RU2139070C1 - Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli - Google Patents
Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli Download PDFInfo
- Publication number
- RU2139070C1 RU2139070C1 RU99105814A RU99105814A RU2139070C1 RU 2139070 C1 RU2139070 C1 RU 2139070C1 RU 99105814 A RU99105814 A RU 99105814A RU 99105814 A RU99105814 A RU 99105814A RU 2139070 C1 RU2139070 C1 RU 2139070C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- microflora
- lactobacilli
- bifidobacteria
- intestinal
- bifid bacteria
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к микробиологии, и может быть использовано в медицине и ветеринарии для лечения и профилактики заболеваний, связанных с нарушениями состава и функций нормальной микрофлоры человека и животных. The invention relates to biotechnology, in particular to microbiology, and can be used in medicine and veterinary medicine for the treatment and prevention of diseases associated with violations of the composition and functions of the normal microflora of humans and animals.
Известно, что с современных позиций микрофлору человека и животных рассматривают как совокупность множества микробиоценозов, занимающих многочисленные экологические ниши на коже и слизистых открытых полостей макроорганизма. В любом микробиоценозе всегда имеются постоянно обитающие виды бактерий (автохтонная, индигенная микрофлора), а также транзиторные, случайные виды (аллохтонная микрофлора). It is known that from modern positions, the microflora of humans and animals are considered as a combination of many microbiocenoses occupying numerous ecological niches on the skin and mucous open cavities of a macroorganism. In any microbiocenosis, there are always constantly living species of bacteria (autochthonous, indigenous microflora), as well as transient, random species (allochthonous microflora).
Функции, выполняемые нормальной микрофлорой в организме хозяина, многообразны. В совокупности выполняемых ею функций нормальную микрофлору человека и животных можно рассматривать как первичную мишень воздействия любого фактора внешней среды, как неспецифический барьер, лишь после прорыва которого инициируется включение неспецифических и специфических механизмов защиты. Если эти факторы по своей интенсивности превышают компенсаторные возможности данной экосистемы, возникают микроэкологические нарушения, нередко сопровождающиеся патологическими процессами. Перечень заболеваний и патологических состояний, связанных с микроэкологическими нарушениями, велик. Он включает как инфекционные заболевания, так и неинфекционные, в том числе так называемые "болезни цивилизации" (атеросклероз, мочекаменная болезнь, аллергические и онкологические заболевания и др.). The functions performed by normal microflora in the host are diverse. In the aggregate of the functions performed by it, the normal microflora of humans and animals can be considered as the primary target of the influence of any environmental factor, as a non-specific barrier, only after a breakthrough of which the inclusion of non-specific and specific defense mechanisms is initiated. If these factors in their intensity exceed the compensatory capabilities of this ecosystem, microecological disturbances arise, often accompanied by pathological processes. The list of diseases and pathological conditions associated with microecological disturbances is long. It includes both infectious and non-infectious diseases, including the so-called "diseases of civilization" (atherosclerosis, urolithiasis, allergic and oncological diseases, etc.).
В настоящее время для восстановления нарушенного микробиоценоза человека и животных используют разнообразные приемы, прежде всего введение в больших количествах антагонистических штаммов бактерий - представителей нормальной микрофлоры (бифидобактерий, лактобацилл и др.) в составе пробиотиков - фармакопейных препаратов или продуктов функционального питания. Эти бактерийные препараты и продукты функционального питания являются достаточно эффективным лечебно-профилактическим средством, однако их эффективность в значительной степени ограничена тем, что используемые в их составе в качестве действующего начала штаммы микроорганизмов - представителей нормальной микрофлоры являются чужеродными для организма реципиента. В результате происходит обычное при трансплантации донорских тканей отторжение, т.е. вводимые в составе пробиотиков микроорганизмы не приживаются на слизистых кишечника и транзитом выводятся из организма. Поэтому для получения положительного эффекта от применения бактерийных препаратов и продуктов функционального питания требуется длительный курс их применения (не менее 2-х недель) и введение большого количества жизнеспособных клеток бактерий (не менее 107 КОЕ бактерий в 1 дозе).At present, various methods are used to restore the disturbed microbiocenosis of humans and animals, primarily the introduction of large amounts of antagonistic strains of bacteria - representatives of normal microflora (bifidobacteria, lactobacilli, etc.) as part of probiotics - pharmacopeia drugs or functional food products. These bacterial preparations and functional nutrition products are quite effective therapeutic and prophylactic means, however, their effectiveness is largely limited by the fact that the strains of microorganisms used in their composition as an active principle - representatives of normal microflora are foreign to the recipient's body. As a result, rejection usually occurs during donor tissue transplantation, i.e. microorganisms introduced as part of probiotics do not take root on the intestinal mucosa and are excreted in transit. Therefore, to obtain a positive effect from the use of bacterial preparations and functional nutrition products, a long course of their use (at least 2 weeks) and the introduction of a large number of viable bacterial cells (at least 10 7 CFU of bacteria in 1 dose) are required.
