -9 .
Таким образом, по длине корней, высоте растений и образованию листьев выделился вариант с добавлением в питательную среду препарата эмистим в разведении 10-10.Thus, according to the length of the roots, the height of the plants and the formation of leaves, a variant was distinguished with the addition of the drug Emistim at a dilution of 10 -10 to the nutrient medium.
Развитие пробирочных растений различных сортов винограда при различных концентрациях эмистимаTable 3
The development of test plants of various grape varieties at various concentrations of emistim
Аналогичные результаты получены при культивировании на питательной среде с эмистимом сорта Каберне северный. Увеличение числа корней, их длины, величины ризогенной зоны отмечено во всех вариантах с эмистимом, но наиболее значительное увеличение этих показателей произошло при разведении 10-10%. В этом варианте также отмечены более высокие показатели роста растений и образования листьев.Similar results were obtained when cultured in a nutrient medium with an emistim of the Cabernet variety North. An increase in the number of roots, their length, and the size of the rhizogenic zone was noted in all variants with emistim, but the most significant increase in these indicators occurred with a dilution of 10 -10 %. This option also noted higher rates of plant growth and leaf formation.
Следует отметить, что у обоих сортов винограда при концентрации эмистима 10-7% отмечалось торможение роста растений и образования листьев, что отрицательно влияет на коэффициент размножения этих сортов.It should be noted that in both grape varieties at an emistim concentration of 10 -7 %, inhibition of plant growth and leaf formation was observed, which negatively affects the multiplication rate of these varieties.
Наблюдение за ходом развития пробирочных растений сорта Рупестрис дю Ло (табл.4) показало, что в варианте с эмистимом 10-10% произошло самое незначительное в опыте, причем с начала культивирования, отставание в росте корней и побегов. В контроле и других вариантах с эмистимом наблюдалось как отсутствие роста корней, так и отсутствие роста побегов до 49-го дня культивирования. В связи с этим выход растений в этих вариантах был 82,1-92,8%, а в варианте с эмистимом 10-10-100%.Observation of the course of development of plant varieties test tube rupestris du Lo (Table 4) showed that in the embodiment with emistimom 10 -10% was the smallest in the experiment, and with the initiation of culture, retarded growth of roots and shoots. In the control and other variants with emistim, both the absence of root growth and the absence of shoot growth until the 49th day of cultivation were observed. In this regard, the yield of plants in these variants was 82.1-92.8%, and in the variant with emistim 10 -10 -100%.
Ход развития пробирочных растений винограда при добавлении эмистима в питательную средуTable 4
The development of test tube grape plants with the addition of emistim in a nutrient medium
У сорта Каберне северный под влиянием эмистима также улучшилось образование и рост корней и побегов, а выход растений по сравнению с контролем увеличился в 2-3 раза.Under the influence of emistim, the Cabernet variety North also improved the formation and growth of roots and shoots, and the yield of plants increased by a factor of 2–3 compared with the control.
Анализ применения эмистима при микрочеренковании сортов винограда показал, что препарат эмистим способствует повышению эффективности клонального микроразмножения оздоровленных растений. Это происходит за счет улучшения приживаемости микрочеренков, более быстрого образования и роста корней, побегов и листьев, что обеспечивает, как мы отмечали выше, ускорение процесса клонального микроразмножения более чем на две недели и, как следствие, повышение его эффективности.An analysis of the use of emistim for microcrossing of grape varieties showed that the preparation emistim contributes to an increase in the efficiency of clonal micropropagation of healthy plants. This is due to improved survival of microcrops, faster formation and growth of roots, shoots and leaves, which ensures, as we noted above, the acceleration of the process of clonal micropropagation by more than two weeks and, as a result, increase its efficiency.
Добавление препарата эмистим в питательную среду на этапе микрочеренкования, помимо вышеизложенного, способствует улучшению процесса адаптации растений к нестерильным условиям, благодаря чему при высадке пробирочных растений в торфоперегнойные горшочки практически отсутствует их гибель, и выход растений составляет 99,0-100%.The addition of the emistim preparation to the nutrient medium at the microcherenking stage, in addition to the foregoing, helps to improve the process of plant adaptation to non-sterile conditions, due to which, when the test plants are planted in peat pots, their death is practically absent, and the plant yield is 99.0-100%.
Большое значение имеет правильно подобранная концентрация препарата, так как помимо стимулирующего эффекта может наблюдаться и ингибирование, чрезмерное развитие ризогенной зоны, тормозящее развитие побегов и образование листьев, что ведет к снижению коэффициента размножения.A correctly selected concentration of the drug is of great importance, since in addition to the stimulating effect, inhibition, excessive development of the rhizogenic zone, inhibiting the development of shoots and leaf formation can be observed, which leads to a decrease in the reproduction rate.
Влияние препарата эмистим на эффективность клонального микроразмножения оздоровленных растений виноградаTable 5
The effect of emistim on the effectiveness of clonal micropropagation of healthy grape plants
Технико-экономическое обоснованиеFeasibility Study
Заявленное техническое решение способствует усилению функций иммунитета размножаемых растений, активации их защитных механизмов их против многих патогенов, улучшению приживаемости микрочеренков.The claimed technical solution helps to strengthen the immunity functions of propagated plants, activate their protective mechanisms against many pathogens, and improve the survival rate of microcrops.
