RU2255802C1 - Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof - Google Patents
Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof Download PDFInfo
- Publication number
- RU2255802C1 RU2255802C1 RU2004118276/15A RU2004118276A RU2255802C1 RU 2255802 C1 RU2255802 C1 RU 2255802C1 RU 2004118276/15 A RU2004118276/15 A RU 2004118276/15A RU 2004118276 A RU2004118276 A RU 2004118276A RU 2255802 C1 RU2255802 C1 RU 2255802C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antibiotic
- sorbent
- silica gel
- aglycon
- eremomycin
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к сорбентам для хроматографии и может быть использовано для анализа и препаративной очистки оптически активных соединений.The invention relates to sorbents for chromatography and can be used for analysis and preparative purification of optically active compounds.
Известны сорбенты для разделения оптически активных соединений на основе силикагеля с привитыми оптически активными соединениями для разделения энантиомеров. Известен, например, сорбент, содержащий на поверхности силикагеля производные хинина (SU 1429016, 1988):Sorbents for the separation of optically active compounds based on silica gel with grafted optically active compounds for the separation of enantiomers are known. Known, for example, a sorbent containing quinine derivatives on the surface of silica gel (SU 1429016, 1988):
Известны сорбенты, содержащие привитые к кремнезему группы:Known sorbents containing grafted to silica groups:
илиor
(SU 1132965, 1132966, 1985).(SU 1132965, 1132966, 1985).
Известен хиральный оптически активный сорбент, содержащий оптически активный полимер, ковалентно связанный с твердым носителем, при этом полимер представляет собой сетчатый полимер, содержащий оптически активные производные дикарбоновых кислот, диаминов, диолов или гидроксикислот, предпочтительно производные винной кислоты, а носитель представляет собой органический или неорганический материал. Способ получения данного сорбента включает закрепление производных винной кислоты на поверхности носителя, которое производят путем сетевой полимеризации через гидроксилирование в присутствии гидросилана и гидросилоксана и закрепляют на носителе в присутствии катализатора (RU 2121395, 1998).Known chiral optically active sorbent containing an optically active polymer covalently bonded to a solid carrier, the polymer is a network polymer containing optically active derivatives of dicarboxylic acids, diamines, diols or hydroxyacids, preferably derivatives of tartaric acid, and the carrier is an organic or inorganic material. A method of obtaining this sorbent involves fixing derivatives of tartaric acid on the surface of the carrier, which is produced by network polymerization through hydroxylation in the presence of hydrosilane and hydrosiloxane and is fixed on the carrier in the presence of a catalyst (RU 2121395, 1998).
Известен сорбент для разделения рацематов оптически активных соединений, содержащий носитель и хиральный селектор - пер-6-аминопроизводные α-, β-, или γ-циклодекстрина или их ацетилированные аналоги. Способ получения данного сорбента включает ковалентную иммобилизацию хиральных селекторов на носителе, которую осуществляют путем последовательного взаимодействия аминированного носителя с конденсирующим агентом, затем с реагентом, выбранным из группы: пер-6-амино-α-циклодекстрина, пер-6-амино-β-циклодекстрина, пер-6-амино-γ-циклодекстрина, а затем с боргидридом металла (RU 2203730, 2003).A known sorbent for the separation of racemates of optically active compounds, containing a carrier and a chiral selector - per-6-amino derivatives of α-, β-, or γ-cyclodextrin or their acetylated analogues. The method for producing this sorbent includes covalent immobilization of chiral selectors on a carrier, which is carried out by sequential interaction of the aminated carrier with a condensing agent, then with a reagent selected from the group: per-6-amino-α-cyclodextrin, per-6-amino-β-cyclodextrin , per-6-amino-γ-cyclodextrin, and then with metal borohydride (RU 2203730, 2003).
