RU2247390C2 - Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр - Google Patents

Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр Download PDF

Info

Publication number
RU2247390C2
RU2247390C2 RU2002103970/15A RU2002103970A RU2247390C2 RU 2247390 C2 RU2247390 C2 RU 2247390C2 RU 2002103970/15 A RU2002103970/15 A RU 2002103970/15A RU 2002103970 A RU2002103970 A RU 2002103970A RU 2247390 C2 RU2247390 C2 RU 2247390C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
epstein
barr virus
minutes
lymphocytes
diagnosis
Prior art date
Application number
RU2002103970/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2002103970A (ru
Inventor
Н.В. Александрова (RU)
Н.В. Александрова
В.В. Иванова (RU)
В.В. Иванова
Р.А. Насыров (RU)
Р.А. Насыров
О.В. Родионова (RU)
О.В. Родионова
Original Assignee
Научно-исследовательский институт детских инфекций (НИИДИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт детских инфекций (НИИДИ) filed Critical Научно-исследовательский институт детских инфекций (НИИДИ)
Priority to RU2002103970/15A priority Critical patent/RU2247390C2/ru
Publication of RU2002103970A publication Critical patent/RU2002103970A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2247390C2 publication Critical patent/RU2247390C2/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины, в частности к диагностике инфекции, вызванной вирусом Эпштейн-Барр. Сущность изобретения состоит в том, что проводят непрямую иммунопероксидазную реакцию с последующим гистохимическим окрашиванием и выявлением антигена вируса Эпштейн-Барр. Дополнительно диагностируют тяжесть течения инфекционного мононуклеоза по характеру экспрессии антигена вируса Эпштейн-Барр. Техническим результатом является повышение точности диагностики инфекции, вызванной вирусом Эпштейн-Барр, и определение тяжести течения инфекционного мононуклеоза. 1 з.п.ф-лы, 1 табл.

