RU2178171C1 - Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material - Google Patents
Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material Download PDFInfo
- Publication number
- RU2178171C1 RU2178171C1 RU2000119999A RU2000119999A RU2178171C1 RU 2178171 C1 RU2178171 C1 RU 2178171C1 RU 2000119999 A RU2000119999 A RU 2000119999A RU 2000119999 A RU2000119999 A RU 2000119999A RU 2178171 C1 RU2178171 C1 RU 2178171C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- medium
- bacteria
- genus lactobacillus
- agar
- clinical material
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Fodder In General (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано для селективного выделения бактерий рода Lactobacillus из клинического материала (фекалий, вагинального отделяемого). The invention relates to medical microbiology and can be used for the selective isolation of bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material (feces, vaginal discharge).
Бактерии рода Lactobacillus широко распространены в природе. Они являются типичными представителями нормальной микрофлоры организма человека и животных, содержатся во многих пищевых продуктах (молочных, мясных, растительных). Bacteria of the genus Lactobacillus are widespread in nature. They are typical representatives of the normal microflora of the human and animal body, found in many foods (dairy, meat, vegetable).
Известно, что бактерии рода Lactobacillus являются доминирующей флорой влагалища человека. Существует тесная взаимосвязь между состоянием микрофлоры родовых путей беременных и формированием эубиотической микрофлоры кишечника ребенка в неонатальном периоде. При возникновении ряда акушерско-гинекологических заболеваний как инфекционной, так и не инфекционной природы, формируются выраженные нарушения резидентной вагинальной микрофлоры. Бактериальный вагиноз, сопровождающийся резкими изменениями лактофлоры, в настоящее время рассматривается как дисбактериоз влагалища. В диагностике дисбактериоза кишечника и влагалища одним из критериев дисбактериоза служит содержание бактерий рода Lactobacillus. При проведении бактериотерапии дисбактериозов содержание бактерий рода Lactobacillus служит показателем нормализации микрофлоры. Bacteria of the genus Lactobacillus are known to be the dominant flora of the human vagina. There is a close relationship between the state of the microflora of the birth canal of pregnant women and the formation of eubiotic microflora of the intestines of the child in the neonatal period. In the event of a number of obstetric and gynecological diseases of both infectious and non-infectious nature, pronounced disorders of resident vaginal microflora are formed. Bacterial vaginosis, accompanied by abrupt changes in lactoflora, is currently regarded as vaginal dysbiosis. In the diagnosis of intestinal and vaginal dysbiosis, one of the criteria for dysbiosis is the content of bacteria of the genus Lactobacillus. When conducting bacteriotherapy of dysbiosis, the content of bacteria of the genus Lactobacillus serves as an indicator of the normalization of microflora.
В связи с тем, что перед проведением антибиотикотерапии лечащий врач должен знать, влияет ли выбранный для лечения препарат на состояние индигенной лактофлоры пациента, необходимо определение чувствительности к антибиотикам индигенных бактерий рода Lactobacillus, а для этого нужен способ выделения их из клинического материала. Due to the fact that before conducting antibiotic therapy, the attending physician must know whether the drug chosen for treatment affects the patient’s indigenous lactoflora, it is necessary to determine the sensitivity of the indigenous bacteria of the genus Lactobacillus to antibiotics, and this requires a way to isolate them from the clinical material.
Кроме того, в тех случаях, когда содержание индигенных бактерий рода Lactobacillus у пациента ниже нормы (Дисбактериоз кишечника и методы его лабораторной диагностики. - Метод. рекомендации. - Хабаровск. - 1987), ему проводят заместительную бактериотерапию эубиотическими штаммами бактерий рода Lactobacillus. Однако применение эубиотических штаммов не всегда бывает эффективным. Известно, что экзогенные бактерии рода Lactobacillus не всегда приживаются в организме хозяина. Это связано с тем, что среди бактерий рода Lactobacillus широко распространен межвидовой и даже внутривидовой антагонизм, они могут оказывать повреждающее действие на индигенную микрофлору, или наоборот, аутофлора может подавлять развитие эубиотика, что снижает его лечебный эффект (Коршунов В. М. , Смеянов В. В. , Ефимов Б. А. Рациональные подходы к проблеме коррекции микрофлоры кишечника //Вести. Рос. АМН, - 1996. - 2. - С. 60-65). В связи с этим, необходимо каждому пациенту до начала бактериотерапии определять биосовместимость эубиотических бактерий рода Lactobacillus с аутолактофлорой, а для этого необходим простой и доступный для осуществления в бактериологических лабораториях способ выделения бактерий рода Lactobacillus из клинического материала. In addition, in cases where the content of indigenous bacteria of the genus Lactobacillus in a patient is below normal (Dysbacteriosis of the intestine and methods of its laboratory diagnosis. - Method. Recommendations. - Khabarovsk. - 1987), he is given bacterial replacement therapy with eubiotic strains of bacteria of the genus Lactobacillus. However, the use of eubiotic strains is not always effective. It is known that exogenous bacteria of the genus Lactobacillus do not always take root in the host organism. This is due to the fact that interspecific and even intraspecific antagonism is widespread among bacteria of the genus Lactobacillus, they can have a damaging effect on indigenous microflora, or vice versa, autoflora can inhibit the development of eubiotics, which reduces its therapeutic effect (Korshunov V.M., Smeyanov V V., Efimov B. A. Rational approaches to the problem of correction of intestinal microflora // News. Ros. AMN, - 1996. - 2. - P. 60-65). In this regard, before each bacteriotherapy, each patient must determine the biocompatibility of eubiotic bacteria of the genus Lactobacillus with autolactoflora, and this requires a simple and accessible method for isolating bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material in bacteriological laboratories.
