RU2229133C1 - Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals - Google Patents
Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals Download PDFInfo
- Publication number
- RU2229133C1 RU2229133C1 RU2002125596/15A RU2002125596A RU2229133C1 RU 2229133 C1 RU2229133 C1 RU 2229133C1 RU 2002125596/15 A RU2002125596/15 A RU 2002125596/15A RU 2002125596 A RU2002125596 A RU 2002125596A RU 2229133 C1 RU2229133 C1 RU 2229133C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lipid peroxidation
- membranes
- rate
- formation
- prooxidants
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к гематологии, а именно к лабораторньм способам определения скорости перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов сельскохозяйственных животных.The invention relates to the field of veterinary medicine, in particular to hematology, and in particular to laboratory methods for determining the rate of lipid peroxidation in erythrocyte membranes of farm animals.
Существует способ определения скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов, который основан на измерении содержания образующегося при окислении мембранных липидов малонового диальдегида (МДА) по цветной реакции с тиобарбитуровой кислотой (Строев Е.М., Макарова В.Г. "Практикум по биологической химии": Учебное пособие для фармац. вузов и фак. -М: Высш. шк., 1986.-С.211-213). Указанный способ был взят в качестве прототипа.There is a method for determining the rate of formation of lipid peroxidation products in erythrocyte membranes, which is based on measuring the content of malondialdehyde (MDA) formed during the oxidation of membrane lipids by the color reaction with thiobarbituric acid (EM Stroev, VG Makarova "Biological Workshop Chemistry ": Textbook for pharmaceutical universities and faculty. -M: Higher school, 1986.-S.211-213). The specified method was taken as a prototype.
Способ включает получение осадка эритроцитов путем центрифугирования образцов крови; 3-кратную промывку осадка эритроцитов физиологическим раствором хлористого натрия и переосаждение в том же режиме центрифугирования; проведение полного гемолиза эритроцитов путем добавления к 0,5 мл осадка эритроцитов равного объема дистиллированной воды и выдерживания в течение 30 мин; получение образцов мембран эритроцитов из гемолизированных эритроцитов с помощью центрифугирования и осторожного отбора пипеткой надосадочной жидкости с серой прослойкой мембран эритроцитов; подготовку трех опытных образцов: в первую пробирку вносят по 0,3 мл раствора соли Мора (4х10-5 М свежеприготовленный раствор), трис-буфера (трис-НСl буфер, 0,04 М раствор с рН 7,4), аскорбиновой кислоты (2,6 мМ свежеприготовленный раствор) и 0,1 мл полученной взвеси мембран эритроцитов, во вторую пробирку приливают 0,3 мл трис-буфера, 0,6 мл дистиллированной воды и 0,1 мл взвеси мембран эритроцитов, в третью (контроль) добавляют те же реактивы, что и в первую пробирку, после чего сразу приливают 1 мл трихлоруксусной кислоты. Далее инкубируют образцы 20 мин в водяной бане при 37°С, останавливают реакцию, добавляя в обе опытные пробирки по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты, все пробы центрифугируют, сливают надосадочную жидкость (2 мл), прибавляют по 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты, помещают образцы на 10 мин в кипящую водяную баню и охлаждают в ледяной воде. Измеряют величину оптической плотности полученных проб против контроля на спектрофотометре при длине волны 532 нм или фотоэлектроколориметре при длине волны 540 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см и рассчитывают скорость перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов по формуламThe method includes obtaining a erythrocyte sediment by centrifuging blood samples; 3-fold washing of the erythrocyte sediment with physiological solution of sodium chloride and reprecipitation in the same centrifugation mode; complete hemolysis of erythrocytes by adding an equal volume of distilled water to 0.5 ml of erythrocyte sediment and holding for 30 minutes; obtaining samples of erythrocyte membranes from hemolized red blood cells by centrifugation and careful pipetting of a supernatant with a gray layer of erythrocyte membranes; preparation of three test samples: 0.3 ml of Mohr's salt solution (4x10 -5 M freshly prepared solution), Tris-buffer (Tris-Hcl buffer, 0.04 M solution with a pH of 7.4), ascorbic acid are added to the first test