При уменьшении концентраций макросолей и витаминов в составе питательной среды улучшаются показатели развития растений, что способствует улучшению выхода (до 99-100%) и качества адаптированных растений и, в конечном итоге, ускорению процесса закладки базисных маточников для перевода виноградарства на сертифицированную основу.With a decrease in the concentrations of macrosalts and vitamins in the composition of the nutrient medium, the indicators of plant development improve, which helps to improve the yield (up to 99-100%) and the quality of adapted plants and, ultimately, accelerate the process of laying the base mother liquors for transferring viticulture to a certified basis.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003127668/13A RU2264706C2 (en) | 2003-09-11 | 2003-09-11 | Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2003127668/13A RU2264706C2 (en) | 2003-09-11 | 2003-09-11 | Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2003127668A RU2003127668A (en) | 2005-04-10 |
RU2264706C2 true RU2264706C2 (en) | 2005-11-27 |
Family
ID=35611021
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2003127668/13A RU2264706C2 (en) | 2003-09-11 | 2003-09-11 | Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2264706C2 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2521992C1 (en) * | 2013-01-09 | 2014-07-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Чеченский Государственный Университет" | METHOD OF MICROGRAFTING GRAPES in vitro |
MD705Z (en) * | 2013-04-19 | 2014-07-31 | Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы | Process for microclonal propagation of grapevine |
RU2538859C1 (en) * | 2013-11-15 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт органической и физической химии им. А.Е. Арбузова Казанского научного центра Российской академии наук | Method of clonal micropropagation of grape in vitro |
RU2541769C1 (en) * | 2013-07-30 | 2015-02-20 | Федеральное Государственное Бюджетное Научное Учреждение "Всероссийский Научно-Исследовательский Институт Виноградарства И Виноделия Имени Я.И. Потапенко" | Method of clonal microreproduction of grapes in vitro with decontamination from mycoplasmal infection |
-
2003
- 2003-09-11 RU RU2003127668/13A patent/RU2264706C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Клональное микроразмножение и оздоровление посадочного материала винограда для создания из него сортовых маточников интенсивного типа. Рекомендации. М.,1992, с.12-13. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2521992C1 (en) * | 2013-01-09 | 2014-07-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Чеченский Государственный Университет" | METHOD OF MICROGRAFTING GRAPES in vitro |
MD705Z (en) * | 2013-04-19 | 2014-07-31 | Институт Генетики И Физиологии Растений Академии Наук Молдовы | Process for microclonal propagation of grapevine |
RU2541769C1 (en) * | 2013-07-30 | 2015-02-20 | Федеральное Государственное Бюджетное Научное Учреждение "Всероссийский Научно-Исследовательский Институт Виноградарства И Виноделия Имени Я.И. Потапенко" | Method of clonal microreproduction of grapes in vitro with decontamination from mycoplasmal infection |
RU2538859C1 (en) * | 2013-11-15 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт органической и физической химии им. А.Е. Арбузова Казанского научного центра Российской академии наук | Method of clonal micropropagation of grape in vitro |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2003127668A (en) | 2005-04-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Batukaev et al. | Use of growth regulators in grapes grinding by in vitro method | |
Al-Khayri | Date palm Phoenix dactylifera L. | |
Häggman et al. | Somatic embryogenesis of Scots pine: cold treatment and characteristics of explants affecting induction | |
Blasco et al. | Somatic embryogenesis in holm oak male catkins | |
Pandey et al. | Shoot initiation and multiplication from a mature tree of Terminalia arjuna Roxb | |
Govindaraju et al. | High frequency plant regeneration in Ashwagandha (Withania somnifera (L.) Dunal): an important medicinal plant | |
RU2080780C1 (en) | Clonal plant micro propagation method | |
RU2302106C1 (en) | Method for preparation of in vitro propagated strawberry (fragraria l) plants to ex vitro cultivation | |
RU2264706C2 (en) | Method for optimization of clonal in vitro micro multiplication of grape | |
Doğan et al. | The effect of different applications on in vitro bulb development of an endemic hyacinth plant (Hyacinthus orientalis L. subsp. chionophyllus Wendelbo) grown in Turkey | |
Sarker et al. | Establishment of a standard protocol for in vitro meristem culture and plant regeneration of Citrus aurantifollia | |
Xu et al. | Efficient in vitro plant regeneration of Pinellia ternata (Thunb) Breit | |
Waghmare et al. | Somatic embryogenesis in strawberry (Fragariaananassa) var. Camarosa | |
Tung et al. | Somatic embryo as a tool for micropropagating of some plants | |
RU2764104C1 (en) | Method for forming collection and long-term deposition of grapes in vitro | |
KR100457999B1 (en) | Propagation Method of Pinus rigida × P. taeda through Somatic Embryogenesis Technique | |
Dhir et al. | Micropropagation of Salix babylonica through in vitro shoot proliferation | |
RU2617944C1 (en) | Method of reproduction of transgenic plants of meadow clover by bud culture in vitro | |
RU2113111C1 (en) | Method of plant growing from difficultly germinating seeds | |
RU2479992C1 (en) | Method of microclonal propagation of siberian flag-leaf (i.sibirica i.) | |
RU2481766C1 (en) | Method of obtaining plant-regenerates of iris ensata (i. ensata thunb.) in vitro | |
Merkle | Somatic embryogenesis from immature seeds of yellow poplar | |
Bhattacharya et al. | Rapid in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc | |
Karim | An overview of oil palm cultivation via tissue culture | |
Rodge et al. | Tissue Culture as a Plant Production Technique for Fruit Crops and Plant Part Used for Propagation |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20060912 |