Выделение чистой культуры бактерий рода Lactobacillus из клинического материала (фекалий, вагинального отделяемого) необходимо и для получения аутоштамма, на основе которого затем изготавливают бактерийный препарат для восстановления индигенной лактофлоры конкретного пациента. Считают, что применение аутоштаммов является наиболее оптимальным способом восстановления индигенной микрофлоры после антибиотикотерапии. Isolation of a pure culture of bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material (feces, vaginal discharge) is also necessary to obtain an auto-strain, on the basis of which a bacterial preparation is then made to restore the indigenous lactoflora of a particular patient. It is believed that the use of auto-strains is the most optimal way to restore indigenous microflora after antibiotic therapy.
В настоящее время известно множество питательных сред, применяемых для культивирования лактобацилл, однако не все они пригодны для выделения лактобацилл из клинического материала, содержащего сопутствующую бактериальную флору. Главным образом, известные питательные среды предназначены для накопления биомассы лактобацилл и бифидобактерий. Currently, there are many nutrient media used for the cultivation of lactobacilli, but not all of them are suitable for the isolation of lactobacilli from clinical material containing concomitant bacterial flora. Mostly, known nutrient media are intended for the accumulation of biomass of lactobacilli and bifidobacteria.
Так, питательная среда для культивирования бифидобактерий и лактобацилл "Эпидермат" имеет следующее соотношение компонентов, г/л: 20,0-25,0 ферментативного гидролизата строжки шкур ластоногих или шкур плодов крупного рогатого скота с конечной концентрацией аминного азота 100-140 мг%; 9,5-10,0 лактозы; 4,5-5,5 натрия хлористого; 0,0025-0,0030 триптофана, 0,65-0,70 агара; воды до 1 литра (Ермишина И. Г. , Власова Т. Ф. RU 2039814; Б. И. 20, 20.07.95). So, the nutrient medium for the cultivation of bifidobacteria and lactobacilli "Epidermate" has the following ratio of components, g / l: 20.0-25.0 enzymatic hydrolyzate for gouging skins of pinnipeds or skins of cattle fruit with a final concentration of amine nitrogen of 100-140 mg%; 9.5-10.0 lactose; 4.5-5.5 sodium chloride; 0.0025-0.0030 tryptophan, 0.65-0.70 agar; water up to 1 liter (Ermishina I.G., Vlasova T.F. RU 2039814; B.I. 20, 07.20.95).
Недостатком данной среды является то, что она не обладает ингибирующими свойствами по отношению к микроорганизмам, присутствующем в клиническом материале (энтеробактериям, стафилококкам) и может использоваться только для накопления чистой культуры лактобацилл и бифидобактерий в пищевой промышленности и производстве препаратов-эубиотиков. The disadvantage of this medium is that it does not have inhibitory properties against microorganisms present in the clinical material (enterobacteria, staphylococci) and can only be used to accumulate a pure culture of lactobacilli and bifidobacteria in the food industry and the production of eubiotics.
Известна питательная среда для выращивания микроорганизмов, состоящая из следующих компонентов, г/л: 0,14-0,16 панкреатического гидролизата казеина; 4,5-5,5 экстракта пекарских дрожжей; 19-21 лактозы; 0,15-0,25 цистина; 0,15-0,25 MgSO4•7Н2О; 0,04-0,06 MnSO4•4H2O; 0,4-0,6 аскорбиновой кислоты; водопроводной воды до 1 литра (Вашурин О. А. , Якшина Т. В. , Краснова С. П. и др. RU 2027754; Б. И. 3, 27.01.95).A known nutrient medium for growing microorganisms, consisting of the following components, g / l: 0.14-0.16 casein pancreatic hydrolyzate; 4.5-5.5 baker's yeast extract; 19-21 lactose; 0.15-0.25 cystine; 0.15-0.25 MgSO 4 • 7H 2 O; 0.04-0.06 MnSO 4 • 4H 2 O; 0.4-0.6 ascorbic acid; tap water up to 1 liter (Vashurin O.A., Yakshina T.V., Krasnova S.P. et al. RU 2027754; B.I. 3, 01.27.95).
Недостатком данной питательной среды является многокомпонентность состава, трудоемкость приготовления панкреатического гидролизата казеина, который необходимо подвергать ультрафильтрации на мембране, что требует сложного аппаратурного оформления. Применяемая концентрация панкреатического гидролизата казеина (0,14-0,16 г/л) в качестве источника питательных веществ недостаточна для культивирования лактобацилл, что компенсируется большим расходом лактозы (19-21 г/л) и добавками - витаминными (экстрактом пекарских дрожжей, цистином, аскорбиновой кислотой) и минеральными (MgSO4•7Н2О; MnSO4•4Н2О).The disadvantage of this nutrient medium is the multicomponent composition, the complexity of preparing pancreatic casein hydrolyzate, which must be subjected to ultrafiltration on the membrane, which requires complex hardware design. The applied concentration of casein pancreatic hydrolyzate (0.14-0.16 g / l) as a source of nutrients is insufficient for the cultivation of lactobacilli, which is offset by a large consumption of lactose (19-21 g / l) and vitamin supplements (baker's yeast extract, cystine , ascorbic acid) and mineral (MgSO 4 • 7Н 2 О; MnSO 4 • 4Н 2 О).