Известен способ ускорения лечения дисбактериозов кишечника путем введения аутоштаммов бифидобактерий и лактобацилл [1]. There is a method of accelerating the treatment of intestinal dysbacteriosis by the introduction of auto-strains of bifidobacteria and lactobacilli [1].
Аутоштаммы выделяли из фекалий путем последовательных десятикратных разведений физиологическим раствором исследуемого материала до 10-8. Исследуемый материал из различных разведений засевали на соответствующие питательные среды для определения исходных уровней энтеробактерий, энтерококков, стафилококков, лактобактерий, бифидобактерий. Через двое суток материал из изолированных колоний лактобактерий, выросших на среде МРС-4, в наибольшем разведении (103) и из изолированных колоний бифидобактерий, выросших на питательной среде Блаурокка в наибольшем разведении (107), вновь пересевали на соответствующие селективные питательные среды. Выросшие через 2 суток после второго пассажа изолированные колонии бифидобактерий и лактобактерий пересевали на жидкие среды МРС-4 и Блаурокка для получения биомассы микроорганизмов, которая была использована в виде аутоштаммов для лечения дисбактериоза кишечника.Auto-strains were isolated from feces by successive ten-fold dilutions with physiological saline of the test material to 10 -8 . The studied material from various dilutions was seeded on appropriate nutrient media to determine the initial levels of enterobacteria, enterococci, staphylococci, lactobacilli, bifidobacteria. Two days later, the material from isolated colonies of lactobacilli grown on MPC-4 medium in the highest dilution (10 3 ) and from isolated colonies of bifidobacteria grown on the medium of Blaurock in the highest dilution (10 7 ) were again reseeded to the corresponding selective nutrient media. Isolated colonies of bifidobacteria and lactobacilli, grown 2 days after the second passage, were subcultured onto liquid media MPC-4 and Blaurock to obtain biomass of microorganisms, which was used as auto-strains for the treatment of intestinal dysbiosis.
В данном способе в виде аутоштаммов было использовано всего по одному штамму выделенных отдельно бифидобактерий и лактобацилл из всего многообразия видов этих индигенных микроорганизмов (до 5 видов бифидобактерий и более 10 видов лактобацилл). Кроме того, при данном способе выделения аутоштаммов велика вероятность того, что выделенные культуры являются клонами чужеродных для хозяина микроорганизмов, случайно попавших в пищеварительный тракт с пищей и водой. In this method, in the form of auto-strains, only one strain of separately isolated bifidobacteria and lactobacilli was used from the entire variety of species of these indigenous microorganisms (up to 5 types of bifidobacteria and more than 10 types of lactobacilli). In addition, with this method of isolating auto-strains, it is highly probable that the isolated cultures are clones of microorganisms alien to the host that accidentally enter the digestive tract with food and water.
Цель изобретения - получение аутопробиотика, содержащего комплекс живых бифидобактерий и лактобацилл - представителей индигенной микрофлоры кишечника хозяина, предназначенный для восстановления нарушенной микроэкологии его кишечника. The purpose of the invention is to obtain an autoprobiotic containing a complex of live bifidobacteria and lactobacilli - representatives of the indigenous intestinal microflora of the host, designed to restore the disturbed microecology of his intestines.