Однако известные сорбенты обладают энантиоселективностью лишь к определенным классам веществ или обладают недостаточной селективностью для полного разделения энантиомеров.However, known sorbents possess enantioselectivity only to certain classes of substances or have insufficient selectivity for complete separation of enantiomers.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому результату является сорбент на основе силикагеля с химически привитыми гликопептидными антибиотиками, такими как ванкомицин, тейкопланин, тейкопланин агликон, ристомицин, структурные формулы которых приведены на фиг.1-4, а также способ его получения, описанный в (US 6669842, 2003).The closest in technical essence and the achieved result is a sorbent based on silica gel with chemically grafted glycopeptide antibiotics such as vancomycin, teicoplanin, teicoplanin aglycone, ristomycin, the structural formulas of which are shown in Figs. 1-4, as well as the method for its preparation described in ( US 6669842, 2003).
Фиг.1 илюстрирует структурную формулу ванкомицина.Figure 1 illustrates the structural formula of vancomycin.
Фиг.2 илюстрирует структурную формулу тейкопланина.Figure 2 illustrates the structural formula of teicoplanin.
Фиг.3 илюстрирует структурную формулу агликона тейкопланина.Figure 3 illustrates the structural formula of teicoplanin aglycon.
Фиг.4 илюстрирует структурную формулу ристомицина А.Figure 4 illustrates the structural formula of ristomycin A.
Сорбенты проявляют селективность в разделении широкого круга энантиомеров как в водно-органических, так и в неводных элюентах. Однако не всегда энантиоселективность является достаточно высокой.Sorbents show selectivity in the separation of a wide range of enantiomers in both aqueous-organic and non-aqueous eluents. However, enantioselectivity is not always high enough.
Способ получения известных сорбентов заключается во взаимодействии антибиотика с кремнийорганическим модификатором с последующим химическим связыванием полученного соединения с поверхностью силикагеля.A method of producing known sorbents consists in the interaction of an antibiotic with an organosilicon modifier, followed by chemical bonding of the resulting compound to the surface of silica gel.
Недостатком известного способа получения сорбентов с привитыми гликопептидами состоит в том, что модифицирование антибиотика и прививка его производного к силикагелю осуществляется при температуре 90-105°С, что может приводить к разрушению молекулы антибиотика. Неконтролируемое изменение структуры молекулы хирального селектора при прививке может приводить к неконтролируемому изменению селективности сорбента. Кроме того, недостатком известного способа является использование абсолютированных органических растворителей.A disadvantage of the known method for producing sorbents with grafted glycopeptides is that the modification of the antibiotic and the grafting of its derivative to silica gel is carried out at a temperature of 90-105 ° C, which can lead to the destruction of the antibiotic molecule. An uncontrolled change in the structure of the chiral selector molecule during grafting can lead to an uncontrolled change in the selectivity of the sorbent. In addition, the disadvantage of this method is the use of absolute organic solvents.
Задачей настоящего изобретения является повышение селективности сорбента в разделении оптических изомеров и разработка способа, позволяющего обеспечить воспроизводимое получение селективного сорбента и упрощение технологии.The objective of the present invention is to increase the selectivity of the sorbent in the separation of optical isomers and the development of a method that allows for the reproducible production of selective sorbent and simplification of the technology.
Поставленная задача решается описывамым сорбентом для хроматографии оптических изомеров, который содержит силикагель с привитым через спейсер хиральным селектором - гликопептидным антибиотиком, в котором спейсер представлен группой формулы:The problem is solved by the described sorbent for chromatography of optical isomers, which contains silica gel grafted through a spacer with a chiral selector - a glycopeptide antibiotic, in which the spacer is represented by a group of the formula:
Предпочтительно в качестве гликопептидного антибиотика он содержит эремомицин или его агликон.Preferably, it contains eremomycin or its aglycon as a glycopeptide antibiotic.
Сорбент может содержать также антибиотики, выбранные из группы: ванкомицин, ристомицин А, тейкопланин или их агликоны.The sorbent may also contain antibiotics selected from the group: vancomycin, ristomycin A, teicoplanin or their aglycones.
