RU2248806C1 - Alive vaccine against porcine colibacteriosis - Google Patents

Alive vaccine against porcine colibacteriosis Download PDF

Info

Publication number
RU2248806C1
RU2248806C1 RU2003133961/13A RU2003133961A RU2248806C1 RU 2248806 C1 RU2248806 C1 RU 2248806C1 RU 2003133961/13 A RU2003133961/13 A RU 2003133961/13A RU 2003133961 A RU2003133961 A RU 2003133961A RU 2248806 C1 RU2248806 C1 RU 2248806C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vaccine
colibacteriosis
antigen
strain
microbial cells
Prior art date
Application number
RU2003133961/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
М.В. Волкова (RU)
М.В. Волкова
Original Assignee
Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция filed Critical Государственное научное учреждение Саратовская научно-исследовательская ветеринарная станция
Priority to RU2003133961/13A priority Critical patent/RU2248806C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2248806C1 publication Critical patent/RU2248806C1/en

Links

Abstract

FIELD: veterinary microbiology and biotechnology.
SUBSTANCE: the suggested alive vaccine is being the suspension containing a solvent and an antigen out of E.coli strain as bacterial mass of colony-forming microbial cells. The vaccine contains physiological solution as the solvent and an antigen out of E.coli strain "B-5" as the antigen at the content of 2.4 x 108 - 2.4 x 109 microbial cells/1 cu. cm physiological solution. The suggested alive vaccine is of highly immunogenic properties and safe.
EFFECT: higher efficiency of application.
5 ex, 3 tbl

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и биотехнологии и может быть использовано для получения живых вакцин против колибактериоза сельскохозяйственных животных.The invention relates to veterinary microbiology and biotechnology and can be used to obtain live vaccines against colibacteriosis of farm animals.

Колибактериоз (эшерихиоз) - инфекционная болезнь, вызываемая энтеропатогенными эшерихиями, широко распространен во многих странах мира и наносит значительный экономический ущерб животноводству за счет высокой смертности телят и поросят.Colibacteriosis (Escherichiosis) - an infectious disease caused by enteropathogenic Escherichia, is widespread in many countries of the world and causes significant economic damage to livestock due to the high mortality of calves and piglets.

Известна вакцина против колибактериоза сельскохозяйственных животных (см. патент РФ №1149466 по кл. А 61 К 39/108, опуб. 10.12.95), содержащая антигены эшерихий, консервант на основе формалина, адъювант, бульон Хоттингера и физиологический раствор. Вакцина изготовлена на основе штаммов, продуцирующих термолабильные и термостабильные токсины, обладает выраженными антигенными свойствами, широким спектром иммуногенности.Known vaccine against colibacteriosis of farm animals (see RF patent No. 1149466, class A 61 K 39/108, publ. 10.12.95), containing Escherichia antigens, formalin-based preservative, adjuvant, Hottinger broth and physiological saline. The vaccine is made on the basis of strains producing thermolabile and thermostable toxins, has pronounced antigenic properties, a wide range of immunogenicity.

Однако эффективность данной вакцины невысока, поскольку она, являясь инактивированной, теряет свою иммуногенность при инактивации. Кроме этого, изготовление данной вакцины требует значительных трудозатрат, и она является дорогостоящей, так как предусматривает использование нескольких штаммов.However, the effectiveness of this vaccine is low, since it, being inactivated, loses its immunogenicity upon inactivation. In addition, the manufacture of this vaccine requires considerable labor, and it is expensive, since it involves the use of several strains.