Поставленная цель достигается тем, что бифидобактерии и лактобациллы выделяют одновременно в виде естественных комплексов кишечника человека и/или животных путем деконтаминации содержимого толстого кишечника от посторонней микрофлоры за счет многократных разведений исследуемого материала жидкой питательной средой, содержащей селективные агенты, пригодной для выделения и культивирования бифидобактерий и лактобацилл, с последующим удалением аллохтонной микрофлоры путем добавления к биоматериалу, разведенному до 10-6, сыворотки крови того же индивидуума, у которого был взят образец кишечного содержимого, последующего его культивирования в течение 48 часов при 38oC и дальнейшего пересева полученной биомассы на жидкие питательные среды для культивирования бифидобактерий и лактобацилл без добавления селективных агентов. Полученная после культивирования биомасса содержит бифидобактерии и лактобациллы, являющиеся истинными представителями индигенной микрофлоры хозяина, и пригодна для использования в качестве аутопробиотика для восстановления и коррекции микроэкологических нарушений кишечника человека и животных.This goal is achieved by the fact that bifidobacteria and lactobacilli are isolated simultaneously in the form of natural complexes of the intestines of humans and / or animals by decontamination of the contents of the large intestine from extraneous microflora due to multiple dilutions of the test material with a liquid nutrient medium containing selective agents suitable for isolation and cultivation of bifidobacteria and lactobacilli, followed by the removal of allochthonous microflora by adding to the biomaterial diluted to 10 -6 , serum cro see the same individual from whom a sample of intestinal contents was taken, culturing it for 48 hours at 38 ° C and further transferring the resulting biomass to liquid culture media for culturing bifidobacteria and lactobacilli without the addition of selective agents. The biomass obtained after cultivation contains bifidobacteria and lactobacilli, which are true representatives of the indigenous microflora of the host, and is suitable for use as an autoprobiotic for the restoration and correction of microecological disorders of the intestines of humans and animals.
Способ осуществляют следующим образом. The method is as follows.
Пример 1. Пробоподготовка. Example 1. Sample preparation.
От момента последнего принятия пищи до взятия материала должно пройти не менее 8 часов. При этом исключают любые факторы, способные хотя бы потенциально влиять на состав микрофлоры хозяина (лекарственные препараты, стрессы, алкоголь и т.п.). Пробу содержимого толстой кишки отбирают в стерильный одноразовый пластиковый контейнер, специально предназначенный для этих целей. Для определения количества отобранного биоматериала контейнер взвешивают до и после забора материала. From the moment of the last meal to take the material should pass at least 8 hours. At the same time, any factors that can at least potentially affect the composition of the host microflora (drugs, stress, alcohol, etc.) are excluded. A sample of the contents of the colon is taken in a sterile disposable plastic container specifically designed for this purpose. To determine the amount of biomaterial selected, the container is weighed before and after the material is taken.
Пример 2. Деконтаминация биоматериала от транзиторной микрофлоры. Example 2. Decontamination of biomaterial from transient microflora.
Деконтаминацию биоматериала от транзиторной микрофлоры осуществляют путем последовательного десятикратного разведения испытуемого образца. Способ осуществляют следующим образом. Decontamination of the biomaterial from transient microflora is carried out by successive ten-fold dilution of the test sample. The method is as follows.
Готовят 2 параллельных ряда пробирок с последовательными десятикратными разведениями биоматериала любой жидкой питательной средой, пригодной для выделения и культивирования бифидобактерий и лактобацилл, например МРС или БС-средой, с добавлением селективных агентов. Первый ряд состоит из пробирок до разведения 10-9 и предназначен для оценки общего количественного содержания бифидобактерий и лактобацилл в исходном биоматериале. Второй ряд предназначен для получения аутопробиотика и состоит из пробирок с биоматериалом до разведения 10-6.Prepare 2 parallel rows of tubes with successive ten-fold dilutions of the biomaterial with any liquid nutrient medium suitable for isolation and cultivation of bifidobacteria and lactobacilli, for example, MRS or BS medium, with the addition of selective agents. The first row consists of tubes prior to dilution 10 -9 and is intended to assess the total quantitative content of bifidobacteria and lactobacilli in the original biomaterial. The second row is designed for autoprobiotic and consists of tubes with biomaterial before dilution 10 -6 .
