RU2203317C2 - Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке - Google Patents
Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке Download PDFInfo
- Publication number
- RU2203317C2 RU2203317C2 RU2001112390/13A RU2001112390A RU2203317C2 RU 2203317 C2 RU2203317 C2 RU 2203317C2 RU 2001112390/13 A RU2001112390/13 A RU 2001112390/13A RU 2001112390 A RU2001112390 A RU 2001112390A RU 2203317 C2 RU2203317 C2 RU 2203317C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- milk
- grown
- sample
- anthrax
- detection
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано при лабораторном исследовании молока. Пробу смешивают со смесью полимиксина М-сульфата 250 мкг/мл и триметоприма 100-120 мкг/мл в равных пропорциях, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5-5,5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин. Культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, а учет выросших колоний осуществляют в парах аммиака. Способ обеспечивает повышение надежности обнаружения возбудителя сибирской язвы в молоке. 2 табл.
Description
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано при лабораторном исследовании молока, контаминированного возбудителем сибирской язвы (Bacillus anthracis) или подозрительного на зараженность.
Сложность бактериологического исследования молока связана с тем, что оно само является прекрасной питательной средой для большинства микроорганизмов, в том числе и спорообразующих сапрофитов, которые попадают в молоко во время доения.
В последнее время при выявлении возбудителя сибирской язвы в объектах внешней среды (пробы почв, корма, шерсть и т.п.), контаминированного примесями сопутствующей микрофлоры, в том числе спорообразующими сапрофитами, успешно используется для культивирования проб дифференциально-диагностическая среда, содержащая питательный агар, ингибиторы роста посторонней микрофлоры (смесь полимиксина с триметопримом) и индикатор фенолфталеинфосфат натрия в количестве 0,01% на 1 мл среды. Эта среда (без фенолфталеинфосфата натрия) в сухом виде выпускается ФГУП "Аллерген" (Буравцева Н.П. Ярощук В.А. Ускоренный метод обнаружения возбудителя сибирской язвы в исследуемом материале // Методические рекомендации. - М., 1989).
Однако использование этой среды при лабораторном исследовании молока, контаминированного малыми концентрациями микробных палочек В.anthracis (1-10 м.к./мл молока), оказалось малоэффективным.
Наиболее близким по назначению является способ обнаружения микробов в молоке с помощью высева пробы в питательные среды (Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования, под ред. М.О. Биргера// М. : Медицина, 1982. - С.422-428). Способ предусматривает смешивание исследуемых проб в различных разведениях с питательной средой, в качестве которой применяют питательный агар с 1% глюкозы на основе из смеси панкреотического перевара молока, мяса или казеина и дрожжевого аутолизата (в отношении 3:1), культивирование смеси при 30-32oС в течение 3-х сут с последующим учетом образовавшихся колоний.
Способ оказался неэффективным при обнаружении возбудителя сибирской язвы, особенно, когда он находится в пробе в малых концентрациях.
Техническим результатом изобретения является повышение надежности обнаружения возбудителя сибирской язвы в молоке, подозрительного на зараженность или контаминированного возбудителем инфекции.
Указанный технический результат достигается тем, что исследуемую пробу предварительно перед посевом смешивают со смесью полимиксина М-сульфат 250 мкг и триметоприма 100-120 мкг в равных пропорциях на 1 мл молока, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5,0-5,5 тыс.об/мин. Культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, учет и дифференциацию выросших колоний проводят в парах аммиака.
По отношению к прототипу заявляемый способ имеет следующие отличительные признаки.
Добавление в исследуемую пробу смеси полимиксина М-сульфата 250 мкг и триметоприма 100-120 мкг в равных пропорциях на 1 мл молока, подращивание смеси в течение 4-6 ч при 37oС. Этот прием обеспечивает ингибирование сапрофитов.
Центрифугирование исследуемой пробы при 5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин необходимо и достаточно для концентрирования микроорганизмов, при этом микроорганизмы переходят в верхний слой, в среднем слое микробов практически не остается.
Культивирование подращенной пробы на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС. Использование дифференциально-диагностической среды, содержащей питательный агар, проверенный на рост сибиреязвенного микроба, и ингибиторы роста сапрофитов обеспечивает достаточно быстрое культивирование возбудителя сибирской язвы при его содержании в исследуемой пробе менее 10 м.кл./мл молока. Учет образования колоний в парах аммиака обеспечивает четкую дифференциацию колоний сибиреязвенного микроба от близкородственных спорообразующих сапрофитов.