Наиболее близким к заявляемому является способ выделения бактерий рода Lactobacillus из клинического материала путем приготовления 10-ти кратных разведений в жидкой селективной питательной среде обогащения для лактобацилл при следующем соотношении компонентов: гидролизата обезжиренного молока жидкого 20±5%; аутолизата дрожжей концентрированного 10±2%; агара технического 0,08%; воды дистиллированной до 100%; рН среды 5,4±0,1. Культивирование посевов осуществляют при 39oС в течение 24-48 часов при повышенном содержании углекислого газа (5%) и пониженной концентрации кислорода (16%), а затем выделяют лактобациллы из жидкой селективной питательной среды обогащения высевом на плотную селективную питательную среду при следующем соотношении компонентов, г/л: 150-250 гидролизата обезжиренного молока жидкого; 80-120 аутолизата дрожжей концентрированного; 20 агара; воды дистиллированной до 1 литра; рН среды 5,3-5,5; культивирование посевов проводят при 39oС в течение 24-48 часов при повышенном содержании углекислого газа (5%) и пониженной концентрации кислорода (16%) (Глушанова Н. А. Лактобациллы в исследовании и коррекции резидентной микрофлоры человека: Автореф. . . дис. канд. мед. наук. - Челябинск, 1999. - С. 7). Недостатком данного способа является длительность и трудоемкость приготовления панкреатического гидролизата обезжиренного молока (Инструкция по приготовлению кисломолочного бифилакта на молочных кухнях 11-14/6-33. - Утв. 27.03.87. МЗ СССР. - М, 1987. - С. 11).Closest to the claimed is a method for isolating bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material by preparing 10-fold dilutions in a liquid selective nutrient enrichment medium for lactobacilli in the following ratio of components: hydrolyzed skim milk liquid 20 ± 5%; yeast autolysate concentrated 10 ± 2%; technical agar 0.08%; distilled water up to 100%; pH of the medium is 5.4 ± 0.1. Cultivation of crops is carried out at 39 o C for 24-48 hours with a high content of carbon dioxide (5%) and a low oxygen concentration (16%), and then lactobacilli are isolated from a liquid selective nutrient culture medium by inoculation into a dense selective nutrient medium in the following ratio components, g / l: 150-250 hydrolyzate of skim milk liquid; 80-120 yeast autolysate concentrated; 20 agar; distilled water up to 1 liter; pH of the medium is 5.3-5.5; cultivation of crops is carried out at 39 o C for 24-48 hours with a high content of carbon dioxide (5%) and a low oxygen concentration (16%) (Glushanova N.A. Lactobacilli in the study and correction of resident microflora of a person: Abstract. Candidate of Medical Sciences .-- Chelyabinsk, 1999. - P. 7). The disadvantage of this method is the duration and the complexity of the preparation of pancreatic hydrolyzate of skim milk (Instructions for the preparation of sour milk bifilact in dairy kitchens 11-14 / 6-33. - Approved. 03.27.87. MH USSR. - M, 1987. - P. 11).
Задача изобретения - создание более простой по технологии приготовления селективной питательной среды для выделения бактерий рода Lactobacillus из клинического материала (фекалий, вагинального отделяемого). The objective of the invention is the creation of a simpler technology for the preparation of selective nutrient medium for the isolation of bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material (feces, vaginal discharge).
Поставленная задача достигается тем, что осуществляют накопление бактерий рода Lactobacillus из клинического материала при 39oС на жидкой селективной питательной среде обогащения следующего состава, г/л:
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,0±10,0
Агар - 0,8
Вода дистиллированная - До 1 литра
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1,
а затем проводят выделение лактобацилл на плотной селективной питательной среде при следующем соотношении компонентов среды, г/л:
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,0±10,0
Агар - 22,5±2,5
Вода дистиллированная - До 1 литра
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1,
а культивирование посевов осуществляют при температуре 39oС.The problem is achieved by the fact that they carry out the accumulation of bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material at 39 o C on a liquid selective nutrient enrichment medium of the following composition, g / l:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.0 ± 10.0
Agar - 0.8
Distilled water - Up to 1 liter
A solution of sodium hydroxide 20% to a pH of 5.4 ± 0.1,
and then lactobacilli are isolated on a dense selective nutrient medium in the following ratio of medium components, g / l:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.0 ± 10.0
Agar - 22.5 ± 2.5
Distilled water - Up to 1 liter
A solution of sodium hydroxide 20% to a pH of 5.4 ± 0.1,
and the cultivation of crops is carried out at a temperature of 39 o C.