Пример 3. Деконтаминации биоматериала от чужеродных микроорганизмов и получение аутопробиотика. Example 3. Decontamination of biomaterial from foreign microorganisms and obtaining autoprobiotic.
Известно, что среди механизмов, контролирующих состав микрофлоры хозяина, важную роль играют иммуноглобулины, прежде всего IgA, препятствующие адгезии и способствующие выведению чужеродных микроорганизмов во внешнюю среду. Подтверждением роли IgA в предотвращении колонизации слизистых посторонними микроорганизмами является тот факт, что 99% бактерий - представителей индигенной анаэробной флоры не покрыты секреторными иммуноглобулинами. Напротив, энтеробактерии, энтерококки и другие аэробные бактерии кишечника полностью покрыты IgA. В основе этого явления, по мнению D.van der Waaij, лежит феномен иммунологической толерантности к индигенной микрофлоре [2]. Нарушение процесса формирования иммунологической толерантности при дефектах микробной экологии беременных и их потомства ведет к снижению колонизационной резистентности. Установлено также, что слизистые желудочно-кишечного тракта начинают реагировать на вводимые микроорганизмы синтезом IgA только тогда, когда количество микроорганизмов составляет 106 и более клеток на грамм содержимого тонкой кишки [3]. Это позволило сделать вывод, что любые микроорганизмы, обнаруживаемые в пищеварительном тракте здорового человека в количествах менее 106 КОЕ/г являются транзиторными и их влияние на физиологические функции организма хозяина может быть проигнорировано. Естественно, это не касается микроорганизмов, относящихся к известным кишечным патогенам (сальмонеллы, шигеллы и др.).It is known that among the mechanisms controlling the composition of the host microflora, an important role is played by immunoglobulins, primarily IgA, which interfere with adhesion and promote the excretion of foreign microorganisms into the external environment. Confirmation of the role of IgA in preventing colonization of mucous membranes by extraneous microorganisms is the fact that 99% of bacteria - representatives of indigenous anaerobic flora are not covered with secretory immunoglobulins. In contrast, enterobacteria, enterococci and other aerobic gut bacteria are completely IgA coated. The basis of this phenomenon, according to D.van der Waaij, is the phenomenon of immunological tolerance to indigenous microflora [2]. Violation of the process of formation of immunological tolerance with defects in the microbial ecology of pregnant women and their offspring leads to a decrease in colonization resistance. It was also established that the mucous membranes of the gastrointestinal tract begin to respond to the introduced microorganisms by IgA synthesis only when the number of microorganisms is 10 6 or more cells per gram of the contents of the small intestine [3]. This allowed us to conclude that any microorganisms found in the digestive tract of a healthy person in amounts of less than 10 6 CFU / g are transient and their effect on the physiological functions of the host can be ignored. Naturally, this does not apply to microorganisms belonging to known intestinal pathogens (salmonella, shigella, etc.).
Исходя из этого для удаления чужеродных микроорганизмов, присутствующих в биоматериале в сопоставимых с индикаторными бактериями индигенной микрофлоры (бифидобактерии, лактобациллы и др.) количествах (более 106 КОЕ/г), а также для гарантированного удаления аллохтонных, включая патогенные, бактерий осуществляют 2-й этап деконтаминации.Based on this, in order to remove foreign microorganisms present in the biomaterial in amounts comparable to indicator bacteria of indigenous microflora (bifidobacteria, lactobacilli, etc.), amounts (more than 10 6 CFU / g), as well as to ensure the removal of allochthonous, including pathogenic, bacteria, carry out 2- the first stage of decontamination.
