RU2206089C1 - Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides - Google Patents

Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides Download PDF

Info

Publication number
RU2206089C1
RU2206089C1 RU2001134132/04A RU2001134132A RU2206089C1 RU 2206089 C1 RU2206089 C1 RU 2206089C1 RU 2001134132/04 A RU2001134132/04 A RU 2001134132/04A RU 2001134132 A RU2001134132 A RU 2001134132A RU 2206089 C1 RU2206089 C1 RU 2206089C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
sodium hydroxide
hydrochloric acid
titration
titrated
Prior art date
Application number
RU2001134132/04A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Н.Ш. Кайшева
Original Assignee
Пятигорская государственная фармацевтическая академия
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Пятигорская государственная фармацевтическая академия filed Critical Пятигорская государственная фармацевтическая академия
Priority to RU2001134132/04A priority Critical patent/RU2206089C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2206089C1 publication Critical patent/RU2206089C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)

Abstract

FIELD: analytical methods. SUBSTANCE: invention relates to standardizing of pectins and alginates used as heavy metal detoxicants. Aqueous solution of polysaccharides is titrated potentiometrically or conductometrically with 0.1 M sodium hydroxide solution (determining free carboxyl groups). To titrate polysaccharide solution, 0.1 M sodium hydroxide solution is poured and resulting solution is allowed to stand during 24 h at room temperature until hydrolysis of ester groups is completed, after which solution is titrated with 0.1 M hydrochloric acid solution. More 0.1 M hydrochloric acid solution is then poured and resulting solution is heated for 10 min on boiling water bath, cooled, and filtered. Polyuronic acid precipitate is washed on filter with water until negative acid test of wash water is attained, after which precipitate is quantitatively transferred into beaker with the aid of 0.1 M sodium hydroxide solution and dissolved during 30 min with periodic stirring. Finely, solution is titrated with 0.1 M hydrochloric acid solution. Reference experiment is simultaneously performed. EFFECT: increased accuracy and information content. 11 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к фармацевтической и пищевой промышленности и касается стандартизации пектинов и альгинатов, используемых в качестве детоксикантов тяжелых металлов. The invention relates to the pharmaceutical and food industries and for the standardization of pectins and alginates used as detoxifiers of heavy metals.

Полиурониды (пектины, альгиновая кислота), имеющие функциональные группы: -СООН, -СООСН3, -ОН, -OCOCH3, обладают сорбционными свойствами и могут выполнять роль ионообменников. Эти свойства полисахаридов обусловлены наличием в них уроновых кислот: полигалактуроновой в пектине, полигулуроновой и полиманнуроновой в альгиновой кислоте. В значительной степени ионообменные свойства полиуронидов связаны с содержанием в них перечисленных выше функциональных групп: чем выше содержание свободных карбоксильных и гидроксильных групп, тем выше сорбционные свойства полисахаридов. И, напротив, высокое количественное содержание этерифицированных метанолом карбоксильных групп и уксусной кислотой гидроксильных групп обусловливает выраженные студнеобразующие свойства полимеров.Polyuronides (pectins, alginic acid) having functional groups: —COOH, —COOCH 3 , —OH, —OCOCH 3 , have sorption properties and can act as ion exchangers. These properties of polysaccharides are due to the presence of uronic acids in them: polygalacturonic in pectin, polyguluronic and polymannuronic in alginic acid. To a large extent, the ion-exchange properties of polyuronides are associated with the content of the functional groups listed above: the higher the content of free carboxyl and hydroxyl groups, the higher the sorption properties of polysaccharides. Conversely, the high quantitative content of carboxyl groups esterified with methanol and acetic acid hydroxyl groups determines the pronounced gel-forming properties of the polymers.

Описаны методики определения содержания свободных карбоксильных групп полиуронидов путем титрования их растворами гидроксида натрия в присутствии индикатора фенолфталеина (в точке эквивалентности наблюдается переход от бесцветной окраски раствора до слабо-розовой). Содержание этерифицированных карбоксильных групп определяют после омыления полисахаридов избытком раствора гидроксида натрия в течение 2 ч при комнатной температуре с последующим прибавлением к реакционной смеси равного объема соляной кислоты и титрованием избытка кислоты щелочью (индикатор - фенолфталеин). Содержание ацетильных групп определяют после омыления полиуронидов 0,6% раствором гидроксида натрия путем отгонки образовавшейся уксусной кислоты и титрования ее щелочью (индикатор-фенолфталеин). (Шелухина Н. П. , Абаева Р.Ш., Аймухамедова Г.Б. Пектин и параметры его получения. - Фрунзе: Илим, 1987. - С.87-88, 91-92). Methods are described for determining the content of free carboxyl groups of polyuronides by titration with sodium hydroxide solutions in the presence of a phenolphthalein indicator (at the equivalence point, a transition from a colorless color to a slightly pink solution is observed). The content of esterified carboxyl groups is determined after saponification of polysaccharides with an excess of sodium hydroxide solution for 2 hours at room temperature, followed by the addition of an equal volume of hydrochloric acid to the reaction mixture and titration of the excess acid with alkali (phenolphthalein is an indicator). The content of acetyl groups is determined after saponification of polyuronides with a 0.6% sodium hydroxide solution by distillation of the resulting acetic acid and titration with alkali (indicator-phenolphthalein). (Shelukhina N.P., Abaeva R.Sh., Aymukhamedova GB.B. Pectin and the parameters for its preparation. - Frunze: Ilim, 1987. - P.87-88, 91-92).

Недостатками описанного способа являются: а) трудоемкость определения содержания ацетильных групп, связанная с отгонкой образующейся уксусной кислоты, б) невозможность количественного определения уксусной кислоты, т.к. после омыления щелочью преимущественно образуется ацетат натрия, который не будет в дальнейшем титроваться щелочью; в) определение содержания свободных и этерифицированных карбоксильных групп и содержания ацетильных групп ведется в различных навесках препарата, что увеличивает погрешность определения, г) точка эквивалентности при определении всех функциональных групп устанавливается визуально с помощью фенолфталеина, что также увеличивает погрешность определения из-за нечеткого перехода окраски; д) завышены объемы титрантов - раствора гидроксида натрия - вследствие того, что вода, насыщенная карбонатами и гидрокарбонатами (рН 5-6,5), также частично титруется щелочью. The disadvantages of the described method are: a) the complexity of determining the content of acetyl groups associated with the distillation of the resulting acetic acid, b) the inability to quantify acetic acid, because after saponification with alkali, sodium acetate is predominantly formed, which will not be titrated with alkali in the future; c) determination of the content of free and esterified carboxyl groups and the content of acetyl groups is carried out in various samples of the preparation, which increases the error of determination, d) the equivalence point in the determination of all functional groups is established visually using phenolphthalein, which also increases the determination error due to a fuzzy color transition ; e) the volumes of titrants — sodium hydroxide solution — are overestimated due to the fact that water saturated with carbonates and bicarbonates (pH 5-6.5) is also partially titrated with alkali.