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности медицинской диагностики, а именно диагностики инфекционного мононуклеоза.
Инфекционный мононуклеоз (ИМ) - один из вариантов течения инфекционного процесса, вызванного вирусом Эпштейн-Барра (ВЭБ).
В последние годы отмечается постоянный рост показателей заболеваемости ИМ. В России в 2000 году зарегистрировано 6,77 случаев ИМ на 100 тыс. населения, причем среди детского населения заболеваемость составляет 29,41 на 100 тыс., что на 6,3% больше, чем в 1999 году. Для ИМ характерна системность поражения с вовлечением в процесс лимфоидной и ретикулярной ткани, нервной системы, костного мозга, глаз, сердца, легких и других органов. Тяжесть течения ИМ определяется по совокупности выраженности симптомов интоксикации, лимфопролиферативного синдрома и изменений в анализе крови. ИМ может иметь острое, хроническое и рецидивирующее течение (Vyosevic M., Gvozdenovic E. 1994).
Вирус Эпштейн-Барра ассоциирован с онкологическими и онкогематологическими заболеваниями, такими как назофарингеальная карцинома, лимфогранулематоз, некоторые В-клеточные и периферические Т-клеточные лимфомы. Установлено, что у лиц, перенесших ИМ в 2-5 раз повышается риск развития в дальнейшем лимфогранулематоза.
Одним из важнейших белков, экспрессирующих ВЭБ, является латентный мембранный протеин (LMP-1). Обычно он экспрессируется в острую фазу ИМ и при лимфопролиферативных заболеваниях. Кроме того, он обладает прямой онкогенной активностью. Данный антиген является маркером острого периода ИМ, выявление LMP-1 в периоде реконвалесценции ИМ может расцениваться как неблагоприятный прогностический признак для развития лимфопролиферативных заболеваний.
В связи с этим необходима точная диагностика инфекции, вызванной ВЭБ для проведения адекватной терапии.
Наиболее распространенным методом специфической диагностики ВЭБ инфекции является серологическая диагностика с помощью иммуноферментного анализа (ИФА). Сыворотки обследованных больных инкубируют с рекомбинантным белком-антигеном ВЭБ. Далее связавшиеся антитела выявляют при инкубации с конъюгатом антител к иммуноглобулинам с пероксидазой хрена. Учет результата проводят по измерению оптической плотности растворов при длине волны 450 нм.
Но серологическое обследование имеет существенные недостатки: с одной стороны, наличие антител к ВЭБ в крови не является четким признаком активности инфекционного процесса (антитела к ВЭБ выявляются до 85-90% у здоровых доноров), с другой стороны, при угнетении иммунного ответа антителогенез может быть нарушен, у новорожденных определение серологических маркеров малоэффективно вследствие несформировавшейся иммунной системы, кроме того, в начальной стадии болезни антител может не быть, так как они образуются отсрочено. Выше указанные недостатки снижают точность диагностики инфекции, вызванной ВЭБ, серологическим методом.
В связи с этим наиболее информативным является определение самого инфекционного агента - антигена ВЭВ.
Наиболее близким к предлагаемому нами способу диагностики является иммуногистохимическое выявление антигена ВЭБ (LMP-1). (Е.Е.Леенман, Б.В.Афанасьев, К.М.Пожарисский. О роли вируса Эпштейн-Барр в патогенезе лмфогрануломатоза Иммуногистохимическое и молекулярно-биологическое (гибридизация in situ) исследование //Архив патологии 1999 №1).
Биоптаты лимфоузлов получают при оперативном вмешательстве, фиксируют в формалине, заливают в парафин. Далее парафиновые срезы для восстановления антигенной реактивности тканей перед нанесением первичных антител обрабатывают в бытовой скороварке в течение 1 мин после достижения максимальных давления и температуры. Срезы инкубируют с первичными антителами в течение 18 ч при 4°С. На следующем этапе используют АВС Elite kit ("Vector", США), в качестве хромогена применяют 3,3′-диамино-бензидин. Препараты докрашивают гематоксилином и после стандартной обработки заключают в бальзам, препараты смотрят при помощи светового микроскопа.
В данном способе имеются следующие недостатки: травматичность, так как биоптаты возможно взять только в процессе оперативного вмешательства. Проведение всех этапов способа достаточно длительно по времени. Взятие биоптата, его фиксация, заливка в парафин, приготовление гистологических срезов занимает 6-7 часов и более 18 часов уходит на проведение иммунопероксидазной реакции. За счет высокого фонового окрашивания при работе с парафиновыми срезами снижается точность результата.
Устранению указанных недостатков может помочь предлагаемый авторами способ выявления антигена ВЭБ.
Технический результат настоящего изобретения состоит в повышении точности. Этот результат достигается тем, что при проведении непрямой иммунопероксидазной реакции согласно изобретению берут 0,05 мл лимфоцитарной взвеси крови больного, которую наносят тонким слоем на предметное стекло, через 5-7 минут фиксируют в ацетоне в течение 3-5 минут, затем обрабатывают нормальной сывороткой, инкубируют с моноклональными антителами в течение 45 минут, после чего наносят биотилинированную сыворотку, и по характеру экспрессии антигена определяют форму инфекции: при наличии 5-6 мелких гранул в свободнолежащих лимфоцитах диагносцируют легкую форму, при наличии перинуклеарной экспрессии в слипшихся лимфоцитах и 6-7 крупных гранул как в слипшихся, так и в свободнолежащих лимфоцитах диагносцируют тяжелую форму, а при наличии перинуклеарной экспресии и 15 гранул и более в слипшихся лимфоцитах - рецидивирующее течение инфекционного мононуклеоза.