В пробирку из последнего десятикратного разведения биоматериала второго ряда, приготовленного с использованием жидкой питательной среды по примеру 2, добавляют сыворотку крови того же индивидуума, у которого был взят исследуемый биоматериал, в количестве 10% (возможно от 5 до 20%) от объема исследуемого образца. Содержимое пробирки тщательно перемешивают встряхиванием, герметично закрывают пробкой и помещают в термостат при 38oC на 48 часов. Затем пробу вытаскивают из термостата, делают контрольные посевы для определения количества бифидобактерий, лактобацилл и наличия посторонней микрофлоры. В случае отсутствия последней делают пересев материала (1:10) в жидкую питательную среду для культивирования бифидобактерий и лактобацилл без добавления селективных агентов и культивируют при 38oC в течение 48 часов. Полученную биомассу используют в качестве аутопробиотика. Добавление к разведенному биоматериалу сыворотки крови того же индивидуума позволяет иммуноглобулинам крови связать оставшуюся аллохтонную флору и получить биомассу бифидобактерий и лактобацилл, являющихся истинными представителями индигенной микрофлоры хозяина, пригодный для дальнейшего использования в качестве аутопробиотика для восстановления микрофлоры кишечника.In a test tube from the last ten-fold dilution of the second-row biomaterial prepared using the liquid nutrient medium of Example 2, add the blood serum of the same individual from whom the studied biomaterial was taken in an amount of 10% (possibly from 5 to 20%) of the volume of the test sample . The contents of the tube are thoroughly mixed by shaking, sealed with a stopper and placed in a thermostat at 38 o C for 48 hours. Then the sample is pulled out of the thermostat, make control crops to determine the number of bifidobacteria, lactobacilli and the presence of extraneous microflora. In the absence of the latter, the material is reseeded (1:10) in a liquid nutrient medium for the cultivation of bifidobacteria and lactobacilli without the addition of selective agents and cultivated at 38 o C for 48 hours. The resulting biomass is used as an autoprobiotic. Adding to the diluted biomaterial the blood serum of the same individual allows blood immunoglobulins to bind the remaining allochthonous flora and obtain the biomass of bifidobacteria and lactobacilli, which are true representatives of the indigenous host microflora, suitable for further use as an autoprobiotic to restore intestinal microflora.
Контроль полученного аутопробиотика осуществляют общепринятым методом посева на селективные питательные среды Эндо, Плоскирева, МПА и ТГС для определения посторонней микрофлоры - на этих средах рост в аэробных условиях должен отсутствовать. Для оценки количественного содержания отдельно бифидобактерий и лактобацилл делают посевы на среды МРС и бифидум-среду с добавлением соответствующих селективных агентов. Все определения ведут общепринятыми методами. The control of the obtained autoprobiotic is carried out by the generally accepted method of seeding on selective nutrient media Endo, Ploskirev, MPA and TGS to determine extraneous microflora - on these media growth should be absent under aerobic conditions. To assess the quantitative content of bifidobacteria and lactobacilli separately, crops are made on medium MPC and bifidum medium with the addition of appropriate selective agents. All definitions are generally accepted methods.
Таким образом, предложен способ получения аутопробиотика на основе естественных микробиоценозов бифидобактерий и лактобацилл толстой кишки человека и животных. Пробиотик может быть использован для лечения дисбактериоза и заболеваний, связанных с нарушениями нормальной микрофлоры кишечника, как у человека, так и у ценных экземпляров животных и птиц. Thus, a method for producing an autoprobiotic based on natural microbiocenoses of bifidobacteria and lactobacilli of the colon of humans and animals is proposed. The probiotic can be used to treat dysbiosis and diseases associated with disorders of the normal intestinal microflora, both in humans and in valuable specimens of animals and birds.
Список литературы:
1. Авторское свидетельство СССР N 1286212, A 61 K 35/74, 30.01.87.List of references:
1. USSR author's certificate N 1286212, A 61 K 35/74, 01.30.87.
2. Van der Vaaij D. Evidence of imminoregulation of the composition of intestinal microflora and its practical consequences. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1988, vol. 7. 2. Van der Vaaij D. Evidence of imminoregulation of the composition of intestinal microflora and its practical consequences. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1988, vol. 7.