Поставленная задача решается также описываемым способом получения сорбента для хроматографии оптических изомеров, который включает химическую иммобилизацию гликопептидного антибиотика с помощью кремнийорганического модификатора на поверхности силикагеля, которую осуществляют, вначале обрабатывая силикагель 3-глицидоксипропилтриалкоксисиланом, а затем щелочным водно-органическим буферным раствором соответствующего антибиотика при температуре не выше 40°С.The problem is also solved by the described method of producing a sorbent for chromatography of optical isomers, which includes the chemical immobilization of a glycopeptide antibiotic using an organosilicon modifier on the surface of a silica gel, which is carried out by first treating the silica gel with 3-glycidoxypropyltrialkoxysilane and then with an alkaline aqueous-organic antibiotic solution at appropriate temperature with an antibiotic-organic buffer solution above 40 ° C.
Предпочтительно в качестве антибиотика используют эремомицин или его агликон.Preferably, eremomycin or its aglycon is used as an antibiotic.
Возможно также использование антибиотиков, выбранных из ряда: ванкомицин, ристомицин А, тейкопланин или их агликонов.It is also possible to use antibiotics selected from the range: vancomycin, ristomycin A, teicoplanin or their aglycones.
Ниже приведены конкретные примеры осуществления способа.The following are specific examples of the method.
Пример 1.Example 1
Пример описывает методику иммобилизации эремомицина, который получен с использованием штамма-продуцента Amicolatopsis orientalis subsp (RU 2110578, 1998). Его структурная формула приведена на фиг.5.An example describes a technique for immobilizing eremomycin, which was obtained using the producer strain Amicolatopsis orientalis subsp (RU 2110578, 1998). Its structural formula is shown in figure 5.
101,1 г силикагеля Kromasil KR100-5-SIL суспендировали в 500 мл 0,1 М раствора ацетата натрия, доведенного ледяной уксусной кислотой до рН 5,5. К полученной суспензии добавили 78 мл 3-глицидоксипропилтриэтоксисилана. Реакционную смесь интенсивно перемешивали в течение 2-х часов, а затем оставили без нагревания и перемешивания на 4 суток. По окончании реакции модифицированный силикагель промыли водой, этанолом, ацетоном и отфильтровали. Сушили при температуре 105°С. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 5,2%.101.1 g of Kromasil KR100-5-SIL silica gel was suspended in 500 ml of a 0.1 M sodium acetate solution adjusted to pH 5.5 with glacial acetic acid. To the resulting suspension was added 78 ml of 3-glycidoxypropyltriethoxysilane. The reaction mixture was intensively stirred for 2 hours, and then left without heating and stirring for 4 days. At the end of the reaction, the modified silica gel was washed with water, ethanol, acetone and filtered. Dried at a temperature of 105 ° C. According to elemental analysis, the carbon content is 5.2%.
Получен силикагель, модифицированный эпоксигруппами. Затем 1 г макроциклического антибиотика - эремомицина - растворили в 15 мл дистиллированной воды. Довели рН до значения 8,75, прибавляя по каплям 1 М водный раствор КОН. Полученный раствор смешали с 3 г силикагеля с привитыми эпоксигруппами. Полученную реакционную смесь нагревали при температуре 40°С при перемешивании в течение 14 часов. После окончания реакции сорбент отфильтровали и отмыли последовательно водой, ацетонитрилом, метанолом и диэтиловым эфиром. Сушили в сушильном шкафу при 50°С в течение 4 часов. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 9,5%.Received silica gel modified with epoxy groups. Then 1 g of the macrocyclic antibiotic - eremomycin - was dissolved in 15 ml of distilled water. The pH was adjusted to 8.75 by dropwise adding a 1 M aqueous KOH solution. The resulting solution was mixed with 3 g of epoxy grafted silica gel. The resulting reaction mixture was heated at 40 ° C. with stirring for 14 hours. After completion of the reaction, the sorbent was filtered and washed successively with water, acetonitrile, methanol and diethyl ether. Dried in an oven at 50 ° C for 4 hours. According to elemental analysis, the carbon content is 9.5%.