Новизна заявляемого способа состоит в том, что выделение бактерий рода Lactobacillus производят в два этапа при сочетании нескольких факторов: низкого значения рН среды (5,3-5,5), оптимального соотношения компонентов питательной среды, повышенной температуре инкубации (39oС), культивировании посевов в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа, 16% кислорода, обеспечивающих ускоренный рост бактерий рода Lactobacillus, обитающих в организме человека, и одновременно ингибирующих развитие сопутствующей микрофлоры, адаптированной к нейтральному значению рН (7,0), температуре 37oС и аэробным условиям. Развитие сопутствующей облигатной анаэробной микрофлоры в таких условиях невозможно.The novelty of the proposed method lies in the fact that the isolation of bacteria of the genus Lactobacillus is carried out in two stages with the combination of several factors: low pH (5.3-5.5), optimal ratio of the components of the nutrient medium, increased incubation temperature (39 o C), cultivation of crops in an atmosphere containing 5% carbon dioxide, 16% oxygen, which ensure the accelerated growth of bacteria of the genus Lactobacillus that live in the human body and at the same time inhibit the development of concomitant microflora adapted to a neutral pH value (7 , 0), a temperature of 37 o C and aerobic conditions. The development of concomitant obligate anaerobic microflora in such conditions is impossible.
Сущность способа заключается в следующем:
Выделение бактерий рода Lactobacillus из клинического материала (фекалий, вагинального отделяемого), осуществляют в два этапа. Первый этап заключается в приготовлении серии 10-ти кратных разведений исследуемого материала в жидкой селективной питательной среде обогащения для накопления лактобацилл, следующего состава:
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,04±10,0
Агар - 0,8
Вода дистиллированная - До 1 литра
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1
Разведения делают в пробирках, содержащих по 4,5 мл жидкой селективной питательной среды обогащения при помощи автоматического дозатора со съемными наконечниками, путем перенесения из пробирки в пробирку по 0,5 мл. Титрование по 0,5 мл производят до 10-8-10-10. После титрования посевы инкубируют в течение 24 часов при повышенном содержании углекислого газа (5%) и пониженной концентрации кислорода (16%) в атмосфере культивирования при температуре 39oС. Результат учитывают визуально, по наличию общего помутнения среды или росту изолированных колоний. Затем из пробирок с наличием роста готовят мазки, окрашивают по Граму. Отмечают последнее разведение, где был обнаружен рост характерных по морфологии грамположительных палочек. Титр лактобацилл (количество бактерий рода Lactobacillus в 1 г клинического материала) определяют по максимальному разведению, в котором обнаружены типичные грамположительные палочки. Отмечают пробирки с разведениями клинического материала, в которых обнаружен обильный рост бактерий рода Lactobacillus.The essence of the method is as follows:
Isolation of bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material (feces, vaginal discharge) is carried out in two stages. The first stage consists in preparing a series of 10-fold dilutions of the test material in a liquid selective nutrient enrichment medium for the accumulation of lactobacilli, of the following composition:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.04 ± 10.0
Agar - 0.8
Distilled water - Up to 1 liter
A solution of caustic soda 20% to a pH of 5.4 - 0.1
Dilutions are made in tubes containing 4.5 ml of liquid selective nutrient enrichment medium using an automatic dispenser with removable tips, by transferring 0.5 ml from the tube to the tube. Titration of 0.5 ml is carried out up to 10 -8 -10 -10 . After titration, the crops are incubated for 24 hours at a high content of carbon dioxide (5%) and a low oxygen concentration (16%) in the cultivation atmosphere at a temperature of 39 o C. The result is taken into account visually, by the presence of a general turbidity of the medium or the growth of isolated colonies. Then, smears are prepared from tubes with growth, stained according to Gram. The last breeding is noted, where the growth of gram-positive rods characteristic of morphology was detected. The titer of lactobacilli (the number of bacteria of the genus Lactobacillus in 1 g of clinical material) is determined by the maximum dilution in which typical gram-positive bacilli are found. Tubes with dilutions of clinical material were noted in which abundant growth of bacteria of the genus Lactobacillus was detected.
Затем проводят второй этап - выделение лактобацилл на плотной селективной питательной среде. Для этого из пробирок с разведениями клинического материала, в которых обнаружен обильный рост бактерий рода Lactobacillus, осуществляют посев бактериологической петлей на поверхность плотной селективной питательной среды для получения изолированных колоний. Плотная селективная питательная среда имеет следующий состав, г/л:
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,0±10,0
Агар - 22,5±2,5
Вода дистиллированная - До 1 литра
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1
Культивирование посевов осуществляют при 39oС в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа, 16% кислорода, в течение 24-48 часов.Then, the second stage is carried out - the isolation of lactobacilli in a dense selective nutrient medium. To do this, from tubes with dilutions of clinical material in which abundant growth of bacteria of the genus Lactobacillus was detected, a bacteriological loop is sown on the surface of a dense selective nutrient medium to obtain isolated colonies. Dense selective nutrient medium has the following composition, g / l:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.0 ± 10.0
Agar - 22.5 ± 2.5
Distilled water - Up to 1 liter
A solution of caustic soda 20% to a pH of 5.4 - 0.1
Cultivation of crops is carried out at 39 o C in an atmosphere containing 5% carbon dioxide, 16% oxygen, for 24-48 hours.