Описано определение содержания функциональных групп полисахаридов путем кондуктометрического титрования 0,1-0,2% раствора пектина 0,1 моль/л раствором гидроксида натрия; при титровании определяют величину сопротивления растворов (R, Ом) и рассчитывают электропроводность растворов (I/R, Ом-1), затем графически I/R=f(VNaOH) определяют точку эквивалентности, которая соответствует нейтрализации свободных карбоксильных групп. Затем к оттитрованному растору полиуронида добавляют 10 мл 0,1 моль/л раствора гидроксида натрия (избыток щелочи) для омыления этерифицированных карбоксильных и гидроксильных групп (омыление проводится 30-40 мин при комнатной температуре), после чего аликвотную часть омыленного раствора полисахарида титруют раствором 0,1 моль/л соляной кислоты. В системе координат: I/R-VNaOH графически определяют две точки эквивалентности: первая точка характеризует нейтрализацию гидроксида натрия, не вступившего в реакцию взаимодействия при омылении, а участок кривой между первой и второй точками эквивалентности соответствует титрованию всех карбоксильных групп (до и после омыления полиуронида, а также ацетата натрия). Другую аликвотную часть омыленного раствора полисахарида последовательно в статических условиях обрабатывают катионитом в Н+-форме (для удаления ионов натрия) и анионитом в ОН--форме (для удаления хлорид- и ацетат-ионов), затем раствор фильтруют и фильтрат снова кондуктометрически титруют 0,1 моль/л раствором гидроксида натрия. Графически определяют точку эквивалентности, которая соответствует нейтрализации всех карбоксильных групп. (Голубев В.Н., Шелухина Н.П. Пектин: химия, технология, применение. - М., 1995. - С.105-110).The determination of the content of functional groups of polysaccharides by conductometric titration of a 0.1-0.2% pectin solution with a 0.1 mol / L sodium hydroxide solution is described; during titration, the resistance value of the solutions (R, Ohm) is determined and the conductivity of the solutions (I / R, Ohm -1 ) is calculated, then the equivalence point, which corresponds to the neutralization of free carboxyl groups, is determined graphically by I / R = f (V NaOH ). Then, 10 ml of a 0.1 mol / L sodium hydroxide solution (excess alkali) is added to the titrated polyuronide solution to saponify the esterified carboxyl and hydroxyl groups (saponification is carried out for 30-40 minutes at room temperature), after which an aliquot of the saponified polysaccharide solution is titrated with solution 0 , 1 mol / l hydrochloric acid. In the coordinate system: I / RV NaOH , two equivalence points are graphically determined: the first point characterizes the neutralization of sodium hydroxide, which did not react during the saponification, and the curve between the first and second equivalence points corresponds to the titration of all carboxyl groups (before and after saponification of the polyuronide, as well as sodium acetate). Another aliquot of polysaccharide solution consecutively saponified under static conditions was treated with the cation exchanger in H + form (to remove the sodium ions) and an anion exchanger in the OH - -form (to remove the chloride and acetate ions) then the solution was filtered and the filtrate was again titrated conductometric 0 , 1 mol / l sodium hydroxide solution. Graphically determine the equivalence point, which corresponds to the neutralization of all carboxyl groups. (Golubev V.N., Shelukhina N.P. Pectin: chemistry, technology, application. - M., 1995. - P.105-110).

Схематически определение функциональных групп в пектине по указанному способу можно представить в виде уравнений, показанных на схеме 1 (см. в конце описания). Schematically, the definition of functional groups in pectin by the specified method can be represented in the form of equations shown in scheme 1 (see the end of the description).

Недостатками указанного способа являются: 1) невозможность количественного определения пектовой кислоты, т.к. а) после обработки анионитом пектовая кислота как малорастворимое соединение частично диссоциирует на пектат ион и ион водорода (Кдис•10-4 ), при этом пектат ион обменивается на ОH- группы анионита, осаждаясь на анионите; б) элюирование пектовой кислоты с катионита и анионита водой не может быть количественным, т.к. возможна адсорбция пектовой кислоты на смолах; в) после обработки ионитами образующаяся пектовая кислота (осадок) фильтруется и остается на фильтре, что не учитывается в описанной методике, поскольку определение пектовой кислоты, согласно методике, проводится не в нерастворимой части, а в фильтрате; 2) трудоемкость и длительность процесса, связанные с необходимостью регенерации катионитов и анионитов; 3) т.к. вода имеет слабокислую реакцию за счет образования карбонатов и гидрокарбонатов (рН 5-6,5), то при титровании полиуронидов щелочью часть последней расходуется на титрование воды, поэтому расход щелочи при анализе несколько завышен.The disadvantages of this method are: 1) the inability to quantify pectic acid, because a) after treatment with anion exchange resin, pectic acid as a poorly soluble compound partially dissociates an ion and a hydrogen ion (K dis • 10 -4 ) into pectate, while the pectate ion is exchanged for OH - anion exchange groups, precipitating on the anion exchange resin; b) elution of pectic acid from cation exchange resin and anion exchange resin with water cannot be quantitative, because pectic acid adsorption on resins is possible; c) after treatment with ion exchangers, the formed pectic acid (precipitate) is filtered and remains on the filter, which is not taken into account in the described method, since the determination of pectic acid, according to the method, is carried out not in the insoluble part, but in the filtrate; 2) the complexity and duration of the process associated with the need for regeneration of cation exchangers and anion exchangers; 3) since Since water has a slightly acid reaction due to the formation of carbonates and bicarbonates (pH 5-6.5), when titrating polyuronides with alkali, part of the latter is spent on titration of water, therefore, the alkali consumption in the analysis is somewhat overestimated.