Известна также живая вакцина против колибактериоза сельскохозяйственных животных для внутримышечного введения (см. Wilson R.A., Jotila J.W. Experimental neonatal colibacillosis caws. Serological studies // J. Infection and Jmmunity. - 1976. - V.13. - №1 - Р.92), содержащая бульонную культуру штамма “В-44” (E.coli 0,9:K:H) с содержанием 3×1010 микробных клеток в см3 и адъювант. Вакцину вводят один раз подкожно, а второй - внутримышечно.A live vaccine against colibacteriosis of farm animals for intramuscular administration is also known (see Wilson RA, Jotila JW Experimental neonatal colibacillosis caws. Serological studies // J. Infection and Jmmunity. - 1976. - V.13. - No. 1 - P.92) containing broth culture of strain “B-44” (E. coli 0.9: K: H) with a content of 3 × 10 10 microbial cells in cm 3 and an adjuvant. The vaccine is administered once subcutaneously, and the second - intramuscularly.

Однако вирулентность данной вакцины достаточно высока. Кроме этого, вакцина является многокомпонентной системой, поскольку включает адъювант, а необходимость двукратного введения увеличивает трудозатраты.However, the virulence of this vaccine is quite high. In addition, the vaccine is a multicomponent system, since it includes an adjuvant, and the need for a two-time administration increases labor costs.

Наиболее близкой к заявляемой является живая вакцина против колибактериоза поросят (см. Nagy L.K., Phogal B.S. The effect of colostrums on the adhesion of Escherihia coli to the small intenstine of the pig.// Research in Veterinery sience. - 1976 - v.21. - p.303-308), содержащая суспензию штамма 0149:К91:К88, при этом суспензия содержит 1×1010 колониеобразующих микробных клеток в см3. Штамм ресуспензирован в кислотном гидролизате казеина. Вакцина предназначена для пероральной иммунизации новорожденных поросят.Closest to the claimed is a live vaccine against colibacteriosis of piglets (see Nagy LK, Phogal BS The effect of colostrums on the adhesion of Escherihia coli to the small intenstine of the pig.// Research in Veterinery sience. - 1976 - v.21. - p.303-308) containing a suspension of strain 0149: K91: K88, while the suspension contains 1 × 10 10 colony-forming microbial cells in cm 3 . The strain is resuspended in casein acid hydrolyzate. The vaccine is intended for oral immunization of newborn piglets.

Однако данная вакцина обладает остаточной вирулентностью. Кроме того, использование гидролизата казеина может приводить к появлению аллергических реакций, отвлечению иммунной системы на дополнительный раздражитель, а также появлению воспалительного процесса на месте введения вакцины.However, this vaccine has residual virulence. In addition, the use of casein hydrolyzate can lead to allergic reactions, distraction of the immune system to an additional irritant, as well as the appearance of an inflammatory process at the injection site.

Изобретение направлено на решение задачи создания безопасной живой вакцины против колибактериоза свиней для внутримышечного введения, обладающей высокоиммуногенными свойствами.The invention is aimed at solving the problem of creating a safe living vaccine against colibacteriosis of pigs for intramuscular administration with highly immunogenic properties.

Для решения поставленной задачи живая вакцина против колибактериоза свиней, представляющая собой суспензию, содержащую растворитель и антиген из штамма Е.coli в виде бактериальной массы колониеобразующих микробных клеток, согласно изобретению содержит в качестве растворителя - физиологический раствор, а в качестве антигена - антиген из штамма Е.coli “Б-5” с содержанием 2,4×108-2,4×109 микробных клеток в 1 см3 физиологического раствора.To solve the problem, a live vaccine against pig colibacteriosis, which is a suspension containing a solvent and antigen from E. coli strain in the form of a bacterial mass of colony-forming microbial cells, according to the invention contains physiological saline as a solvent, and antigen from strain E as an antigen .coli “B-5” with a content of 2.4 × 10 8 -2.4 × 10 9 microbial cells in 1 cm 3 of physiological saline.

В известных авторам источниках патентной и научно-технической литературы не описано авирулентных живых вакцин против колибактериоза свиней, обладающих высокоиммуногенными свойствами за счет использования антигена из штамма Е.coli “Б-5”, представляющего собой бактериальную массу с содержанием 2,4×108-2,4×109 микробных клеток в см3.The sources of patent and scientific literature known to the authors do not describe avirulent live vaccines against colibacteriosis of pigs with highly immunogenic properties due to the use of antigen from E. coli strain “B-5”, which is a bacterial mass with a content of 2.4 × 10 8 - 2.4 × 10 9 microbial cells in cm 3 .

