RU2173122C1 - Способ лечения эрозии роговицы - Google Patents
Способ лечения эрозии роговицыInfo
- Publication number
- RU2173122C1 RU2173122C1 RU2000129570A RU2000129570A RU2173122C1 RU 2173122 C1 RU2173122 C1 RU 2173122C1 RU 2000129570 A RU2000129570 A RU 2000129570A RU 2000129570 A RU2000129570 A RU 2000129570A RU 2173122 C1 RU2173122 C1 RU 2173122C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cornea
- contact lens
- cells
- erosion
- corneal
- Prior art date
Links
- 210000004087 Cornea Anatomy 0.000 title claims abstract description 26
- 230000003628 erosive Effects 0.000 title description 14
- 210000002919 epithelial cells Anatomy 0.000 claims abstract description 22
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 claims abstract description 17
- 210000002510 Keratinocytes Anatomy 0.000 claims abstract description 8
- 230000000735 allogeneic Effects 0.000 claims description 13
- 206010011013 Corneal erosion Diseases 0.000 claims description 7
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 3
- 206010052779 Transplant rejections Diseases 0.000 abstract description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 230000000472 traumatic Effects 0.000 abstract 1
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 17
- 210000000981 Epithelium Anatomy 0.000 description 10
- 230000002085 persistent Effects 0.000 description 9
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 6
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000000034 method Methods 0.000 description 6
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 description 6
- 239000000463 material Substances 0.000 description 5
- 239000002609 media Substances 0.000 description 5
- 206010051559 Corneal defect Diseases 0.000 description 4
- 230000003247 decreasing Effects 0.000 description 4
- 230000001605 fetal Effects 0.000 description 4
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 4
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 4
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 4
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 4
- 102100010813 EGF Human genes 0.000 description 3
- 101700033006 EGF Proteins 0.000 description 3
- 229940116977 Epidermal Growth Factor Drugs 0.000 description 3
- 206010022114 Injury Diseases 0.000 description 3
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 3
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 3
- 210000003491 Skin Anatomy 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- 210000002469 Basement Membrane Anatomy 0.000 description 2
- 210000000795 Conjunctiva Anatomy 0.000 description 2
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 2
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 2
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 2
- 210000003560 Epithelium, Corneal Anatomy 0.000 description 2
- 206010015911 Eye burns Diseases 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 210000002536 Stromal Cells Anatomy 0.000 description 2
- 208000005561 Urinary Fistula Diseases 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- 230000000306 recurrent Effects 0.000 description 2
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 2
- 230000002194 synthesizing Effects 0.000 description 2
- 230000036269 ulceration Effects 0.000 description 2
- 230000000989 vascularization Effects 0.000 description 2
- 230000004304 visual acuity Effects 0.000 description 2
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 208000009043 Chemical Burns Diseases 0.000 description 1
- 206010008424 Chemical injury Diseases 0.000 description 1
- 206010051625 Conjunctival hyperaemia Diseases 0.000 description 1
- 208000006069 Corneal Opacity Diseases 0.000 description 1
- 210000003683 Corneal Stroma Anatomy 0.000 description 1
- 210000001161 Embryo, Mammalian Anatomy 0.000 description 1
- 208000010167 Eye Injury Diseases 0.000 description 1
- 206010016717 Fistula Diseases 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 210000002966 Serum Anatomy 0.000 description 1
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 1
- 206010068760 Ulcers Diseases 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 230000001058 adult Effects 0.000 description 1
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 230000001413 cellular Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 230000001684 chronic Effects 0.000 description 1
- 231100000269 corneal opacity Toxicity 0.000 description 1
- 230000002497 edematous Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 230000004438 eyesight Effects 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 230000003890 fistula Effects 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 230000001771 impaired Effects 0.000 description 1
- 210000001542 lens epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000001681 protective Effects 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 238000009738 saturating Methods 0.000 description 1
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000005477 standard model Effects 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic Effects 0.000 description 1
- 230000001228 trophic Effects 0.000 description 1
- 231100000397 ulcer Toxicity 0.000 description 1
- 230000029663 wound healing Effects 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к медицине, офтальмологии. На внутренней поверхности контактной линзы выращивают многослойный пласт эпителиальных клеток. На пораженную роговицу укладывают мягкую контактную линзу. Используют кератиноциты, аллогенные клетки, ксеногенные клетки. Способ атравматичен, прост в исполнении. Отсутствует риск развития отторжения трансплантата. 3 з.п. ф-лы.