В условиях первого этапа культивирования на жидкой селективной среде происходит накопление бактерий рода Lactobacillus за счет их ускоренного роста и ингибирования роста сопутствующей микрофлоры при культивировании в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода в течение 24 часов при температуре 39oС. Лактобациллы, обитающие в организме человека в составе индигенной микрофлоры, являются термофильными и хорошо растут при 39oС. Бактерии рода Lactobacillus являются факультативными анаэробами, поэтому растут в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа, 16% кислорода. Для получения атмосферы культивирования, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода, посевы помещают в герметически закрывающуюся емкость (анаэростат, эксикатор), зажигают свечу и плотно закрывают.In the conditions of the first stage of cultivation on a liquid selective medium, the accumulation of bacteria of the genus Lactobacillus occurs due to their accelerated growth and inhibition of the growth of concomitant microflora when cultured in an atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen for 24 hours at a temperature of 39 o C. Lactobacilli, living in the human body as part of indigenous microflora, are thermophilic and grow well at 39 o C. Bacteria of the genus Lactobacillus are facultative anaerobes, therefore, grow in an atmosphere containing 5% carbon dioxide logo of gas, 16% oxygen. To obtain a cultivation atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen, the crops are placed in a hermetically sealed container (anaerostat, desiccator), a candle is lit and tightly closed.
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный (Нижегородского государственного предприятия по производству бактерийных препаратов "ИмБио", содержание аминного азота 1485 мг%) в количестве 27,0-33,0 г/л является источником азота. Ледяная уксусная кислота (ГОСТ 61-75) в количестве 3,3-3,5 г/л обеспечивает подавление сопутствующей микрофлоры, не препятствуя размножению лактобацилл. Дрожжевой аутолизат концентрированный (содержание аминного азота 580-600 мг%) в количестве 100,0-120,0 г на 1 литр среды служит стимулятором роста и источником пластических веществ, способствующих регенерации лактобацилл, поврежденных действием селективных факторов (рН 5,4±0,1, уксусная кислота). The skim milk milk hydrolyzate is enzymatic (Nizhny Novgorod state enterprise for the production of bacterial preparations "ImBio", the content of amine nitrogen 1485 mg%) in an amount of 27.0-33.0 g / l is a source of nitrogen. Glacial acetic acid (GOST 61-75) in an amount of 3.3-3.5 g / l provides suppression of concomitant microflora, without interfering with the reproduction of lactobacilli. Concentrated yeast autolysate (amine nitrogen content 580-600 mg%) in an amount of 100.0-120.0 g per 1 liter of medium serves as a growth promoter and a source of plastic substances that promote the regeneration of lactobacilli damaged by selective factors (pH 5.4 ± 0 , 1, acetic acid).
Указанные количества гидролизата обезжиренного молока сухого ферментативного и дрожжевого аутолизата позволяют получить концентрацию аминного азота в питательной среде от 100 до 130 мг%, что обеспечивает чувствительность (всхожесть) среды. The indicated amounts of skim milk hydrolyzate of dry enzymatic and yeast autolysate make it possible to obtain a concentration of amine nitrogen in the nutrient medium from 100 to 130 mg%, which ensures the sensitivity (germination) of the medium.
Использование в заявляемом способе 0,8 г/л агара повышает вязкость среды, что позволяет получить рост изолированных колоний бактерий рода Lactobacillus в столбике среды, а также уменьшает растворимость кислорода в толще среды. В тоже время, 0,8 г/л агара в питательной среде не затрудняет приготовление разведений. Using in the inventive method 0.8 g / l agar increases the viscosity of the medium, which allows to obtain the growth of isolated colonies of bacteria of the genus Lactobacillus in the column of the medium, and also reduces the solubility of oxygen in the thickness of the medium. At the same time, 0.8 g / l of agar in the medium does not complicate the preparation of dilutions.
Установление значения рН среды в пределах 5,3-5,5 в сочетании с заявляемым составом обеспечивает подавление сопутствующей микрофлоры, не угнетая при этом роста засеянных лактобацилл. Культивирование посевов при 39oС в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа, 16% кислорода обеспечивает ускорение роста колоний лактобацилл, одновременно задерживая рост сопутствующей микрофлоры при исследовании клинического материала. Атмосфера такого газового состава может быть получена при помощи анаэростата и свечи. Сопутствующая индигенная анаэробная микрофлора в таких условиях не растет, из представителей аэробной микрофлоры, в указанных условиях возможен рост энтерококков и грибов рода Candida.Setting the pH of the medium in the range of 5.3-5.5 in combination with the claimed composition ensures the suppression of concomitant microflora, without inhibiting the growth of seeded lactobacilli. The cultivation of crops at 39 o C in an atmosphere containing 5% carbon dioxide, 16% oxygen provides accelerated growth of colonies of lactobacilli, while delaying the growth of concomitant microflora in the study of clinical material. The atmosphere of such a gas composition can be obtained using an anaerostat and a candle. The concomitant indigenous anaerobic microflora does not grow under such conditions; among representatives of aerobic microflora, under these conditions, the growth of enterococci and fungi of the genus Candida is possible.
Введение в состав среды 20,0-25,0 г агара на 1 литр позволяет получить плотную селективную питательную среду для выделения изолированных колоний лактобацилл, что дает возможность выделения чистой культуры бактерий рода Lactobacillus для дальнейшего изучения. The introduction of 20.0-25.0 g of agar per liter into the medium makes it possible to obtain a dense selective nutrient medium for isolation of isolated colonies of lactobacilli, which makes it possible to isolate a pure culture of bacteria of the genus Lactobacillus for further study.