Сказанное позволяет сделать вывод о наличии в заявляемом изобретении критерия “изобретательский уровень”.The foregoing allows us to conclude that there is a criterion of "inventive step" in the claimed invention.

Штамм, предназначенный для изготовления вакцины, характеризуется следующими свойствами.The strain intended for the manufacture of the vaccine is characterized by the following properties.

Культуральные и морфологические признаки.Cultural and morphological characters.

Культивирование осуществляют вначале на мясопептонном бульоне (МПБ), затем на мясопептонном агаре (МПА) при температуре 37°С в течение от 18 до 48 часов при аэробных условиях. При этом на МПБ колонии растут диффузно, образуя интенсивную муть и легко разбивающийся осадок, на МПА вначале образуются гладкие, выпуклые, блестящие с ровными краями колонии S-формы. В последующем возможно образование переходных от S- к R-форме колоний и суховатых с неровными краями R-форм колоний (до 50%). На агаре Эндо формируются темно-красные с металлическим блеском колонии.Cultivation is carried out first on meat and peptone broth (MPB), then on meat and peptone agar (MPA) at a temperature of 37 ° C for 18 to 48 hours under aerobic conditions. At the same time, colonies grow diffusely on the MPB, forming an intense haze and easily breaking sediment, on the MPA, initially S-shaped colonies are smooth, convex, shiny with smooth edges. Subsequently, the formation of transitional from S- to R-shaped colonies and dry with uneven edges of the R-shaped colonies (up to 50%) is possible. On the Endo agar, dark red colonies are formed with a metallic sheen.

Ферментативные свойства.Enzymatic properties.

Микроорганизм обладает подвижностью, проявляет каталазную активность, дает положительную реакцию с метилротом, продуцирует индол, ферментирует глюкозу с газообразованием, а также лактозу, арабинозу, маннит, мальтозу, ксилозу, сорбит, дульцит.The microorganism has mobility, exhibits catalase activity, gives a positive reaction with methylroth, produces indole, ferments glucose with gas formation, as well as lactose, arabinose, mannitol, maltose, xylose, sorbitol, dulcite.

Условия и состав сред для токсинообразования: бульон Хоттингера.Conditions and composition of media for toxin formation: Hottinger broth.

Антигенные свойства.Antigenic properties.

Продукт, синтезируемый штаммом Escherichia coli Б-5 - термолабильный экзотоксин, не подверженный нейтрализации поливалентной антитоксической сывороткой против колибактериоза (эшерихиоза) сельскохозяйственных животных.The product synthesized by the strain Escherichia coli B-5 is a thermolabile exotoxin that is not susceptible to neutralization with polyvalent antitoxic serum against colibacteriosis (Escherichiosis) of farm animals.

Молекулярно-генетическая особенность штамма - треки штамма как в S-, так и в R-формах имеют репликон размером около 0,3 кв, в данном репликоне имеется ген, кодирующий В-субъединицу термолабильного токсина (ЛТ), обуславливающий иммуногенную активность штамма. Структурные гены ЛТ дополнительно интегрированы и в хромосому микробной клетки. В клетках штамма имеется репликон, несущий генетическую информацию регуляторного свойства, необходимую для синтеза ЛТ-продукции. У штамма имеется в наличии иммуногенный эпитоп, но отсутствует репликон, ответственный за реактогенность эшерихий.The molecular genetic feature of the strain is that the tracks of the strain in both S- and R-forms have a replicon of about 0.3 kV in size, in this replicon there is a gene encoding the B-subunit of the thermolabile toxin (LT), which determines the immunogenic activity of the strain. LT structural genes are additionally integrated into the chromosome of the microbial cell. In the cells of the strain there is a replicon that carries genetic information of regulatory properties necessary for the synthesis of LT products. The strain has an immunogenic epitope, but there is no replicon responsible for the reactogenicity of Escherichia.