Известен способ определения содержания функциональных групп полисахаридов, заключающийся в следующем: раствор пектина титруют 0,1 моль/л раствором гидроксида натрия в присутствии фенолфталеина (определение свободных карбоксильных групп), затем добавляют еще 10 мл щелочи и оставляют при комнатной температуре на 30 мин. Избыток щелочи оттитровывают 0,1 моль/л раствором соляной кислоты в присутствии фенолфталеина (определение всех функциональных групп) и прибавляют еще 50 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты, помещают в кипящую водяную баню на 10 мин, охлаждают, доводят до определенного объема, фильтруют. Отмеренное количество фильтрата титруют 0,1 моль/л раствором гидроксида натрия в присутствии фенолфталеина (определение всех карбоксильных групп пектина или пектовой кислоты). Аналогично проводят контрольный опыт. (Арасимович В.В., Балтага С.В., Пономарева Н.П. Методы анализа пектиновых веществ, гемицеллюлоз и пектолитических ферментов в плодах.- Кишинев: Редакционно-издательский отдел АН Молд. ССР, 1970. - С.38). Данный способ определения массовой доли функциональных групп полиуронидов наиболее близок к предлагаемому и выбран за прототип. A known method for determining the content of functional groups of polysaccharides is as follows: a pectin solution is titrated with a 0.1 mol / L sodium hydroxide solution in the presence of phenolphthalein (determination of free carboxyl groups), then an additional 10 ml of alkali is added and left at room temperature for 30 minutes. The excess alkali is titrated with a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution in the presence of phenolphthalein (determination of all functional groups) and another 50 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution is added, placed in a boiling water bath for 10 minutes, cooled, adjusted to a certain volume, filtered. The measured amount of filtrate is titrated with 0.1 mol / L sodium hydroxide solution in the presence of phenolphthalein (determination of all carboxyl groups of pectin or pectic acid). Similarly carry out a control experiment. (Arasimovich V.V., Baltaga S.V., Ponomareva N.P. Methods of analysis of pectin substances, hemicelluloses and pectolytic enzymes in fruits. - Chisinau: Editorial and Publishing Department of the Academy of Sciences of the Moldavian SSR, 1970. - P. 38). This method of determining the mass fraction of functional groups of polyuronides is closest to the proposed one and is selected as a prototype.

Недостатками указанного способа являются: а) невозможность количественного определения пектовой кислоты, т.к. пектовая кислота как малорастворимое соединение выпадает в осадок (после обработки соляной кислотой и нагревания), который фильтруется, поэтому определение пектовой кислоты необходимо вести в осадке, а не в фильтрате; б) невозможность количественного определения всех сложноэфирных групп, т.к. омыление с помощью 10 мл щелочи и в течение 30 мин недостаточно, в) установление точек эквивалентности визуальным способом с помощью фенолфталеина из-за нечеткого перехода окраски растворов способствует высокой погрешности определений. The disadvantages of this method are: a) the impossibility of quantitative determination of pectic acid, because pectic acid as a poorly soluble compound precipitates (after treatment with hydrochloric acid and heating), which is filtered, therefore, the determination of pectic acid must be carried out in the precipitate, and not in the filtrate; b) the impossibility of quantitative determination of all ester groups, because saponification with 10 ml of alkali and for 30 minutes is not enough, c) the establishment of equivalence points by visual means using phenolphthalein due to a fuzzy color transition of the solutions contributes to a high measurement error.

Цель изобретения - количественное определение различных функциональных групп полиуроновых кислот, повышение точности анализа. The purpose of the invention is the quantitative determination of various functional groups of polyuronic acids, improving the accuracy of the analysis.

Поставленная цель достигается тем, что к навеске полисахаридов около 0,1 г (точная навеска) приливают 50 мл воды и перемешивают на магнитной мешалке с нагревом до получения раствора. Полученный раствор титруют потенциометрически на иономере И-135 (индикаторный электрод - стеклянный, электрод сравнения - хлорсеребряный) или кондуктометрически на кондуктометре КП (платиновые электроды) 0,1 моль/л раствором гидроксида натрия. К оттитрованному раствору полисахарида приливают 50 мл 0,1 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют раствор на 24 ч при комнатной температуре для полного омыления сложноэфирных групп. Затем весь раствор потенциометрически или кондуктометрически титруют 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. При этом первая точка эквивалентности характеризует нейтрализацию гидроксида натрия, не вступившего в реакцию омыления, а участок кривой между первой и второй точками эквивалентности соответствует титрованию всех карбоксильных групп (до и после омыления полиуронидов, а также ацетата натрия). Далее для осаждения пектовой или альгиновой кислот приливают еще 50 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты, стакан с раствором помещают в кипящую водяную баню на 10 мин, охлаждают, фильтруют через плотный бумажный фильтр ("синяя лента"), промывают осадок на фильтре водой до отрицательной реакции промывных вод на уксусную и соляную кислоты по универсальному индикатору. Затем осадок (пектовая или альгиновая кислоты) с фильтра количественно переносят в стакан с помощью 50 мл 0,1 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют на 30 мин при периодическом перемешивании для полного растворения, после чего потенциометрически или кондуктометрически титруют раствор пектата натрия или альгината натрия 0,1 моль/л раствором соляной кислоты: первая точка эквивалентности соответствует нейтрализации избытка гидроксида натрия, не вступившего в реакцию, а участок кривой между первой и второй точками эквивалентности соответствует титрованию карбоксильных групп полиуронида. Параллельно проводят контрольный опыт (без полиуронида). This goal is achieved in that 50 ml of water is added to a weighed portion of polysaccharides of about 0.1 g (exact weighed portion) and mixed on a magnetic stirrer with heating until a solution is obtained. The resulting solution is titrated potentiometrically on an I-135 ionomer (indicator electrode is glass, reference electrode is silver chloride) or conductometric on a conductivity meter KP (platinum electrodes) with 0.1 mol / L sodium hydroxide solution. To the titrated polysaccharide solution, 50 ml of a 0.1 mol / L sodium hydroxide solution are added and the solution is left for 24 hours at room temperature for complete saponification of the ester groups. Then, the entire solution is potentiometrically or conductometrically titrated with 0.1 mol / L hydrochloric acid solution. In this case, the first equivalence point characterizes the neutralization of sodium hydroxide, which did not enter the saponification reaction, and the portion of the curve between the first and second equivalence points corresponds to the titration of all carboxyl groups (before and after saponification of polyuronides, as well as sodium acetate). Then, to precipitate pectic or alginic acids, another 50 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution is poured, a beaker with the solution is placed in a boiling water bath for 10 minutes, cooled, filtered through a thick paper filter (blue ribbon), the precipitate is washed with filter with water until a negative reaction of the washings to acetic and hydrochloric acids according to the universal indicator. Then the precipitate (pectic or alginic acid) from the filter is quantitatively transferred into a beaker using 50 ml of a 0.1 mol / L sodium hydroxide solution and left for 30 min with periodic stirring to completely dissolve, after which potassium or alginate solution is titrated potentiometrically or conductometrically. sodium 0.1 mol / L hydrochloric acid solution: the first equivalence point corresponds to neutralizing the excess sodium hydroxide that has not reacted, and the portion of the curve between the first and second equivalence points There is a titration of the carboxyl groups of the polyuronide. In parallel, a control experiment is carried out (without polyuronide).

