RU2123331C1 - Method of live antimeasles vaccine preparing - Google Patents

Method of live antimeasles vaccine preparing Download PDF

Info

Publication number
RU2123331C1
RU2123331C1 RU96106117A RU96106117A RU2123331C1 RU 2123331 C1 RU2123331 C1 RU 2123331C1 RU 96106117 A RU96106117 A RU 96106117A RU 96106117 A RU96106117 A RU 96106117A RU 2123331 C1 RU2123331 C1 RU 2123331C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
vaccine
lactose
lyophilization
calcium stearate
Prior art date
Application number
RU96106117A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU96106117A (en
Inventor
Л.С. Сандахчиев
В.Ф. Попов
А.А. Махлай
В.В. Михайлов
В.Н. Подкуйко
Т.В. Дорохина
Е.А. Нечаева
Е.Ю. Шалаев
Н.А. Вараксин
Т.Г. Рябичева
Т.Д. Колокольцова
Original Assignee
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" filed Critical Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority to RU96106117A priority Critical patent/RU2123331C1/en
Publication of RU96106117A publication Critical patent/RU96106117A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2123331C1 publication Critical patent/RU2123331C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, pharmacy, vaccines. SUBSTANCE: invention relates to production of antiviral vaccine preparations in tabletted form. Method involves measles virus multiplication on cellular substrate, collection of virus-containing fluid, cellular detritis removal and addition of stabilizing composition followed by lyophilization of a preparation. Virus-containing fluid is collected at virus titer 5.0-6.0 lg TCD (toxic cytopathic dose) 50/0.5 ml and at protein content 16 mcg/ml, not above. Sucrose, gelatose and peptone are added to virus-containing fluid as a stabilizing composition up to their final concentration in mixture by 3 wt.-% for each component. After lyophilization a dried virus-containing material is milled, mixed with lactose and calcium stearate at the following ratio of components, wt.-%: lyophilized virus-containing material at activity 4.5 lg TCD 50/0.5 ml, not less 49-98; lactose 0.1-49, and calcium stearate 1.5-2.5. Obtained mass is tabletted and tablets are covered with acid-resistant shell based on acetylphthalylcellulose. Prepared live antimeasles vaccine in tabletted form can be used for oral using. EFFECT: improved method of vaccine preparing, simple and economical equipment.

Description

Изобретение относится к медицине, в частности, к производству вирусных вакционных препаратов в таблетированной форме. The invention relates to medicine, in particular, to the production of viral vaccine preparations in tablet form.

Известен способ получения живой коревой вакцины (ЖКВ) на основе любого вакционного штамма вируса кори. Способ включает культивирование вируса в культуре клеток эмбрионов японских перепелок, сбор вируссодержащей жидкости, введение стабилизатора и высушивание [1]. Вакцина индуцирует синтез гемагглютинирующих антител в организме человека и животных и обеспечивает протективный эффект. Стабилизатор содержит сорбит и желатозу. A known method for producing live measles vaccine (LCV) based on any vaccine strain of measles virus. The method includes cultivating the virus in a culture of Japanese quail embryo cells, collecting virus-containing liquid, introducing a stabilizer and drying [1]. The vaccine induces the synthesis of hemagglutinating antibodies in humans and animals and provides a protective effect. The stabilizer contains sorbitol and gelatose.

Наиболее близким способом (прототипом) является традиционная технология получения ЖКВ путем размножения аттенуированного штамма Л-16 вируса кори на культуре фибробластов японских перепелов с последующим сбором вируссодержащей жидкости и ее очистки при помощи фильтрации или центрифугирования. В полученную субстанцию вводят стабилазатор, включающий сорбит и желатозу в конечной концентрации 5% или ЛС-18 и желатин. Продукт разливают в ампулы, лиофильно высушивают с последующей герметизацией ампул [2]. Перед применением вакцину разводят растворителем. Биологическая активность ЖКВ составляет 3,3-4,0 lg ТЦД50/0,5 мл.The closest method (prototype) is the traditional technology for the production of LCS by propagating an attenuated measles virus strain L-16 strain on a Japanese quail fibroblast culture, followed by collection of the virus-containing liquid and its purification by filtration or centrifugation. A stabilizer is introduced into the resulting substance, including sorbitol and gelatose at a final concentration of 5% or LS-18 and gelatin. The product is poured into ampoules, freeze-dried, followed by sealing of the ampoules [2]. Before use, the vaccine is diluted with a solvent. The biological activity of the LCD is 3.3-4.0 lg TCD 50 / 0.5 ml.

