RU2242246C2 - Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing - Google Patents
Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2242246C2 RU2242246C2 RU2002122340/13A RU2002122340A RU2242246C2 RU 2242246 C2 RU2242246 C2 RU 2242246C2 RU 2002122340/13 A RU2002122340/13 A RU 2002122340/13A RU 2002122340 A RU2002122340 A RU 2002122340A RU 2242246 C2 RU2242246 C2 RU 2242246C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- smallpox
- vaccine
- tablet
- bivaccine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии, и может быть использовано для специфической профилактики инфекционного вирусного гепатита В и натуральной оспы.The invention relates to medicine, in particular to immunology, and can be used for specific prophylaxis of infectious viral hepatitis B and smallpox.
Известна живая рекомбинантная вакцина для профилактики гепатита В и натуральной оспы для накожного применения (патент РФ №2073524, МПК А 61 К 39/29; С 12 N 15/86, опубл. 20.02.97 г.). Вакцина содержит штамм рекомбинантно-го вируса осповакцины (ВОВ) ГКВ №2131 с титром (3-5)×108 ООЕ/мл, способного синтезировать preS2 и HbsAg вируса гепатита В и пептон в качестве стабилизатора при следующем соотношении компонентов, мас.%:Known live recombinant vaccine for the prevention of hepatitis B and smallpox for cutaneous use (RF patent No. 2073524, IPC A 61 K 39/29; C 12 N 15/86, publ. 02.20.97). The vaccine contains a strain of recombinant smallpox vaccine virus (BWA) with bills No. 2131 with a titer of (3-5) × 10 8 OOE / ml, capable of synthesizing preS2 and HbsAg of hepatitis B virus and peptone as a stabilizer in the following ratio of components, wt.%:
штамм рекомбинантного вируса оспо-recombinant smallpox virus strain
вакцины ГКВ №2131 с указанным титром 90-95STB vaccine No. 2131 with a titer of 90-95
пептон 5-10peptone 5-10
Недостатком известной вакцины является то, что в ней используют в качестве стабилизирующей добавки один пептон, что недостаточно обеспечивает сохранение активности вирусного материала в процессе его лиофилизации. Кроме того, низка производительность применения этого препарата при накожной вакцинации, необходимость квалифицированного медицинского персонала для проведения вакцинации, угроза инфицирования прививаемого пациента вирусами иммунодефицита, гепатитов и др. При вакцинации скарификацией возможно выделение вируса осповакцины в окружающую среду, что грозит неконтролируемой его передачей к непривитым людям с риском развития тяжелых осложнений.A disadvantage of the known vaccine is that it uses only peptone as a stabilizing additive, which does not sufficiently ensure the preservation of the activity of the viral material during its lyophilization. In addition, the productivity of this drug in case of skin vaccination is low, the need for qualified medical personnel for vaccination, the threat of infection of the vaccinated patient with immunodeficiency viruses, hepatitis, etc. When vaccinated with scarification, vaccinia virus can be released into the environment, which threatens its uncontrolled transmission to unvaccinated people with the risk of developing serious complications.
Известен способ получения живой рекомбинантной вакцины для профилактики гепатита В и натуральной оспы для накожного применения, включающий пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 двукратно на куриных эмбрионах и однократно на коже теленка, далее вируссодержащий материал накапливают на коже теленка и собирают путем соскоба образовавшихся оспин, гомогенизируют с фреоном, выделяют вирус центрифугированием в надосадочную жидкость, содержащую вирус с титром (3-5)×108 ООЕ/мл, вносят 5-10 мас.% пептона, после чего полученную вакцину разливают в ампулы и лиофильно высушивают (патент РФ №2073524, МПК А 61 К 39/29; С 12 N 15/86, опубл. 20.02.97 г.).A known method of producing a live recombinant vaccine for the prevention of hepatitis B and smallpox for cutaneous application, including the passage of the recombinant strain of Great Patriotic War Bills No. 2131 twice on chicken embryos and once on the skin of the calf, then the virus-containing material is accumulated on the skin of the calf and collected by scraping the homogenized smallpox with freon, the virus is isolated by centrifugation in a supernatant containing a virus with a titer of (3-5) × 10 8 OOE / ml, 5-10 wt.% peptone is added, after which the resulting vaccine is decomposed they are poured into ampoules and freeze-dried (RF patent No. 2073524, IPC A 61 K 39/29; C 12 N 15/86, publ. 02.20.97).