При применении потенциометрического титрования для надежного определения точки эквивалентности строят график зависимости в системе координат

Figure 00000002

При использовании кондуктометрического титрования точку эквивалентности определяют графически в системе координат I/R-Vтитранта, где I/R - электропроводность растворов (Ом-1).When applying potentiometric titration to reliably determine the equivalence point, a dependency graph is constructed in the coordinate system
Figure 00000002

When using conductometric titration, the equivalence point is determined graphically in the coordinate system I / RV of the titrant , where I / R is the conductivity of the solutions (Ohm -1 ).

В результате исследований подобраны следующие оптимальные условия определения массовой доли функциональных групп полиуронидов (таблицы 1-4). As a result of the studies, the following optimal conditions were determined for determining the mass fraction of the functional groups of polyuronides (tables 1-4).

Из таблицы 1 следует, что потенциометрическое и кондуктометрическое титрования обусловливают хорошую воспроизводимость полученных результатов на всех этапах определения функциональных групп. Визуальная фиксация точки эквивалентности дает иные результаты при анализе различных функциональных групп возможно из-за "размытого" перехода окраски растворов в точке эквивалентности, неполного омыления полисахаридов, а также из-за отсутствия контрольного опыта, предусматривающего титрование воды с рН<7. При визуальной фиксации невозможно определить две точки эквивалентности, характерные для титрования избытка щелочи, не вступившей в реакцию, и прореагировавшей щелочи. При определении карбоксильных групп полиуроновых кислот (3-е титрование) по способу-прототипу определяется также только одна точка эквивалентности, соответствующая титрованию воды раствором гидроксида натрия; второй точки эквивалентности нет из-за потери полиуроновых кислот в результате фильтрации (кислоты остаются в виде осадков на фильтре). From table 1 it follows that potentiometric and conductometric titration determine the good reproducibility of the results obtained at all stages of determining the functional groups. Visual fixation of the equivalence point gives different results in the analysis of various functional groups, possibly due to a “blurry” transition of the color of the solutions at the equivalence point, incomplete saponification of polysaccharides, and also due to the lack of a control experiment involving titration of water with pH <7. With visual fixation, it is impossible to determine two equivalence points characteristic of titration of an excess of alkali that has not reacted and that has reacted alkali. When determining the carboxyl groups of polyuronic acids (3rd titration) by the prototype method, only one equivalence point corresponding to titration of water with sodium hydroxide solution is also determined; there is no second point of equivalence due to the loss of polyuronic acids as a result of filtration (acids remain in the form of precipitates on the filter).

Из таблицы 2 следует, что оптимальный объем щелочи для полного омыления этерифицированных групп составляет 50,0 мл. При меньших объемах щелочи рН растворов ≤7, т.е. щелочи недостаточно для практически полного омыления. From table 2 it follows that the optimal volume of alkali for complete saponification of esterified groups is 50.0 ml. With smaller volumes of alkali, the pH of the solutions is ≤7, i.e. alkali is not enough for almost complete saponification.

Из таблицы 3 видно, что наиболее оптимальная продолжительность омыления составляет 24 ч, при большей продолжительности реакции рH растворов полиуронидов не меняется. From table 3 it is seen that the most optimal duration of saponification is 24 hours, with a longer reaction time, the pH of the solutions of polyuronides does not change.

Как следует из таблицы 4, в течение 30 мин осадки пектовой и альгиновой кислот растворяются в растворе гидроксида натрия, образуя истинные растворы. As follows from table 4, within 30 min precipitation of pectic and alginic acids dissolve in a solution of sodium hydroxide, forming true solutions.

Статистически обработанные результаты определений содержания функциональных групп приведены в таблице 5 (при п=6, Р=0,95). The statistically processed results of the determination of the content of functional groups are shown in table 5 (with n = 6, P = 0.95).

Как следует из таблицы 5, погрешность определений предлагаемым способом в среднем в 2,3 раза меньше погрешности анализа по способу, принятому за прототип. При этом потенциометрический и кондуктометрический способы определения дают сопоставимые результаты, в то время как по способу-прототипу содержание свободных -СООН и суммы всех карбоксильных групп отличается, по-видимому, из-за перетитровывания анализируемых растворов и недостаточно полного омыления полисахаридов. При анализе карбоксильных групп полиуроновых кислот способ-прототип позволяет получить заниженные результаты в связи с потерями полиуроновых кислот при фильтрации. As follows from table 5, the error in the definitions of the proposed method is on average 2.3 times less than the error of the analysis by the method adopted for the prototype. In this case, the potentiometric and conductometric methods of determination give comparable results, while the prototype method, the content of free -COOH and the sum of all carboxyl groups is different, apparently due to over titration of the analyzed solutions and insufficiently saponification of polysaccharides. When analyzing the carboxyl groups of polyuronic acids, the prototype method allows to obtain underestimated results in connection with the loss of polyuronic acids during filtration.

Предлагаемый способ определения массовой доли функциональных групп полиуронидов поясняется следующими примерами конкретного выполнения. The proposed method for determining the mass fraction of functional groups of polyuronides is illustrated by the following examples of specific performance.

ПРИМЕР 1. К 0,1 г (точная навеска) свекловичного пектина приливают 50 мл воды очищенной и перемешивают на магнитной мешалке с нагревом до растворения пектина. Полученный раствор титруют 0,086 моль/л раствором гидроксида натрия потенциометрически на иономере И-135. В качестве индикаторного электрода используют стеклянный электрод, а в качестве электрода сравнения - хлорсеребряный. По полученным результатам - величине рН и объему титранта (VТ, мл) - определяют дифференциальным методом (Пономарев В.Д. Аналитическая химия. - М.: ВШ. 1982. - ч.2. - С.219-228) отношение

Figure 00000003
затем строят график зависимости в системе координат
Figure 00000004

и определяют объем титранта в точке эквивалентности (таблица 6, фиг.1).EXAMPLE 1. To 0.1 g (accurately weighed) of beet pectin is poured 50 ml of purified water and stirred on a magnetic stirrer with heating until the pectin dissolves. The resulting solution was titrated with 0.086 mol / L sodium hydroxide solution potentiometrically on an I-135 ionomer. A glass electrode is used as an indicator electrode, and silver chloride is used as a reference electrode. According to the results - pH and titrant volume (V T , ml) - determined by the differential method (Ponomarev VD Analytical chemistry. - M .: VSH. 1982. - Part 2. - S.219-228) ratio
Figure 00000003
then build a dependency graph in the coordinate system
Figure 00000004

and determine the titrant volume at the equivalence point (table 6, figure 1).