Description
Изобретение относится к области медицины - офтальмологии и предназначено для лечения больных с эрозиями роговицы, в том числе персистирующими эрозиями роговицы.
Лечение больных с рецидивирующими и персистирующими эрозиями роговицы, в том числе послеожоговыми, остается актуальной проблемой для офтальмотравматологов.
Традиционное консервативное лечение, к сожалению, нередко не оказывает положительного эффекта. Несвоевременное закрытие эпителиального дефекта приводит к формированию помутнения, изъязвлению, перфорации роговицы, функциональной и анатомической гибели глаза.
Эффективным способом лечения персистирующих эрозий роговицы является использование лечебных мягких контактных линз (Лапина Л.А. Физиологические аспекты адаптации глаза к контактным линзам. //Автореферат диссертации канд. мед. наук. Москва, 1988, стр. 22; Boles S.F. et all. //Cornea, -1992,Vol. 11, N 1, P.47- 52).
Ближайшим способом того же назначения является способ лечения дефектов роговицы с помощью культуры фетальных клеток роговицы человека, адгезированных на внутренней поверхности мягкой контактной линзы (патент RU 2000102601 от 04.02.2000). При этом способе контактная линза с предварительно нанесенным на внутреннюю поверхность монослоем фетальных клеток укладывается на поврежденную роговицу. Монослой фетальных клеток содержит 80% эпителиальных и 20% стромальных клеток роговицы. Аллогенные клетки мигрируют с контактной линзы на рану, происходит их пролиферация и образование новых ростков, замещающих поврежденную ткань. Авторы используют культуру клеток эмбриона человека. Однако в данном способе применяют монослой эпителиальных клеток, между которыми располагаются стромальные клетки, в результате чего трансплантат не обладает гистотипическими свойствами, и, следовательно, не обеспечивает оптимальной эпителизации в ране. Кроме того, морально-этические проблемы, техническая сложность получения донорского материала и высокая стоимость способа ограничивают его применение в клинической практике.
Предлагаемый способ основан на применении многослойного пласта аллогенных или ксеногенных эпителиальных клеток, выращенных на внутренней поверхности контактной линзы, которая используется с одной стороны в качестве матрицы и носителя клеток, а с другой - в качестве способа фиксации трансплантата. Клетки могут быть получены из кожи человека, эпителия конъюнктивы и роговицы человека, свиньи, крупного рогатого скота.
Условия культивирования эпителиальных клеток вне организма (in vitro) в среде DMEM: F12 при добавлении эпидермального фактора роста (10 нг/мл), инсулина (5 мкг/мл), изопротеринола (10М) позволяют получать в культуре многослойные эпителиальные пласты клеток, гистотипически подобные эпителию в организме. Такие многослойные выращенные эпителиальные клетки способны пролиферировать, дифференцироваться и стратифицироваться в условиях in vitro (Терских В.В. и др. Эпидермальные кератиноциты человека и животных. Проблемы культивирования и трансплантации.//Москва: Наука, 1995, 1, стр. 4, 82). Именно это свойство было использовано при восстановлении эпителия роговицы трансплантацией выращенных на контактных линзах многослойных культур эпителиальных клеток. Ранее многослойные пласты клеток на контактных линзах не выращивались. Нами были разработаны модификации получения пластов клеток на линзе. Выращивание многослойного пласта эпителиальных клеток непосредственно на линзе позволяет максимально сохранить их свойства для их последующего воздействия на рану. Кроме того, выращивание эпителиального пласта на линзе позволяет упростить методику, поскольку выращивание пласта на другой матрице требует последующего пассирования на линзу, вследствие чего возникает необходимость дополнительных мероприятий по восстановлению функций эпителиального пласта, нарушенных в процессе пассирования. Возможно также создание на основе методики выращивания эпителиальных пластов на контактной линзе банка трансплантационного материала, что особенно актуально в условиях массовой травмы глаза. Кроме того, в работе использовались эпителиальные клетки взрослых доноров (прижизненное донорство), что показало высокую эффективность лечения при значительном упрощении процедуры забора материала (биопсии) для выращивания, строгого тестирования как материала, так и собственно донора. Такой подход, кроме того, лишен морально-этических и социальных ограничений, появляющихся при использовании эмбрионального материала.