Чувствительность к антибиотикам (зона задержки роста в мм): полимиксин - 11, стрептомицин - 25, левомицетин - 25, рифампицин -9, карбенициллин - 15; не чувствителен к: оксациллину, доксициклину, линкомицину, тетрациклину, олеандомицину, ампициллину, пенициллину.Sensitivity to antibiotics (growth retardation zone in mm): polymyxin - 11, streptomycin - 25, chloramphenicol - 25, rifampicin -9, carbenicillin - 15; not sensitive to: oxacillin, doxycycline, lincomycin, tetracycline, oleandomycin, ampicillin, penicillin.

Вирулентные свойства.Virulent properties.

Внутрибрюшинное введение культуры штамма в концентрации 5·108 м.к./см3 и объеме 0,5 мл гибели белых мышей не вызывает. LД50 - 1,2·1010 м.к./см3. Гибель белых мышей наступает в течение суток.Intraperitoneal administration of the strain culture at a concentration of 5 · 10 8 m.k./cm 3 and a volume of 0.5 ml of death of white mice does not cause. LD 50 - 1.2 · 10 10 m.k./cm 3 . The death of white mice occurs within 24 hours.

Определение энтеротоксигенных свойств штамма.Determination of enterotoxigenic properties of the strain.

Для определения токсинообразования культивирование штамма проводили в питательном составе Mundeli в течение 20 часов. Полученную бульонную культуру разделяли на токсиносодержащий материал и бакмассу методом стерилизующей фильтрации. Культуральная жидкость, лишенная бактериального компонента, служила материалом, содержащим экзотоксин Е.coli.To determine the toxin formation, the strain was cultured in the nutritional composition of Mundeli for 20 hours. The resulting broth culture was divided into toxin-containing material and Bakmass by sterilizing filtration. The culture fluid devoid of the bacterial component served as a material containing E. coli exotoxin.

Устойчивость к температуре определяли прогреванием токсиносодержащего материала в течение 10-минутного кипячения при 100°С и последующим его введением белым мышам.Temperature resistance was determined by heating the toxin-containing material for 10 minutes at 100 ° С and then introducing it into white mice.

Определение ТЛ-токсина проводили с использованием: прогретого токсиносодержащего материала, не прогретого и питательной среды Mundeli - в качестве отрицательного контроля.The determination of TL-toxin was carried out using: heated toxin-containing material, not heated and Mundeli culture medium as a negative control.

Культивирование штамма можно осуществлять, например, на разработанной и запатентованной Саратовской НИВС (патент №2142505) питательной среде следующего состава, мас.%: аминокровин 5-20; пептон 0,6-1,5; хлористый аммоний 0,08-0,18; хлористый натрий 0,09-0,11; гидролизат казеина 9-20; питательная среда “ИГЛА” 52-61; дистиллированная вода - остальное. На данной среде культивирование осуществляют в течение 7 суток при температуре 37°С, затем суспензию центрифугируют при 6000 об/мин в течение 30 минут. Надосадочная жидкость являлась энтеротоксигенным материалом.The cultivation of the strain can be carried out, for example, on the developed and patented Saratov NIVS (patent No. 2142505) nutrient medium of the following composition, wt.%: Aminokrov 5-20; peptone 0.6-1.5; ammonium chloride 0.08-0.18; sodium chloride 0.09-0.11; casein hydrolyzate 9-20; nutrient medium “Igla” 52-61; distilled water - the rest. On this medium, cultivation is carried out for 7 days at a temperature of 37 ° C, then the suspension is centrifuged at 6000 rpm for 30 minutes. The supernatant was an enterotoxigenic material.

Пример 1.Example 1

Способ изготовления живой вакцины против колибактериоза свиней заключается в следующем.A method of manufacturing a live vaccine against colibacteriosis of pigs is as follows.