Пример
Выделение бактерий рода Lactobacillus из фекалий с предварительным накоплением на жидкой селективной питательной среде обогащения.Example
Isolation of bacteria of the genus Lactobacillus from feces with preliminary accumulation on a liquid selective nutrient enrichment medium.
В колбу вместимостью 1 литр помещают 120,0 г дрожжевого аутолизата концентрированного (содержание аминного азота 583 мг%), 33,0 г гидролизата обезжиренного молока сухого ферментативного (содержание аминного азота 1485 мг%), 0,8 г агара, 3,5 г ледяной уксусной кислоты, воды дистиллированной до 1 литра, 2,5 мл 20%-ного раствора едкого натра до рН 5,5, нагревают до расплавления агара, стерилизуют в автоклаве при температуре (121±1)oС в течение 15 минут. Среду быстро охлаждают, поместив колбу в водяную баню с температурой 15-20oС, периодически перемешивают для ускорения охлаждения и равномерного распределения агара в объеме среды. После стерилизации среду можно хранить в холодильнике до 2 месяцев.In a flask with a capacity of 1 liter, 120.0 g of concentrated yeast autolysate (amine nitrogen content 583 mg%), 33.0 g skim milk hydrolyzate, enzymatic skim milk powder (amine nitrogen content 1485 mg%), 0.8 g agar, 3.5 g glacial acetic acid, distilled water to 1 liter, 2.5 ml of a 20% sodium hydroxide solution to pH 5.5, heated until the agar melts, sterilized in an autoclave at a temperature of (121 ± 1) o C for 15 minutes. The medium is quickly cooled by placing the flask in a water bath with a temperature of 15-20 o C, periodically stirred to accelerate cooling and uniform distribution of agar in the medium. After sterilization, the medium can be stored in the refrigerator for up to 2 months.
Жидкую селективную питательную среду обогащения в асептических условиях разливают в пробирки по 4,5 мл. Пробирки можно хранить в холодильнике до 4 недель, поместив в герметичный пластиковый пакет для предотвращения высыхания. Перед использованием пробирки необходимо подогреть в термостате или на водяной бане до 37-39oС.Aseptic liquid selective nutrient enrichment medium is poured into 4.5 ml tubes. Test tubes can be stored in the refrigerator for up to 4 weeks by being placed in a sealed plastic bag to prevent drying out. Before use, the tubes must be heated in a thermostat or in a water bath to 37-39 o C.
Из основного разведения фекалий 10-1 (в стерильном физиологическом растворе) при помощи дозатора готовят ряд 10-ти кратных последовательных разведений в 4,5 мл жидкой селективной питательной среды обогащения (титрование по 0,5 мл, до 10-10). Посевы инкубируют при 39oС в течение 24 часов в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода. Результат учитывают визуально, по наличию общего помутнения среды или росту изолированных колоний. Затем из пробирок с наличием роста готовят мазки, окрашивают по Граму. Отмечают последнее разведение, где был обнаружен рост характерных по морфологии грамположительных палочек. Титр (количество бактерий рода Lactobacillus в 1 г фекалий) определяют по максимальному разведению, в котором обнаружены типичные грамположительные палочки. В посевах фекалий, кроме лактобацилл, в указанных условиях могут расти энтерококки, которые легко отличимы по морфологии в мазках по Граму. Отмечают пробирки с разведениями фекалий, в которых обнаружен обильный рост бактерий рода Lactobacillus без энтерококков, или с минимальным присутствием энтерококков, а затем из этих пробирок бактериологической петлей делают высев на поверхность плотной селективной питательной среды для получения изолированных колоний.From the main dilution of feces 10 -1 (in sterile physiological saline) using a dispenser, a series of 10-fold serial dilutions in 4.5 ml of a liquid selective nutrient enrichment medium is prepared (titration of 0.5 ml, up to 10 -10 ). Crops are incubated at 39 o C for 24 hours in an atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen. The result is taken into account visually, by the presence of a general turbidity of the medium or the growth of isolated colonies. Then, smears are prepared from tubes with growth, stained according to Gram. The last breeding is noted, where the growth of gram-positive rods characteristic of morphology was detected. The titer (the number of bacteria of the genus Lactobacillus in 1 g of feces) is determined by the maximum dilution in which typical gram-positive bacilli are found. In feces, in addition to lactobacilli, enterococci can grow under these conditions, which are easily distinguishable by morphology in Gram smears. Test tubes with faecal dilutions are noted in which abundant growth of bacteria of the genus Lactobacillus without enterococci is detected, or with a minimal presence of enterococci, and then from these test tubes a bacteriological loop is used to seed a dense selective nutrient medium to obtain isolated colonies.