Определение антигена ВЭБ в лимфоцитарной взвеси крови является патогенетически оправданным, так как ВЭБ обладает тропизмом к В-лимфоцитам. После внедрения вируса в геном В-лимфоцитов они трансформируются в ВЭБ презентирующие клетки и приобретают способность к неограниченной пролиферации, в результате чего ВЭБ длительное время персистирует в организме.
0,05 мл лимфоцитарной взвеси достаточно для нанесения на предметное стекло тонким слоем и для этого необходим забор минимального количества крови у больного (1 мл).
Метод является неинвазивным и позволяет многократно в течение периода наблюдения контролировать наличие ВЭБ в крови
Фиксация в ацетоне в течение 3-5 минут позволяет сохранить структуры, сделать более доступными для проникновения антител и устранить фоновое окрашивание при пероксидазной реакции.
Нанесение нормальной сыворотки также способствует устранению фонового окрашивания.
В результате такая подготовка позволяет сократить время инкубирования с моноклональными антителами до 45 минут. Этого времени достаточно для реакции антигена со специфическими антителами и устранения чужеродных антител.
Таким образом, постановка реакции занимает около 3-4 часов.
Добавление биотинилированной сыворотки необходимо для последующей обработки в растворе super ABC, что обеспечивает высокую чувствительность и точность метода.
Сущность способа заключается в следующем:
Лимфоцитарную взвесь крови, наносят тонким слоем на предметное стекло, через 5-7 минут фиксируют в ацетоне в течение 3-5 минут, промывают в фосфатно-солевом буфере (рН 7.2-7.4) в течение 3-4 минут, обрабатывают в 1% растворе бихромата калия 3-4 минуты, затем обрабатывают 0,03% перекиси водорода в течение 20 минут и повторно промывают в двух порциях фосфатно-солевого буфера (рН=7.2), по 5 минут в каждой, инкубируют в 0,3% Тритон Х-100, при температуре 37°С в течение 15 минут, после чего наносят нормальную сыворотку и инкубируют при температуре 37°С в течение 20 минут, затем снова промывают в двух порциях фосфатно-солевого буфера (рН=7.2), по 5 минут в каждой, и на мазки наносят моноклональные антитела к антигену ВЭБ и инкубируют при температуре 37°С в течение 45 минут, промывают в двух порциях фосфатно-солевого буфера (рН=7.2) по 5 минут в каждой, наносят биотилинированную сыворотку, инкубируют при комнатной температуре в течение 20 минут, промывают в двух порциях фосфатно-солевого буфера (рН=7.2) по 5 минут в каждой, наносят реагент ABC и инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут, промывают в двух порциях фосфатно-солевого буфера (рН=7.2) по 5 минут в каждой, обрабатывают в водном растворе, содержащем 0,05% 3,3-диаминобензидин тетрахлорида (ДАВ) и 0,025% перекиси водорода, в течение 3 минут в заключение окрашивают гематоксилином. Выявление антигена проводят под световым микроскопом. По характеру экспрессии АГ определяют форму инфекции: при наличии 5-6 мелких гранул в свободнолежащих лимфоцитах диагносцируют легкую форму, при наличии перинуклеарной экспрессии в слипшихся лимфоцитах и 6-7 крупных гранул как в слипшихся, так и в свободнолежащих лимфоцитах диагносцируют тяжелую форму, а при наличии перинуклеарной экспресии и 15 гранул и более в слипшихся лимфоцитах - рецидивирующее течение инфекционного мононуклеоза.
Для получения достоверных результатов и исключения возможности неспецифических реакций обязательным условием является проведение контролей на качество реактивов и специфичность антисыворотки.
1. Для проведения контроля специфичности антисыворотки в качестве специфического антигена наносят неиммунную сыворотку или буфер (результаты должны быть отрицательными).
2. Неспецифичность сыворотки устраняют посредством максимального разведения высококонцентрированной сыворотки и укорочения времени инкубации.
Описанный способ подкреплен примерами конкретного выполнения. Было произведено исследование мазков с лимфоцитарной взвесью 37 детей в остром периоде ИМ. Установлено, что у больных с легкой формой ИМ (12 человек) ИЦХМ выявлялась экспрессия АГ в виде мелких гранул в среднем в 5-6 лимфоцитах по 6-7 гранул в каждом. У детей с тяжелой формой (17 больных) характер экспрессии АГ различен, у 4 больных (23,5%) АГ выявляется перинуклеарно в агломератах лимфоцитов, у 7 (41,1%) детей в виде крупных гранул в 7-8 агломирированных лимфоцитах на 100 кл в п/з по 8-9 гранул в каждом. У 6 (35,2%) больных с тяжелой формой ИМ в препаратах выявляются крупные гранулы в свободнолежащих лимфоцитах. У детей с рецидивирующим течением ИМ (8 больных) наблюдается перинуклеарная экспрессия в агломератах лимфоцитов и в 5-6 лимфоцитах на 100 кл в п/з 15-20 крупных гранул.
В качестве контрольной группы были обследованы 4 ребенка с ОРВИ в возрасте 1 года и 8 детей с лимфогранулематозом. У детей с ОРВИ не выявлялась экспрессия антигена. У больных ЛГМ наблюдается массивная диффузная экспрессия АГ в виде множественных крупных гранул свободнолежащих лимфоцитах.
Параллельно производилось обследование методом ПЦР, в 64,8% случаев ПЦР была отрицательной.
Пример 1: Дамир Ч. 5 лет, находился на 4 отделении НИИДИ с 5.02.01-9.02.01.