tube 2.6 mM freshly prepared solution) and 0.1 ml of the obtained suspension of erythrocyte membranes, 0.3 ml of Tris buffer, 0.6 ml of distilled water and 0.1 ml of suspension of erythrocyte membranes are added to the second test tube, add to the third (control) the same reagents as in the first test tube, after which 1 ml of trichloroacetic acid is immediately added. Then the samples are incubated for 20 min in a water bath at 37 ° C, the reaction is stopped, adding 1 ml of trichloroacetic acid solution to both test tubes, all samples are centrifuged, the supernatant liquid is drained (2 ml), 1 ml of thiobarbituric acid solution is added, the samples are placed for 10 min in a boiling water bath and cooled in ice water. The optical density of the obtained samples is measured against a control on a spectrophotometer at a wavelength of 532 nm or a photoelectrocolorimeter at a wavelength of 540 nm (green filter) in a cuvette with a layer thickness of 1 cm and the rate of lipid peroxidation in erythrocyte membranes is calculated by the formulas
и , and ,
где X1 - скорость образования в пробе МДА в присуствии прооксидантов: соли Мора и аскорбиновой кислоты (индуцированное перекисное окисление липидов), нмоль в час; Х2 - скорость образования в пробе МДА в отсуствии прооксидантов (спонтанное перекисное окисление липидов), нмоль в час; 3 - объем пробы, мл; 6 - коэффициент пересчета на 1 час; 0,156 - экстинция 1 нмоля малонового диальдегида при 532 нм; Е1 и Е2 - оптическая плотность соответственно первой и второй проб против контроля.where X1 is the rate of MDA formation in the sample in the presence of prooxidants: Mohr's salt and ascorbic acid (induced lipid peroxidation), nmol per hour; X2 - the rate of formation of MDA in the sample in the absence of prooxidants (spontaneous lipid peroxidation), nmol per hour; 3 - sample volume, ml; 6 - conversion factor for 1 hour; 0.156 is the extinction of 1 nmol of malondialdehyde at 532 nm; E1 and E2 are the optical density of the first and second samples, respectively, against the control.
Недостатком этого способа является то, что при его использовании для определения скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов сельскохозяйственных животных отмечено появление осадка (взвеси) после взаимодействия находящихся в сливе веществ с тиобарбитуровой кислотой, что сказывается на результатах измерения оптической плотности. При этом отсутствует повторяемость результатов при анализе одной и той же пробы.The disadvantage of this method is that when it is used to determine the rate of formation of lipid peroxidation products in the erythrocyte membranes of farm animals, a precipitate (suspension) after the interaction of substances in the discharge with thiobarbituric acid is observed, which affects the optical density measurement results. However, there is no repeatability of the results when analyzing the same sample.
Задачей настоящего изобретения является подбор оптимального объема образцов мембран эритроцитов сельскохозяйственных животных, который может быть использован для инкубации, и уточнение условий проведения последующих этапов для выявления продуктов реакции перекисного окисления липидов, что в итоге позволит обеспечить повторяемость результатов определения продуктов реакции и повысить точность. В этом состоит технический результат.The objective of the present invention is to select the optimal volume of samples of erythrocyte membranes of farm animals that can be used for incubation, and to clarify the conditions for the subsequent steps to identify the products of lipid peroxidation reaction, which ultimately will ensure repeatability of the results of determination of reaction products and improve accuracy. This is the technical result.
Технический результат изобретения достигается за счет проведения водного гемолиза эритроцитов ледяной водой, уменьшения объема взвеси эритроцитов в опытных образцах (в 6,7 раза по сравнению с прототипом), использования горячей тиабарбитуровой кислоты для проведения цветной реакции и уточнения формулы расчета результата.The technical result of the invention is achieved by conducting aqueous hemolysis of red blood cells with ice water, reducing the volume of suspension of red blood cells in experimental samples (6.7 times compared with the prototype), using hot thiabarbituric acid to conduct a color reaction and clarifying the formula for calculating the result.