Возможность практического использования заявленного способа иллюстрируется примерами конкретного выполнения.
Пример 1. В пробы молока (100 мл) вносили споры и вегетативные палочки 4-х штаммов В. anthracis (81/1, 1 СО, 71/12, 3БК2 ) в таком количестве, чтобы конечная концентрация была 100 и 1000 м.кл на 1 мл молока. Затем часть проб оставляли отстаиваться при комнатной температуре в течение 18 ч, другую часть проб после добавления микробов и смешивания центрифугировали при 5000 тыс. об/мин в течение 30 мин. С помощью пипетки отбирали молоко (1 мл) для лабораторного исследования из верхнего, среднего слоя и из осадка. Посев производили на дифференциально-диагностическую среду по 0,1 мл. С помощью шпателя пробу тщательно втирали в агар и культивировали посевы при 37oС в течение 18 ч. Чашки Петри с выросшими колониями визуально просматривали и в случае наличия подозрительных на рост колоний сибиреязвенного микроба обрабатывали их парами аммиака. С этой целью в крышки от чашки Петри помещали фильтровальную бумагу, которую смачивали водным аммиаком, после этого на несколько секунд помещали на фильтровальную бумагу чашку с выросшими колониями. Под действием паров аммиака колонии сапрофитов изменяли свой цвет и становились розовыми, колонии сибиреязвенного микроба не изменяли своего цвета. Результаты приведены в таблице 1.
Как видно из таблицы 1, концентрирование микробов в молоке в верхнем слое в большей степени происходит при центрифугировании, при этом сроки исследования молока сокращались на сутки, т.к. методом отстаивания необходимо было выдерживать сроки до 18 ч.
Пример 2. Пробы молока с содержанием различных концентраций спор и вегетативных палочек B.anthracis от 1 до 1000 м.кл./мл молока исследовали в лабораторных условиях. В каждую пробу (100 мл) молока после добавления определенной концентрации возбудителя (спор или палочек) добавляли смесь полимиксина и триметоприма, 250 и 100 мкг на 1 мл молока соответственно, перемешивали и помещали в термостат при 37oС на 5 ч. Затем пробу центрифугировали при 5,0 тыс.об/мин, после чего верхний слой молока (1 мл) высевали по 0,1 мл на чашки с дифференциально-диагностической средой. С помощью шпателя пробу тщательно втирали в агар и культивировали посевы при 37oС в течение 18 ч. Чашки Петри с выросшими колониями визуально просматривали и в случае наличия подозрительных на рост колоний сибиреязвенного микроба обрабатывали их парами аммиака. С этой целью в крышки от чашки Петри помещали фильтровальную бумагу, которую смачивали водным аммиаком, после этого на несколько секунд помещали на фильтровальную бумагу чашку с выросшими колониями. Под действием паров аммиака колонии сапрофитов изменяли свой цвет и становились розовыми, колонии сибиреязвенного микроба не изменяли своего цвета. Параллельно высевали контрольные пробы без предварительного подращивания и концентрирования. Результаты приведены в таблице 2.
Из данных таблицы 2 видно, что при предварительном подращивании микроба сибирской язвы с полимиксином и триметопримом и последующем центрифугировании удается выделить единичные особи возбудителя в то время, как при посеве только на дифференциально-диагностическую среду высевается лишь 20 часть внесенных в пробу микробов.
При исследовании молока, подозрительного на загрязненность сибиреязвенным микробом, в лабораторных условиях необходимо соблюдать все меры предосторожности, предусмотренные правилами режима работы с особо опасными инфекциями (Санитарные правила "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности". М., 1994, - 151 с.). Центрифугирование можно проводить только в центрифужных стаканах с плотно завинчивающимися пробками, обеспечивающими надежность защиты от попадания сибиреязвенного микроба в окружающую среду.
Заявляемый способ был испытан в лабораторных исследованиях молока во время эпизоотии сибирской язвы среди коров в Красногвардейском районе Ставропольского края в 1996г.
Таким образом, заявляемый способ может найти широкое применение не только в лабораторных исследованиях молока, но и при эпизоотологическом мониторинге неблагополучных по сибирской язве регионах.