Таким образом, получен силикагель с привитым хиральным селектором:Thus, silica gel with a grafted chiral selector was obtained:
Силикагель - Si-(СН2)3O-СН2-СН(ОН)-СН2 - ЭремомицинSilica gel - Si- (CH 2 ) 3 O-CH 2 -CH (OH) -CH 2 - Eremomycin
Пример 2.Example 2
Силикагель, модифицированный эпоксигруппами, получен, как в примере 1.Epoxy-modified silica gel was prepared as in Example 1.
3 г эремомицина растворили в 25 мл дистиллированной воды. Довели рН до значения 8,52, прибавляя по каплям 1 М водный раствор КОН. Полученный раствор смешали с 9,2 г силикагеля с привитыми эпоксигруппами. Полученную реакционную смесь нагревали при температуре 40°С при перемешивании в течение 14 часов. После окончания реакции сорбент отфильтровали и отмыли последовательно водой, метанолом и ацетоном. Сушили в сушильном шкафу при 50°С в течение 4 часов. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 9,5%.3 g of eremomycin was dissolved in 25 ml of distilled water. The pH was adjusted to 8.52 by dropwise adding a 1 M aqueous KOH solution. The resulting solution was mixed with 9.2 g of epoxy grafted silica gel. The resulting reaction mixture was heated at 40 ° C. with stirring for 14 hours. After the reaction, the sorbent was filtered and washed successively with water, methanol and acetone. Dried in an oven at 50 ° C for 4 hours. According to elemental analysis, the carbon content is 9.5%.
Пример 3.Example 3
Силикагель, модифицированный эпоксигруппами, получен, как в примере 1.Epoxy-modified silica gel was prepared as in Example 1.
1,2 г ристомицина А растворили в смеси 15 мл дистиллированной воды и 4 мл этанола. Довели рН до значения 8,59, прибавляя по каплям 1 М водный раствор КОН. Полученный раствор прилили к 5 г силикагеля с привитыми эпоксигруппами. Полученную реакционную смесь нагревали при температуре 40°С при перемешивании в течение 14 часов. После окончания реакции суспензию отфильтровали и отмыли водой, метанолом, ацетоном. Сушили в сушильном шкафу при 50°С в течение 4 часов. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 13,1%.1.2 g of ristomycin A was dissolved in a mixture of 15 ml of distilled water and 4 ml of ethanol. The pH was adjusted to 8.59, dropwise adding a 1 M aqueous KOH solution. The resulting solution was poured onto 5 g of epoxy grafted silica gel. The resulting reaction mixture was heated at 40 ° C. with stirring for 14 hours. After the reaction, the suspension was filtered and washed with water, methanol, acetone. Dried in an oven at 50 ° C for 4 hours. According to elemental analysis, the carbon content is 13.1%.
Пример 4.Example 4
30,1 г силикагеля КСК-Г суспендировали в 150 мл 0,1 М раствора ацетата натрия, доведенного ледяной уксусной кислотой до рН 5,5. К полученной суспензии добавили 24 мл 3-глицидоксипропилтриэтоксисилана. Реакционную смесь интенсивно перемешивали в течение 2-х часов, а затем оставили без нагревания и перемешивания на 4 суток. По окончании реакции твердую фазу промыли водой, этанолом, ацетоном и отфильтровали. Сушили при температуре 105°С. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 4,8%.30.1 g of KSK-G silica gel was suspended in 150 ml of a 0.1 M sodium acetate solution, adjusted with glacial acetic acid to pH 5.5. To the resulting suspension was added 24 ml of 3-glycidoxypropyltriethoxysilane. The reaction mixture was intensively stirred for 2 hours, and then left without heating and stirring for 4 days. At the end of the reaction, the solid phase was washed with water, ethanol, acetone and filtered. Dried at a temperature of 105 ° C. According to elemental analysis, the carbon content is 4.8%.