Осуществляют культивирование штамма. Для этого штамм Е.coli “Б-5” засевают в пробирки вначале на мясопептонном бульоне (МПБ), затем на мясопептонном агаре (МПА) при температуре 37°С в течение 18 часов при аэробных условиях.The strain is cultured. For this, E. coli strain “B-5” is seeded in test tubes, first on meat and peptone broth (MPB), then on meat and peptone agar (MPA) at a temperature of 37 ° C for 18 hours under aerobic conditions.

Полученную бактериальную массу смывают физиологическим раствором и получают суспензию с содержанием микробных клеток 1,2×1010 в 1 см3 раствора. Затем добавлением к полученной суспензии физиологического раствора доводят содержание микробных клеток до 2,4×108-2,4×109 в 1 см3 физиологического раствора.The resulting bacterial mass is washed off with physiological saline and a suspension is obtained with a content of microbial cells of 1.2 × 10 10 in 1 cm 3 of solution. Then, by adding to the resulting suspension of physiological saline, the content of microbial cells is adjusted to 2.4 × 10 8 -2.4 × 10 9 in 1 cm 3 of physiological solution.

При этом суспензию с содержанием микробных клеток 2,4×108 в 1 см3 используют для вакцинации поросят, а с содержанием микробных клеток 2,4×109 в 1 см3 - для вакцинации свиноматок.In this case, a suspension with a content of microbial cells of 2.4 × 10 8 in 1 cm 3 is used for vaccination of piglets, and with a content of microbial cells of 2.4 × 10 9 in 1 cm 3 for vaccination of sows.

Пример 2. Оценку иммуногенных свойств вакцины проводили путем определения титра специфических антител в сыворотке крови кроликов, иммунизированных заявляемой вакциной.Example 2. Evaluation of the immunogenic properties of the vaccine was carried out by determining the titer of specific antibodies in the blood serum of rabbits immunized with the claimed vaccine.

Для этого ставили реакцию агглютинации (РА) с сыворотками крови иммунизированных и интактных кроликов. В серологических пробирках осуществляли разведение сывороток, начиная с 1:25 до 1:6400 в объеме 1 мл. В каждое разведение сывороток вносили по 2 капли антигена, в качестве которого использовали 10 млрд. взвеси микробных тел Е.coli (живой и инактивированной). Сыворотки перемешивали с антигеном, встряхивая пробирки, после чего их помещали в термостат и выдерживали вначале в течение 4 часов при 37°С, а затем 18-24 часа при комнатной температуре. Учет реакции осуществляли по степени просветления сывороток и образованию конгломерата (осадка в виде “зонтика”) на дне каждой пробирки. Результат определения титра специфических антител в сыворотках крови иммунизированных и интактных кроликов представлен в таблице 1, где характер агглютинации представлен следующим образом:For this, an agglutination reaction (RA) was set with the blood sera of immunized and intact rabbits. Serum dilutions were performed in serological tubes starting from 1:25 to 1: 6400 in a volume of 1 ml. 2 drops of antigen were added to each serum dilution, 10 billion microbial suspensions of E. coli (live and inactivated) were used as this. The sera were mixed with antigen by shaking the tubes, after which they were placed in a thermostat and kept at first for 4 hours at 37 ° C, and then 18-24 hours at room temperature. The reaction was taken into account by the degree of enlightenment of the sera and the formation of conglomerate (precipitate in the form of an “umbrella”) at the bottom of each tube. The result of determining the titer of specific antibodies in the blood serum of immunized and intact rabbits is presented in table 1, where the nature of agglutination is presented as follows:

++++ - полная агглютинация,++++ - complete agglutination,

+++ - почти полная агглютинация,+++ - almost complete agglutination,

++ - неполная агглютинация,++ - incomplete agglutination,

+ - незначительная агглютинация,+ - slight agglutination,

- отсутствие агглютинации.- lack of agglutination.