Способ осуществляется следующим образом:The method is as follows:
- получают кровь из яремной вены животных с использованием антикоагулянта;- receive blood from the jugular vein of animals using an anticoagulant;
- кровь центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин, осаждая эритроциты;- blood is centrifuged for 10 min at 3000 rpm, precipitating red blood cells;
- полученный осадок эритроцитов промывают 0,9% раствором хлористого натрия до исчезновения окраски в надосадочной жидкости и переосаждают в том же режиме центрифугирования;- the obtained erythrocyte sediment is washed with a 0.9% sodium chloride solution until the color disappears in the supernatant and reprecipitated in the same centrifugation mode;
- осуществляют полный гемолиз эритроцитов: в чистую центрифужную пробирку отбирают по 0,5 мл осадка эритроцитов и приливают из пипетки сильной струей равный объем охлажденной до 0°С дистиллированной воды и оставляют стоять в течение 30 мин;- complete erythrocyte hemolysis is performed: 0.5 ml of erythrocyte sediment is taken into a clean centrifuge tube and an equal volume of distilled water cooled to 0 ° C is dispensed from the pipette with a strong jet and left to stand for 30 minutes;
- получают образцы мембран эритроцитов - пробы центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин, осторожно отсасывают надосадочную жидкость с серой прослойкой мембран эритроцитов и переносят в чистую пробирку;- receive samples of erythrocyte membranes - the samples are centrifuged for 30 min at 3000 rpm, the supernatant with a gray layer of erythrocyte membranes is carefully aspirated and transferred to a clean tube;
- осуществляют инкубацию образцов мембран эритроцитов - на каждый образец мембран готовят 3 пробирки: в первую пробирку вносят по 0,6 мл раствора соли Мора (4х10-5 М свежеприготовленный раствор), аскорбиновой кислоты (2,6 мМ свежеприготовленный раствор), 0,77 мл трис-буфера (трис-НСl буфер, 0,04 М раствор с рН 7,4), и 0,03 мл полученной взвеси мембран эритроцитов; во вторую пробирку приливают 0,77 мл трис-буфера, 0,03 мл взвеси мембран эритроцитов и 1,2 мл дистиллированной воды; в третью (контроль) добавляют те же реактивы, что и в первую пробирку, после чего сразу приливают 2 мл 40% раствора трихлоруксусной кислоты; подготовленные пробы помещают в термостатат и инкубируют в течение 20 мин при 37°С;- carry out the incubation of samples of erythrocyte membranes - 3 tubes are prepared for each membrane sample: 0.6 ml of Mohr's salt solution (4x10 -5 M freshly prepared solution), ascorbic acid (2.6 mm freshly prepared solution) are added to the first test tube, 0.77 ml Tris-buffer (Tris-Hcl buffer, 0.04 M solution with a pH of 7.4), and 0.03 ml of the obtained suspension of erythrocyte membranes; 0.77 ml of Tris buffer, 0.03 ml of suspension of erythrocyte membranes and 1.2 ml of distilled water are poured into the second tube; in the third (control) add the same reagents as in the first test tube, after which 2 ml of a 40% trichloroacetic acid solution are immediately added; the prepared samples are placed in a thermostat and incubated for 20 min at 37 ° C;
- останавливают реакцию путем добавления в опытные пробирки по 2 мл раствора трихлоруксусной кислоты;- stop the reaction by adding to the test tubes 2 ml of trichloroacetic acid solution;
- проводят подготовку содержимого проб для цветной реакции - все образцы центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин, затем осторожно пипеткой с удлиненным концом отбирают надосадочную жидкость;- the contents of the samples are prepared for a color reaction - all samples are centrifuged for 15 min at 3000 rpm, then the supernatant is carefully taken with a pipette with an elongated end;
- осуществляют цветную реакцию: отмеряют по 3,0 мл полученной надосадочной жидкости в теплые пробирки, в каждую из которых прибавляют по 1,5 мл 0,8% свежеприготовленного горячего раствора тиобарбитуровой кислоты, и помещают пробы на 10 мин в кипящую водяную баню. После инкубации пробирки охлаждают в ледяной воде;- carry out a color reaction: 3.0 ml of the obtained supernatant are measured in warm tubes, 1.5 ml of 0.8% freshly prepared hot solution of thiobarbituric acid are added to each of them, and the samples are placed for 10 min in a boiling water bath. After incubation, the tubes are cooled in ice water;