1 г ванкомицина растворили в смеси 15 мл дистиллированной воды и 4 мл этанола. Довели рН до значения 8,50, прибавляя по каплям 1 М водный раствор КОН. Полученный раствор прилили к 5 г КСК-Г, модифицированного эпоксигруппами. Полученную реакционную смесь нагревали при температуре 40°С при перемешивании в течение 15 часов. После окончания реакции суспензию отфильтровали и отмыли водой, метанолом, ацетоном. Сушили в сушильном шкафу при 50°С в течение 4 часов. По данным элементного анализа содержание углерода составляет 8,3%.1 g of vancomycin was dissolved in a mixture of 15 ml of distilled water and 4 ml of ethanol. The pH was adjusted to 8.50, dropwise adding a 1 M aqueous KOH solution. The resulting solution was poured onto 5 g of epoxy-modified KSK-G. The resulting reaction mixture was heated at 40 ° C. with stirring for 15 hours. After the reaction, the suspension was filtered and washed with water, methanol, acetone. Dried in an oven at 50 ° C for 4 hours. According to elemental analysis, the carbon content is 8.3%.
Полученные в соответствии с настоящим изобретением сорбенты были испытаны при разделении оптических изомеров в следующих условиях.The sorbents obtained in accordance with the present invention were tested in the separation of optical isomers under the following conditions.
Полученные по примерам 1-4 сорбенты упаковывали суспензионным методом в колонки из нержавеющей стали размером 4,0×250 мм и проводили разделение оптических изомеров с использованием метода высокоэффективной жидкостной хроматографии.The sorbents obtained in Examples 1–4 were packaged by the suspension method into 4.0 × 250 mm stainless steel columns and optical isomers were separated using high performance liquid chromatography.
Хроматографический анализ осуществляли на ВЭЖХ хроматографе фирмы KNAUER (Германия) в составе: насос К-1001, спектрофотометрический детектор К-2501, термостат колонок Jetstream, с возможностью контроля температуры в диапазоне 5-85°С с точностью 0,1°С, ручной кран-дозатор с петлей на 20 мкл. Объем пробы 5-20 мкл. Хроматографические пики детектировали в диапазоне 210-280 нм в соответствии с максимумами поглощения разделяемых соединений.Chromatographic analysis was carried out on an KNAUER HPLC chromatograph (Germany) comprising: a K-1001 pump, a K-2501 spectrophotometric detector, a Jetstream column thermostat, with the ability to control temperature in the range of 5-85 ° C with an accuracy of 0.1 ° C, manual valve -doser with a loop of 20 μl. The sample volume is 5-20 μl. Chromatographic peaks were detected in the range 210-280 nm in accordance with the absorption maxima of the separated compounds.
Запись хроматограмм и расчеты факторов удерживания разделенных компонентов k, селективности α и разрешения RS проводили с помощью программно-аппаратного комплекса “Мультихром” (Амперсенд, Россия).Chromatograms were recorded and the retention factors of the separated components k, α selectivity and R S resolution were calculated using the Multichrom software and hardware complex (Ampersend, Russia).
В качестве подвижной фазы использовали водно-ацетонитрильные и водно-метанольные буферные растворы, метанол с добавками триэтиламина и ледяной уксусной кислоты. Порядок выхода L- и D-изомеров определяли по стандартным образцам оптически чистых соединений.As the mobile phase, water-acetonitrile and water-methanol buffer solutions, methanol with the addition of triethylamine and glacial acetic acid were used. The yield order of the L- and D-isomers was determined using standard samples of optically pure compounds.
Пример 5.Example 5
В таблице 1 представлен состав подвижных фаз, а в таблице 2 результаты хроматографического разделения аминокислот и некоторых их производных на колонке с сорбентом, полученным по примеру 1, с привитым эремомицином.Table 1 presents the composition of the mobile phases, and in table 2 the results of chromatographic separation of amino acids and some of their derivatives on a column with the sorbent obtained in example 1, inoculated with eremomycin.
Пример 6.Example 6
В таблице 3 представлены результаты хроматографического разделения аминокислот и некоторых их производных на колонке с сорбентом, полученным по примеру 3 с привитым ристомицином А с подвижными фазами, выбранными из числа представленных в таблице 1.Table 3 presents the results of the chromatographic separation of amino acids and some of their derivatives on a column with a sorbent obtained in Example 3 with grafted ristomycin A with mobile phases selected from those shown in Table 1.