Таблица 1Table 1 СывороткиSerum Титр антителAntibody titer   1:251:25 1:501:50 1:1001: 100 1:2001: 200 1:4001: 400 1:8001: 800 1:16001: 1600 1:32001: 3200 1:64001: 6400 С ЖИВОЙ КУЛЬТУРОЙWITH LIVE CULTURE ОпытнаяExperienced ++++++++ ++++++++ ++++++++ ++++++++ ++++++ ++++ ++ ++ ++ КонтрольнаяControl ++++++++ ++++++ ++++ ++ ++ ++ ++ ++ -- С ИНАКТИВИРОВАННОЙ КУЛЬТУРОЙWITH INACTIVATED CULTURE ОпытнаяExperienced ++++++++ ++++++++ ++++++++ ++++++++ ++++++ ++++ ++ ++ ++ КонтрольнаяControl ++++++++ ++++++ ++++ ++ ++ ++ ++ ++ --

Таким образом, однократное введение живой вакцины обеспечивает повышение уровня иммунитета как в отношении Н- (жгутикового), так и O- (соматического) антигенов по сравнению с контролем в 8 раз.Thus, a single administration of a live vaccine provides an increase in the level of immunity in relation to H- (flagellar) and O- (somatic) antigens in comparison with the control by 8 times.

Пример 3. Для оценки напряженности иммунитета использовали две группы белых мышей. Первую группу мышей (10 голов) подвергли однократной иммунизации культурой штамма E.coli Б-5, вторая группа мышей (10 голов), которым вводили физиологический раствор в тех же дозах, была контрольной. Через 14 дней обе группы животных заразили внутрибрюшинно вирулентной культурой эшерихий с концентрацией 5×108 микробных клеток в 1 см3 физиологического раствора в дозе 0,5 мл. Результаты исследований представлены в таблице 2, из которой следует, что сохранность иммунизированных животных составляет 100%, в контрольной группе все животные погибли.Example 3. To assess the intensity of immunity used two groups of white mice. The first group of mice (10 animals) was subjected to a single immunization with a culture of E. coli strain B-5, the second group of mice (10 animals), which were injected with saline in the same doses, was a control. After 14 days, both groups of animals were infected with an intraperitoneal virulent culture of Escherichia with a concentration of 5 × 10 8 microbial cells in 1 cm 3 of physiological saline in a dose of 0.5 ml. The research results are presented in table 2, from which it follows that the safety of immunized animals is 100%, in the control group all animals died.

Таблица 2table 2 Группы белых мышейGroups of white mice Кол-во головNumber of goals Пало, головFallen, goals Выжило, головSurvived Goals ИммунизированныеImmunized 1010 00 1010 КонтрольныеControl 1010 1010 00

Пример 4.Example 4

Для доказательства авирулентности вакцины ее вводили мышам в концентрации 5×108 микробных тел. Гибели мышей не наступало.To prove the avirulence of the vaccine, it was administered to mice at a concentration of 5 × 10 8 microbial bodies. The death of mice did not occur.

Пример 5.Example 5

Производилась отработка дозы вакцины как для свиноматок, так и для поросят. Свиноматкам вводили вакцину с концентрацией 2,4×109 микробных клеток в 1 см3, а поросятам - с концентрацией 2,4×108 в 1 см3 физиологического раствора.The vaccine dose was tested both for sows and piglets. Sows received a vaccine with a concentration of 2.4 × 10 9 microbial cells in 1 cm 3 and piglets with a concentration of 2.4 × 10 8 in 1 cm 3 of physiological saline.