- измеряют величину оптической плотности опытных проб против контроля на фотоэлектроколориметре при длине волны 540 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см и рассчитывают скорость образования конечного продукта перекидного окисления липидов - малонового диальдегида по формулам- measure the optical density of the experimental samples against the control on a photoelectrocolorimeter at a wavelength of 540 nm (green filter) in a cuvette with a layer thickness of 1 cm and calculate the rate of formation of the end product of lipid cross-oxidation of malondialdehyde according to the formulas
и , and ,
где X1 - скорость образования в пробе МДА в присуствии прооксидантов - соли Мора и аскорбиновой кислоты (индуцированное перекисное окисление липидов), нмоль в час; Х2 - скорость образования в пробе МДА в отсуствии прооксидантов (спонтанное перекисное окисление липидов), нмоль в час; 4,0 - общий объем среды для инкубации полученных образцов мембран, мл; 3,0 - объем пробы для проведения цветной реакции с тиобарбитуровой кислотой, мл; 4,5 - объем пробы, мл, взятый для фотометрирования; 6 - коэффициент пересчета на 1 час; 0,156 - экстанция 1 нмоль МДА при 532 нм; Е1 и Е2 - оптическая плотность соответственно первой и второй проб против контроля.where X1 is the rate of MDA formation in the sample in the presence of prooxidants - Mohr's salt and ascorbic acid (induced lipid peroxidation), nmol per hour; X2 - the rate of formation of MDA in the sample in the absence of prooxidants (spontaneous lipid peroxidation), nmol per hour; 4.0 - the total volume of medium for incubation of the obtained membrane samples, ml; 3.0 - sample volume for color reaction with thiobarbituric acid, ml; 4,5 - sample volume, ml, taken for photometry; 6 - conversion factor for 1 hour; 0.156 is the extention of 1 nmol MDA at 532 nm; E1 and E2 are the optical density of the first and second samples, respectively, against the control.
Эксперименты по определению скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов сельскохозяйственных животных проводили на телочках двух-шестимесячного возраста фермы Выльгородской научно-экспериментальной станции Коми научного центра УрО РАН (г. Сыктывкар).The experiments to determine the rate of formation of lipid peroxidation products in the erythrocyte membranes of farm animals were carried out on heifers of two to six months of age at the farm of the Vil'gorod Scientific and Experimental Station of the Komi Scientific Center of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences (Syktyvkar).
Пример 1. В ходе проведения экспериментов было отмечено, что содержимое проб после реакции тиобарбитуровой кислоты с продуктами, которые образовывались после инкубации пробы мембран эритроцитов телочек из расчета 0,1 мл на 1,0 мл инкубационной среды или 0,2 мл на 2,0 мл среды при 37°С в течение 20 мин, был мутным и содержал частички осадка. Появление осадка в пробе сказывалось на результатах анализа при фотометрировании. Поэтому было проведено исследование скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в образцах мембран эритроцитов у телочек в зависимости от изменения объема свежеполученных образцов мембран, взятого для проведения инкубации. Получили, что максимальная скорость образования продуктов перекисного окисления липидов или малонового диальдегида наблюдается при добавлении в инкубационную среду объемом 2,0 мл 0,03 мл препарата мембран эритроцитов (табл. 1).Example 1. During the experiments, it was noted that the contents of the samples after the reaction of thiobarbituric acid with products that were formed after incubation of a sample of membranes of red blood cells of heifers at the rate of 0.1 ml per 1.0 ml of incubation medium or 0.2 ml per 2.0 ml of medium at 37 ° C for 20 min, was cloudy and contained particles of sediment. The appearance of sediment in the sample affected the results of the analysis during photometry. Therefore, a study was conducted of the rate of formation of lipid peroxidation products in erythrocyte membrane samples in heifers depending on the change in the volume of freshly obtained membrane samples taken for incubation. It was found that the maximum rate of formation of lipid peroxidation products or malondialdehyde is observed when 2.0 ml of 0.03 ml of the erythrocyte membrane preparation is added to the incubation medium (Table 1).