40-4,1
2020-4.1
40-4.1
twenty
1,23
2,581.81
1.23
2,58
2,05
3,642.85
2.05
3.64
1,66
1,411,57
1.66
1.41
3,67
2,993.78
3.67
2.99
40-4,1
2020-4.1
40-4.1
twenty
0,57
0,840.67
0.57
0.84
1,20
1,691.34
1.20
1,69
2,10
2,012.00
2.10
2.01
3,30
2,803.69
3.30
2.80
40-4,1
2020-4.1
40-4.1
twenty
0,73
1,150.78
0.73
1.15
1,07
1,461.06
1,07
1.46
1,46
1,271.36
1.46
1.27
2,70
1,942.19
2.70
1.94
2020-4.1
twenty
0,200.11
0.20
0,340.18
0.34
1,701,63
1.70
1,780.88
1.78
40-4,1
2020-4.1
40-4.1
twenty
0,29
0,320.24
0.29
0.32
0,54
0,600.43
0.54
0.60
1,82
1,871.79
1.82
1.87
2,95
3,312,30
2.95
3.31
Пример 7.Example 7
В примере представлены результаты разделения атенолола и фенопрофена на колонке с сорбентом, полученным по примеру 4 с иммобилизованным ванкомицином.The example presents the results of the separation of atenolol and phenoprofen on a column with the sorbent obtained in example 4 with immobilized vancomycin.
Результаты для разделения энантиомеров атенолола получены в системе 100% СН3ОН - 0,01% СН3СООН - 0,01% (С2Н5)3N а фенопрофена - в системе 10% ТГФ - 90% 0,1 M NaH2PO4 pH 6,5.The results for the separation of atenolol enantiomers were obtained in the system of 100% CH 3 OH - 0.01% CH 3 COOH - 0.01% (C 2 H 5 ) 3 N and phenoprofen in the
Результаты разделения представлены в таблице 4.The separation results are presented in table 4.
Пример 8.Example 8
В таблице 5 представлены сравнительные характеристики сорбентов, полученных по примеру 1 и примеру 3, и сорбента, полученного известным способом с привитым ристомицином А (из работы Ekborg-Ott K.H., Liu Y., Armstrong D.W. // Chirality, 1998, v.10, p.434.). Разделение осуществляли в элюенте одинакового состава: 50% СН3ОН - 50% Н2O.Table 5 presents the comparative characteristics of the sorbents obtained according to example 1 and example 3, and the sorbent obtained in a known manner with grafted ristomycin A (from Ekborg-Ott KH, Liu Y., Armstrong DW // Chirality, 1998, v.10, p.434.). Separation was carried out in an eluent of the same composition: 50% CH 3 OH - 50% H 2 O.
Из полученных результатов видно, что заявляемый сорбент и заявляемый способ иммобилизации макроциклических гликопептидных антибиотиков на силикагеле показывают более высокие результаты по энантиоселективности, чем известный.From the obtained results it is seen that the claimed sorbent and the claimed method of immobilization of macrocyclic glycopeptide antibiotics on silica gel show higher enantioselectivity results than the known one.
Пример 9.Example 9
Способом, описанным в примере 3, был иммобилизован антибиотик тейкопланин и агликоны эремомицина, ристомицина А, ванкомицина и тейкопланина. Полученные сорбенты показали способность к разделению оптических изомеров различных соединений.The antibiotic teicoplanin and aglycons of eremomycin, ristomycin A, vancomycin and teicoplanin were immobilized by the method described in example 3. The obtained sorbents showed the ability to separate the optical isomers of various compounds.
Хроматограммы разделения некоторых соединений представлены на фиг.6-12.Chromatograms of the separation of some compounds are presented in Fig.6-12.
Фиг.6. Хроматограмма разделения DL-DOPA на колонке с иммобилизованным эремомицином. Элюент: 20% СН3ОН - 80% 0,1 М NaH2PO4 (pH 5,5); 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 280 нм. Температура: 22°С.6. Chromatogram of separation of DL-DOPA on a column with immobilized eremomycin. Eluent: 20% CH 3 OH - 80% 0.1 M NaH 2 PO 4 (pH 5.5); 0.7 ml / min. Detection: UV 280 nm. Temperature: 22 ° C.