Claims (1)
- Способ обнаружения Bacillus anthracis в молоке, включающий культивирование исследуемой пробы с последующим учетом выросших колоний, отличающийся тем, что исследуемую пробу предварительно смешивают со смесью полимиксина М-сульфата 250 мкг/мл и триметоприма 100-120 мкг/мл в равных пропорциях, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5-5,5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин, культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, а учет выросших колоний осуществляют в парах аммиака.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) | 2001-05-04 | 2001-05-04 | Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) | 2001-05-04 | 2001-05-04 | Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2203317C2 true RU2203317C2 (ru) | 2003-04-27 |
RU2001112390A RU2001112390A (ru) | 2003-05-10 |
Family
ID=20249352
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) | 2001-05-04 | 2001-05-04 | Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2203317C2 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7951913B2 (en) | 2006-06-02 | 2011-05-31 | Biotika A.S. | Method of polymyxin B recovery from fermentation broth |
US8119371B2 (en) | 2006-06-15 | 2012-02-21 | Biotika A.S. | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa |
-
2001
- 2001-05-04 RU RU2001112390/13A patent/RU2203317C2/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
БИРГЕР М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, с.422-428. ПРОСКУРИНА В.А. и др. Определение чувствительности сибиреязвенного микроба к антибиотикам для дифференциации от спрообразующих сапрофитов. - Антибиотики и химиотерапия, 1992, т.37, № 2, с.23-25. СИДОРОВ М.А. и др. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: Колос, 1995, с.105-108. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7951913B2 (en) | 2006-06-02 | 2011-05-31 | Biotika A.S. | Method of polymyxin B recovery from fermentation broth |
US8119371B2 (en) | 2006-06-15 | 2012-02-21 | Biotika A.S. | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5627045A (en) | Multi-test format with gel-forming matrix for characterization of microorganisms | |
AU609794B2 (en) | A test set and a process for the determination of antibiotics in milk and a novel streptococcus thermophilus strain to be used therein | |
US8828682B2 (en) | Methods and articles for detecting hemolytic microorganisms | |
EP2245179B1 (en) | Method and medium for detecting the presence or absence of staphylococcus aureus in a test sample | |
Yagupsky et al. | Comparison of BACTEC 9240 Peds Plus medium and isolator 1.5 microbial tube for detection of Brucella melitensis from blood cultures | |
US4421849A (en) | Method for biological screening | |
Donnison | Isolation of thermotolerant Campylobacter–Review & methods for New Zealand laboratories | |
RU2203317C2 (ru) | Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке | |
Feeley | Isolation techniques for Yersinia enterocolitica | |
US20180274005A1 (en) | Cord blood therapy to treat chronic disease caused by l-form bacteria | |
Doern et al. | Screening for bacteriuria with the LN strip test | |
WO1988008037A1 (en) | Method for the detection of bacteria and fungi | |
WO2008002156A1 (en) | Mastitis and bacterial detection media | |
Atanda et al. | Microbiological quality of nono | |
Tortorello et al. | Rapid identification of Escherichia coli O157: H7 in bovine feces using the antibody-direct epifluorescent filter technique (Ab-DEFT) | |
RU2786394C1 (ru) | СПОСОБ СНИЖЕНИЯ УРОВНЯ КОНТАМИНАЦИИ КЛИНИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ПРИ ПОСЕВЕ НА ПЛОТНЫЕ ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ Mycobacterium tuberculosis complex | |
RU2063030C1 (ru) | Способ определения ингибирующих веществ в молоке | |
Mistry et al. | Microbial analysis of water system for veterinary vaccine manufacturing facility | |
RU2125610C1 (ru) | Плотная питательная среда для выявления возбудителя сибирской язвы | |
Hadke et al. | Anti-Microbial Activity of Antibiotic Produced From Fungi by Fermentation Process. | |
Maroff | Determination of the inhibitory activity of some biological extracts agaiast multi rrsistans antibiotic Staphylococcus specis which and isolated from different sources of infechtion | |
RU2238316C2 (ru) | Способ определения гемолитической активности и ее типа у b.anthracis | |
RU2267537C2 (ru) | Питательная среда для микробиологического исследования крови | |
RU2154105C1 (ru) | Способ количественной оценки содержания бифидобактерий в смешанных культурах микроорганизмов | |
Yeboah-Manu et al. | Primary Isolation of Mycobacterium ulcerans |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20030505 |