Недостатком указанного способа является использование дорогостоящей и дефицитной биологической системы (продуцента) для наработки вируса (телята и развивающиеся куриные эмбрионы - РКЭ), параметры которой сложно стандартизировать и поддерживать. В России практически отсутствуют фермы по производству РКЭ в соответствии с международными стандартами, гарантирующие отсутствие посторонней микрофлоры в РКЭ и стандартные показатели развития эмбриона. Это в свою очередь приводит к браку в производстве вакцин, а также может отрицательно повлиять на ее свойства. Еще в большей степени эти недостатки проявляются при наработке вируса на телятах.The disadvantage of this method is the use of an expensive and scarce biological system (producer) for the production of the virus (calves and developing chicken embryos - RCE), the parameters of which are difficult to standardize and maintain. In Russia, there are practically no farms for the production of RCEs in accordance with international standards that guarantee the absence of extraneous microflora in the RCEs and standard indicators of embryo development. This, in turn, leads to marriage in the production of vaccines, and can also adversely affect its properties. To an even greater extent, these shortcomings are manifested when the virus is produced on calves.
Наиболее близким аналогом-прототипом вакцины является таблетированная живая рекомбинантная бивакцина против натуральной оспы и гепатита В на основе вируса осповакцины для перорального применения, содержащая в одной таблетке, покрытой кислоустойчивой оболочкой, лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 с типичными свойствами вируса осповакцины, экспрессирующего preS 2-Ag и HbsAg вируса гепатита В с активностью 6,5-8,0 lg OOE на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин (патент РФ №2076735, МПК А 61 К 39/00; С 12 N 15/00, опубл. 10.04.97 г.).The closest analogue prototype of the vaccine is a tablet live recombinant bivaccine against smallpox and hepatitis B based on the smallpox vaccine virus for oral use, containing in one tablet coated with an acid-resistant coating, lyophilized viral material, developed on the basis of the recombinant BOB strain GKV No. 2 vaccinia virus expressing preS 2-Ag and HbsAg of hepatitis B virus with activity of 6.5-8.0 lg OOE per tablet, lactose, sucrose, calcium stearate and vanillin (RF patent 2076735, IPC A 61 K 39/00 C 12 N 15/00, published 10.04.97 g)..
Недостатком известной вакцины является то, что в ней используют в качестве стабилизирующей добавки одну лактозу, что недостаточно обеспечивает сохранение активности вирусного материала в процессе его лиофилизации и особенно таблетирования. Кроме того, активный вирусный материал нарабатывается на РКЭ, что не исключает содержание в препарате дополнительных примесей и его контаминацию посторонней микрофлорой, требует дополнительный биологический контроль.A disadvantage of the known vaccine is that it uses lactose alone as a stabilizing additive, which insufficiently ensures the preservation of the activity of the viral material during its lyophilization and especially tabletting. In addition, active viral material is produced at the RCE, which does not exclude the content of additional impurities in the preparation and its contamination with extraneous microflora, and requires additional biological control.
Наиболее близким способом-прототипом получения таблетированной бивакцины против гепатита В и натуральной оспы является способ получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В, включающий пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 на РКЭ, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg OOЕ/мл, его лиофилизацию со стабилизирующей добавкой, измельчение, смешивание с наполнителем, прессование и покрытие кислотоустойчивой оболочкой (патент РФ №2076735, МПК А 61 К 39/00; С 12 N 15/00, опубл. 10.04.97 г.).The closest prototype method for producing a tablet hepatitis B and smallpox bivaccine is a method for producing a live, recombinant hepatitis B smallpox and hepatitis B tablet, including passaging the recombinant strain of Great Patriotic Bacteria bills №2131 on the RCA, obtaining a virus-containing material with a titer of at least 8.0 lg OOE / ml, its lyophilization with a stabilizing additive, grinding, mixing with a filler, pressing and coating with an acid-resistant coating (RF patent No. 2076735, IPC A 61 K 39/00; C 12 N 15/00, publ. 1 04/04/97).