Как видно из фиг.1, объем титранта - 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия - в точке эквивалентности составляет 3,4 мл. As can be seen from figure 1, the titrant volume of 0.086 mol / l sodium hydroxide solution at the equivalence point is 3.4 ml.

После титрования электроды промывают небольшим количеством воды (~5 мл), промывные воды сливают в стакан с оттитрованным раствором пектина. Затем к этому раствору приливают 50 мл 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют раствор на 24 ч при комнатной температуре для полного омыления сложноэфирных групп. Далее весь раствор потенциометрически титруют 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. Результаты титрования приведены в таблице 7 и на фиг.2. After titration, the electrodes are washed with a small amount of water (~ 5 ml), the wash water is poured into a glass with a titrated pectin solution. Then, 50 ml of a 0.086 mol / L sodium hydroxide solution is added to this solution and the solution is left at room temperature for 24 hours to completely saponify the ester groups. Further, the entire solution is potentiometrically titrated with 0.1 mol / L hydrochloric acid solution. The titration results are shown in table 7 and figure 2.

Как видно из фиг.2, объем титранта - 0,1 моль/л раствора соляной кислоты - в первой точке эквивалентности составляет 35,4 мл, во второй точке эквивалентности - 44,3 мл. As can be seen from figure 2, the titrant volume - 0.1 mol / l hydrochloric acid solution - at the first equivalence point is 35.4 ml, at the second equivalence point - 44.3 ml.

После титрования электроды промывают небольшим количеством воды (~5 мл), промывные воды сливают в стакан с оттитрованным раствором пектина. Затем к этому раствору приливают 50 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты, стакан с раствором помещают в кипящую водяную баню на 10 мин, охлаждают, фильтруют через плотный бумажный фильтр ("синяя лента"). Осадок (пектовая кислота) на фильтре промывают водой до отрицательной реакции промывных вод на уксусную и соляную кислоты по универсальному индикатору. Затем осадок с фильтра количественно переносят в стакан с помощью 50 мл 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют на 30 мин при периодическом перемешивании для полного растворения, после чего потенциометрически титруют раствор пектата натрия 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. Результаты потенциометрического титрования пектата натрия представлены в таблице 8 и на фиг.3. After titration, the electrodes are washed with a small amount of water (~ 5 ml), the wash water is poured into a glass with a titrated pectin solution. Then, 50 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution is poured into this solution, the beaker with the solution is placed in a boiling water bath for 10 minutes, cooled, filtered through a dense paper filter ("blue ribbon"). The precipitate (pectic acid) on the filter is washed with water until the washings react negatively to acetic and hydrochloric acids according to the universal indicator. Then the filter cake was quantitatively transferred into a beaker using 50 ml of a 0.086 mol / L sodium hydroxide solution and left for 30 minutes with periodic stirring to completely dissolve, after which potassium pentate solution was titrated with a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution. The results of potentiometric titration of sodium pectate are presented in table 8 and figure 3.

Как видно из фиг.3, объем титранта - 0,1 моль/л раствора соляной кислоты - в первой точке эквивалентности составляет 30,7 мл, во второй точке эквивалентности - 37,05 мл. Параллельно титрованию анализируемых растворов пектина проводят контрольные опыты (без добавления пектина). При этом объемы титрантов в контрольных опытах составляют 0,2 мл, поэтому для точного определения объемов титрантов в точках эквивалентности в опытных растворах вычитают объем титранта в контрольных опытах. Таким образом, при первом титровании пектина объем 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия составляет 3,4-0,2=3,2 мл; при втором титровании - 35,2 мл и 44,1 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты; при третьем титровании - 30,5 мл и 36,85 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты. As can be seen from figure 3, the titrant volume - 0.1 mol / l hydrochloric acid solution - at the first equivalence point is 30.7 ml, at the second equivalence point - 37.05 ml. In parallel with the titration of the analyzed pectin solutions, control experiments are carried out (without the addition of pectin). In this case, the titrant volumes in the control experiments are 0.2 ml; therefore, to accurately determine the titrant volumes at the equivalence points in the experimental solutions, the titrant volume in the control experiments is subtracted. Thus, during the first titration of pectin, the volume of 0.086 mol / L sodium hydroxide solution is 3.4-0.2 = 3.2 ml; at the second titration, 35.2 ml and 44.1 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution; in the third titration, 30.5 ml and 36.85 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution.

Массовую долю свободных карбоксильных групп (ω1,%) пектина определяют по формуле:

Figure 00000005

где СТ - концентрация титранта - гидроксида натрия, моль/л.The mass fraction of free carboxyl groups (ω 1 ,%) of pectin is determined by the formula:
Figure 00000005

where C T is the concentration of titrant - sodium hydroxide, mol / L.

VТ - объем титранта, мл,
ЭCOOH - эквивалент карбоксильной группы (45 г/моль),
а - навеска пектина, г.
V T - titrant volume, ml,
E COOH - equivalent carboxyl group (45 g / mol),
a - sample of pectin, g.

Figure 00000006
,
Содержание суммы карбоксильных групп пектина и уксусной кислоты (ω2, %, 2-е титрование) определяют по формуле:
Figure 00000007

где СТ', СТ'' - концентрации титранта - 0,1 моль/л раствора соляной кислоты;
VТ', VТ'' - объемы титранта соответственно в первой и второй точках эквивалентности, мл
Figure 00000008

Содержание всех карбоксильных групп пектина (ω3, %; 3-е титрование) определяют аналогично ω2:
Figure 00000009

Содержание ацетилированных групп (ω4, %) определяют по формуле:
ω4 = ω23 = 43,94-31,35 = 12,59%
Количество ацетилированных групп (п) равно количеству гидроксильных групп:
Figure 00000010

тогда содержание гидроксильных групп (ω5, %) составляет: ω5=п•М(ОН)= 0,280•17=4,76%
Содержание этерифицированных карбоксильных групп (ω6, %):
ω6 = ω31 = 31,35-13,59 = 17,76%
Количество этерифицированных карбоксильных групп равно количеству метанола:
Figure 00000011