Анамнез болезни. Мальчик поступил в НИИДИ на 9 день остро начавшегося заболевания. Жалобы при поступлении: повышение температуры до 39 в течение 6 дней, вялость, головная боль, увеличение шейных ЛУ, боль в горле и затруднение носового дыхания, сыпь. Дома 3 дня получал флемоксин-солютаб в возрастной дозировке.
Объективное обследование при поступлении. Состояние средней тяжести. Выражены симптомы интоксикации. На кожных покровах лица, туловища, конечностей грубая, сливная пятнисто-папулезная сыпь. В зеве яркая разлитая гиперемия. Миндалины рыхлые, I-II степени гипертрофии. На миндалинах белые рыхлые налеты, не выходящие за пределы миндалин. Отека в зеве нет. Верхние переднешейные ЛУ справа пакетами 4,0×5,0 см, слева 2,0×3,0 см, плотные, болезненные при пальпации. Заднешейные ЛУ 2,0×3,0 см, цепочкой. Пальпируются мелкие затылочные, подчелюстные, подмышечные и паховые ЛУ. Носовое дыхание резко затруднено, во сне отмечается храп. Живот мягкий, безболезненный. Печень увеличена до 2 см ниже края реберной дуги. Край печени эластичный, умеренно чувствительный при пальпации. Селезенка увеличена до 1,5 см ниже края реберной дуги, плотноватая, безболезненная.
В анализе крови при поступлении (на 9-й д. б.) L - 15×109/л, э - 0%, п - 4%, с - 36%, л - 50%, м - 2%, ат. мон. - 8%, СОЭ-19 мм/час. АЛТ на день болезни - 83 ед/л. Реакция Пауля-Буннеля 1/16 (отрицательная), ПЦР на ВЭБ отрицательная.
Больному было проведено иммуноцитохимическое исследование мазков крови предлагаемым способом: лимфоцитарную взвесь крови, полученную путем центрифугирования, нанесли тонким слоем на предметное стекло, высушили при комнатной температуре, фиксировали в ацетоне в течение 3-5 минут, нанесли нормальную сыворотку и инкубировали при температуре 37°С в течение 20 минут, мазки наносили моноклональные антитела к антигену ВЭБ и инкубировали при температуре 37°С в течение 45 минут, наносили биотилинированную сыворотку, инкубировали при комнатной температуре в течение 20 минут, наносили реагент АВС и инкубировали при комнатной температуре в течение 30 минут, обрабатывали в водном растворе, содержащем 0,05% 3,3-диаминобензидин тетрахлорида (ДАБ) и 0,025% перекиси водорода, в течение 3 минут в заключение окрашивали гематоксилином. У больного выявлена диффузная перинуклеарная экспрессия антигена LMP1 в "слипшихся" лимфоцитах и 6 лимфоцитов на 100 кл в п/з с 15-20 крупными гранулами в одном лимфоците. Таким образом, на основании данных ИЦХ исследования и клинических проявлений был поставлен диагноз инфекционный мононуклеоз, тяжелая форма.
При диспансерном наблюдении в течение 1 года установлено, что у ребенка дважды (через 1 месяц и через 8 месяцев после выписки из стационара) клинически наблюдался возврат симптомокомплекса острого инфекционного мононуклеоза: повышение температуры до 39, резкое затруднение носового дыхания, увеличение шейных ЛУ до 3,5×4,0 см, гепатомегалия до 2 см, спленомегалия до 1,5 см. При иммуноцитохимическом исследовании выявлялась экспрессия антигена в виде крупных гранул в свободнолежащих лимфоцитах.
Пример 2: Елена А., 7 лет, находилась на 4 отделении НИИДИ с 12.03.00-21.03.00.
Анамнез болезни. Девочка поступила в НИИДИ на 4 день остро начавшегося заболевания. Жалобы при поступлении: повышение температуры до 39 в течение 4 дней, вялость, головная боль, увеличение шейных ЛУ, боль в горле и затруднение носового дыхания.
Объективное обследование при поступлении. Состояние средней тяжести. Выражены симптомы интоксикации. В зеве яркая разлитая гиперемия. Миндалины рыхлые, I-II степени гипертрофии. На миндалинах белые рыхлые налеты, не выходящие за пределы миндалин. Отека в зеве нет. Верхние переднешейные ЛУ 2,0×1,5 см, плотные, болезненные при пальпации. Заднешейные ЛУ 1,0×1,5 см, цепочкой. Пальпируются мелкие затылочные, подчелюстные, подмышечные и паховые ЛУ. Носовое дыхание резко затруднено, во сне отмечается храп. Живот мягкий, безболезненный. Печень увеличена до 2 см ниже края реберной дуги. Край печени эластичный, умеренно чувствительный при пальпации. Селезенка увеличена до 0,5 см ниже края реберной дуги, плотноватая, безболезненная.
В анализе крови при поступлении (на 4-й д. б.) L - 15×109/л, э - 0%, п - 4%, с - 36%, л - 55%, м - 2%, ат. мон. - 5%, СОЭ - 10 мм/час. АЛТ на 4 день болезни - 56 ед/л. Реакция Пауля-Буннеля 1/16 (отрицательная), ПЦР на ВЭБ отрицательная.
Больной было проведено иммуноцитохимическое исследование лимфоцитарной взвеси крови предлагаемым способом и выявлена экспрессия антигена LMP1 в виде 4-5 мелких гранул в свободнолежащих лимфоцитах. Таким образом, на основании данных ИЦХ исследования и клинических проявлений был поставлен диагноз инфекционный мононуклеоз, легкая форма.
В результате проведенных нами исследований можно сделать следующие выводы:
1) предложенный нами способ диагностики ВЭБ инфекции в 90-100% позволяет с высокой степенью точности, специфичности и достоверности выявить наличие АГ ВЭБ в крови у больных с ИМ;
2) позволяет определить форму заболевания;
3) диффузная перинуклеарная экспрессия АГ и более 15 крупных гранул в агломератах лимфоцитов расценивается в качестве прогностического критерия рецидивирующего течения ИМ.
Метод достаточно прост, возможно его широкое применение в практическом здравоохранении для быстрого определения экспрессии антигена ВЭБ и соответственно оценки тяжести заболевания и своевременной иммунокорригирующей терапии.
Figure 00000001