3. Lorenz A. Interaction of some species of the gut microflora and their influence on the amount of IgA in the gut lumen of gnotobiotic rats. Abstr. XII Intern. Sympos. Gnotobiology, Honolulu, June 23-28, 1966. 3. Lorenz A. Interaction of some species of the gut microflora and their influence on the amount of IgA in the gut lumen of gnotobiotic rats. Abstr. XII Intern. Sympos. Gnotobiology, Honolulu, June 23-28, 1966.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU99105814A RU2139070C1 (en) | 1999-03-31 | 1999-03-31 | Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU99105814A RU2139070C1 (en) | 1999-03-31 | 1999-03-31 | Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2139070C1 true RU2139070C1 (en) | 1999-10-10 |
Family
ID=20217483
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU99105814A RU2139070C1 (en) | 1999-03-31 | 1999-03-31 | Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2139070C1 (en) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005011714A1 (en) * | 2003-08-01 | 2005-02-10 | Anidral S.R.L. | Process for the selective withdrawal of bacterial strains adhering to intestinal mucosa through endoscopy |
| RU2460778C1 (en) * | 2010-12-30 | 2012-09-10 | Александр Николаевич Суворов | Method for producing autoprobiotic of enterocuccus faecium being representative of indigenic host intestinal microflora |
| RU2505304C2 (en) * | 2010-06-22 | 2014-01-27 | Олег Ювенальевич Кузнецов | Method for preparing autoprobiotic containing living bifidus bacteria and lactic acid bacilli |
| RU2580002C1 (en) * | 2015-05-19 | 2016-04-10 | Дмитрий Евгеньевич Денисов | Method of producing autoprobiotic containing living bifidus bacteria and lactic acid bacilli |
| RU2675315C1 (en) * | 2018-04-17 | 2018-12-18 | Общество с ограниченной ответственностью Торговый дом "ЭкоФарм сервис" | Method of selective allocation of auto strains of lactobacillus speciales from clinical material |
| RU2727444C1 (en) * | 2019-10-24 | 2020-07-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of isolating and preserving total intestinal microbiota for transplantation |
| RU2734896C2 (en) * | 2018-12-28 | 2020-10-26 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") | Method for preparing an autoprobiotic based on an anaerobic consortium of bacteria |
| RU2772351C1 (en) * | 2021-09-18 | 2022-05-19 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Донской государственный технический университет», (ДГТУ) | Method for identifying promising probiotic strains from natural media |
-
1999
- 1999-03-31 RU RU99105814A patent/RU2139070C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Коршунов В.М. Проблема регуляции микрофлоры кишечника. - Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. - М., С-ИНФО, 1995, N 3, с.48-53. Соколова К.Я. и др. Методика оценки состояния микрофлоры толстой кишки с использованием ЭВМ. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. - М.: С-ИНФО, 1988, N 11, с.11-16. Van der Vaaij D.Evidence of immunoregulation of the composition of intestinal microflora and its practical consequences. Eur. J.Clin.Microbiol. Infect. Dis., 1988, vol. 7. Lorenz A.Interaction of some species of the gut microflora and their influence on the amount of IgA in the gut lumen of gnotobiotic rats. Abstr. XII Intern. Sympos. Gnotobiology, Honolulu, June 23-28, 1966. * |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005011714A1 (en) * | 2003-08-01 | 2005-02-10 | Anidral S.R.L. | Process for the selective withdrawal of bacterial strains adhering to intestinal mucosa through endoscopy |
| RU2505304C2 (en) * | 2010-06-22 | 2014-01-27 | Олег Ювенальевич Кузнецов | Method for preparing autoprobiotic containing living bifidus bacteria and lactic acid bacilli |
| RU2460778C1 (en) * | 2010-12-30 | 2012-09-10 | Александр Николаевич Суворов | Method for producing autoprobiotic of enterocuccus faecium being representative of indigenic host intestinal microflora |