Недостатками известных способов (аналога и прототипа) получения ЖКВ [1, 2] является инъекционная форма применения ЖКВ, что создает угрозу заражения вирусами гепатита и ВИЧ при вакцинации, а также необходимость в специально оборудованных помещениях, большом количестве шприцов и игл, квалифицированном персонале для проведения вакцинаций и ревакцинаций. The disadvantages of the known methods (analogue and prototype) for the production of ZhKV [1, 2] is the injection form of ZhKV, which poses a threat of infection with hepatitis viruses and HIV during vaccination, as well as the need for specially equipped rooms, a large number of syringes and needles, qualified personnel for vaccinations and revaccinations.

Задачей предлагаемого изобретения является разработка такого способа получения ЖКВ, который позволил бы изготавливать ЖКВ в таблетированной форме для перорального применения с использованием простого и экономичного технологического оборудования. The objective of the invention is to develop such a method for the production of LCS, which would make it possible to produce LCV in tablet form for oral use using simple and economical technological equipment.

Указанная задача решается тем, что в способе получения живой коревой вакцины, включающем размножение вируса кори на клеточном субстрате, сбор вируссодержащей жидкости, освобождение продукта от клеточного детрита, введение в него стабилизирующего состава с последующей лиофилизацией препарата, согласно изобретению, сбор вируссодержащей жидкости осуществляют при достижении титра вируса не менее 5,0-6,0 lg ТЦД50/0,5 мл и содержании белка не более 16 мкг/мл, в качестве стабилизирующего состава в вируссодержащую жидкость вводят сахарозу, желатозу и пептон до конечной их концентрации в смеси по 3 мас.% каждого компонента стабилизатора, после лиофилизации сухой вируссодержащий материал измельчают, смешивают с лактозой и стеаратом кальция при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Лиофилизированный вируссодержащий материал с активностью не менее 4,5 lg ТЦД50/0,5 мл - 49 - 98
Лактоза - 0,1 - 49
Стеарат кальция - 1,5 - 2,5
Полученную массу таблетируют и таблетки покрывают кислотоустойчивой оболочкой на основе ацетилфталилцеллюлозы.
This problem is solved by the fact that in the method for producing live measles vaccine, including the propagation of measles virus on a cellular substrate, the collection of virus-containing liquid, the release of the product from cellular detritus, the introduction of a stabilizing composition followed by lyophilization of the drug, according to the invention, the collection of virus-containing liquid is achieved a virus titer of at least 5.0-6.0 lg TCD 50 / 0.5 ml and a protein content of not more than 16 μg / ml, sucrose, gelatose are introduced into the virus-containing liquid as a stabilizing composition and peptone to their final concentration in a mixture of 3 wt.% each stabilizer component, after lyophilization, the dry virus-containing material is crushed, mixed with lactose and calcium stearate in the following ratio of components, wt.%:
Lyophilized virus-containing material with an activity of at least 4.5 lg TCD 50 / 0.5 ml - 49 - 98
Lactose - 0.1 - 49
Calcium Stearate - 1.5 - 2.5
The resulting mass is tabletted and the tablets are coated with an acid-resistant cellulose acetate-based coating.

Вакцина, приготовленная предлагаемым способом, обладает выраженными иммуногенными свойствами, проверенными экспериментально на лабораторных животных. При производстве вакцины исключается дорогостоящие и трудоемкие этапы подготовки и стерилизации ампул, розлива вакцины в ампулы, их герметизации, приготовления и контроля растворителя, вследствие чего освобождается ряд производственных помещений и оборудования. Новая форма выпуска вакцины исключает возможность заражения вирусами гепатитов и ВИЧ при вакцинации, необходимость в оборудовании помещений для профилактических прививок, обеспечении инструментами, квалифицированным персоналом. The vaccine prepared by the proposed method has pronounced immunogenic properties, tested experimentally in laboratory animals. During the production of the vaccine, the expensive and laborious stages of preparation and sterilization of ampoules, filling the vaccine into ampoules, their sealing, preparation and control of the solvent are excluded, as a result of which a number of production facilities and equipment are freed. A new form of vaccine release excludes the possibility of infection with hepatitis viruses and HIV during vaccination, the need for equipment for preventive vaccinations, provision of tools, and qualified personnel.