Для этого одной группе свиноматок в количестве 7 голов вакцину вводили внутримышечно в дозе 2 мл, а другой группе в количестве 6 голов - в дозе 3 мл. В результате проведенных экспериментов была подобрана доза 2 мл, которая обеспечивала наиболее эффективную защиту животных и их сохранность - 98,5%, при этом родившиеся поросята колибактериозом не болели. На месте введения вакцины у животных воспалительных реакций не регистрировалось. Введение вакцины свиноматкам в дозе 3 мл не оказывало особого влияния на эффективность вакцинации.For this, one group of sows in an amount of 7 animals was injected with the vaccine intramuscularly at a dose of 2 ml, and the other group in an amount of 6 animals was given a dose of 3 ml. As a result of the experiments, a dose of 2 ml was selected, which provided the most effective protection of animals and their safety - 98.5%, while the born pigs did not get colibacillosis. At the injection site, no inflammatory reactions were recorded in animals. The introduction of the vaccine to sows in a dose of 3 ml did not have a particular effect on the effectiveness of vaccination.

Аналогичным образом была испытана вакцина в концентрации 2,4×108 на поросятах. Результат исследований представлен в таблице 3, из которой следует, что сохранность поросят в опытной группе на 6,9% больше, чем в контрольной. При этом наилучшая эффективность достигалась при введении вакцины в дозе 2 мл.Similarly, the vaccine was tested at a concentration of 2.4 × 10 8 on piglets. The research result is presented in table 3, from which it follows that the safety of piglets in the experimental group is 6.9% more than in the control. In this case, the best efficiency was achieved with the introduction of a vaccine in a dose of 2 ml.

Таблица 3Table 3 Наименование групп животныхName of animal groups Кол-во поросятNumber of pigs Выжило, головSurvived Goals % сохранности% safety ОпытнаяExperienced 254254 250250 98,498.4 КонтрольнаяControl 249249 228228 91,591.5

Проведены широкие производственные испытания вакцины на свиноматках и отдельно - на поросятах.Extensive production testing of the vaccine was carried out on sows and separately on pigs.

Вакцину вводили 4783 свиноматкам внутримышечно в дозе 2 мл однократно на 104-105 день супоросности. В контрольной группе животных (в количестве 852 головы) использовали общепринятые методы профилактики колибактериоза. Сохранность поросят-сосунов от вакцинированных свиноматок в опытной группе была на 8,7% выше, чем в контрольной.The vaccine was administered to 4783 sows intramuscularly at a dose of 2 ml once on 104-105 days of gestation. In the control group of animals (in the amount of 852 heads), generally accepted methods for the prevention of colibacteriosis were used. The safety of suckling piglets from vaccinated sows in the experimental group was 8.7% higher than in the control.

Введение вакцины 5194 поросятам в возрасте 2-7 дней внутримышечно однократно в дозе 2 мл показало повышение сохранности на 10,8% по сравнению с контрольной группой (в количестве 7148 поросят), которым осуществляли профилактику принятыми в хозяйствах методами.The introduction of the vaccine to 5194 piglets at the age of 2-7 days intramuscularly once in a dose of 2 ml showed an increase in safety by 10.8% compared with the control group (in the amount of 7148 piglets), which were prevented by the methods adopted in the farms.

Таким образом, заявляемая вакцина высокоиммуногенна, не обладает реактогенностью, аллергогенностью, не вызывает воспалительных реакций на месте введения и обеспечивает защиту поросят от колибактериоза.Thus, the claimed vaccine is highly immunogenic, does not have reactogenicity, allergenicity, does not cause inflammatory reactions at the injection site and provides protection for piglets from colibacteriosis.

Claims (1)