п(СООН)=п(СН3ОН)=0,395 моль,
тогда массовая доля метанола (ω7, %) составляет:
ω7=0,395•32=12,64%
Степень этерификации карбоксильных групп (ω8, % определяют по формуле:
Figure 00000012

ПРИМЕР 2. К 0,02 г (точная навеска) альгиновой кислоты приливают 50 мл воды очищенной и перемешивают на магнитной мешалке с нагревом до растворения кислоты. Определение функциональных групп альгиновой кислоты проводят потенциометрически аналогично примеру 1.
Figure 00000006
,
The content of the sum of the carboxyl groups of pectin and acetic acid (ω 2 ,%, 2nd titration) is determined by the formula:
Figure 00000007

where C T ' , C T '' - titrant concentration - 0.1 mol / l hydrochloric acid solution;
V T ' , V T '' - titrant volumes, respectively, at the first and second points of equivalence, ml
Figure 00000008

The content of all carboxyl groups of pectin (ω 3 ,%; 3rd titration) is determined similarly to ω 2 :
Figure 00000009

The content of acetylated groups (ω 4 ,%) is determined by the formula:
ω 4 = ω 23 = 43.94-31.35 = 12.59%
The number of acetylated groups (p) is equal to the number of hydroxyl groups:
Figure 00000010

then the content of hydroxyl groups (ω 5 ,%) is: ω 5 = n • M (OH) = 0.280 • 17 = 4.76%
The content of esterified carboxyl groups (ω 6 ,%):
ω 6 = ω 31 = 31.35-13.59 = 17.76%
The amount of esterified carboxyl groups is equal to the amount of methanol:
Figure 00000011

p (COOH) = p (CH 3 OH) = 0.395 mol,
then the mass fraction of methanol (ω 7 ,%) is:
ω 7 = 0.395 • 32 = 12.64%
The degree of esterification of carboxyl groups (ω 8 ,% is determined by the formula:
Figure 00000012

EXAMPLE 2. To 0.02 g (accurately weighed) of alginic acid is added 50 ml of purified water and stirred on a magnetic stirrer with heating until the acid dissolves. The determination of functional groups of alginic acid is carried out potentiometrically as in example 1.

С учетом контрольных опытов при первом титровании альгиновой кислоты объем 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия составил 0,60 мл; при втором титровании 41,10 мл и 43,80 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты; при третьем титровании - 36,20 мл и 38,45 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты. Taking into account control experiments during the first titration of alginic acid, the volume of 0.086 mol / L sodium hydroxide solution was 0.60 ml; in the second titration, 41.10 ml and 43.80 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution; in the third titration, 36.20 ml and 38.45 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution.

Аналогично примеру 1 рассчитывают содержание функциональных групп альгиновой кислоты:

Figure 00000013

Figure 00000014

Figure 00000015

ω4=71,60-59,66=11,94%,
Figure 00000016

ω5=0,265•17=4,51%,
ω6=59,66-13,68=45,98%,
Figure 00000017

ω7=1,022•32=32,70%,
Figure 00000018

ПРИМЕР 3. К навеске свекловичного пектина около 0,1 г (точная навеска) приливают 50 мл воды очищенной и перемешивают на магнитной мешалке с нагревом до растворения пектина. Полученный раствор титруют 0,086 моль/л раствором гидроксида натрия кондуктометрически на кондуктометре КП. По полученным результатам - величинам сопротивления раствора (R, Ом) и вычисленным по ним значениям электропроводности растворов (I/R, Ом-1) и объему титранта (VТ, мл) графически определяют объем титранта в точке эквивалентности. Результаты кондуктометрического титрования свекловичного пектина приведены в таблице 9 и на фиг.4.Analogously to example 1, the content of functional groups of alginic acid is calculated:
Figure 00000013

Figure 00000014

Figure 00000015

ω 4 = 71.60-59.66 = 11.94%,
Figure 00000016

ω 5 = 0.265 • 17 = 4.51%,
ω 6 = 59.66-13.68 = 45.98%,
Figure 00000017

ω 7 = 1,022 • 32 = 32.70%,
Figure 00000018

EXAMPLE 3. To a sample of beet pectin, about 0.1 g (exact sample) is poured with 50 ml of purified water and stirred on a magnetic stirrer with heating until the pectin dissolves. The resulting solution was titrated with 0.086 mol / L sodium hydroxide solution conductometry on a conductivity meter KP. According to the results obtained - the values of the resistance of the solution (R, Ohm) and the values of the electrical conductivity of the solutions (I / R, Ohm -1 ) and the titrant volume (V T , ml) calculated on them, the titrant volume is graphically determined at the equivalence point. The results of conductometric titration of beet pectin are shown in table 9 and figure 4.

Как видно из фиг.4, объем титранта - 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия - в точке эквивалентности составляет 3,35 мл. As can be seen from figure 4, the titrant volume of 0.086 mol / l sodium hydroxide solution at the equivalence point is 3.35 ml.

После титрования электроды промывают примерно 5 мл воды, промывные воды сливают в ячейку кондуктометра с оттитрованным раствором пектина. Затем к этому раствору приливают 50 мл 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют раствор на 24 ч при комнатной температуре для полного омыления сложноэфирных групп. Далее весь раствор кондуктометрически титруют 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. Результаты титрования приведены в таблице 10 и на фиг.5. After titration, the electrodes are washed with about 5 ml of water, the wash water is poured into a conductometer cell with a titrated pectin solution. Then, 50 ml of a 0.086 mol / L sodium hydroxide solution is added to this solution and the solution is left at room temperature for 24 hours to completely saponify the ester groups. Further, the whole solution is conductometric titrated with 0.1 mol / L hydrochloric acid solution. The titration results are shown in table 10 and figure 5.

Как видно из фиг.5, объем титранта - 0,1 моль/л раствора соляной кислоты - в первой точке эквивалентности составляет 35,45 мл, во второй точке эквивалентности - 44,35 мл. As can be seen from figure 5, the titrant volume - 0.1 mol / l hydrochloric acid solution - at the first equivalence point is 35.45 ml, at the second equivalence point - 44.35 ml.