Пример 2. В ходе проведения экспериментов доказана необходимость в проведении аккуратного отбора надосадочной жидкости после остановки реакции образования продуктов перекисного окисления липидов в образцах мембран эритроцитов животных добавлением в инкубационную среду 40% трихлоруксусной кислоты и их последующем центрифугировании в течение 15 мин. Отмечено, что после прохождения этой реакции на стенках пробирок появляется легкий сероватый налет, который при сливе содержимого из пробирок легко попадает в надосадочную жидкость. В связи с этим величины скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в 1,5-3,0 раза превышают показатели, полученные при аккуратном отборе проб (табл. 2).Example 2. During the experiments, the need for accurate selection of the supernatant after stopping the formation of lipid peroxidation products in animal erythrocyte membrane samples by adding 40% trichloroacetic acid to the incubation medium and their subsequent centrifugation for 15 minutes was proved. It was noted that after passing this reaction, a light grayish coating appears on the walls of the tubes, which, when the contents are drained from the tubes, easily enters the supernatant. In this regard, the rates of formation of lipid peroxidation products are 1.5–3.0 times higher than those obtained by careful sampling (Table 2).
Пример 3. При использовании способа, взятого в качестве прототипа для определения скорости образования продуктов реакций перекисного окисления липидов, отмечается разброс в величинах при параллельном исследовании одной пробы мембран (табл. 3, животные №№1 и 2). Предлагаемый нами способ обеспечивает оптимальную вероятность совпадения результатов, полученных при анализе одних и тех же образцов мембран эритроцитов у животных (табл. 3, животные №№3-6).Example 3. When using the method, taken as a prototype to determine the rate of formation of reaction products of lipid peroxidation reactions, there is a scatter in values in a parallel study of one sample of membranes (table. 3, animals No. 1 and 2). Our proposed method provides the optimal probability of coincidence of the results obtained when analyzing the same samples of erythrocyte membranes in animals (Table 3, animals No. 3-6).
Примечание: * - для определения скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов телочек использовали способ, взятый в качестве прототипаNote: * - to determine the rate of formation of products of lipid peroxidation in the membranes of red blood cells of heifers used the method taken as a prototype
Пример 4. Способ для определения скорости образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов сельскохозяйственных животных использовали для выявления продуктов перекисного окисления липидов в образцах мембран эритроцитов телочек, содержащихся с первого дня жизни в разных условиях двигательной нагрузки: принудительного движения на установке с движущим полом - дважды в день по 30 мин со скоростью 20 м в минуту или на свободном содержании. Получили, что скорость образования ТБК-активных продуктов в мембранах эритроцитов телочек 125-дневного возраста, находящихся с первого дня жизни в условиях принудительного движения, в 3,5 раза и более превышает скорость образования продуктов перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов у телочек 107-дневного возраста, содержащихся с первого дня жизни в стандартных клетках на свободном содержании (табл. 4.).Example 4. A method for determining the rate of formation of lipid peroxidation products in erythrocyte membranes of farm animals was used to identify lipid peroxidation products in membranes of erythrocyte membranes of heifers kept from the first day of life under different conditions of motor load: forced movement on a unit with a moving floor - twice per day for 30 minutes at a speed of 20 m per minute or at free content. It was found that the rate of formation of TBA-active products in the erythrocyte membranes of heifers of 125 days old, which are on the first day of life under conditions of forced movement, is 3.5 times or more higher than the rate of formation of products of lipid peroxidation in the membranes of red blood cells in heifers of 107 days age contained from the first day of life in standard cells in free content (table. 4.).