Живая вакцина против колибактериоза свиней, представляющая собой суспензию, содержащую растворитель и антиген из штамма E.coli в виде бактериальной массы колониеобразующих микробных клеток, отличающаяся тем, что она содержит в качестве растворителя физиологический раствор, а в качестве антигена - антиген из штамма Е.coli "Б-5" с содержанием 2,4×108-2,4×109 микробных клеток в 1 см3 физиологического раствора.Live vaccine against pig colibacteriosis, which is a suspension containing a solvent and an antigen from E. coli strain in the form of a bacterial mass of colony-forming microbial cells, characterized in that it contains physiological saline as a solvent, and an antigen from E. coli strain as an antigen "B-5" with a content of 2.4 × 10 8 -2.4 × 10 9 microbial cells in 1 cm 3 physiological saline.
RU2003133961/13A 2003-11-25 2003-11-25 Alive vaccine against porcine colibacteriosis RU2248806C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003133961/13A RU2248806C1 (en) 2003-11-25 2003-11-25 Alive vaccine against porcine colibacteriosis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003133961/13A RU2248806C1 (en) 2003-11-25 2003-11-25 Alive vaccine against porcine colibacteriosis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2248806C1 true RU2248806C1 (en) 2005-03-27

Family

ID=35560418

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2003133961/13A RU2248806C1 (en) 2003-11-25 2003-11-25 Alive vaccine against porcine colibacteriosis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2248806C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NAGY L.K., PHOGAL B.S., The effect of colostrums on the adhesion of Escherihia coli to the small intenstine of the pig, Research in Veterinary Sience, 1976, v.21, p.303-308. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2015066292A1 (en) Attenuated pasteurella multocidavaccines & methods of making & use thereof
JPH06505730A (en) Preparation and use of formalin-sterilized colony-forming factor antigen (CFA)-expressing E. coli for inoculation against intestinal infections/diarrhea caused by enterotoxin-producing E. coli in humans.
RU2428202C1 (en) Associated vaccine against anaerobic enterotoxemia and colibacillosis diarrhea in calves
RU2248806C1 (en) Alive vaccine against porcine colibacteriosis
RU2263143C2 (en) Strain of bacterium streptococcus pyogenes 289 used for preparing vaccine against streptococcosis in fur animal
RU2043771C1 (en) Vaccine against escherichiosis in animals
RU2288006C1 (en) Live vaccine against colibacteriosis in calves
RU2129441C1 (en) Mixed vaccine against anaerobic enterotoxemia and escherichiosis in piglets
RU2227160C1 (en) Strain of bacterium leptospira interrogans "mitronov" of serum group canicola for preparing vaccine
RU2521651C1 (en) STRAINS OF BACTERIA Moraxella bovoculi "SH-CH6 N-DEP" USED TO MANUFACTURE DIAGNOSTIC PREPARATIONS AND VACCINES AGAINST INFECTIOUS KERATOCONJUNCTIVITIS OF CATTLE
RU2761379C1 (en) Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use
CA2303722A1 (en) Campylobacter vaccine
CN114805554B (en) Refined egg yolk antibody injection for resisting streptococcus suis and haemophilus parasuis and preparation method thereof
RU2764600C1 (en) Vaccine against escherichiosis of calves and piglets
RU2404803C1 (en) Vaccine against colibacteriosis of hens
RU2806810C1 (en) Hydroxide aluminum oil vaccine against escherichiosis in calves and piglets
RU2699035C2 (en) Polyvalent cattle vaccine against anaerobic enterotoxemia and method of using it
RU2248393C2 (en) Strain escherichia coli b-5 used for preparing thermolabile exotoxin
RU2145353C1 (en) Strain of bacterium moraxella bovis "g97-vnivi" used for preparing diagnostica and vaccines against infectious keratoconjunctivitis in cattle
RU2018322C1 (en) Vaccine against swine erysipelas
CN111467488B (en) Water-soluble composite immunoadjuvant and application thereof
RU2080381C1 (en) Strain of bacterium streptococcus eqni used for preparing diagnostic and prophylaxis preparations against strangles in horses
Kumar et al. Immunological studies on a modified water-in-oil-in-water (w/o/w) haemmorhagic septicemia vaccine incorporated with Pasteurella multocida A: 1 in the external aqueous phase
RU2098127C1 (en) Mixed vaccine for control over cattle necrobacteriosis
RU1679791C (en) Strain of bacterium erysipelothrix insioliosa used for preparing biopreparations against erysipelas in pigs

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20161126