После титрования электроды промывают примерно 5 мл воды, промывные воды сливают в стакан с оттитрованным раствором пектина. Затем к этому раствору приливают 50 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты, стакан с раствором помещают в кипящую водяную баню на 10 мин, охлаждают, фильтруют через бумажный фильтр "синяя лента". Осадок (пектовая кислота) на фильтре промывают водой до отрицательной реакции промывных вод на уксусную и соляную кислоты по универсальному индикатору. Затем осадок с фильтра количественно переносят в стакан с помощью 50 мл 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия и оставляют на 30 мин при периодическом перемешивании до полного растворения, после чего кондуктометрически титруют раствор пектата натрия 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. Результаты кондуктометрического титрования пектата натрия приведены в таблице 11 и на фиг.6. After titration, the electrodes are washed with about 5 ml of water, the wash water is poured into a glass with a titrated pectin solution. Then, 50 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution is added to this solution, the beaker with the solution is placed in a boiling water bath for 10 minutes, cooled, filtered through a blue ribbon paper filter. The precipitate (pectic acid) on the filter is washed with water until the washings react negatively to acetic and hydrochloric acids according to the universal indicator. Then, the filter cake was quantitatively transferred into a beaker using 50 ml of a 0.086 mol / L sodium hydroxide solution and left for 30 minutes with periodic stirring until completely dissolved, after which the sodium pectate solution was conductometric titrated with a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution. The results of conductometric titration of sodium pectate are shown in table 11 and Fig.6.

Как видно из фиг.6, объем титранта - 0,1 моль/л раствора соляной кислоты - в первой точке эквивалентности составил 30,70 мл, во второй точке - 37,05 мл. As can be seen from Fig.6, the titrant volume - 0.1 mol / l hydrochloric acid solution - in the first point of equivalence was 30.70 ml, in the second point - 37.05 ml.

С учетом контрольных опытов при первом титровании пектина объем 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия составил 3,15 мл; при втором титровании 35,25 мл и 44,15 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты, при третьем титровании - 30,50 мл и 36,85 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты. Taking into account control experiments during the first titration of pectin, the volume of 0.086 mol / L sodium hydroxide solution amounted to 3.15 ml; with a second titration of 35.25 ml and 44.15 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution, with a third titration of 30.50 ml and 36.85 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution.

Массовую долю функциональных групп пектина вычисляют по формулам, приведенным в примере 1. The mass fraction of the functional groups of pectin is calculated by the formulas given in example 1.

Figure 00000019

Figure 00000020

Figure 00000021

ω4=43,96-31,37=12,59%,
Figure 00000022

ω5=0,280•17=4,76%,
ω6=31,37-13,38=17,99%,
Figure 00000023

ω7=0,400•32=12,80%,
Figure 00000024

ПРИМЕР 4. К навеске альгиновой кислоты около 0,02 г (точная навеска) приливают 50 мл вода очищенной и перемешивают на магнитной мешалке с нагревом до растворения кислоты. Определение функциональных групп альгиновой кислоты проводят кондуктометрически аналогично примеру 3.
Figure 00000019

Figure 00000020

Figure 00000021

ω 4 = 43.96-31.37 = 12.59%,
Figure 00000022

ω 5 = 0.280 • 17 = 4.76%,
ω 6 = 31.37-13.38 = 17.99%,
Figure 00000023

ω 7 = 0.400 • 32 = 12.80%,
Figure 00000024

EXAMPLE 4. To a weighed sample of alginic acid, about 0.02 g (exact weighed sample) was added 50 ml of purified water and stirred on a magnetic stirrer with heating until the acid was dissolved. The determination of functional groups of alginic acid is carried out conductometrically analogously to example 3.

С учетом контрольных опытов при первом титровании альгиновой кислоты объем 0,086 моль/л раствора гидроксида натрия составил 0,60 мл; при втором титровании 41,10 мл и 43,80 мл 0,1 моль/л раствора соляной кислоты; при третьем титровании - 36,15 мл и 38,45 0,1 моль/л раствора соляной кислоты. Taking into account control experiments during the first titration of alginic acid, the volume of 0.086 mol / L sodium hydroxide solution was 0.60 ml; in the second titration, 41.10 ml and 43.80 ml of a 0.1 mol / L hydrochloric acid solution; in the third titration, 36.15 ml and 38.45 0.1 mol / L hydrochloric acid solution.

Массовую долю функциональных групп альгиновой кислоты рассчитывают по формулам, приведенным в примере 1. The mass fraction of functional groups of alginic acid is calculated by the formulas given in example 1.

Figure 00000025

Figure 00000026

Figure 00000027

ω4=71,55-60,95=10,60%,
Figure 00000028

ω5=0,236•17=4,01%,
ω6=60,95-13,67=47,28%,
Figure 00000029

ω7=1,051•32=33,63%,
Figure 00000030

Таким образом, предлагаемый способ определения массовой доли функциональных групп полиуронидов обеспечивает следующий положительный эффект:
1) количественное определение полиуроновых кислот: в предлагаемом способе после нагревания, осаждения и фильтрации полиуроновых кислот анализ этих кислот проводят не в фильтрате, как предусмотрено по способу, принятому за прототип, а в нерастворимой части путем переведения осадков с помощью гидроксида натрия в раствор и последующего титрования соляной кислотой пектатов или альгинатов натрия. Данные таблицы 5 свидетельствуют о том, что при определении полиуроновых кислот по способу-прототипу при третьем титровании в фильтрате практически нет этих кислот, в то время как при анализе предлагаемым способом (анализ осадков) наблюдается высокое содержание этих кислот;
2) практически полное определение всех функциональных групп полиуроновых кислот при втором титровании, т.к. обеспечивается полное омыление сложноэфирных групп за счет увеличения объема щелочи (до 50 мл) и продолжительности омыления (24 ч), о чем свидетельствуют данные таблицы 5;
3) повышение точности анализа, или понижение погрешности определений в среднем в 2,3 раза за счет использования физико-химических методов анализа (потенциометрия, кондуктометрия) для фиксации точек эквивалентности.
Figure 00000025

Figure 00000026

Figure 00000027

ω 4 = 71.55-60.95 = 10.60%,
Figure 00000028

ω 5 = 0.236 • 17 = 4.01%,
ω 6 = 60.95-13.67 = 47.28%,
Figure 00000029

ω 7 = 1,051 • 32 = 33.63%,
Figure 00000030

Thus, the proposed method for determining the mass fraction of functional groups of polyuronides provides the following positive effect:
1) quantitative determination of polyuronic acids: in the proposed method, after heating, precipitation and filtration of polyuronic acids, the analysis of these acids is carried out not in the filtrate, as provided for by the method adopted for the prototype, but in the insoluble part by transferring the precipitates with sodium hydroxide into solution and subsequent titration with hydrochloric acid of sodium pectates or alginates. The data in table 5 indicate that when determining polyuronic acids by the prototype method, there are practically no these acids in the filtrate during the third titration, while the analysis of the proposed method (precipitation analysis) shows a high content of these acids;
2) almost complete determination of all functional groups of polyuronic acids in the second titration, because full saponification of ester groups is ensured by increasing the alkali volume (up to 50 ml) and the duration of saponification (24 hours), as evidenced by the data in Table 5;
3) increasing the accuracy of the analysis, or lowering the error of the determination by an average of 2.3 times due to the use of physico-chemical methods of analysis (potentiometry, conductometry) to fix the points of equivalence.