Совокупность существенных признаков предлагаемого изобретения, отличающихся от существенных признаков прототипа, неизвестна из опубликованных источников информации, что позволяет сделать вывод о соответствии технического решения критерию "изобретательский уровень". The set of essential features of the invention, different from the essential features of the prototype, is unknown from published sources of information, which allows us to conclude that the technical solution meets the criterion of "inventive step".

Способ иллюстрируется следующими примерами. The method is illustrated by the following examples.

Пример 1. Приготовление таблетированной формы ЖКВ
Культуру клеток фибробластов японских перепелов получают путем трипсинизации эмбрионов раствором трипсина-версена при температуре + 37oC. Клеточную взвесь центрифугируют, клетки ресуспендируют в ростовой среде и рассеивают в матрасы или роллеры из расчета 500 и 950 тыс. кл./мл соответственно. Выращивание проводят при 35oC до образования монослоя. При суспензионном заражении вирус добавляют во взвесь клеток с множественностью заражения 0,1-0,001 ТЦД50/кл. После образования монослоя клетки подвергают 6-кратным отмывкам для освобождения от балластных белков, далее культивируют при температуре (35±1)oC и частоте вращения роллеров 2 - 12 об/мин. При появлении цитопатического действия вируса на клетки осуществляют сбор вируссодержащей жидкости с интервалом 1-3 суток с последующей заменой поддерживающей среды. Индивидуальные вирусные сливы с биологической активностью не ниже 5,0 lg ТЦД50/0,5 мл объединяют и освобождают фильтрованием от клеточного детрита. В полученную суспензию добавляют стерильные растворы 50%-ной сахарозы, 25%-ной желатозы (мол. вес 3000) и 25%-ного пептона до конечной концентрации по 3% каждого соединения. Состав разливают в лотки по 1 л (толщина слоя жидкости 0,5 см) и замораживают при температуре -60oC в течение 18 часов. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. Высушенный вируссодержащий материал измельчают, смешивают с лактозой и стеаратом кальция по 49,0%, 49,0% и 2,0% соответственно. Полученную массу таблетируют и таблетки покрывают кислотоустойчивой оболочкой на основе ацетилфталилцеллюлозы. Полученную вакцину контролируют по физико-химическим свойствам, содержанию посторонней микрофлоры, биологической активности, безвредности, антигенности, иммуногенности (на лабораторных животных).
Example 1. The preparation of the tablet form of the LCD
The Japanese quail fibroblast cell culture is obtained by trypsinization of embryos with trypsin-versene solution at a temperature of + 37 o C. The cell suspension is centrifuged, the cells are resuspended in growth medium and scattered into mattresses or scooters at a rate of 500 and 950 thousand cells / ml, respectively. Cultivation is carried out at 35 o C to form a monolayer. In suspension infection, the virus is added to a suspension of cells with a multiplicity of infection of 0.1-0.001 TCD 50 / cell. After the formation of a monolayer, the cells are subjected to 6-fold washing to release from ballast proteins, then they are cultured at a temperature of (35 ± 1) o C and a roller rotation speed of 2-12 rpm. When the cytopathic effect of the virus on cells appears, a virus-containing fluid is collected at intervals of 1-3 days, followed by replacement of the support medium. Individual viral plums with biological activity not lower than 5.0 lg TCD 50 / 0.5 ml are combined and freed by filtration from cellular detritus. Sterile solutions of 50% sucrose, 25% gelatose (mol. Weight 3000) and 25% peptone are added to the resulting suspension to a final concentration of 3% of each compound. The composition is poured into trays of 1 l (liquid layer thickness 0.5 cm) and frozen at a temperature of -60 o C for 18 hours. The product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions. The dried virus-containing material is crushed, mixed with lactose and calcium stearate at 49.0%, 49.0% and 2.0%, respectively. The resulting mass is tabletted and the tablets are coated with an acid-resistant cellulose acetate-based coating. The resulting vaccine is controlled by physico-chemical properties, the content of extraneous microflora, biological activity, harmlessness, antigenicity, immunogenicity (in laboratory animals).