Фиг.7. Хроматограмма разделения DL-Met на колонке с иммобилизованным эремомицином. Элюент: 20% СН3ОН - 80% 0,1 М NaH2PO4; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 210 нм. Температура: 5°С.7. Chromatogram of DL-Met separation on an immobilized eremomycin column. Eluent: 20% CH 3 OH - 80% 0.1 M NaH 2 PO 4 ; 0.7 ml / min. Detection: UV 210 nm. Temperature: 5 ° C.
Фиг.8. Хроматограмма разделения DL-His на колонке с иммобилизованным эремомицином. Элюент: 20% СН3ОН - 80% 0,1 М NaH2PO4; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 210 нм. Температура: 22°С.Fig. 8. Chromatogram of DL-His separation on an immobilized eremomycin column. Eluent: 20% CH 3 OH - 80% 0.1 M NaH 2 PO 4 ; 0.7 ml / min. Detection: UV 210 nm. Temperature: 22 ° C.
Фиг.9. Хроматограмма разделения DL-Asp на колонке с иммобилизованным эремомицином. Элюент: 20% СН3ОН - 80% 0,l M NaH2PO4; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 210 нм. Температура: 22°С.Fig.9. Chromatogram of DL-Asp separation on an immobilized eremomycin column. Eluent: 20% CH 3 OH - 80% 0, l M NaH 2 PO 4 ; 0.7 ml / min. Detection: UV 210 nm. Temperature: 22 ° C.
Фиг.10. Хроматограмма разделения DL-PhGly на колонке с иммобилизованным ристомицином А. Элюент: 50% СН3ОН - 50% Н2O; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 220 нм. Температура: 22°С.Figure 10. Chromatogram of DL-PhGly separation on a column with immobilized ristomycin A. Eluent: 50% CH 3 OH - 50% H 2 O; 0.7 ml / min. Detection: UV 220 nm. Temperature: 22 ° C.
Фиг.11. Хроматограмма разделения DL-Asn на колонке с иммобилизованным ристомицином А. Элюент: 20% СН3ОН - 80% 0,1 М NaH2PO4; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 210 нм. Температура: 22°С.11. Chromatogram of DL-Asn separation on a column with immobilized ristomycin A. Eluent: 20% CH 3 OH - 80% 0.1 M NaH 2 PO 4 ; 0.7 ml / min. Detection: UV 210 nm. Temperature: 22 ° C.
Фиг.12. Хроматограмма разделения DL-Atenolol на колонке с иммобилизованным ванкомицином. Элюент: 100% СН3ОН - 0,01% TEA - 0.01% HOAc; 0,7 мл/мин. Детектирование: УФ 254 нм. Температура: 22°С.Fig. 12. Chromatogram separation DL-Atenolol on a column with immobilized vancomycin. Eluent: 100% CH 3 OH - 0.01% TEA - 0.01% HOAc; 0.7 ml / min. Detection: UV 254 nm. Temperature: 22 ° C.