| RU2580002C1 (en) * | 2015-05-19 | 2016-04-10 | Дмитрий Евгеньевич Денисов | Method of producing autoprobiotic containing living bifidus bacteria and lactic acid bacilli |
| RU2675315C1 (en) * | 2018-04-17 | 2018-12-18 | Общество с ограниченной ответственностью Торговый дом "ЭкоФарм сервис" | Method of selective allocation of auto strains of lactobacillus speciales from clinical material |
| RU2734896C2 (en) * | 2018-12-28 | 2020-10-26 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") | Method for preparing an autoprobiotic based on an anaerobic consortium of bacteria |
| RU2727444C1 (en) * | 2019-10-24 | 2020-07-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of isolating and preserving total intestinal microbiota for transplantation |
| RU2772351C1 (en) * | 2021-09-18 | 2022-05-19 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Донской государственный технический университет», (ДГТУ) | Method for identifying promising probiotic strains from natural media |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2126446C1 (en) | Strain of lactic acid bacterium lactobacillus acidophilus and a composition against diarrhea | |
| Havenaar et al. | Probiotics: a general view | |
| Sharma et al. | Identification and probiotic potential of lactic acid bacteria from camel milk | |
| DE60133581T2 (en) | PROBIOTIC COMPOUNDS DERIVED BY LACTOBACILLUS CASEI KE01 STEM | |
| RU2316586C2 (en) | PROBIOTIC STRAINS OF Lactobacillus (VARIANTS) AND THEIR USING | |
| Barba-Vidal et al. | Evaluation of the probiotic strain Bifidobacterium longum subsp. infantis CECT 7210 capacities to improve health status and fight digestive pathogens in a piglet model | |
| Spring | Effects of mannanoligosaccharide on different cecal parameters and on cecal concentrations of enteric pathogens in poultry | |
| KR20170118828A (en) | Therapeutic and prophylactic compositions produced by intestinal microbial populations | |
| CA2689360A1 (en) | Mammalian milk microorganisms, compositions containing them and their use for the treatment of mastitis | |
| KR20010022906A (en) | Control of enterohemorrhagic e. coli o157:h7 in cattle by probiotic bacteria | |
| SE511524C2 (en) | Lactobacillus casei rhamnosus strain and pharmaceutical preparation for the control of pathogenic intestinal bacteria | |
| JPH09506625A (en) | A symbiont for the regulation of Salmonella | |
| Yu et al. | Lactobacillus cells in the rabbit digestive tract and the factors affecting their distribution | |
| WO2020063531A1 (en) | Lactobacillus paracasei et-22 and use thereof | |
| Ostad et al. | Live and heat-inactivated lactobacilli from feces inhibit Salmonella typhi and Escherichia coli adherence to Caco-2 cells | |
| Nair et al. | Effect of Propionibacterium freudenreichii on Salmonella multiplication, motility, and association with avian epithelial cells | |
| AL-Saadi | Estimation of minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) of cell-free extracts of Bifidobacterium species against methicillin-resistant Staphylococcus aureus in vitro | |
| RU2139070C1 (en) | Method of preparing autoprobiotic containing living bifid bacteria and lactobacilli | |
| CN109486732B (en) | Bifidobacterium longum and application thereof | |
| Bohez et al. | Long-term colonisation–inhibition studies to protect broilers against colonisation with Salmonella Enteritidis, using Salmonella Pathogenicity Island 1 and 2 mutants | |
| RU2505304C2 (en) | Method for preparing autoprobiotic containing living bifidus bacteria and lactic acid bacilli | |
| US7744868B2 (en) | Composition and method for inhibiting Salmonella and Campylobacter colonization in poultry | |
| RU2605626C2 (en) | Method of producing bacterial preparation with probiotic activity | |
| Olajugbagbe et al. | Evaluation of the effects of Pediococcus acidilactici isolated from Wara, a Nigerian milk product, in the prevention of diarrhea and the modulation of intestinal microflora in Wistar rats | |
| Getachew et al. | Effect of probiotic Lactobacillus species supplementation on productive traits of white leghorn chicken |