Пример 2. Результаты оценки физико-химических свойств таблеток ЖКВ
Контроль таблетированной формы ЖКВ по физико-химическим свойствам проводят в соответствии с [2], остаточную влажность определяют по методу [3]. Средняя масса таблеток составляет 0,2 - 0,5 г, остаточная влажность - (1 - 3)%. Таблетки прочные, круглые, двояковыпуклой формы, без трещин, края круглые без выщербленных мест. Диаметр 5 мм. Таблетки не распадаются в течение 50 минут в 0,1N растворе соляной кислоты.
Example 2. The results of the assessment of the physico-chemical properties of tablets of the LCD
The control of the tablet form of the LCD by the physicochemical properties is carried out in accordance with [2], the residual moisture is determined by the method of [3]. The average weight of the tablets is 0.2 - 0.5 g, the residual moisture content is (1 - 3)%. The tablets are strong, round, biconvex, without cracks, the edges are round without jagged places. Diameter 5 mm. The tablets do not disintegrate within 50 minutes in a 0.1N hydrochloric acid solution.

Пример 3. Определение биологической активности препарата
Для определения биологической активности вирус из таблетки извлекают в водную фазу (питательная среда, фосфатно-солевой буфер, 8%-ный водный раствор бикарбоната натрия с последующей нейтрализацией 0,1N соляной кислотой до pH 7,0-7,3), выделяют водную фазу центрифугированием при 3000 об/мин в течение 10 минут и титруют в 96-луночных культуральных планшетах на культуре клеток VERO по цитопатическому действию в соответствии с [2]. Биологическая активность таблетированной формы ЖКВ составляет 3,5 - 4,45 lg ТЦД50/табл.
Example 3. Determination of the biological activity of the drug
To determine the biological activity, the virus is removed from the tablet into the aqueous phase (nutrient medium, phosphate-buffered saline, 8% aqueous sodium bicarbonate solution, followed by neutralization with 0.1N hydrochloric acid to pH 7.0-7.3), the aqueous phase is isolated centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes and titrated in 96-well culture plates on a VERO cell culture according to the cytopathic effect in accordance with [2]. The biological activity of the tablet form of the LCD is 3.5 - 4.45 lg TCD 50 / table.

Пример 4. Определение содержания посторонней микрофлоры в ЖКВ
Методику проведения анализа на содержание в таблетках ЖКВ посторонней микрофлоры осуществляют в соответствии с Инструкцией [5].
Example 4. The determination of the content of extraneous microflora in the LCD
The methodology for analyzing the content of extraneous microflora in the LCD tablets is carried out in accordance with the Instruction [5].

Содержание посторонних микроорганизмов составляет 1 - 5 колоний на таблетку. Патогенных бактерий кишечной группы, золотистого стафилококка, синегнойной палочки не обнаружено. The content of foreign microorganisms is 1 to 5 colonies per tablet. No pathogenic bacteria of the intestinal group, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa were found.

Пример 5. Исследование препарата ЖКВ на токсичность
Токсичность на лабораторных животных определяют в соответствии с методикой [6]. Таблетки растирают в стерильной ступке с физиологическим раствором (5 мл/табл.), после отстаивания в течение 15 - 30 мин надосадочную жидкость вводят подкожно по 5 мл двум беспородным морским свинкам в возрасте 3 месяцев с массой тела 300 ± 50 г и по 0,2 мл пяти беспородным белым мышам в возрасте 2 месяца с массой тела 17 - 20 г. Все животные остались живы в течение 7 суток, масса каждого животного не уменьшилась по сравнению с исходной на день окончания эксперимента, на месте введения не развился абсцесс или некроз, не отмечено повышения температуры ни у одного животного.
Example 5. The study of the preparation of the LCD for toxicity
Toxicity in laboratory animals is determined in accordance with the procedure [6]. The tablets are ground in a sterile mortar with physiological saline (5 ml / table.), After settling for 15-30 minutes, the supernatant is injected subcutaneously in a dose of 5 ml to two outbred guinea pigs at the age of 3 months with a body weight of 300 ± 50 g and 0. 2 ml of five outbred white mice aged 2 months with a body weight of 17 - 20 g. All animals remained alive for 7 days, the weight of each animal did not decrease compared to the original on the day the experiment was completed, an abscess or necrosis did not develop at the injection site, no increase in temperature bottom of the animal.