Claims (10)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004118276/15A RU2255802C1 (en) | 2004-06-17 | 2004-06-17 | Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004118276/15A RU2255802C1 (en) | 2004-06-17 | 2004-06-17 | Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2255802C1 true RU2255802C1 (en) | 2005-07-10 |
Family
ID=35838275
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004118276/15A RU2255802C1 (en) | 2004-06-17 | 2004-06-17 | Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2255802C1 (en) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2541524C2 (en) * | 2013-01-23 | 2015-02-20 | Закрытое акционерное общество "НТЦ "Ленхром" | Method of obtaining thin-layer chiral plates for planar chromatography of stereoisomers and their racemic mixtures |
RU2545315C2 (en) * | 2012-10-10 | 2015-03-27 | Закрытое акционерное общество "Научно-технический центр "Ленхром" | Method of obtaining chiral planar plate for thin layer chromatography of optical isomers |
RU2574767C1 (en) * | 2015-01-12 | 2016-02-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Башкирский государственный университет" | Adsorbent for gaschromatographic separation of enantiomers |
RU2592893C2 (en) * | 2014-12-26 | 2016-07-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Sorbent for separation of optical isomers of substances and analysis thereof in biological fluids by hplc and preparation method thereof |
RU2667002C1 (en) * | 2017-12-27 | 2018-09-13 | Закрытое акционерное общество "Алтайвитамины" | Method for selective separation of salbutamol racemic mixture |
-
2004
- 2004-06-17 RU RU2004118276/15A patent/RU2255802C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2545315C2 (en) * | 2012-10-10 | 2015-03-27 | Закрытое акционерное общество "Научно-технический центр "Ленхром" | Method of obtaining chiral planar plate for thin layer chromatography of optical isomers |
RU2541524C2 (en) * | 2013-01-23 | 2015-02-20 | Закрытое акционерное общество "НТЦ "Ленхром" | Method of obtaining thin-layer chiral plates for planar chromatography of stereoisomers and their racemic mixtures |
RU2574766C2 (en) * | 2014-06-17 | 2016-02-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Башкирский государственный университет" | Sorbent for gas-chromatographic separation of enantiomers (versions) and method for use thereof |
RU2592893C2 (en) * | 2014-12-26 | 2016-07-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Sorbent for separation of optical isomers of substances and analysis thereof in biological fluids by hplc and preparation method thereof |
RU2574767C1 (en) * | 2015-01-12 | 2016-02-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Башкирский государственный университет" | Adsorbent for gaschromatographic separation of enantiomers |
RU2667002C1 (en) * | 2017-12-27 | 2018-09-13 | Закрытое акционерное общество "Алтайвитамины" | Method for selective separation of salbutamol racemic mixture |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN109569026B (en) | Preparation of chromatographic stationary phase with porous frame material as matrix for chiral separation | |
JP3808500B2 (en) | Macrocyclic antibiotics as separating agents | |
Fanali | Enantiomers separation by capillary electrochromatography | |
Guo et al. | Recent advances in preparation and applications of monolithic chiral stationary phases | |
EP1693108A1 (en) | Mixed-modal anion-exchange type separation material | |
D’Acquarica et al. | HPLC chiral stationary phases containing macrocyclic antibiotics: practical aspects and recognition mechanism | |
Pittler et al. | Enantioseparation of dansyl amino acids by HPLC on a monolithic column dynamically coated with a vancomycin derivative | |
US20120202976A1 (en) | Separation matrices | |
EP1594912B1 (en) | Silica gel bonded with cucurbiturils | |
US20050029196A1 (en) | Packing materials for separation of biomolecules | |
JP3653798B2 (en) | New modified silica gel | |
RU2255802C1 (en) | Sorbent for resolution of optical isomers and a method for preparation thereof | |
RU2348455C2 (en) | Sorbent for optic isomer chromatography and method of its obtainment | |
Cichna-Markl | Selective sample preparation with bioaffinity columns prepared by the sol–gel method | |
JP3995935B2 (en) | Chromatographic packing material | |
RU2363538C1 (en) | Method for preparation of enantioselective sorbent | |
JP3263986B2 (en) | Adsorption carrier for chromatography | |
JP2792038B2 (en) | Analysis method and pretreatment method for sample in which water-soluble polymer substance and low-molecular component coexist, and filler for chromatography | |
RU2592893C2 (en) | Sorbent for separation of optical isomers of substances and analysis thereof in biological fluids by hplc and preparation method thereof | |
Varilova et al. | Separation media in affinity chromatography of proteins-A critical review | |
RU2818021C1 (en) | Chromatographic sorbent for analysis of low-molecular compounds in biological fluids | |
US7008533B2 (en) | Macrocyclic antibiotics as separation agents | |
US4812362A (en) | Solid phase N-hydroxysuccinimide reagents | |
WO2001058561A1 (en) | Packing materials for separation of biomolecules | |
Yu et al. | High performance liquid chromatography of small and large molecules with nonporous silica-based stationary phases |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180618 |