Теоретической основой способа является феномен максимальной стимуляции регенерации эпителия реципиента при трансплантации морфологически подобной эпителиальной ткани как аллогенной, так и ксеногенной. Пересадка эпителиальной ткани в виде многослойного пласта стимулирует регенерацию собственного эпителия выделяемыми клетками во внешнюю среду биологически активными веществами (факторы роста, цитокины и др.), при этом временно приживший трансплантат активно вытесняется и замещается собственным эпителием (Smirnov S. V. et all. Seven-years experience in the treatment of burn patients with allogenic cultured keratinicytes. //Annals of burn and fire disasters,Vol. XII, N4, dec. 1998, p. 212-216). Возможность использования как аллогенной, так и ксеногенной культуры клеток значительно упрощает техническое исполнение способа, снимает проблемы этического характера, снижает себестоимость и позволяет широко использовать его в клинической практике.
Метод трансплантации культивированных аллогенных эпителиальных клеток успешно применяется в клинической комбустологии, лечении хронических трофических язв и свищей (Сергиенко Н.Ф. и др. Лечение мочевых свищей с применением культуры аллогенных фибробластов. //Урология, 1999, N 1, стр. 44-46; Методические рекомендации: "Восстановление кожных покровов у тяжелообожженных больных с помощью пересадки выращенных эпидермальных пластов" //Главное военно-медицинское управление МО РФ, Москва, 1997, стр. 10).
По данным различных авторов приживление трансплантата аллогенных клеток наступает в 50-90% случаев. Пересаженные клетки оказывают многофункциональное влияние на процессы заживления раны, предотвращая негативное воздействие факторов внешней среды на глубжележащие ткани, выделяя различные клеточные медиаторы стимуляции регенерации, участвуют в синтезе базальных мембран. В результате происходит восстановление типичного для данной ткани эпителия (по пути физиологической эпителизации). Этот процесс носит гистотипический характер.
Однако восстановление дефектов роговицы принципиально отличается от закрытия дефектов других тканей, при лечении которых использовали трансплантацию аллогенных эпителиальных клеток. Если в случае дефектов кожи, мочевых свищей, эрозий шейки матки восстановление дефекта происходит в основном за счет контракции, то при дефектах роговицы его заживление происходит исключительно в результате миграции собственного эпителия на дефект без элементов контракции, что послужило предпосылкой для использования аллогенных эпителиальных клеток при лечении рецидивирующих и персистирующих эрозий роговицы.
В офтальмологии предлагаемый способ был впервые применен нами на экспериментальных животных. Эксперимент проведен на стандартной модели тяжелого щелочного ожога роговицы. Экспериментальный ожог глаз 7 кроликов наносили под кеталаровым наркозом путем накладывания на роговицу пропитанного 10% раствором NaOH круга фильтровальной бумаги диаметром 7 мм, время экспозиции 20 секунд.
Мягкую контактную линзу с нанесенными на внутреннюю ее поверхность культивированными аллогенными эпителиальными клетками получали следующим способом. Культивирование аллогенных эпителиальных клеток кератиноцитов производили стандартным способом в среде DMEM:F12 при добавлении эпидермального фактора роста (10 нг/мл), инсулина (5 мкг/мл), изопротеринола (10М) при температуре 37 град. С в атмосфере 5% CO2 и насыщающей влажности в течение 7-23 суток (Терских В.В. и др. Эпидермальные кератиноциты человека и животных. Проблемы культивирования и трансплантации.// Москва: Наука, 1995, 1, стр. 4, 82). Культуру эпителиальных клеток в концентрации 500 тысяч клеток в мл наносили на внутреннюю поверхность мягкой контактной линзы в 2 мл среды DMEM-F12 (1: 1). Эпителиальные клетки на контактной линзе культивировали в течение 2-7 суток в среде DMEM-F12, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, эпидермальный фактор роста (10 нг/мл), инсулин (5 мкг/мл) и изопротеринол (10 М). За сутки до трансплантации среду меняли на среду без сыворотки. Непосредственно перед трансплантацией контактные линзы с многослойным пластом эпителиальных клеток промывали стерильным физиологическим раствором.
На 12 сутки после нанесения экспериментального ожога после предварительной некрэктомии на пораженную роговицу укладывали мягкую контактную линзу с выращенными на ее внутренней поверхности многослойным пластом эпителиальных клеток.
Гисто-морфологические исследования, проведенные на 2, 7, 14, 30 сутки, свидетельствуют о временном приживлении трансплантата и восстановлении эпителиального покрова роговицы за счет активной миграции на дефект и вытеснения трансплантата собственными эпителиальными клетками. В итоге получено закрытие роговичного дефекта и предупреждение грозного осложнения ожога роговицы - перфорации. Обнадеживающие результаты позволили нам применить способ в клинической практике.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является полноценное восстановление эпителиального дефекта роговицы с получением наиболее приближенной к нормальной структуры ткани роговицы.