Пример 6. Исследование иммуногенности препарата на животных
Контроль иммуногенности вакцины осуществляют на кроликах. Препарат вводят животным перорально. Исследования показывают влияние вакцины на стимуляцию гуморального и клеточного иммунитета животных (в реакциях пассивной агглютинации, торможения гемагглютинации, ИФА, бласттрансформации лимфоцитов периферической крови) на 14-21 день после вакцинации.
Example 6. The study of the immunogenicity of the drug in animals
Control of the immunogenicity of the vaccine is carried out on rabbits. The drug is administered to animals orally. Studies show the effect of the vaccine on the stimulation of animal humoral and cellular immunity (in reactions of passive agglutination, inhibition of hemagglutination, ELISA, peripheral blood lymphocyte blast transformation) on days 14-21 after vaccination.

Экспериментальные исследования показывают, что таблетированная форма ЖКВ, приготовленная на основе сухого вируссосодержащего препарата (активность 4,5 lg ТЦВ50/0,5 мл), полученного по традиционной технологии [1, 2] (со стабилизатором сорбит с желатозой или ЛС-18 с желатином) имеет биологическую активность 1,0 и 2,5 lg ТЦД50/1 таблетку соответственно, что меньше одной прививочной дозы (2000 ТЦД50). Предлагаемая технология получения таблетированной формы ЖКВ с использованием нового состава стабилизатора обеспечивает сохранение биологической активности вируссодержащего препарата.Experimental studies show that the tablet form of ZhKV prepared on the basis of a dry virus-containing preparation (activity 4.5 lg of TCV 50 / 0.5 ml) obtained by traditional technology [1, 2] (with a stabilizer sorbitol with gelatin or LS-18 s gelatin) has biological activity and 2,5 lg 1.0 TCD 50/1 tablet respectively, less than one-dose vaccination (2000 TCD 50). The proposed technology for the production of a tablet form of LCV using a new stabilizer composition ensures the preservation of the biological activity of the virus-containing preparation.

Источники информации
1. Авторское свидетельство СССР N 278964, C 12 K 5/00, опубл. 1973 г., "Способ получения живой коревой вакцины" (аналог).
Sources of information
1. USSR author's certificate N 278964, C 12 K 5/00, publ. 1973, "A method of obtaining a live measles vaccine" (analogue).

2. ФС 42 - 179 ВС - 88, "Вакцина коревая культуральная живая, сухая" (прототип). 2. FS 42 - 179 BC - 88, "Vaccine measles culture live, dry" (prototype).

3. Государственная Фармакопея СССР. - М., 1987. - 11 изд., в. 2, с. 156
4. Государственная Фармакопея СССР. - М., 1987. - 11 изд., в. 2, с. 196 - 209.
3. The State Pharmacopoeia of the USSR. - M., 1987 .-- 11th ed. 2, p. 156
4. The State Pharmacopoeia of the USSR. - M., 1987 .-- 11th ed. 2, p. 196 - 209.

5. Сборник инструкций по общим методам контроля стерильности, физико-химических свойств, пирогенности, на отсутствие контаминирующих агентов и токсичности МИБП. Приказ М3 СССР N 31 от 13.01.1983. 5. A collection of instructions on general methods for monitoring sterility, physico-chemical properties, pyrogenicity, the absence of contaminating agents and the toxicity of MIBP. Order M3 of the USSR N 31 of 01/13/1983.

Claims (1)