Недостатком указанного способа-прототипа является использование дорогостоящей и дефицитной биологической системы (продуцента) для наработки вируса (РКЭ), параметры которой сложно стандартизировать и поддерживать. В России практически отсутствуют фермы по производству РКЭ в соответствии с международными стандартами, гарантирующие отсутствие посторонней микрофлоры в РКЭ и стандартные показатели развития эмбриона. Это в свою очередь приводит к браку в производстве вакцин, а также может отрицательно повлиять на ее свойства.The disadvantage of this prototype method is the use of an expensive and scarce biological system (producer) for the production of the virus (RCE), the parameters of which are difficult to standardize and maintain. In Russia, there are practically no farms for the production of RCEs in accordance with international standards that guarantee the absence of extraneous microflora in the RCEs and standard indicators of embryo development. This, in turn, leads to marriage in the production of vaccines, and can also adversely affect its properties.
Техническим результатом предлагаемых изобретений является создание такой бивакцины против натуральной оспы и гепатита В и способа ее получения, которые позволили бы получить вируссодержащий материал в более концентрированном и очищенном виде, обеспечить сохранение активности этого вируссодержащего материала в процессе лиофилизации и таблетирования, снизить вероятность контаминации готового препарата посторонней микрофлорой, а также упростить технологию производства и обеспечить возможность стандартизации основных технологических этапов получения вакцины.The technical result of the proposed inventions is the creation of such a vaccine against smallpox and hepatitis B and a method for its preparation, which would make it possible to obtain the virus-containing material in a more concentrated and purified form, to maintain the activity of this virus-containing material during lyophilization and tabletting, and to reduce the likelihood of contamination of the finished product with an extraneous microflora, as well as simplify production technology and provide the ability to standardize the main technological stages of obtaining the vaccine.
Указанный технический результат достигается тем, что в таблетированной живой рекомбинантной бивакцине против натуральной оспы и гепатита В на основе вируса осповакцины для перорального применения, содержащей в одной таблетке лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 с типичными свойствами ВОВ, экспрессирующего preS 2-Ag и HbsAg вируса гепатита В с активностью 6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин, согласно изобретению, вакцина дополнительно содержит пептон, желатозу и буфер, а ВОВ наработан на перевиваемых культурах клеток животных при следующем соотношении компонентов на одну таблетку, мас.%:The specified technical result is achieved in that in a tablet live recombinant bivaccine against smallpox and hepatitis B based on the vaccinia virus for oral use, containing in one tablet lyophilized viral material, produced on the basis of the recombinant BOB strain BKB No. 2131 with typical properties of BOB expressing preS 2-Ag and HbsAg of hepatitis B virus with an activity of 6.5-8.0 lg CPD 50 per tablet, lactose, sucrose, calcium stearate and vanillin, according to the invention, the vaccine further comprises peptone , gelatose and buffer, and WWII was developed on transplantable cultures of animal cells in the following ratio of components per tablet, wt.%:
лиофилизированный вирусныйlyophilized viral
материал осповакцины с активностьюvaccinia material with activity
6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку 1,04-31,36.5-8.0 lg CPD 50 per tablet 1.04-31.3
пептон 0,12-3,8peptone 0.12-3.8
желатоза 0,06-1,9gelatin 0.06-1.9
сахароза 10,1-11,55sucrose 10.1-11.55
буфер 0,001-0,027buffer 0.001-0.027
стеарат кальция 1,94-2,0calcium stearate 1.94-2.0
ванилин 0,17-0,2vanillin 0.17-0.2
лактоза остальное до 100%lactose rest up to 100%
Бивакцина дополнительно может содержать мочевину в количестве 0,01-0,2 мас.%.Bivaccine may additionally contain urea in an amount of 0.01-0.2 wt.%.
Указанный технический результат достигается также тем, что в способе получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В, включающем пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 в биологической системе для культивирования вирусов, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, его лиофилизацию со стабилизирующими добавкой, измельчение, смешивание с наполнителем, прессование, согласно изобретению в качестве биологической системы для культивирования вируса используют перевиваемую культуру клеток животных с дозой заражения вирусом осповакцины не более 1,0 ЦПД50 на клетку, наработку вируса осуществляют на монослое указанных клеток животных в роллерах на питательной среде до 50%-ного цитопатического действия (ЦПД) с последующей заменой этой среды на буферный раствор с объемом, меньшим, чем объем питательной среды; получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании и оттаивании клеточного монослоя, а в качестве стабилизирующих добавок при лиофильном высушивании используют пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно.The specified technical result is also achieved by the fact that in the method for producing a tablet live recombinant bivaccine against smallpox and hepatitis B, which includes the passage of the recombinant strain of Great Patriotic War Bills No. 2131 in a biological system for the cultivation of viruses, obtaining a virus-containing material with a titer of at least 8.0 lg CPD 50 / ml, its lyophilization with a stabilizing additive, grinding, mixing with a filler, compression, according to the invention as a biological system for culturing the virus using m continuous culture of animal cells with a dose of vaccinia infection of not more than 1.0 CPD 50 per cell, the virus is carried to an operating time of said monolayer of animal cells in roller on the medium before the 50% cytopathic effect (CPE) followed by replacement of the medium in buffer a solution with a volume less than the volume of the nutrient medium; the preparation of the virus-containing material is carried out after replacing the nutrient medium with a buffer solution by extracting the virus by freezing and thawing the cell monolayer three times, and peptone, sucrose and gelatose in the final concentration in the mixture are used as stabilizing additives for freeze drying, wt.%: 2.0 -4.0; 2.0-3.0; 1.0-3.0 respectively.