Плотную селективную питательную среду готовят следующим образом:
в колбу вместимостью 1 литр помещают 100,0 г дрожжевого аутолизата концентрированного (содержание аминного азота 583 мг%), 27,0 г гидролизата обезжиренного молока сухого ферментативного (содержание аминного азота 1485 мг%), 20,0 г агара, 3,3 г ледяной уксусной кислоты, воды дистиллированной до 1 литра, 2,5 мл 20%-ного раствора едкого натра до рН 5,5, нагревают до расплавления агара, стерилизуют в автоклаве при температуре (121±1)oС в течение 15 минут. Среду охлаждают до температуры 45-50oС, разливают в асептических условиях по 20 мл в стерильные чашки Петри, перед посевом чашки подсушивают в термостате при 37-39oС до исчезновения капель конденсата на поверхности среды.A dense selective nutrient medium is prepared as follows:
100.0 g of concentrated yeast autolysate (amine nitrogen content 583 mg%), 27.0 g skimmed milk powder hydrolyzate (amine nitrogen content 1485 mg%), 20.0 g agar, 3.3 g are placed in a flask with a capacity of 1 liter glacial acetic acid, distilled water to 1 liter, 2.5 ml of a 20% sodium hydroxide solution to pH 5.5, heated until the agar melts, sterilized in an autoclave at a temperature of (121 ± 1) o C for 15 minutes. The medium is cooled to a temperature of 45-50 o C, poured under aseptic conditions, 20 ml in sterile Petri dishes, before sowing the cups are dried in an oven at 37-39 o C until the droplets of condensate disappear on the surface of the medium.
Инкубацию посевов на плотной селективной питательной среде проводят в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода, крышкой вниз, при 39oС в течение 24-48 часов.The incubation of crops in a dense selective nutrient medium is carried out in an atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen, with the lid down, at 39 o C for 24-48 hours.
Колонии бактерий рода Lactobacillus вырастают разной величины, от точечных (росинки), до 2-3 мм в диаметре, чаще плоские, шероховатые, слегка опалесцирующие, прозрачные, иногда с возвышением в центре и валиком по краю, редко белого цвета. В мазке по Граму - грамположительные мелкие или крупные, без капсулы, неспорообразующие палочки, расположенные отдельно или цепочками. При посеве фекалий, наряду с колониями бактерий рода Lactobacillus, обнаруживают колонии энтерококков. Колонии энтерококков белые, круглые, выпуклые, блестящие, гладкие, редко шероховатые. От бактерий рода Lactobacillus их дифференцируют в мазках по Граму. Colonies of bacteria of the genus Lactobacillus grow in different sizes, from punctate (dewdrops) to 2-3 mm in diameter, often flat, rough, slightly opalescent, transparent, sometimes with an elevation in the center and a roller along the edge, rarely white. In a Gram smear, gram-positive small or large, capsule-free, non-spore-forming sticks located separately or in chains. When sowing feces, along with colonies of bacteria of the genus Lactobacillus, enterococcus colonies are found. Enterococcal colonies are white, round, convex, shiny, smooth, rarely rough. From bacteria of the genus Lactobacillus, they are differentiated in Gram smears.
Для накопления чистой культуры бактерий рода Lactobacillus, после микроскопии производят посев остатков колонии в 5 мл молочно-дрожжевой жидкой среды накопления. Инкубацию посевов на среде накопления проводят при 39oС в течение 16-20 часов, проверяют чистоту культуры и используют для дальнейшего изучения (определения биосовместимости с эубиотическими штаммами бактерий рода Lactobacillus, приготовления лактобактерина на основе аутоштамма бактерий рода Lactobacillus, определения чувствительности аутоштамма бактерий рода Lactobacillus к антибиотикам).To accumulate a pure culture of bacteria of the genus Lactobacillus, after microscopy, the remains of the colony are seeded in 5 ml of milky-yeast liquid accumulation medium. The incubation of crops on the accumulation medium is carried out at 39 o C for 16-20 hours, the purity of the culture is checked and used for further study (determination of biocompatibility with eubiotic strains of bacteria of the genus Lactobacillus, preparation of lactobacterin based on the auto-strain of bacteria of the genus Lactobacillus, determination of the sensitivity of the auto-strain of bacteria of the genus Lactobacillus to antibiotics).
Для обоснования принадлежности выделенных бактерий к роду Lactobacillus используют следующие признаки. Сам факт развития культуры на селективной питательной среде в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода, позволяет предположить развитие культуры лактобацилл. Дополнительно проводят морфологические исследования: палочковидная форма и положительная окраска по Граму, а также выявление метахроматических включений при окраске метиленовым синим, отсутствие способности к споро - и капсулообразованию. Подтверждением принадлежности культуры к роду лактобацилл служит отсутствие подвижности (особенно из жидкой среды) при фазово-контрастной микроскопии, неспособность к редукции нитратов и метиленовой сини, отрицательная оксидазная и каталазная пробы, отсутствие пигментообразования. На принадлежность культуры к группе анаэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов указывает неспособность к росту на неселективной плотной среде для культивирования лактобацилл при 39oС в аэробных условиях, отсутствие роста при 39oС на простом агаре в атмосфере, содержащей 5% углекислого газа и 16% кислорода.To justify the belonging of the selected bacteria to the genus Lactobacillus, the following characteristics are used. The very fact of the development of culture on a selective nutrient medium in an atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen suggests the development of a culture of lactobacilli. In addition, morphological studies are carried out: a rod-shaped form and a positive Gram stain, as well as the identification of metachromatic inclusions when stained with methylene blue, the lack of ability to spore and capsule formation. Confirmation of the belonging of the culture to the genus of lactobacilli is the lack of mobility (especially from a liquid medium) under phase contrast microscopy, the inability to reduce nitrates and methylene blue, negative oxidase and catalase samples, and the absence of pigmentation. The fact that the culture belongs to the group of anaerobic and facultative anaerobic microorganisms is indicated by the inability to grow on a non-selective solid medium for culturing lactobacilli at 39 ° C under aerobic conditions, the lack of growth at 39 ° C on simple agar in an atmosphere containing 5% carbon dioxide and 16% oxygen.