Claims (2)

1. Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом Эпштейн-Барр путем проведения непрямой иммунопероксидазной реакции с последующим гистохимическим окрашиванием и выявлением антигена вируса Эпштейн-Барр под световым микроскопом, отличающийся тем, что на предметное стекло тонким слоем наносят 0,05 мл лимфоцитарной взвеси крови больного, через 5-7 мин фиксируют в ацетоне в течение 3-5 мин, промывают, обрабатывают нормальной сывороткой, инкубируют с моноклональными антителами к антигену вируса Эпштейн-Барр в течение 45 мин, с последующей инкубацией с биотинилированной сывороткой в течение 20 мин при комнатной температуре.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что при выявлении антигена вируса Эпштейн-Барр в виде 5-6 мелких гранул в свободнолежащих лимфоцитах диагностируют легкую форму инфекционного мононуклеоза, при наличии перинуклеарной экспрессии в агломератах лимфоцитов и 6-7 крупных гранул как в агломератах, так и в свободнолежащих лимфоцитах диагностируют тяжелую форму инфекционного мононуклеоза, а при наличии перинуклеарной экспрессии и более 15 гранул в агломератах лимфоцитов - рецидивирующее течение инфекционного мононуклеоза.
RU2002103970/15A 2002-02-19 2002-02-19 Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр RU2247390C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002103970/15A RU2247390C2 (ru) 2002-02-19 2002-02-19 Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002103970/15A RU2247390C2 (ru) 2002-02-19 2002-02-19 Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002103970A RU2002103970A (ru) 2003-10-10
RU2247390C2 true RU2247390C2 (ru) 2005-02-27