Технический результат достигается тем, что осуществляется активная стимуляция регенерации эпителия роговицы с помощью многослойного пласта эпителиальных клеток, выращенного на мягкой контактной линзе.
Способ осуществляется следующим образом. Трансплантаты аллогенных эпителиальных клеток, выращенных на внутренней поверхности контактных линз, готовят предварительно по изложенной выше методике. Укладывание мягкой контактной линзы на поврежденную роговицу производят без предварительной анестезии. Контактная линза остается на поверхности глазного яблока в течение 3-5 дней. В зависимости от результатов лечения через 3-5 дней трансплантацию повторяют до полного закрытия эпителиального дефекта роговицы.
Конкретные примеры выполнения способа.
Пример 1. Больной Т. 20 дней назад перенес термохимический ожог роговицы 3-4 степени. В процессе лечения по месту жительства у больного сформировалась персистирующая эрозия роговицы. При поступлении роговица матового цвета, персистирующая эрозия роговицы диаметром до 8 мм, васкуляризация обрывается по краю эпителиального дефекта. На 24 сутки после травмы произведена трансплантация культивированных эпидермальных кератиноцитов на контактной линзе. На 5-е сутки после первой трансплантации площадь эрозии уменьшилась на 40%. Произведена повторная трансплантация эпителиальных клеток на линзе. Спустя 3 дня после второй пересадки эрозия уменьшилась до 3 мм в диаметре. Произведена третья трансплантация. Через 4 для после третьей трансплантации роговица полностью эпителизирована. В дальнейшем больной продолжал пользоваться мягкой контактной линзой в течение 2-х недель. Рецидивов эрозии не было.
Пример 2. Больная Л. 14 дней назад перенесла химический ожог роговицы 3 степени. Консервативное лечение по месту жительства с начальным положительным эффектом, однако к 12 суткам эпителизация роговицы прекратилась, сформировалась персистирующая эрозия роговицы. При поступлении роговица отечная, эрозия в центральной зоне роговицы диаметром до 9 мм. На 16 и 22 сутки после травмы произведена трансплантация культивированных эпидермальных кератиноцитов на контактной линзе. На 6-е сутки после первой трансплантации диаметр эрозии уменьшился до 6 мм, спустя 6 дней после второй пересадки наступила полная эпителизация роговицы. В дальнейшем больная продолжала пользоваться мягкой контактной линзой в течение 2-х недель. Рецидивов эрозии не было. В результате сформировалось бельмо 2 категории с остротой зрения 0.3. У аналогичных больных при традиционном лечении отмечается или формирование грубого рубца с резким ухудшением зрения, или перфорация роговицы с угрозой гибели глаза.
Пример 3. Больной Т. 11 дней назад перенес химический щелочной ожог роговицы и конъюнктивы 2-3 степени. Консервативное лечение по месту жительства. При поступлении определяется персистирующая эрозия роговицы диаметром 8 мм, гиперемия конъюнктивы, васкуляризация заканчивается в 1 мм от лимба. Строма роговицы отечная. На 14 и 20 сутки после травмы произведена трансплантация культивированных эпидермальных кератиноцитов на контактной линзе. На 5-е сутки после первой трансплантации диаметр эрозии уменьшился до 5 мм, спустя 6 дней после второй пересадки наступила полная эпителизация роговицы. В дальнейшем больная продолжала пользоваться мягкой контактной линзой в течение 2-х недель. Рецидивов эрозии не было, сформировалось бельмо 2 категории с остротой зрения травмированного глаза 0.5.
Всего предлагаемый способ применен в лечении 5 больных с персистирующими эрозиями роговицы, в том числе после тяжелых ожогов роговицы. Во всех случаях получена активизация репаративных процессов, закрытие дефектов эпителия и устранение угрозы изъязвления и перфорации глазного яблока.
Основным преимуществом предлагаемого способа перед кератопластикой кадаверной роговицей или другими тканями и мягкими контактными линзами является его атравматичность, отсутствие риска развития реакции отторжения трансплантата, стимуляция эпителиальными клетками репаративного процесса посредством секреции факторов роста, цитокинов и др. во внешнюю среду и активное их участие в синтезе собственной базальной мембраны, одновременное использование протекторной функции мягкой контактной линзы, формирование помутнения роговицы меньшей интенсивности, чем при использовании других способов лечения.