Таким образом, полученные результаты доказывают, что заявляемый способ выделения бактерий рода Lactobacillus из клинического материала позволяет не только значительно улучшить диагностику желудочно-кишечных заболеваний, но и значительно повысить качество бактериотерапии и антибиотикотерапии. Thus, the obtained results prove that the inventive method for isolating bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material can not only significantly improve the diagnosis of gastrointestinal diseases, but also significantly improve the quality of bacteriotherapy and antibiotic therapy.
Claims (1)
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,0±10,0
Агар - 0,8
Вода дистиллированная - До 1 л
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1
а затем проводят выделение лактобацилл на плотной селективной питательной среде при следующем соотношении компонентов среды, г/л:
Гидролизат обезжиренного молока сухой ферментативный - 30,0±3,0
Кислота уксусная ледяная - 3,4±0,1
Аутолизат дрожжей концентрированный - 110,0±10,0
Агар - 22,5±2,5
Вода дистиллированная - До 1 л
Раствор едкого натра 20% до рН среды - 5,4±0,1A method of isolating bacteria of the genus Lactobacillus from clinical material (feces, vaginal discharge), which consists in preparing a series of 10-fold dilutions of the test material in a liquid selective nutrient enrichment medium, seeding from dilutions on the surface of a dense selective nutrient medium, culturing crops at 39 o C for 24-48 hours with a high content of carbon dioxide (5%) and a low concentration of oxygen (16%) in the atmosphere of cultivation, characterized in that the accumulation of bacteria of the genus Lactobacillu s from clinical material on a liquid selective nutrient enrichment medium in the following ratio of medium components, g / l:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.0 ± 10.0
Agar - 0.8
Distilled water - Up to 1 L
A solution of caustic soda 20% to a pH of 5.4 - 0.1
and then lactobacilli are isolated on a dense selective nutrient medium in the following ratio of medium components, g / l:
The skim milk hydrolyzate is enzymatic dry - 30.0 ± 3.0
Glacial acetic acid - 3.4 ± 0.1
Concentrated yeast autolysate - 110.0 ± 10.0
Agar - 22.5 ± 2.5
Distilled water - Up to 1 L
A solution of caustic soda 20% to a pH of 5.4 - 0.1
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2000119999A RU2178171C1 (en) | 2000-07-26 | 2000-07-26 | Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2000119999A RU2178171C1 (en) | 2000-07-26 | 2000-07-26 | Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2178171C1 true RU2178171C1 (en) | 2002-01-10 |
Family
ID=20238439
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2000119999A RU2178171C1 (en) | 2000-07-26 | 2000-07-26 | Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2178171C1 (en) |
-
2000
- 2000-07-26 RU RU2000119999A patent/RU2178171C1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN110373342B (en) | Lactobacillus reuteri and uses thereof | |
Rahman | Probiotic properties analysis of isolated lactic acid bacteria from buffalo milk | |
ES2674353T3 (en) | Method for preparing microbial liquid cultures that have high stability and fermentative activity | |
CN113061543B (en) | Lactobacillus plantarum and application thereof | |
CN112143680B (en) | Lactobacillus paracasei ZJUIDS05 with antioxidant effect and application thereof | |
JP2007518693A (en) | Stable liquid probiotic composition, its preparation and application | |
Shuhadha et al. | Evaluation of probiotic attributes of Lactobacillus sp. isolated from cow and buffalo curd samples collected from Kandy | |
JP5197375B2 (en) | Bacterial growth-promoting substance | |
CN112625979A (en) | Lactobacillus casei for resisting helicobacter pylori and application thereof | |
CN111548958A (en) | Anti-phage lactobacillus plantarum strain and application thereof in fermented soybean milk | |
CN113755409A (en) | Bifidobacterium longum for relieving insulin resistance and application thereof | |
Miyamoto et al. | Lactobacillus flora in the cloaca and vagina of hens and its inhibitory activity against Salmonella enteritidis in vitro | |
CN117143767A (en) | Breast milk-derived fermented lactobacillus mucilaginosus MSJK0025 capable of regulating intestinal flora and application thereof | |
CN116103201A (en) | Lactobacillus plantarum LP10 and application, product and method thereof in aspect of producing extracellular polysaccharide and/or antioxidation | |
RU2178171C1 (en) | Method of isolation of lactobacillus genus bacterium from clinical material | |
RU2154822C1 (en) | Method of isolation of bacterium of genus lactobacillus from clinical material | |
RU2475535C1 (en) | Method to produce probiotic preparation lacto-amylovorin | |
RU2193060C1 (en) | Method of isolation of bacterium of genus lactobacillus from clinical material | |
CN106236782A (en) | Lactasinum preparation method and application | |
RU2280465C2 (en) | Method for preparing probiotic | |
CN111011590A (en) | Composite probiotic agent and preparation method and application thereof | |
RU2213779C2 (en) | Nutrient medium for isolation of lactobacilli | |
Raju et al. | Isolation, Characterization and Sequencing of Lactobacillus from the Oral and Fecal Samples of Healthy Dogs | |
RU2244744C2 (en) | Method for preparing liquid lactobacterin | |
CN116286510B (en) | Lactobacillus plantarum for producing extracellular polysaccharide and application thereof |