В качестве перевиваемой культуры клеток животных используют клетки почки зеленой мартышки №4647 или VERO, в качестве питательной среды для наработки вируса - среду ДМЕМ или Игла MEM с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота или 2%-ной эмбриональной телячьей сывороткой, в качестве буферного раствора используют 0,01 М Tris, pH 8, а при смене питательной среды на буферный раствор объем его уменьшают не менее чем в 10 раз.As a transplantable culture of animal cells, green monkey kidney cells No. 4647 or VERO are used, as a nutrient medium for virus production, DMEM medium or MEM Needle with 2% cattle serum or 2% fetal calf serum as a buffer the solution is used 0.01 M Tris, pH 8, and when changing the nutrient medium to a buffer solution, its volume is reduced by at least 10 times.
В качестве дополнительного компонента стабилизирующей добавки при лиофильном высушивании бивакцины используют мочевину в конечной концентрации в смеси 1,0-2,0 мас.%.Urea in a final concentration in a mixture of 1.0-2.0 wt.% Is used as an additional component of the stabilizing additive during freeze drying of the bivaccine.
Ниже приведены примеры 1-4 составов таблетированной живой рекомби-нантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В.Below are examples of 1-4 formulations of a tablet live recombinant bivaccine against smallpox and hepatitis B.
Пример 1.Example 1
лиофилизированный вирусный материалlyophilized viral material
осповакцины с активностью 6,5 lgsmallpox vaccines with an activity of 6.5 lg
ЦПД50 на таблетку 1,04 50 CPP per tablet 1.04
пептон 0,12peptone 0.12
желатоза 0,06gelatin 0.06
сахароза 10,10sucrose 10.10
мочевина 0,20urea 0.20
буфер 0,001buffer 0.001
стеарат кальция 2,0calcium stearate 2.0
ванилин 0,20vanillin 0.20
лактоза остальное до 100%lactose rest up to 100%
Пример 2.Example 2
лиофилизированный вирусный материалlyophilized viral material
осповакцины с активностью 7,0 lgsmallpox vaccines with an activity of 7.0 lg
ЦПД50 на таблетку 3,20 50 CPP per tablet 3.20
пептон 0,38peptone 0.38
желатоза 0,19gelatin 0.19
сахароза 10,29sucrose 10.29
мочевина 0,01urea 0.01
буфер 0,003buffer 0.003
стеарат кальция 1,99calcium stearate 1.99
ванилин 0,2vanillin 0.2
лактоза остальное до 100%lactose rest up to 100%
Пример 3.Example 3
лиофилизированный вирусный материалlyophilized viral material
осповакцины с активностью 7,57.5 smallpox vaccines
lg ЦПД50 на таблетку 10,40lg CPA 50 per tablet 10.40
пептон 1,20peptone 1.20
желатоза 0,60gelatin 0.60
сахароза 10,85sucrose 10.85
буфер 0,009buffer 0.009
стеарат кальция 1,97calcium stearate 1.97
ванилин 0,19vanillin 0.19
лактоза остальное до 100%lactose rest up to 100%
Пример 4.Example 4
лиофилизированный вирусный материалlyophilized viral material
осповакцины с активностью 8,0 lgsmallpox vaccines with an activity of 8.0 lg
ЦПД50 на таблетку 31,30 50 CPP per tablet 31.30
пептон 3,80peptone 3.80
желатоза 1,90gelatin 1.90
сахароза 11,55sucrose 11.55
буфер 0,027buffer 0.027
стеарат кальция 1,94calcium stearate 1.94
ванилин 0,17vanillin 0.17
лактоза остальное до 100%lactose rest up to 100%
Рекомбинантный штамм ВОВ ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) депонирован в государственной коллекции вирусов Института вирусологии им. Д.И.Ивановского (патент РФ №1575576, С 12 N 15/00, опубл. 1994 г.).The recombinant strain of the Great Patriotic War of Bills No. 2131 (b7.5S2-S BOB) was deposited in the State Virus Collection of the Institute of Virology named after D. I. Ivanovsky (RF patent No. 1575576, C 12 N 15/00, publ. 1994).