Способ получения живой коревой вакцины, включающий размножение вируса кори на клеточном субстрате, сбор вируссодержащей жидкости, освобождение продукта от клеточного детрита, введение в него стабилизирующего состава с последующей лиофилизацией препарата, отличающийся тем, что сбор вируссодержащей жидкости осуществляют по достижении титра вируса не менее 5 - 6 lg ТПД 50/0,5 мл и содержания белка не более 16 мкг/мл, в качестве стабилизирующего состава в вируссодержащую жидкость вводят сахарозу, желатозу и пептон до конечной их концентрации в смеси по 3 мас.% каждого компонента стабилизатора, после лиофилизации сухой вируссодержащий материал измельчают, смешивают с лактозой и стеаратом кальция при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Лиофилизированный вируссодержащий материал с активностью не менее 4,5 lg ТПД 50/0,5 мл - 49 - 98
Лактоза - 0,1 - 49
Стеарат кальция - 1,5 - 2,5
с последующим таблетированием полученной массы и покрытием кислотоустойчивой оболочкой на основе ацетилфталилцеллюлозы.
A method of producing a live measles vaccine, including the propagation of measles virus on a cellular substrate, collecting virus-containing liquid, releasing the product from cellular detritus, introducing a stabilizing composition into it, followed by lyophilization of the drug, characterized in that the collection of virus-containing liquid is carried out upon reaching a virus titer of at least 5 - 6 lg TPD 50 / 0.5 ml and a protein content of not more than 16 μg / ml; sucrose, gelatin and peptone are introduced into the virus-containing liquid as a stabilizing composition to their final concentration in s hast to 3 wt% of each stabilizer component after lyophilization dry virus-containing material was pulverized, mixed with lactose and calcium stearate in the following ratio, wt.%.:
Lyophilized virus-containing material with an activity of at least 4.5 lg TPD 50 / 0.5 ml - 49 - 98
Lactose - 0.1 - 49
Calcium Stearate - 1.5 - 2.5
followed by tableting the resulting mass and coating with an acid-resistant coating based on acetylphthalyl cellulose.
RU96106117A 1996-03-28 1996-03-28 Method of live antimeasles vaccine preparing RU2123331C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96106117A RU2123331C1 (en) 1996-03-28 1996-03-28 Method of live antimeasles vaccine preparing

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96106117A RU2123331C1 (en) 1996-03-28 1996-03-28 Method of live antimeasles vaccine preparing

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU96106117A RU96106117A (en) 1998-06-10
RU2123331C1 true RU2123331C1 (en) 1998-12-20

Family

ID=20178656

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96106117A RU2123331C1 (en) 1996-03-28 1996-03-28 Method of live antimeasles vaccine preparing

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2123331C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Фарм.статья 42-179 ВС-88, Вакцина коревая культуральная живая сухая, 1988. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6048537A (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
CN1285753A (en) Transdermal delivery of particulate vaccine compositions
DE69923470T2 (en) COMBINATION VACCINE AGAINST HAV AND MASONIC VIRUS AND METHOD FOR ITS PRODUCTION
FI66020C (en) FRAMEWORK FOR ANTIGENIC IMMUNOGENIC SUBMITS OF HSV-1 AND HSV-2
KR101617464B1 (en) Ipv-dpt vaccine
EP1420065A1 (en) Process for producing inactivated virus envelope
JPS6216933B2 (en)
US4320115A (en) Rabies virus vaccine
RU2123331C1 (en) Method of live antimeasles vaccine preparing
RU2140288C1 (en) Method of live antimeasles vaccine preparing
RU2142816C1 (en) Method of preparing antiherpetic vaccine and medicinal form based on said
US3318775A (en) Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine
Miyamae Protective effects of nasal immunization in mice with various kinds of inactivated Sendai virus vaccines
RU2810740C1 (en) Method of obtaining inactivated vaccine against covid-19 and vaccine obtained by method
RU2809375C1 (en) WHOLE VIRION INACTIVATED VACCINE AGAINST SARS-Cov-2 INFECTION AND ITS USE
Johnson Status of arenavirus vaccines and their application
RU2225223C1 (en) Lyophilized antiherpetic vaccine
NO118229B (en)
RU2181295C1 (en) Virion cytomegaloviral vaccine and method for its obtaining
RU2301079C2 (en) Inactivated adsorbed vaccine against cattle coronaviral infection
Sale et al. Overview of Vaccine Drug Delivery System
KR0123538B1 (en) Vaccine mixture and diagnostic composition using antigens made of hantaan virus, seoul virus, puumala virus, belgrade virus and howang virus
WO2000015257A1 (en) Vaccine preparations containing saponins
RU2242246C2 (en) Tableted live recombinant bivaccine "revaks vkt" against natural smallpox and hepatitis b and method for its preparing
RU47743U1 (en) TABLETED LIVING RECOMBINANT BIVACCINE "REVAX VKT" AGAINST NATURAL Smallpox and Hepatitis B for enteral use