Claims (1)

Способ определения массовой доли функциональных групп полиуронидов, включающий растворение пробы в воде, титрование полученного раствора 0,1 молярным раствором гидроксида натрия и фиксирование объема титранта, омыление сложноэфирных групп при добавлении к оттитрованному раствору 0,1 молярного раствора гидроксида натрия и последующей выдержке при комнатной температуре, титрование избытка щелочи 0,1 молярным раствором соляной кислоты и фиксирование объема титранта, добавление к оттитрованному раствору 0,1 молярного раствора соляной кислоты, помещение полученного раствора в кипящую водяную баню на 10 мин с последующим охлаждением и фильтрованием, расчет содержания функциональных групп, исходя из зафиксированных объемов титранта, отличающийся тем, что выдержку раствора при омылении осуществляют в течение 24 ч, после фильтрования осадок промывают до отрицательной реакции промывных вод на уксусную и соляную кислоты по универсальному индикатору с последующим растворением в 0,1 молярном растворе гидроксида натрия в течение 30 мин при периодическом перемешивании и титрованием полученного раствора 0,1 молярным раствором соляной кислоты при фиксировании объема титранта, титрование осуществляют потенциометрически или кондуктометрически с фиксированием объемов титранта по точкам эквивалентности. A method for determining the mass fraction of functional groups of polyuronides, including dissolving the sample in water, titrating the resulting solution with a 0.1 molar solution of sodium hydroxide and fixing the volume of the titrant, saponification of ester groups when adding a 0.1 molar solution of sodium hydroxide to the titrated solution and subsequent exposure at room temperature titration of the alkali excess with a 0.1 molar hydrochloric acid solution and fixing the titrant volume, adding a 0.1 molar hydrochloric acid solution to the titrated solution Then, placing the resulting solution in a boiling water bath for 10 minutes, followed by cooling and filtering, calculating the content of functional groups based on the recorded volumes of titrant, characterized in that the solution is soaked during saponification for 24 hours, after filtration, the precipitate is washed until a negative reaction washing water for acetic and hydrochloric acids according to a universal indicator, followed by dissolution in a 0.1 molar solution of sodium hydroxide for 30 min with periodic stirring and titration the resulting solution with a 0.1 molar solution of hydrochloric acid when fixing the titrant volume, titration is carried out potentiometrically or conductometry with fixing the titrant volumes at equivalence points.
RU2001134132/04A 2001-12-13 2001-12-13 Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides RU2206089C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001134132/04A RU2206089C1 (en) 2001-12-13 2001-12-13 Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001134132/04A RU2206089C1 (en) 2001-12-13 2001-12-13 Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2206089C1 true RU2206089C1 (en) 2003-06-10

Family

ID=29211138

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2001134132/04A RU2206089C1 (en) 2001-12-13 2001-12-13 Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2206089C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009027955A3 (en) * 2007-08-31 2009-04-30 Shannon Minerals Patents Ltd Detoxification composition and method of detoxifying the body

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АБРАСИМОВИЧ В.В., БАЛТАГА С.В., ПОНОМАРЕВА Н.П. Методы анализа пектиновых веществ, гемицеллюлоз и пектолитических ферментов в плодах. - Кишинев: Редакционно-издательский отдел АН Молдавской ССР, 1970, с.38. *
ГОЛУБЕВ В.Н., ШЕЛУХИНА Н.П. Пектин: химия, технология, применение. - М., 1995, с.105-110. КАРАКОЛЕВ Г., ОГНЯНОВ И., МАРИНОВ М. Пектиновые вещества. Химия, производство, приложение. - София: Державно издательство "Наука и искусство", 1956, 154 с. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009027955A3 (en) * 2007-08-31 2009-04-30 Shannon Minerals Patents Ltd Detoxification composition and method of detoxifying the body

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Adeloju et al. Polypyrrole-based potentiometric biosensor for urea part 1. Incorporation of urease
Ueno et al. Colloid titration-A rapid method for the determination of charged colloid
Johnston et al. The solubility of silver oxide in water, in alkali and in alkaline salt solutions. The amphoteric character of silver hydroxide
CN101825579A (en) Method for measuring concentration of polyacrylamide solution
RU2206089C1 (en) Method of determining weight proportion of functional groups of polyuronides
CN101339139A (en) Method for determining anion type polyacrylamide hydrolysis degree
Dilley Determination of anionic-active matter in detergents by potentiometric titration
CN107727715A (en) A kind of content of fluoride ion assay method of soda ash product and bittern
DE112008000740T5 (en) Method for measuring urea concentration and device for measuring urea concentration
Wagner et al. High Frequency Titrations of Organic Bases
CN1025242C (en) Method for monitoring sulfates and other ions at low concentraiton
Gao et al. Determination of trace amounts of copper (I) with a chemically modified carbon paste electrode
Mitchell et al. Standardization of Methodology for Chemical Functions in Starch Dervatives. Part 1
Matsuhisa et al. An improved ion-exchanger colorimetry for the determination of a trace amount of phosphate
CN111007195A (en) Method for detecting aluminum content of electrolyte
Mohadesi et al. Stripping voltammetric determination of copper (II) on an overoxidized polypyrrole functionalized with Nitroso-R
RU2010801C1 (en) Method for quantitatively determining pectins
Van Lamoen et al. Potentiometric method for Karl Fischer titrations
CN116297353A (en) Ferrocene formaldehyde semicarbazide Schiff base specific recognition Cu 2+ And Fe (Fe) 3+
RU2125724C1 (en) Method of determining zinc in water
SU1190249A1 (en) Method of potentiometric determination of iodides
Selig Potentiometric titration of gallium with cetylpyridinium chloride: preliminary results
Reijnders et al. Titrimetry in continuous flow systems
Keirstead et al. Hydrolysis of cellulose acetate sulphate in acetone
CN117250186A (en) Hg is detected to dual wavelength electrochemiluminescence sensor 2+ Is a method of (2)

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20031214