Желатоза - частично гидролизованный желатин - компонент стабилизатора; мочевина - хелатирующий агент, компонент стабилизатора. Лактоза (ТУ 6-09-2293-77), стабилизатор и наполнитель; сахароза (ГОСТ 5833-75), стабилизатор и органолептик; стеарат кальция (ТУ 6-09-4233-76) - скользящая добавка; ванилин (ГОСТ 16599-71), органолептик.Gelatose - partially hydrolyzed gelatin - a component of the stabilizer; urea is a chelating agent, a component of the stabilizer. Lactose (TU 6-09-2293-77), stabilizer and filler; sucrose (GOST 5833-75), stabilizer and organoleptic; calcium stearate (TU 6-09-4233-76) - a sliding additive; vanillin (GOST 16599-71), organoleptic.
Пример 5. Способ получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины "Ревакс ВКТ"Example 5. A method of obtaining a tablet live recombinant bivaccine "Revax VKT"
Вначале проведена проверка однородности вирусных материалов, полученных путем 10-кратного пассирования музейного штамма ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) на перевиваемых культурах клеток Vero и 4647. Для этого проведены исследования пассажного материала (5 и 10-й пассажи) путем анализа экспрессии HBs-антигена - методом ИФА и наличия встройки pre-S2-S гена в вирусной ДНК - методом ПЦР. Необходимость этих исследований диктуется требованиями производства препарата, когда количество пассажей производственного штамма на клеточных культурах-продуцентах может достигнуть 10. В результате этих исследований было отмечено, что пассажный материал (5 и 10-й пассажи на культурах клеток Vero и 4647) не содержат примесей ВОВ дикого типа и экспрессирует HBs-антиген на уровне 100-200 нг/106 клеток. Это свидетельствует о высокой стабильности созданной генетической конструкции и открывает перспективы использования любой из испытанных культур клеток для производства бивакцины против натуральной оспы и гепатита В.First, the homogeneity of the viral materials obtained by 10-fold passage of the museum strain of STB No. 2131 (b7,5S2-S BOB) on transplantable cultures of Vero and 4647 cells was tested. For this purpose, studies of the passive material (5th and 10th passages) by analysis expression of HBs antigen by ELISA and the presence of an insert of the pre-S2-S gene in viral DNA by PCR. The need for these studies is dictated by the requirements for the production of the drug, when the number of passages of the production strain in producer cell cultures can reach 10. As a result of these studies, it was noted that the passage material (5th and 10th passages in Vero and 4647 cell cultures) do not contain BOB impurities wild-type and expresses the HBs antigen at a level of 100-200 ng / 10 6 cells. This testifies to the high stability of the created genetic construct and opens up prospects for using any of the tested cell cultures for the production of bivaccine against smallpox and hepatitis B.
После этого выращивают монослои перевиваемых культур клеток почки зеленой мартышки №4647 или VERO на питательной среде ДМЕМ или Игла MEM с 10%-ной КРС или 10%-ной эмбриональной телячьей сывороткой в роллерных бутылях объемом, например, 2 литра. Использованную ростовую среду сливают и клеточный монослой заливают поддерживающей питательной средой ДМЕМ или Игла MEM с 2%-ной сывороткой КРС или 2%-ной эмбриональной телячьей сывороткой в количестве 200 мл на бутыль. Клетки инфицируют рекомбинантным штаммом ВОВ ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) с дозой заражения не более 1,0 ЦПД50 на клетку. Культивирование проводят при скорости вращения бутылей 3-12 оборота в минуту до 50% ЦПД (при этом условии достигается наиболее высокая урожайность вируса). Ниже в таблице 1 приведены результаты культивирования.After this, monolayers of transplantable cultures of green monkey kidney cells No. 4647 or VERO are grown on DMEM or MEM Needle with 10% cattle or 10% fetal calf serum in roll bottles, for example, 2 liters. The growth medium used is drained and the cell monolayer is poured with DMEM or Eagle MEM maintenance nutrient medium with 2% cattle serum or 2% fetal calf serum in an amount of 200 ml per bottle. Cells are infected with a recombinant strain of the Great Patriotic War of bills bills No. 2131 (b7,5S2-S BOB) with a dose of infection of not more than 1.0 CPD 50 per cell. Cultivation is carried out at a bottle rotation speed of 3-12 revolutions per minute up to 50% of the CPP (under this condition, the highest virus yield is achieved). Table 1 below shows the results of cultivation.
Далее питательную среду (200 мл в одной бутыли) заменяют на буферный раствор с объемом (20 мл), т.е. в 10 раз меньшим, чем объем питательной среды. В качестве буферного раствора используют 0,01 М Tris для поддержания рН 8. Замена питательной среды на меньший по объему буфер (0,01М Tris с рН 8,0) перед экстракцией вируса из животных клеток производится с целью снижения объема вирусной биомассы (при сохранении общего количества жизнеспособных вирусных частиц), что сокращает финансовые и временные затраты при проведении процесса последующей лиофилизации вирусного материала. Получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании при температуре минус 20°С в течение не менее 5 часов и оттаивании клеточного монослоя при температуре плюс 20°С в течение не менее 1 часа. Далее полученную вируссодержащую суспензию отстаивают и отделяют целевую надосадочную фракцию с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, в которую вводят стабилизирующие добавки: пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно или мочевину, пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 1,0-2,0; 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно. Полученную жидкую препаративную форму разливают в емкости, которые размещают в лиофильной установке типа СУПЕР-4. После проведения стандартной процедуры лиофилизации в препарате практически не снижается инфекционная вирусная активность, что свидетельствует о высокой устойчивости штамма b7,5S2-S BOB к лиофилизации в присутствии заявляемых стабилизирующих добавок. Далее сухой материал измельчают и смешивают с наполнителем. Ниже в таблице 2 приведен рецептурный состав таблеток с разной активностью вакцинного материала (в соответствии с примерами 1-4).Next, the nutrient medium (200 ml in one bottle) is replaced with a buffer solution with a volume (20 ml), i.e. 10 times less than the volume of the nutrient medium. As a buffer solution, 0.01 M Tris is used to maintain pH 8. The nutrient medium is replaced with a smaller buffer (0.01 M Tris with pH 8.0) before the virus is extracted from animal cells in order to reduce the volume of viral biomass (while maintaining the total number of viable viral particles), which reduces financial and time costs during the process of subsequent lyophilization of viral material. Obtaining a virus-containing material is carried out after replacing the nutrient medium with a buffer solution by extracting the virus by freezing three times at a temperature of minus 20 ° C for at least 5 hours and thawing the cell monolayer at a temperature of plus 20 ° C for at least 1 hour. Next, the resulting virus-containing suspension is defended and the target supernatant fraction is separated with a titer of at least 8.0 lg CPD 50 / ml, into which stabilizing additives are introduced: peptone, sucrose and gelatin in their final concentration in the mixture, wt.%: 2.0-4-4 0; 2.0-3.0; 1.0-3.0, respectively, or urea, peptone, sucrose and gelatose in their final concentration in the mixture, wt.%: 1.0-2.0; 2.0-4.0; 2.0-3.0; 1.0-3.0 respectively. The resulting liquid preparative form is poured into containers, which are placed in a lyophilic type SUPER-4. After carrying out the standard lyophilization procedure, the infectious viral activity practically does not decrease in the preparation, which indicates a high resistance of the b7.5S2-S BOB strain to lyophilization in the presence of the claimed stabilizing additives. Next, the dry material is ground and mixed with a filler. Table 2 below shows the prescription composition of tablets with different activity of the vaccine material (in accordance with examples 1-4).
Прессование в таблетки препарата производят на двенадцатипуансонном таблетпрессе модели К-VIII (Дрезден, Германия). Количество вируссодержащего материала в каждой таблетке закладывают столько, чтобы концентрация жизнеспособного вируса в них по расчетным данным исходя из активности лиофильно высушенных материалов находилась в диапазоне от 6,5 до 8,0 lg ЦПД50/таблетку.Compression into tablets of the drug is carried out on a twelve-punch tablet press model K-VIII (Dresden, Germany). The amount of virus-containing material in each tablet is laid so that the concentration of viable virus in them, according to the calculated data based on the activity of lyophilized materials, is in the range from 6.5 to 8.0 lg CPD 50 / tablet.
Пример 6. Данные по исследованию активности таблетированной формы бивакцины "Ревакс ВКТ"Example 6. Data on the study of the activity of the tablet form of the bivaccine "Revax VKT"
Экспериментальные исследования активности полученных таблеток показали, что в процессе приготовления таблеток бивакцины “Ревакс ВКТ” на базе лиофилизированного вирусного материала в присутствии стабилизирующей добавки не наблюдалось достоверной инактивация вирусного компонента. Расчетные данные по концентрации вируса в таблетках совпали с результатами раститровок вируса в таблетках: 7,2; 7,2; 7,2; 7,0 lg ЦПД50/таблетку, а сама таблетированная форма соответствовала по своим физико-биологическим свойствам всем требованиям, предъявляемым к таким препаратам, что следует из приведенной ниже таблицы 3.Experimental studies of the activity of the obtained tablets showed that during the preparation of the Revax BKT vaccine tablets on the basis of lyophilized viral material in the presence of a stabilizing additive, no significant inactivation of the viral component was observed. The calculated data on the concentration of the virus in the tablets coincided with the results of virus measurements in tablets: 7.2; 7.2; 7.2; 7.0 lg CPD 50 / tablet, and the tablet form itself corresponded in its physical and biological properties to all the requirements for such drugs, which follows from table 3 below.
Пример 7. Данные по оценке реактогенности субстанции заявляемой бивакцины "Ревакс ВКТ"Example 7. Data on the evaluation of the reactogenicity of the substance of the claimed bivaccine "Revax VKT"
Для оценки реактогенности субстанции заявляемой бивакцины была изучена динамика развития инфильтратов у кроликов, вакцинированных внутрикожно субстанциями штаммов вируса вакцины, полученными разными способами:To assess the reactogenicity of the substance of the claimed bivaccine, we studied the dynamics of the development of infiltrates in rabbits vaccinated intradermally with substances of the vaccine virus strains obtained in different ways:
- на основе заявляемого способа (при культивировании штамма ГКВ №2131 BOB на культурах клеток);- on the basis of the proposed method (when cultivating a strain of STB No. 2131 BOB on cell cultures);
- на основе способа-прототипа (при культивировании штамма ГКВ №2131 BOB на РКЭ);- on the basis of the prototype method (during cultivation of the STB strain No. 2131 BOB at RCE);
- на основе способа-прототипа (при культивировании родительского штамма Л-ИВП на РКЭ);- on the basis of the prototype method (during cultivation of the parent strain of L-IVP at RCE);
Данные приведены ниже в таблице 4.The data are shown below in table 4.
Животных инфицировали по методу Гротта. Максимальное развитие инфильтрата у кроликов наблюдалось на 4-е сутки после вакцинации в месте введения 5 lg ООЕ/0,1 мл и 4 lg ООЕ/0,1 мл штаммов b7,5S2-S эмбрионального и Л-ИВП. Причем появление же инфильтратов в обоих случаях было зарегистрировано на вторые сутки после инфицирования. При этом наименьшие по площади инфильтраты образовывались при введении штамма b7,5S2-S эмбрионального (Р<0,05) по сравнению со штаммам Л-ИВП. В то же время внутрикожное введение кроликам 5 lg TЦД50/0,1 мл и 4 lg ТЦД50/0,1 мл штамма b7,5S2-S культурального приводило к появлению инфильтратов на месте введения лишь на 7-е сутки с максимумом по площади на 8-е сутки. Кроме того, размеры этих инфильтратов были достоверно меньшими (Р<0,05) по сравнению даже с таковыми для штамма b7,5S2-S эмбрионального.Animals were infected by the Grott method. The maximum development of infiltrate in rabbits was observed on the 4th day after vaccination at the injection site of 5 lg OOE / 0.1 ml and 4 lg OOE / 0.1 ml of strains of b7.5S2-S embryonic and L-IVP. Moreover, the appearance of infiltrates in both cases was recorded on the second day after infection. In this case, the smallest infiltrates in area were formed upon administration of the embryonic strain b7.5S2-S (P <0.05) as compared with the L-IVP strains. At the same time, intradermal administration to rabbits of 5 lg TCD 50 / 0.1 ml and 4 lg TCD 50 / 0.1 ml of culture strain b7,5S2-S led to the appearance of infiltrates at the injection site only on the 7th day with a maximum area on the 8th day. In addition, the sizes of these infiltrates were significantly smaller (P <0.05) compared to even those for the b7.5S2-S embryonic strain.
Полученные результаты свидетельствуют, что рекомбинантный штамм b7,5S2-S культурального происхождения обладает достоверно более низкой реак-тогенностью по сравнению с таковым эмбрионального происхождения.The results obtained indicate that the recombinant strain b7,5S2-S of cultural origin has a significantly lower reactogenicity compared to that of embryonic origin.
Таким образом, заявляемая таблетированная бивакцина "Ревакс ВКТ", наработанная на перевиваемых культурах клеток животных, и способ ее получения по сравнению с такой же таблетированной формой вакцины "Ревакс ВТ", наработанной на РКЭ, менее реактогенна, так как содержит меньше посторонних примесей, не контаминируется посторонней микрофлорой, более технологична при изготовлении в промышленных масштабах.Thus, the inventive tabletted bivaccine "Revax VKT", developed on transplantable cultures of animal cells, and the method of its preparation in comparison with the same tablet form of the vaccine "Revax BT", developed on RKE, is less reactogenic, as it contains less impurities, is not contaminated by extraneous microflora, more technological in the manufacture on an industrial scale.
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002122340/13A RU2242246C2 (en) | 2002-08-15 | 2002-08-15 | Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002122340/13A RU2242246C2 (en) | 2002-08-15 | 2002-08-15 | Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2002122340A RU2002122340A (en) | 2004-10-27 |
RU2242246C2 true RU2242246C2 (en) | 2004-12-20 |
Family
ID=34387136
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2002122340/13A RU2242246C2 (en) | 2002-08-15 | 2002-08-15 | Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2242246C2 (en) |
-
2002
- 2002-08-15 RU RU2002122340/13A patent/RU2242246C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ЖДАНОВ В.М. и др. Вирусные гепатиты. - М.: Колос, 1986, с.130-136. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102258777B (en) | Method for preparing inactivated vaccine and combined vaccine by breeding infectious bursal disease virus (IBDV) by chicken embryo source cell line | |
CN104498441A (en) | Duck hepatitis A virus III type attenuated strain, live vaccine prepared from same and application of live vaccine | |
US8753646B2 (en) | IPV-DPT vaccine | |
CN102058882B (en) | Method of preparing hepatitis A inactivated vaccine | |
Perez et al. | Production methods for rabies vaccine | |
Duchene et al. | Production of poliovirus vaccines: past, present, and future | |
US4472378A (en) | Live vaccine for the prevention of salmonellosis in water fowl, a process for making and applying the same | |
RU2242246C2 (en) | Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing | |
CN102886043A (en) | Binary inactivated vaccine against Japanese encephalitis virus and porcine parvovirus and preparation method thereof | |
CN104357406A (en) | Rabies virus SNK-CTN strain and application thereof | |
US4021302A (en) | Cell cultures | |
RU47743U1 (en) | TABLETED LIVING RECOMBINANT BIVACCINE "REVAX VKT" AGAINST NATURAL Smallpox and Hepatitis B for enteral use | |
CN1299768C (en) | Diploid cell cerebritis B vaccine and purified cerebritis B vaccine, dosage form freeze-drying and water injection | |
CN102793917B (en) | Porcine encephalitis B vaccine and preparation method thereof | |
CN103421729B (en) | Gene recombined swine cholera salmonella choleraesuis vaccine for blue-ear disease and application thereof | |
RU2169574C1 (en) | Method of biopreparation preparing and dry biopreparation | |
CN103160474B (en) | Enterovirus 71 type virus strain, vaccine, animal model establishment method | |
US3843451A (en) | Microorganism production | |
CN104740627A (en) | Large-scale production method for veterinary pseudorabies attenuated live vaccines | |
RU2332234C1 (en) | Method of virus vaccine production against classical swine fever | |
CN102657860A (en) | Canine parvovirus propolis inactivated vaccine and preparation method thereof | |
RU2142816C1 (en) | Method of preparing antiherpetic vaccine and medicinal form based on said | |
RU2204599C1 (en) | Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing | |
RU2538617C2 (en) | Method of production of antirabic vaccine | |
RU2123331C1 (en) | Method of live antimeasles vaccine preparing |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20120320 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160816 |