Основным преимуществом предлагаемого способа является техническая простота исполнения, отсутствие при выполнении проблем морально-этического характера, низкая себестоимость способа, что позволяет широко использовать его в клинической практике.
Claims (4)
1. Способ лечения эрозий роговицы, включающий подведение к роговице эпителиальных клеток, расположенных на внутренней поверхности контактной линзы, отличающийся тем, что используют многослойный пласт эпителиальных клеток, выращенных на внутренней поверхности контактной линзы.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют кератиноциты.
3. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют аллогенные клетки.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют ксеногенные клетки.
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2173122C1 true RU2173122C1 (ru) | 2001-09-10 |
Family
ID=
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2010068078A1 (ru) * | 2008-12-10 | 2010-06-17 | Республиканское Государственное Казенное Предприятие "Kaзaxcкий Ордена "Зhak Пoчeta" Научно-Исследовательский Институт Глазных Бoлeзнeй" Министерства Здравоохранения Республики Казахстан | Способ хирургического лечения заболеваний роговицы |
RU2522381C1 (ru) * | 2013-01-24 | 2014-07-10 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения трофических эрозий роговицы |
RU2544225C1 (ru) * | 2013-12-13 | 2015-03-10 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения послеоперационных эрозий роговицы после удаления птеригиума |
RU2575590C1 (ru) * | 2014-12-25 | 2016-02-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения рецидивирующих эрозий роговицы |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2010068078A1 (ru) * | 2008-12-10 | 2010-06-17 | Республиканское Государственное Казенное Предприятие "Kaзaxcкий Ордена "Зhak Пoчeta" Научно-Исследовательский Институт Глазных Бoлeзнeй" Министерства Здравоохранения Республики Казахстан | Способ хирургического лечения заболеваний роговицы |
RU2522381C1 (ru) * | 2013-01-24 | 2014-07-10 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения трофических эрозий роговицы |
RU2544225C1 (ru) * | 2013-12-13 | 2015-03-10 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения послеоперационных эрозий роговицы после удаления птеригиума |
RU2575590C1 (ru) * | 2014-12-25 | 2016-02-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ лечения рецидивирующих эрозий роговицы |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Dua | Amniotic membrane transplantation | |
Rama et al. | Autologous fibrin-cultured limbal stem cells permanently restore the corneal surface of patients with total limbal stem cell deficiency1 | |
John | Amniotic membrane transplantation in the management of severe ocular surface disease: indications and outcomes | |
McCulley et al. | Corneal endothelial transplantation | |
Lange et al. | Corneal endothelial cell transplantation using Descemet's membrane as a carrier | |
HU222185B1 (hu) | Szaruhártya-rátétek | |
JP4488902B2 (ja) | Bmp‐7ポリペプチドを含む瘢痕形成抑制剤 | |
JP2001161353A (ja) | 移植用細胞片及びその作成方法 | |
WO2007083685A1 (ja) | 生体内で細胞増殖可能な角膜内皮製剤 | |
JPH05184358A (ja) | 水晶体上皮細胞に対する抗体を産生するセルライン | |
Gipson et al. | Transplant of oral mucosal epithelium to rabbit ocular surface wounds in vivo | |
Choe et al. | Ocular surface reconstruction using circumferentially-trephined autologous oral mucosal graft transplantation in limbal stem cell deficiency | |
DE60120676T2 (de) | Verfahren zur entwicklung von epithelialen stammzellen | |
CN103989554A (zh) | 一种角膜损伤无瘢痕修复装置及其用途 | |
Gipson et al. | Transplant of corneal epithelium to rabbit corneal wounds in vivo. | |
Chan et al. | Specificity of a neuronotrophic factor from rabbit corneal epithelial cultures | |
Kim et al. | Clinical uses of human amniotic membrane for ocular surface diseases | |
Eveleth | Cell-based therapies for ocular disease | |
Scuderi et al. | Transplantation of autologous cultivated conjunctival epithelium for the restoration of defects in the ocular surface | |
RU2173122C1 (ru) | Способ лечения эрозии роговицы | |
CN103989553B (zh) | 一种角膜损伤无瘢痕修复装置的制造方法和储存方法 | |
RU2609253C1 (ru) | Способ лечения глубоких дефектов роговицы | |
RU2177284C1 (ru) | Способ хирургического лечения глубоких дефектов роговицы | |
Pan et al. | Transplantation of corneal stem cells cultured on amniotic membrane for corneal burn: experimental and clinical study | |
Treffers | Corneal endothelial wound healing |