Таким образом, предлагаемый способ определения скорости перекисного окисления липидов в мембранах эритроцитов сельскохозяйственных животных может быть использован для выявления особенностей функционирования эритроцитарных мембран животных в процессе адаптации их организма к изменению условий содержания (влияние интенсивности двигательной нагрузки, температурного режима, включение новых кормов в рацион и т.д.).Thus, the proposed method for determining the rate of lipid peroxidation in the erythrocyte membranes of farm animals can be used to identify the features of the functioning of erythrocyte membranes of animals in the process of adaptation of their body to changing conditions (the influence of the intensity of the motor load, temperature, the inclusion of new feed in the diet, etc. .d.).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002125596/15A RU2229133C1 (en) | 2002-09-24 | 2002-09-24 | Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002125596/15A RU2229133C1 (en) | 2002-09-24 | 2002-09-24 | Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2002125596A RU2002125596A (en) | 2004-03-27 |
RU2229133C1 true RU2229133C1 (en) | 2004-05-20 |
Family
ID=32678948
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2002125596/15A RU2229133C1 (en) | 2002-09-24 | 2002-09-24 | Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2229133C1 (en) |
-
2002
- 2002-09-24 RU RU2002125596/15A patent/RU2229133C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Строев Е.М., Макарова В.Г. Практикум по биологической химии. Уч. пособие. - М.: Высшая школа. 1986, с.211-213. Влияние антиоксидантов на процессы ПОЛ и показатели липидного обмена ... у животных. В сб. Антиоксиданты в профилактике и терапии. / Под ред. К.М.Дюмаева и др. - М., 1995, с. 182-187. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2002125596A (en) | 2004-03-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP2711786B2 (en) | Reagent composition and its use for cell sphering | |
SU753346A3 (en) | Method of preparing cell suspension | |
US3915805A (en) | Quantitative detection of endotoxin in biological fluids | |
EP0513762B1 (en) | Reagent and method for analyzing cells in urine | |
US5958776A (en) | Method for classifying and counting immature leukocytes | |
EP1930723B1 (en) | Method for measuring biological sample and measuring apparatus therefor | |
CN103627638B (en) | A kind of composition for splitting erythrocyte, red blood cell lysing agent and application | |
NL8003987A (en) | COMPOSITION FOR THE EXAMINATION OF ORGANIC TISSUES AND / OR LIQUIDS AND METHOD USE THEREOF. | |
CN110579595B (en) | Isohemolysin, preparation method thereof, biological sample treatment method and leukocyte membrane antigen detection method | |
US20210116448A1 (en) | Method for measuring fibrinogen concentration in blood sample and nanoparticles for same | |
Burmester et al. | Evaluation of a rapid method for the determination of plasma fibrinogen | |
RU2691413C1 (en) | Method for determining bacterial endotoxin in biological fluids | |
RU2229133C1 (en) | Method for detecting velocity in development of lipid peroxidation products in erythocytic membranes in farm animals | |
US6146901A (en) | Composition for manipulating optical and electrical properties of particles to achieve target values for such properties and methods for using the composition | |
CN111157713A (en) | Hemolysin for blood analysis, preparation method thereof, reagent and kit | |
Hervig et al. | Endogenous serotonin in human blood platelets: factors that may influence reference values | |
JPS5845562A (en) | Method of measuring beta-lipoprotein fraction in body fluid and measurement reagent | |
SU1561034A1 (en) | Method of determining sensitivity of membranes of erythrocytes to free-radical oxidation of lipids | |
Bloch et al. | Flow-cytometric analysis of chromatin | |
SU905787A1 (en) | Method of determination of adenosintriphosphorous acid in blood | |
CN114236134A (en) | Detection method and application of comprehensive biological toxicity | |
RU1807410C (en) | Method for detecting malonic dialdehyde in blood | |
UA127842C2 (en) | METHOD OF DETERMINING MYELOPEROXIDASE ACTIVITY OF NEUTROPHILS IN LEUKOCONCENTRATE | |
RU2007720C1 (en) | Method of acute leukosis diagnosis | |
SU1116394A1 (en) | Method of determining lytic activity of substances |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20040925 |