Family

ID=35286614

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002103970/15A RU2247390C2 (ru) 2002-02-19 2002-02-19 Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2247390C2 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007136303A1 (ru) 2006-05-23 2007-11-29 Closed Company "Molecular-Medicine Technologies" Способ идентификации урогенитальной инфекции, олигонуклеотид, комбинация олигонуклеотидов, биочип и набор на его основе
RU2612120C1 (ru) * 2016-01-11 2017-03-02 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России) Способ диагностики глоссита, обусловленного поражением вирусом эпштейна-барр

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЛЕЕНМАН Е.Е. и др. О роли вируса Эпштейн-Барр в патогенезе лимфогранулематоза. Иммуногистохимическое и молекулярно-биологическое (гибридизация in situ) исследование. Архив патологии. 1999, №1, с.15-22. Лимфоциты. Методы. Под ред. Дж.Клауса. - М.: Мир, 1990, с.230-248. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007136303A1 (ru) 2006-05-23 2007-11-29 Closed Company "Molecular-Medicine Technologies" Способ идентификации урогенитальной инфекции, олигонуклеотид, комбинация олигонуклеотидов, биочип и набор на его основе
RU2612120C1 (ru) * 2016-01-11 2017-03-02 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России) Способ диагностики глоссита, обусловленного поражением вирусом эпштейна-барр

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ericson et al. Recurrent parotitis and sialectasis in childhood: clinical, radiologic, immunologic, bacteriologic, and histologic study
JP3404020B2 (ja) 癌の早期診断方法
Jimenez‐Flores et al. High‐risk human papilloma virus infection decreases the frequency of dendritic Langerhans' cells in the human female genital tract
JP3117695B2 (ja) 医療目的の人体の乳頭腫ヴィールス(hpv)防止方法
USRE42129E1 (en) Viral obesity methods and compositions
Field et al. The reliability of serological tests for the diagnosis of genital herpes: a critique
RU2247390C2 (ru) Способ диагностики инфекции, вызванной вирусом эпштейн- барр
Fulton et al. Immunofluorescence in diagnosis of measles infections in children
Kinčeková et al. Larval toxocariasis and its clinical manifestation in childhood in the Slovak Republic
JP7081861B1 (ja) LIPに基づいてUMODを修飾した尿中のNeu5Gcを識別する尿路上皮癌の検査用キット、およびその製造方法
Dondey et al. Application of polymerase chain reaction assay in the diagnosis of orbital granuloma complicating atypical oculoglandular cat scratch disease
CN110045105A (zh) 柯萨奇A16病毒IgA抗体量子点免疫荧光层析试纸条及试剂盒
Behbehani et al. Epidemiology of toxoplasmosis in Kuwait. I. Detection of antibodies to Toxoplasma gondii and percentage distribution among the inhabitants
Svensson et al. Detection of Chlamydia trachomatis in urinary samples from women.
Mogi et al. Increased β2-microglobulin in both parotid and submandibular/sublingual saliva from patients with Sjögren's syndrome
Chua et al. Seroepidemiology of human herpesvirus 6 in a population seen in the University Hospital Kuala Lumpur, Malaysia
RU2310851C1 (ru) Способ диагностики внутриутробных вирусных инфекций у детей
Chaiyabutr et al. Comparison of the sensitivity and specificity of Tzanck smear and immunofluorescence assay for the diagnosis of cutaneous herpes simplex virus and varicella zoster virus infections in a real-life clinical setting
JPWO2007069423A1 (ja) アレルギー診断用マーカー
RU2137137C1 (ru) Способ определения m.leprae у больных с регрессом заболевания
Folkers et al. Improved detection of HSV by electron microscopy in clinical specimens using ultracentrifugation and colloidal gold immunoelectron microscopy: comparison with viral culture and cytodiagnosis
Donaldson et al. The 1976 influenza epidemic in Melbourne
EP4075138A1 (en) Composition employing wasf2 autoantibody for early diagnosis of hepatocellular carcinoma
RU2730980C1 (ru) Способ диагностики лямблиоза
JPH06109729A (ja) アポトーシス検出試薬

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees